Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Hemodiyaliz Erişimi ile İlişkili El Disfonksiyonunun Bir Murine Modeli

2K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/63892

⸱

31 Mayıs 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Applied Physiology and Kinesiology, University of Florida, 2Division of Vascular Surgery and Endovascular Therapy, University of Florida, 3Center for Exercise Science, University of Florida, 4Malcom Randall Veteran Affairs Medical Center

Bu makalede

Özet

Bu protokol, murin ortak iliak arteriyovenöz fistül oluşumunun cerrahi adımlarını detaylandırır. Bu modeli hemodiyaliz erişimi ile ilişkili ekstremite patofizyolojisini incelemek için geliştirdik.

Özet

Kronik böbrek hastalığı önemli bir halk sağlığı sorunudur ve hemodiyaliz gibi kronik renal replasman tedavileri gerektiren son dönem böbrek hastalığı (SDBY) prevalansı artmaya devam etmektedir. Otojen arteriyovenöz fistül (AVF) yerleştirilmesi, SDBY'li hastalar için primer vasküler erişim seçeneği olmaya devam etmektedir. Ne yazık ki, hemodiyaliz hastalarının yaklaşık yarısı, ince paresteziden dijital kangrene kadar değişen diyaliz erişimi ile ilişkili el disfonksiyonu (ARHD) yaşamaktadır. Özellikle, ARHD'den sorumlu olan altta yatan biyolojik faktörler tam olarak anlaşılamamıştır ve mekanizmaları aydınlatmak ve / veya ARHD'nin önlenmesi / tedavisi için yeni terapötikler geliştirmek için yeterli hayvan modeli yoktur. Burada, sol ortak iliak arter ve ven arasında bir AVF'nin oluşturulduğu ve böylece ekstremite patofizyolojisinin değerlendirilmesini kolaylaştıran yeni bir fare modeli tanımlanmıştır. Mikrocerrahi, damar izolasyonu, uzunlamasına venotomi, arteriyovenöz anastomoz oluşumu ve venöz rekonstrüksiyonu içerir. Sahte ameliyatlar, AVF oluşturma dışındaki tüm kritik adımları içerir. İliak AVF yerleşimi santral hemodinamik, periferik iskemi ve arka ekstremite nöromotor performansında bozulmalara klinik olarak anlamlı değişiklikler ile sonuçlanır. Bu yeni preklinik AVF modeli, hemodiyaliz hastaları tarafından bildirilen yaygın nöromotor pertürbasyonları özetleyen ve araştırmacıların ARHD patofizyolojisinin mekanizmalarını araştırmalarına ve potansiyel terapötikleri test etmelerine olanak tanıyan yararlı bir platform sunmaktadır.

Giriş

Fonksiyonel vasküler erişimin sağlanması ve korunması, hemodiyaliz yoluyla renal replasman tedavisi alan son dönem böbrek hastalığı (SDBY) hastaları için önemli bir birincil hedef olmaya devam etmektedir1. Tekrarlanan hemodiyaliz tedavileri, atık ürünleri uzaklaştırmak, elektrolitleri normalleştirmek ve böbrek fonksiyonu yetersiz kaldığında sıvı dengesini korumak için gereklidir ve bu nedenle uzun süreli sağkalım için gereklidir2. Bu nedenle, vasküler erişim SDBY'li hastalar için bir "yaşam çizgisi" dir ve otojen arteriyovenöz fistül (AVF) yerleşimi bu kohort3 arasında tercih edilen bir diyaliz erişim seçeneği olmaya devam etmektedir. Bununla birlikte, hemodiyaliz hastalarının yaklaşık% 30-60'ı, klinik olarak erişimle ilişkili el disfonksiyonu (ARHD) olarak tanımlanan bir el sakatlığı spektrumu yaşamaktadır. ARHD'nin semptomları zayıflık ve koordinasyonsuzluktan monopleji ve dijital kangrene kadar değişebilir, bu da AVF oluşturulduktan hemen sonra ortaya çıkabilir veya fistül olgunlaşması ile yavaş yavaş gelişebilir. Ayrıca, ARHD, düşük yaşam kalitesi, yüksek kardiyovasküler hastalık riski ve artmış mortalite 2,3,4 ile ilişkili SDBY tedavi programını karmaşıklaştırmaktadır.

