Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Psödotip H5 Kuş Gribi Virüslerinin Kalsiyum Fosfat Transfeksiyon Yöntemi ile Hazırlanması ve Antikor Nötralize Edici Aktivitesinin Ölçülmesi

2.6K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/62626

⸱

22 Kasım 2021

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Nanjing Advanced Academy of Life and Health, 2Institute of Animal Bio-technology, Jilin Academy of Agricultural Sciences, 3National Clinical Research Center for Infectious Diseases, Shenzhen Third People’s Hospital, Southern University of Science and Technology, 4CAS Key Laboratory of Molecular Virology and Immunology, Institut Pasteur of Shanghai, Chinese Academy of Sciences, University of Chinese Academy of Sciences

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Burada psödovirüs paketlemesi ve antikor nötralize edici aktivitenin ölçümü için bir protokol açıklanmaktadır.

Özet

1996 yılından bu yana, A / kaz / Guangdong / 1 / 96 soyundan gelen yüksek derecede patojenik kuş gribi (HPAI) H5 virüsleri kümes hayvanlarında ve yabani kuşlarda grip salgınlarına neden olmaktadır. Bazen, insanlar da buna kurban gider ve bu da yüksek ölüm oranıyla sonuçlanır. Bununla birlikte, HPAI virüsü araştırması, biyogüvenlik seviye 3 laboratuvarlarında ele alınması gerektiği düşünülerek sıklıkla engellenmektedir. Bu sorunu ele almak için, H5 HPAI çalışmalarının bazı deneylerinde psödovirüsler vahşi tip virüslere alternatif olarak benimsenmiştir. Psödovirüsler, H5 HPAI virüslerine karşı nötralize edici antikorları incelemek için ideal araçlar olduğunu kanıtlamıştır. Bu protokol, H5 HPAI psödovirüs preparatlarının ve psödovirüs nötralizasyon testlerinin prosedürlerini ve kritik adımlarını açıklamaktadır. Ayrıca, bu testlerin sorun giderme, sınırlama ve modifikasyonları da ele alınmaktadır.

Giriş

1996 yılından bu yana, A / kaz / Guangdong / 1 / 96 soyundan gelen yüksek derecede patojenik kuş gribi (HPAI) H5 virüsleri, kümes hayvanlarında ve yabani kuşlarda sürekli grip salgınlarına neden olmakta ve küresel kanatlı hayvan endüstrisinde muazzam sosyo-ekonomik kayıplara neden olmaktadır. Bazen, insanlar da onunla enfekte olurlar, yüksek bir ölüm oranıile karşı karşıya kalırlar 1,2. Bununla birlikte, HPAI virüsü araştırması, biyogüvenlik seviye 3 laboratuvarlarının dışında ele alınamayacağı için sıklıkla engellenmektedir. Bu sorunu ele almak için, H5 HPAI çalışmalarının bazı deneylerinde psödovirüsler vahşi tip virüslere alternatif olarak benimsenmiştir. Psödovirüsler biyogüvenlik seviye 2 laboratuvarlarında uygulanabilecek kadar güvenlidir.

H5 HPAI psödovirüsleri, vekil virüs çekirdekleri, influenza virüslerinden yüzey glikoproteinleri içeren lipit zarfları ve muhabir genlerinden oluşan kimerik virüslere aittir. Psödovirüs çekirdekleri genellikle lentiviral insan immün yetmezlik virüsü (HIV), murin lösemi virüsü (MLV) gibi retrovirüsler ve veziküler stomatit virüsü (VSV)3 türevlerinden türetilir. Spesifik olarak, HIV-1 paketleme sistemi, sağlanan birincil genlerin tıkaç ve pol olduğu influenza psödovirüs üretmek için yaygın olarak kullanılmaktadır. HIV gag geni çekirdek proteinleri eksprese eder. Pol geni, her ikisi de transdübe hücrelerde muhabir genin ekspresyonu için gerekli olan integraz ve ters transkriptazı eksprese eder. Vekil virüsün genomunu taklit eden muhabir gen, RNA formunda psödovirüs çekirdeğine sarılır. Muhabir gen, konakçı hücrelerdeki proteini eksprese edecektir. Muhabir genlerin gen ekspresyon seviyeleri, psödovirüs enfeksiyonu etkinliğini ölçmek için kullanılabilir 3,4. Birincil raporlayıcı, dönüştürülmüş hücrelerdeki bağıl lüminesans birimlerini (RLU) veya göreceli lusiferaz aktivitesini (RLA) ölçmek için ateşböceği lusiferazdır. LacZ, Gaussia ve Renilla lusiferaz gibi diğer muhabirler de kullanılır, sadece daha az ölçüde5.