AVF oluşumunu takiben hemodinamik değişikliklerin neden olduğu vasküler yeniden şekillenmeyi incelemek için çeşitli hayvan modelleri geliştirilmiştir 5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15. İliak veya femoral AVF 16,17,18,19,20 olan büyük hayvan modelleri ve karotis arter-juguler ven anastomozu veya infrarenal aort-inferior vena kava fistül formasyonu kullanan kemirgen modelleri, AVF olgunlaşmasının ve açıklığının yukarıda belirtilen yönlerini incelemek için iyi kurulmuştur 21 . Örneğin, venöz hipertansiyon, daha büyük luminal çap ve artmış ven duvarı kalınlığı başarılı AVF olgunlaşmasının imzalarıdır, oysa medyanın önemli fibrozisi ve akışta herhangi bir değişiklik olmaksızın intimal hiperplazi veya trombüs gelişimi sıklıkla AVF başarısızlıklarını karakterize eder 6,15. Bununla birlikte, büyük hayvan modelleri, murin modellerinin deneysel esnekliğinden veya transgenik yeteneklerinden yoksunken, mevcut kemirgen modelleri, anatomik konum ve / veya ilişkili uzuv patolojisinin eksikliği nedeniyle ARHD'nin araştırılmasını kolayca kolaylaştırmamaktadır. Gerçekten de, ilgili klinik fenotipi özetleyen yerleşik bir preklinik hayvan modelinin eksikliği nedeniyle, semptomatik ARHD hastalarının sayısındaki ilerleyici artışa rağmen, patobiyolojik mekanizmaları aydınlatmak ve yeni terapötik stratejiler geliştirmek için araştırma ilerlemesi durgun kalmıştır. Bu nedenle, bu çalışmanın temel amacı, AVF mikrocerrahisinin prosedürel adımlarını ve AVF ile ilişkili patofizyolojinin karakterizasyonunu sağlayan benzersiz bir ARHD fare modelini tanıtmaktır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm prosedürler Florida Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) ve Malcom Randall Gazi İşleri Tıp Merkezi tarafından onaylanmıştır.

NOT: Genç yetişkin (8-10 haftalık) erkek C57BL/6J fareler Jackson Laboratuvarı'ndan satın alınmış ve ışık (12 saat ışık: 12 saat karanlık döngü), sıcaklık (22 °C ± 1 °C) ve nem (%50 ± %10) kontrollü bir hayvan tesisinde barındırılmıştır. Beş farenin kafes başına (W: 18 cm x L: 29 cm x H: 12.5 cm) oturmasına izin verildi ve yuvalama malzemeleri, yiyecek ve su ad libitum olarak sağlandı. Standart chow ile 7 günlük habitat alışmasının ardından, fareler diyet geçiş aşaması olarak 7 gün boyunca kazein bazlı bir chow diyetine dönüştürüldü. Bundan sonra, fareler, daha önce tarif edildiği gibi AVF ameliyatından önce böbrek fonksiyon bozukluğunu (KBH) indüklemek için 2-3 hafta boyunca% 0.2 -% 0.15 adenin takviyesi ile kazein bazlı chow ile beslendi 22,23,24. Kontrol fareleri, adenin takviyesi (kontrol) olmadan kazein bazlı bir chow diyeti aldı. Kontrol ve KBH diyetleri postoperatif iyileşme dönemi (POD) boyunca sürdürüldü.

1. Ameliyat öncesi ölçümler

  1. Daha önce tarif edildiği gibi dupleks ultrason görüntüleme ve lazer Doppler ile arka ekstremite perfüzyonunu kullanarak başlangıç/ameliyat öncesi sonuç ölçümlerini, aortoiliak damar çaplarını ve hemodinamik akım parametrelerini değerlendirin25.
  2. Daha önce tarif edildiği gibi taban çizgisi arka bacak fonksiyonunu oluşturmak için tek taraflı arka bacak kavrama gücünü ve koşu bandı yürüyüş değerlendirmesini belirleyin25,26.
  3. Daha önce tarif edildiği gibi FITC-inülin klerensi ve / veya serum kan üre azotu (BUN) seviyesi ile glomerüler filtrasyon hızını (GFR) ölçerek böbrek fonksiyonunu değerlendirin 22,24,27.

2. Cerrahi hazırlık

  1. Aşağıdaki cerrahi alet ve malzemeleri hazırlayın (Malzeme Tablosu): sıcak boncuk sterilizatörü, göz yağlayıcı, kalem düzeltici, alkol preparatları, klorheksidin mendiller, ekstra ince Graefe forseps, sterilize edilmiş% 0.9 salin, 29 G ve 31 G iğne şırıngaları, 2 x 2 dokunmamış sünger, orta tek uçlu yuvarlak (SC-9) ve küçük çift uçlu sert, keskin, sivri uçlu (SC-4) pamuklu çubuklar, düşük sıcaklıkta koter, düz Dumont forseps, 45° açılı Dumont forseps, düz Vannas yay makasları, kavisli Vannas yay makasları, yuvarlak saplı iğne tutucular, birden fazla dikiş boyutu (4-0 ipek, 5-0 PGA, 6-0 ipek ve 10-0 naylon sütürler), heparin, emilebilir jelatin sünger, düz iğne tutucu ve buprenorfin.
    NOT: Ekstremite sabitleme lastik bantları ve karın ve bacaklar için retraktörler el yapımıdır.
  2. Cerrahi hazırlıkları otoklav kullanarak 120-125 °C'de buhar sterilizasyonu ile 30 dakika boyunca sterilize edin, ardından ameliyattan önce 30 dakika kurutun. Her hayvan ameliyatı arasında% 70 etanol temizliği ve ardından sıcak boncuk sterilizasyonu (3 dakika boyunca 240-270 ° C) kullanın.
  3. 29-31 G iğne şırıngaları kullanarak sterilize edilmiş% 0.9 normal salin, heparinize salin (100 IU / mL) ve buprenorfin (0.01 mg / mL) hazırlayın.

3. Anestezi ve konumlandırma

  1. İndüksiyon odasında fare anestezisini başlatın (0.8 mL / dak,% 2.5 izofluran). Fare yeterince uyuşturulduktan sonra, fareyi steril bir örtü ile kaplı ameliyat istasyonuna sırtüstü pozisyonda yerleştirin. Tıraş ve konumlandırma adımları sırasında izofluran konsantrasyonunu ~% 1.2'ye kadar azaltın.
  2. Ameliyat sırasında gözlerin kurumasını önlemek için oküler kayganlaştırıcıyı uygulayın.
  3. Bir kalem düzeltici kullanarak, operasyon için karın kıllarını ve postoperatif perfüzyon ölçümleri için bacak kıllarını tıraş edin. Saçları cerrahi alandan temizleyin.
  4. Üst ve alt ekstremiteleri lastik bantlar ve tutamaklarla sabitleyin, ayak parmağı sıkışma refleksini izleyerek anestezinin derinliğini kontrol edin ve gerektiğinde anesteziyi titre edin. Anestezi seviyesini kalibre etmek için cerrahi prosedür boyunca her 3-5 dakikada bir solunum paterni değerlendirmesi yapın.

4. Cerrahi hedef bölgenin araştırılması

  1. Cerrahi alanı dezenfekte etmek için alkol hazırlığı ve klorheksidin mendiller arasında dairesel bir düzende geçiş yaparak tıraş edilen cilt bölgesini birkaç kez temizleyin.
  2. Sternal sınırın alt kenarından pubis simfizine kadar orta hat laparotomi yapın. Daha geniş bir ameliyat alanı elde etmek için pubis yağ yastığını diseke edin.
  3. Retraktörlerle periton içeriğine erişmek için seliyotomiyi açın ve orta, tek uçlu yuvarlak pamuklu çubuklar kullanarak ince ve kalın bağırsakları boşaltın. Bağırsakları tuzlu suya batırılmış dokunmamış bir süngerle örtün.
  4. Retroperitoneal vaskülatürün yeterli maruziyeti elde edildikten sonra, kalan bağırsakları, böbrekleri ve üreterleri küçük tuzlu batırılmış dokunmamış süngerlerle örtün. Mesane kubbesini gerektiğinde orta, tek uçlu yuvarlak pamuklu çubuklarla hafifçe sıkarak şişkin bir mesaneyi boşaltın.
  5. Düz Dumont forsepsleri ve küçük çift uçlu sert, keskin, sivri pamuklu çubuklar kullanarak perivasküler fasyayı ve yağ dokusunu yaklaşık 1 cm proksimalden sol iliak bifurkasyon seviyesine kadar uzanan aort bifurkasyonuna dikkatlice diseke edin.
    NOT: Sol iliak arter ve ven, arteriyovenöz yapılar topluca izole edilirken birbirine yapışık bırakılır. Bu adım, AVF'nin oluşturulmasını kolaylaştırmak için yeterli gemi mobilizasyonu sağlayacaktır.
  6. Sol ortak iliak damardan kaynaklanan veya onunla yakınlaşan küçük venöz dallarla karşılaşılırsa, gerektiğinde 6-0 ipek dikişli veya dikişsiz düşük sıcaklıklı koter kullanarak bunları bağlayın.
  7. Açılı forsepsin ucunu sol ortak iliak vasküler demetin altından geçirin ve damarları altta yatan retroperitoneal kas sisteminden harekete geçirmek için birkaç kez yavaşça yayın (Şekil 1A).