Psödovirüsler, H5 HAPI virüslerine karşı nötralize edici antikorları incelemek için ideal araçlardır. Nötralize edici antikor gücünü ölçmek için, psödovirüs nötralizasyonu (PN) testleri6 kullanılır. Hemaglutinin (HA) ve nöraminidaz (NA), influenza A virüsü 7,8'in yüzeyindeki glikoproteinlerdir. HA, reseptör bağlanması için küresel bir kafa alanı ve membran füzyonu için bir kök alanından oluşur. NA proteini, virüs salınımını kolaylaştırmak için sialidaz aktivitesine sahiptir 7,8. Bir PN testi, HA proteinlerine yönelik nötralize edici antikorları ölçebilir. HA'nın baş ve kök bölgesine yönelik nötralize edici antikorlar viral bağlanma ve giriş testleri ile de tespit edilebilir. Vahşi tip virüslerle karşılaştırıldığında, psödovirüs nötralizasyon deneyleri daha hassas tespit değerlerine sahiptir, Seviye 2 biyogüvenlik laboratuvarında güvenli bir şekilde ele alınabilir ve pratikte genellikle kullanımı daha kolaydır.

Bu protokol, H5 HPAI psödovirüs preparatlarının ve PN tahlillerinin prosedürlerini ve kritik adımlarını ayrıntılı olarak sunmaktadır. Ayrıca, bu testlerin sorun giderme, sınırlama ve modifikasyonları da ele alınmaktadır. Bu çalışmada, H5N1 HPAI virüslerinden A/Tayland/1(KAN)-1/2004(TH) suşu örnek olarak kullanılmıştır. Tahlillerde kullanılan immün serumları elde etmek için, bu protokol TH suşundan kaynaklanan HA proteinini fareleri immünojen olarak seçti.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Psödovirüs ile ilgili tüm deneysel operasyonlar Şangay Çin Bilimler Akademisi Pasteur Enstitüsü'nde (IPS, CAS) ABSL2 koşulu altında gerçekleştirildi. Hayvan deneyleri, IPS, CAS'ın Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi onaylı hayvan protokollerine dayanarak gerçekleştirilmiştir.

1. Kalsiyum-fosfat transfeksiyonu ile psödovirüs ambalajı

  1. Tam DMEM ortamında HEK293FT hücrelerin tek hücreli süspansiyonlarını (mL başına 9 x 105) yapın (Tablo 1). Tek hücreli süspansiyonların 10 mL'sini bir T75 şişesine ekleyin, hücreleri transfeksiyondan önce 20 saat boyunca 37 ° C,% 5 karbondioksit (CO2) inkübatörde inkübe edin.
    NOT: Düşük HEK293FT pasaj (<20 pasaj) önerilir. Hücre tek katmanının% 80-90 oranında akıcı olduğundan emin olun.
  2. Transfeksiyondan 2 saat önce ortamı klorokin (100 μM) içeren 10 mL taze komple ortam ile değiştirin.
  3. Reaktifleri ve plazmid DNA'sını Tablo 2 ve Şekil 1'de gösterildiği gibi karıştırın: ddH 2 O, pCMV / R-HA, pCMV / R-NA, pHR-Luc, pCMV Δ 8.9, 2.5 M CaCl2ve 2x HEPES tamponu. Pipetleri yavaşça 5 kez yukarı ve aşağı kaydırın, karışımı oda sıcaklığında (RT) 20 dakika boyunca inkübe edin.
  4. Karışımı hücrelerin üzerindeki ortama aktarın ve şişeyi yavaşça sallayın. Hücre inkübatöründeki hücreleri 15 saat boyunca inkübe edin.
  5. Ortamı 15 mL taze tam DMEM ortamı ile değiştirin. Hücreleri 37 ° C,% 5 CO2 inkübatörde 65 saat boyunca inkübe edin.
    NOT: Ortamın rengi açık turuncu veya hafif sarı olacaktır ve hücrenin en az% 80'i ters ışık mikroskobu altında sitopatik etkiyi (CPE) göstermelidir.
  6. Süpernatanı hasat edin ve 4 ° C'de 20 dakika boyunca 2095 x g'de santrifüj edin. Süpernatanı toplayın, aliquot edin ve -80 ° C'de saklayın.

2. İnfluenza psödovirüsünün HA, NA ve HIV-1 p24 protein ekspresyonunun tespiti

  1. Hemaglutinin (HA) testi ile HA protein ekspresyonunu tespit edin.
    1. 2-12 sütunlarına, 96 delikli yuvarlak tabanlı bir plakanın A, B ve C satırlarına 50 μL PBS ekleyin.
      NOT: Satır A, B ve C 3 bağımsız çoğaltma testine aittir ve sütun 12 negatif denetim olarak kullanılır.
    2. Sütun 1'in kuyucuklarına 100 μL psödovirüs ekleyin. Sütun 1'den Sütun 2'ye 50 μL aktarın, 5 kez yukarı ve aşağı pipetleme yaparak iyice karıştırın, son sütun 11'e kadar iki katlı seyreltmeleri gerçekleştirin ve fazladan 50 μL'yi sütun 11'den atın.
    3. Her bir oyuğa 50 μL% 0.5 eritrosit ekleyin, hafifçe iki kez yukarı ve aşağı pipetleyin. Plakayı RT'de 30-60 dakika boyunca veya negatif kontrolün eritrositleri kuyunun dibindeki normal lekeleri oluşturana kadar inkübe edin.
    4. Psödovirüsün HA titrelerini gözlemleyin ve kaydedin.
      NOT: Psödovirüslerin HA ünitesi, kırmızı kan hücrelerinin% 100 hemaglutinasyonuna neden olabilen virüsün en yüksek seyreltme faktörüdür.
  2. Batı lekesi testi ile HA ve NA protein ekspresyonunu tespit edin.
    NOT: Tüm batı lekesi adımları Moleküler klonlama el kitabına (4. baskı) göre gerçekleştirilir.
  3. HIV-1 p24 protein ekspresyonunu HIV-1 p24 ELISA kiti ile tespit edin (Malzeme Tablosu).
    1. 450 μL psödovirüs örneğine 50 μL lizis tamponu ekleyin. İyice karıştırın.
    2. Mikroplakanın her bir kuyucuğuna 300 μL yıkama tamponu ekleyin. Yıkama tamponunu tamamen çıkarmak için plakayı ters çevirin. Yıkamayı 5 kez tekrarlayın.
    3. Standarttan 200 μL ekleyin ve her bir kuyucuğa ayrı ayrı numune alın. Onları gece boyunca 37 ° C'de veya 2 saat boyunca inkübe edin.
    4. Plakanın içeriğini aspire edin ve plakayı adım 2.3.2'de açıklandığı gibi yıkayın.
      NOT: Alt tabaka olarak kullanmak için tahlil plakasının bir kuyucuğunu boş bırakın.
    5. Her bir kuyucuğa 200 μL p24 dedektör antikorları ekleyin. Onları 1 saat boyunca 37 ° C'de inkübe edin. Plakayı adım 2.3.2'de açıklandığı gibi aspire edin ve yıkayın.
    6. Her bir oyuğa 100 μL streptavidin-Peroksidaz çalışma çözeltisi ekleyin ve bunları 30 dakika boyunca 37 ° C'de inkübe edin. Plakayı adım 2.3.2'de açıklandığı gibi aspire edin ve yıkayın.
    7. Substrat boş kuyusu da dahil olmak üzere her bir kuyucuğa 100 μL alt durum çalışma çözeltisi ekleyin ve bunları 30 dakika boyunca 37 ° C'de inkübe edin.
      NOT: Kuyularda mavi renk gelişecektir.
    8. Her bir kuyucuğa 100 μL durdurma tamponu ekleyin.
      NOT: Mavi renk hemen sarıya dönüşecektir.
    9. Optik yoğunluğu 15 dakika içinde 450 nm'de okuyun. Psödovirüsün p24 titrelerini kaydedin