5. Ortak iliak arteriyovenöz fistül anastomozunun oluşturulması

  1. İzole sol ortak iliak arteriyovenöz demetin etrafına iki adet 4-0 ipek sütür yerleştirin ve bunları vasküler demetin üzerine bitişik harfler (örneğin çapraz kelepçeler) olarak kullanın. Her 4-0 ipek kravat ile tek bir düğüm oluşturun ve bunları proksimalden distal'e sırayla uygulayın.
  2. İpek bağ çapraz kelepçelerinin ~ 2 mm damar uzunluğunu izole etmek için yeterince uzağa yerleştirildiğinden emin olun ve sütür ligatürlerinin sıralı uygulaması sol iliak ven engorgementini hızlandıracaktır.
  3. 4-0 ipek sütür tellerini tutamak olarak kullanarak, sol iliak arteriyovenöz vasküler demeti saat yönünde döndürün ve venin ön tarafını artere geçici olarak yerleştirmek için pozisyona ince ayar yapın (Şekil 1B).
  4. Düz Vannas yay makası ile uzunlamasına venotomi (~ 1 mm) yapın ve kalan kanı venöz lümenden %0.9 salin ile nazikçe temizleyin (Şekil 1C). Bu adımda dikkatli olun, çünkü yüksek basınçlı salin yıkama venöz bozulmaya neden olabilir.
    NOT: Venöz kızarmadan sonra iliak arterde kalan kırmızı renkli bölge, bir sonraki adım için görsel bir pencere sağlar.
  5. Damarın arka duvarından 10-0 naylon sütür yerleştirin.
    NOT: İliak venin bu kısmı, iliak arterin ön duvarına derhal yerleştirilmelidir ve duvarlar doğal olarak yapışkandır. Dikiş her iki duvardan da geçmeli ve tek bir düğüm ile dikiş bağlanmalıdır (Şekil 1D). İliak arterdeki durgun kandan kaynaklanan az miktarda kanamanın, iğne her iki duvardan geçtikten sonra ortaya çıkacağını unutmayın. Bu adımda intraluminal kanama devam ederse, ipek sütür çapraz kelepçeleri çok gevşek olabilir ve daha fazla sıkılması gerekebilir.
  6. İmbriye sütür uçlarını kavrayın ve ön duvarı iliak arterin arka duvarından çıkarmak için yumuşak bir gerginlik altına yerleştirin. Kavisli Vannas yay makası kullanarak ~ 1.0 mm x 0.3 mm eliptik bir kesi yapın, hem iliak arterin hem de venin yapışkan duvarlarını çıkarın.
    NOT: Arteriyovenöz fistül, bu ortak kanal kurulduktan sonra oluşturulur. Venotomi maruziyeti ile posterior iliak ven/anterior iliak arter duvarı insizyonu yapıldığı için bu basamakta venin lateral duvarlarına zarar vermek mümkündür. Bu komplikasyondan kaçınmak için dikkatli olunmalıdır, çünkü bu fistül çapını önemli ölçüde azaltabilir ve trombüs gelişimine yol açabilir.
  7. Maruz kalan arteriyel lümenin kalan kanını %0,9 salin ve heparinize salin (100 IU/mL)28 ile nazikçe temizleyin (Şekil 1E).
  8. AVF'nin oluşturulmasını takiben, ilk ön duvar venotomisinin iki veya üç adet 10-0 naylon dikiş kullanarak kesintiye uğramış bir şekilde onarılması (Şekil 1F).
  9. Vasküler demeti orijinal anatomik oryantasyonuna geri döndürün ve hemostazı kolaylaştırmak için onarılan venotominin bitişiğinde küçük bir parça tuzlu suya batırılmış emilebilir jelatin sünger yerleştirin.
  10. 4-0 tek düğümlü çapraz kelepçe ligatürlerini distalden proksimale sırayla gevşetin. Her dikişi gevşetirken aşırı kanama için venotomi bölgesini yakından izleyin.
  11. Onarım yeterince hemostatik değilse, çapraz kelepçeleri tekrar uygulayın ve kanama bölgesine başka bir 10-0 naylon dikiş yerleştirin. Hemostaz garanti edilirse, dikişleri ve ardından emilebilir jelatin süngeri çıkarın.
  12. Damar demetini, kan akışının restorasyonunu daha da kolaylaştıran küçük, çift uçlu sert, keskin, sivri uçlu pamuklu çubuklarla hafifçe ovalayın. İlyak damara giren pulsatilen, parlak kırmızı oksijenli kanın görselleştirilmesini ve arka bacaktan dönen koyu venöz kanla karıştırılmasını kullanarak operasyonun teknik başarısını onaylayın.
  13. AVF açıklık sonuçlarını iyileştirmek için sistemik antikoagülasyon için IVC'ye heparinize salin (0.2 IU / g)15 enjekte edin.
    NOT: Bu basamak vasküler rekonstrüksiyondan sonra meydana gelmesine rağmen (damar çapraz klemplemesinden önce heparinizasyonun meydana geldiği insan analogunun aksine), prosedürün bu aşamasında uygulandığında intraoperatif kanamada bir azalma ve AVF açıklığında iyileşme gözlenmiştir. Delinme bölgesinden kanamayı önlemek için fasya ve / veya yağ ile kaplı bir bölgeye enjeksiyon tercih edilir.
  14. Heparinize salin enjeksiyonundan sonra hemostaz için cerrahi bölgeyi tekrar inceleyin. Kanama endişesi yoksa, orta hat fasyasını kapatın ve ardından cilt insizyonunu emilebilir 5-0 PGA dikişleriyle çalışan bir şekilde kapatın.
  15. Sahte operasyonlar için, AVF oluşumu dışında prosedürün tüm önemli adımlarını izleyin. Sol iliak arteriyovenöz demetin proksimal ucuna 4-0 ipek ligatürün tek bir düğümünü uygulayın ve kelepçe sürelerini AVF ameliyatlarıyla eşleştirin (örneğin, mikrocerrahın yeterliliğine bağlı olarak ~ 20 dakika).