3. Psödovirüs titrasyonu

  1. MDCK hücrelerinin tek hücreli süspansiyonlarını (mL başına 5 x 104 ) tam DMEM ortamında yapın, 96 delikli düz tabanlı bir plakanın farklı kuyucuklarına 1250, 2500, 5000, 10000, 20000 ve 40000 hücre ekleyin. Hücreleri 20 saat boyunca 37 ° C,% 5 CO2 inkübatörde inkübe edin.
  2. Psödovirüsü -80 ° C buzdolabından çıkarın, buzun üzerinde çözün ve psödovirüsü vorteks.
  3. 96 delikli yuvarlak tabanlı plakanın her bir kuyucuğuna 6 HAU (6x HA birimi) psödovirüs ekleyin ve her bir kuyucuğu 120 μL'ye kadar tam DMEM ile doldurun.
  4. İyice karıştırmak için karışımı 5 kez yukarı ve aşağı pipetleyin. Karışım plakasını 37 °C, % 5 CO2 inkübatörde 1 saat boyunca inkübe edin.
  5. Karışımın 100 μL'sini 96 delikli plakadaki hücrelere aktarın. Hücre kültürü plakasını virüs enfeksiyonundan sonra 48 saat, 60 saat ve 72 saat boyunca inkübatöre geri koyun.
  6. Plakayı inkübatörden çıkarın ve lusiferaz tahlilini yapın (Malzeme Tablosu).
  7. Ortamı plakanın kuyucuklarından dikkatlice çıkarın. Hücreleri 200 μL PBS ile durulayın ve PBS'yi mümkün olduğunca çıkarın.
    NOT: Plakayı çevirin ve süpernatantı emici kağıda ters tokat atarak atın. Test hücresi hattı tabana sıkıca yapışamazsa, orta aspirasyonu dikkatlice çıkarın.
  8. Her bir kuyucuğa 50 μL lizis tamponu ekleyin ve kültür plakasını birkaç kez sallayın. Plakayı gece boyunca -80 ° C'de saklayın.
    NOT: 1x lizis tamponunu yapmak için 1 hacim 5x lizis tamponunu 4 hacim su ile karıştırın. Kullanmadan önce 1x lizis tamponunu RT ile dengeleyin. Hücrelerin lizis tamponu ile tamamen kaplandığından emin olmak için plakayı sallayın. Tek donma-çözme işlemi, hücrenin tamamen lize edilmesine yardımcı olabilir.
  9. Plakayı çıkarın, RT'de 2 saat dengeleyin.
    NOT: Hücre tamamen lize edilmelidir.
  10. Plakayı birkaç kez yavaşça sallayın ve tüm hücre lizatlarını opak 96 delikli plakalara aktarın.
  11. Her bir kuyucuğa 50 μL substrat ekleyin, plakayı birkaç kez hafifçe sallayın ve substrat ile lizis tamponunu iyice karıştırın.
  12. Bir luminometre kullanarak 5 dakika içinde üretilen ışığı ölçün. Psödovirüsün lusiferaz titrelerini kaydedin.
    NOT: Uygun bir substrat eklendiğinde, lusiferinin lusiferaz enzimi tarafından oksilusiferine dönüştürüldüğü kimyasal bir reaksiyon yoluyla ışık bir yan ürün olarak yayılır. Üretilen ışık miktarı, lusiferaz enziminin miktarı ile orantılıdır.

4. İmmün serumlar hazırlığı

NOT: İmmün serum, hücre ile ilgili deneyler için kullanılacaktır ve deneysel operasyon aseptik koşullar altında gerçekleştirilmelidir.

  1. 12 sekiz haftalık dişi BALB / c faresi hazırlayın. Fareleri eşit olarak iki gruba ayırın.
    NOT: Bir grup DDV grubu, diğeri negatif kontrol grubuydu.
  2. DDV grubu immünizasyonu: 0. ve 3. haftalarda A / Tayland / (KAN-1) / 2004 (TH) HA proteinini kodlayan 100 μg kodon için optimize edilmiş bir DNA plazmidi ile kas içinden iki kez primer ve 6. haftada 512 HAU TH virüs benzeri partiküller (VLP) ile bir kez intraperitoneal olarak artırın.
  3. Kontrol grubu immünizasyonu: 0. ve 3. haftalarda 100 μg boş vektör plazmid DNA'sı ile kas içinden iki kez primer ve 6. haftada HIV-1 gag VLP ile intraperitoneal olarak bir kez artar.
  4. Son aşılamadan 2 hafta sonra fare kanını toplayın.
    NOT: Burada, fareler kan toplama sırasında pentobarbital sodyum (65 mg / kg) ile uyuşturuldu. Submandibuler damardan kan alındıktan sonra, fareler hemen CO2 ile ötenazi yapıldı.
  5. Kanı RT'de 2 saat, ardından gece boyunca 4 ° C'de tutun. 4 °C'de 10 dakika boyunca 900 x g'de santrifüj yapın ve süpernatanı toplayın. Serumu 30 dakika boyunca 56 ° C'ye yerleştirerek devre dışı bırakın.
  6. İmmün serumları kullanım için -80 ° C'lik bir buzdolabında saklayın.
    NOT: Fare bağışıklamasının başlıca prosedürlerini açıklayan akış şeması için Ek Şekil 1'e bakın.

5. Psödovirüs nötralizasyonu (PN) testi

  1. Tam DMEM ortamında MDCK hücrelerinin tek hücreli süspansiyonlarını (mL başına 5 x 104 ) yapın ve 96 delikli düz tabanlı bir plakanın her bir kuyucuğuna 100 μL hücre süspansiyonu ekleyin. Hücreleri 20 saat boyunca 37 ° C,% 5 CO2 inkübatörde inkübe edin.
  2. Psödovirüs ve serumu -80 ° C buzdolabından çıkarın, buzun üzerinde çözün ve iyice girdap yapın.
  3. Serumu tam ortamda 20 kez seyreltin ve 2-10 sütunlarından 96 delikli yuvarlak tabanlı bir plakanın kuyucuklarına 100 μL tam DMEM ortamı ekleyin.
  4. Seyreltilmiş serumların 200 μL'sini sütun 2'nin kuyucuklarına ekleyin, 100 μL'yi sütun 2'den sütun 3'e aktarın, serumu sütun 2'den sütun 10'a art arda 1:20, 1:40, 1:80 vb. olarak seyreltin ve 100 μL'yi sütun 10'dan atın.
  5. Negatif kontrol olarak sütun 11'in kuyucuklarına 100 μL DMEM tam ortamı ekleyin.
  6. Her bir oyuğa 100 μL psödovirüs ekleyin, karışımı 5 kez iyice yukarı ve aşağı pipetleyin ve karışım plakasını 1 saat boyunca 37 ° C,% 5 CO2 içinde inkübe edin.
  7. Karışımın 100 μL'sini 96 delikli yuvarlak tabanlı plakadan 96 delikli hücre kültürü plakasının karşılık gelen kuyucuğuna aktarın. Plakayı 60 saat boyunca inkübatöre (37 ° C,% 5 CO2) geri koyun.
  8. Plakayı inkübatörden çıkarın. Lusiferaz testini 3.7-3.12 adımlarında açıklandığı gibi gerçekleştirin.

6. Psödovirüs bağlanma testi

  1. Tam DMEM ortamında MDCK hücrelerinin tek hücreli süspansiyonlarını (mL başına 4 x 104 ) yapın ve 96 delikli düz tabanlı bir plakada her bir kuyucuğa 100 μL hücre süspansiyonları ekleyin. Hücreleri 37 ° C'de,% 5 CO2'de 20 saat boyunca inkübe edin.
  2. Psödovirüsü DMEM'de serumla inkübe edin ve gece boyunca 4 ° C'de% 1 BSA içerir.
    NOT: Karışımın hacmi 100 μL'dir.
  3. MDCK hücrelerini, 1 saat boyunca 4 °C'de %1 BSA içeren DMEM kuyucuğu başına 100 μL ile bloke edin.
  4. Psödovirüs ve serum karışımını (100 μL) MDCK tek katmanına aşılayın ve 2 saat boyunca 4 ° C'de inkübe edin.
  5. Bağlanmamış virüsleri temizlemek için hücre plakasını% 1 BSA içeren PBS ile 4 kez yıkayın.
  6. RT'de 100 μL lusiferaz lizis tamponu ile hücreleri 30 dakika boyunca lize edin.
  7. Yukarıda açıklandığı gibi bir HIV-1 p24 ELISA kiti ile hücrelerdeki bağlı virüs miktarını ölçün (bölüm 2.3).

7. Viral girişin değerlendirilmesi

  1. Tam DMEM ortamında MDCK hücrelerinin tek hücreli süspansiyonlarını (mL başına 5 x 104 ) yapın ve 96 delikli düz tabanlı bir plakanın her bir kuyucuğuna 100 μL hücre süspansiyonu ekleyin. Tahlilden önce hücreleri 37 ° C'de,% 5 CO2'de 20 saat boyunca inkübe edin.
  2. Psödovirüsü (100 μL) 6 saat boyunca 4 °C'de 96 delikli bir plakada bir MDCK tek katmanlı üzerine aşılayın.
  3. Bağlanmamış psödovirüsleri çıkarmak için hücre plakasını% 1 BSA içeren PBS ile 4 kez yıkayın.
  4. Tek katmana% 1 BSA içeren DMEM'deki sahte aşılama farelerinden seri olarak seyreltilmiş immün serumların veya serumların 100 μL'sini ekleyin ve hücreyi 2 saat boyunca 4 ° C'de inkübe edin.
  5. Hücre süpernatanını çıkarın ve hücre kültürü plakasını% 1 BSA içeren PBS ile 4 kez yıkayın.
  6. Hücrelere taze DMEM ekleyin ve 37 ° C,% 5 CO2 inkübatörde 60 saat inkübe edin.
  7. Hücrelerin bağıl lusiferaz aktivitesini (RLA) 3.7-3.12 adımlarında açıklandığı gibi ölçün.
    NOT: RLA ile belirtildiği gibi viral giriş, serumların yokluğunda elde edilen okumanın yüzdesi olarak ifade edildi ve bu% 100 olarak ayarlandı.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

İnfluenza psödovirüsünün HA, NA ve HIV-1 p24 protein ekspresyonu
Viral paketleme etkinliğini belirlemek için, influenza psödovirüs stokları ilk olarak HA testi ile tespit edildi (Şekil 2A). İnfluenza psödovirüslerinin mililitresi başına HA birimi 643'tür (Tablo 3). Ha, NA ve HIV-1 p24 protein ekspresyonunu test etmek için Western-blot testi ve sandviç ELISA testleri kullanıldı. Daha sonra HA biriminin oranları ve psödovirüsler için gag p24 miktarı hesapla...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

HEK293FT hücreler genellikle psödovirüs üretmek için paketleme hücreleri olarak kullanılır. Hücre kültürü sırasında düzenli mikoplazma tespiti esastır. Mikoplazma kontaminasyonu, psödovirüs verimini büyük ölçüde azaltabilir ve bazen sıfıra yakın olabilir. Diğer kontaminasyonlarla karşılaştırıldığında, mikoplazma kontaminasyonları pH değeri değişikliklerine veya hücre kültürü ortamının bulanıklığına yol açmaz. Yüksek konsantrasyonda mikoplazma bile çıplak gözle veya mikroskop altında görülemez. Mikoplazma tespitinin üç po...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

Bu çalışma, Jiangsu eyaleti İnovasyon Kapasite Geliştirme Projesi (BM2020019), Shenzhen Bilimsel ve Teknolojik Projesi (No. JSGG20200225150702770), Çin Bilimler Akademisi Stratejik Öncelikli Araştırma Programı (XDB29030103), Guangdong Bilimsel ve Teknolojik Projesi (No. 2020B1111340076) ve Shenzhen Körfezi Laboratuvarı Açık Araştırma Programı (No. SZBL202002271003).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 1 Chiken EritrositBiyo-kanalBC-RBC-C001Reaktifi
96 oyuklu hücre kültürü plakaları (düz tabanlı)Thermo fisher bilimsel167008sarf malzemesi
96 oyuklu hücre kültürü plakaları (yuvarlak tabanlı)Thermo fisher scientific163320sarf malzemesi
Allegra X-15RBeckman coulter--Ekipman/Santrifüj
BD İnsülin ŞırıngalarıBD324910sarf malzemesi
Kalsiyum Klorür SusuzAMRESCO1B1110-500GReaktif
klorokin difosfatSelleckS4157Reaktif
Dulbecco' s Modifiye Eagle Medium (DMEM)Gibco12100-046Reaktif
Fetal Sığır SerumuGibco16000-044Reaktif
HEK293FTGibcoR700-07Hücre hattı
HEPES SERBEST ASİTAMRESCO0511-250GReaktif
HIV-1 p24 Antijen ELISAZeptoMetrix801111Reaktif kiti
Luciferase Test Sistemi Dondurucu PaketPromegaE4530Reaktif kiti
MDCK.1ATCCCRL-2935Hücre hattı Mikrosantrifüj
Tüpleri 1.5 mLThermo fisher scientific509-GRD-Qsarf malzemesi
Nunc Konik Santrifüj Tüpleri 15 mLThermo fisher scientific339650sarf malzemesi
Nunc Konik Santrifüj Tüpleri 50 mLThermo fisher scientific339652sarf malzemesi
Nunc EasYFlask 75 cm2Thermo fisher bilimsel156499sarf malzemesi
Penisilin-StreptomisinGibco15140-122Reaktif
Pipet Uçları (10 μ L)Thermo fisher scientificTF102-10-Qsarf malzemesi
Pipet Uçları (100 μ L)Thermo fisher scientificTF113-100-Qsarf malzemesi
Pipet Uçları (1000 μ L)Thermo fisher scientificTF112-1000-Qsarf malzemesi
Serolojik pipetler (5 mL)Thermo fisher scientific170355Nsarf malzemesi
Serolojik pipetler (10 mL)Thermo fisher scientific170356Nsarf malzemesi
Tripsin/EDTAGibco25200-072Reaktif
Varioskan FlashThermo fisher Bilimsel-Ekipman / Mikroplaka okuyucu
Su Ceketi İnkübatörüThermo fisher scientific3111Ekipman / Hücre inkübatörü
Pentobarbital sodyum tuzuSigma57-33-0Reaktif

Kaynaklar

  1. Wang, G., et al. DNA prime and virus-like particle boost from a single H5N1 strain elicits broadly neutralizing antibody responses against head region of h5 hemagglutinin. The Journal of Infectious Diseases. 209 (5), 676-685 (2014).
  2. Wang, G., Yin, R., Zhou, P., Ding, Z. Combination of the immunization with the sequence close to the consensus sequence and two DNA prime plus one VLP boost generate H5 hemagglutinin specific broad neutralizing antibodies. Plos One. 12 (5), 0176854(2017).
  3. Li, Q., Liu, Q., Huang, W., Li, X., Wang, Y. Current status on the development of pseudoviruses for enveloped viruses. Reviews in Medical Virology. 28 (1), 1963(2018).
  4. Duvergé, A., Negroni, M. Pseudotyping lentiviral vectors: When the clothes make the virus. Viruses. 12 (11), 1311(2020).
  5. Carnell, G. W., Ferrara, F., Grehan, K., Thompson, C. P., Temperton, N. J. Pseudotype-based neutralization assays for influenza: A systematic analysis. Frontiers in Immunology. 6 (161), (2015).
  6. Trombetta, C., Perini, D., Mather, S., Temperton, N., Montomoli, E. Overview of serological techniques for influenza vaccine evaluation: Past, present and future. Vaccines. 2 (4), 707-734 (2014).
  7. Wei, C. J., et al. Next-generation influenza vaccines: opportunities and challenges. Nature Reviews Drug Discovery. 19 (4), 239-252 (2020).
  8. Krammer, F., et al. Influenza. Nature Reviews Disease Primers. 4 (3), (2018).
  9. Wei, C. J., et al. Induction of broadly neutralizing H1N1 influenza antibodies by vaccination. Science. 27 (329), 1060-1064 (2010).
  10. Chernov, V. M., Chernova, O. A., Sanchez-Vega, J. T., Kolpakov, A. I., Ilinskaya, O. N. Mycoplasma contamination of cell cultures vesicular traffic in bacteria and control over infectious agents. Acta Naturae. 6 (3), 41-51 (2014).
  11. Michael, R. G., Joseph, S. Molecular Cloning: A Laboratory Manual (Fourth Edition). , Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York. (2012).
  12. Kumar, P., Nagarajan, A., Uchil, P. D. Transfection of mammalian cells with calcium phosphate-DNA coprecipitates. Cold Spring Harbor Protocols. 2019 (10), (2019).
  13. Robert, E. K., Chen, C. A., Okayama, H., John, K. R. Calcium phosphate transfection. Current Protocols in Molecular Biology. 9, (2003).
  14. Robert, E. K., Chen, C. A., Okayama, H., John, K. R. Transfection of DNA into eukaryotic cells. Current Protocols in Molecular Biology. 9, 11-19 (1996).
  15. Kachkin, D. V., Khorolskaya, J. I., Ivanova, J. S., Rubel, A. A. An efficient method for isolation of plasmid DNA for transfection of mammalian cell cultures. Methods and Protocols. 3 (4), 69(2020).
  16. Luciferase assay system. , Available from: https://www.promega.com.cn/products/luciferase-assays/reporter-assays/luciferase-assay-system (2021).
  17. Corning 96-Well Solid Black or White Polystyrene Microplates. , Available from: https://www.fishersci.com/shop/products/costar-96-well-black-white-solid-plates (2021).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

H5 PsödovirüsKuş İnfluenza VirüsüPsödovirüs Nötralizasyon DeneyiHemaglütinin DeneyiLüsiferaz DeneyiMDCK HücreleriWestern BlotBiyogüvenlik Düzeyi
Psödotip H5 Kuş Gribi Virüslerinin Kalsiyum Fosfat Transfeksiyon Yöntemi ile Hazırlanması ve Antikor Nötralize Edici Aktivitesinin Ölçülmesi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.