6. Postoperatif bakım ve ölçüm

  1. Laparotomi kapatıldıktan sonra lazer Doppler görüntüleme ile bilateral tibialis ön kaslarının ve ventral pençelerinin kan perfüzyonunu ölçün.
    NOT: Tek taraflı perfüzyon eksiklikleri, arteriyel akımın fistül saptırılmasını ("çalma") doğrulayacaktır.
  2. Deri altından 0,1 mg/kg buprenorfin uygulayın ve fareyi yuvalı yüksek oranda emilebilir yumuşak yataklarla önceden ısıtılmış bir fare kafesine geri koyun.
  3. Anestezi tükenene kadar farenin önceden ısıtılmış fare kafesinde iyileşmesine izin verin, bu fare ambulatuar ve etkileşimli olduğunda (~ 2 saat) belirgin olacaktır. İyileşme sırasında, fareye nemlendirilmiş, yumuşak bir diyete kolay erişim sağlayın.
  4. Buprenorfin ve / veya subkutan salin hidrasyonunu her 12 saatte bir 48 saate kadar uygulayın ve ameliyat sonrası 5 gün boyunca günlük izleme yapın. Modifiye iskemi skoru olarak sınıflandırılan kötüleşen bir durumu veya aşırı doku nekrozu olan hayvanları ötenazi yapın ≥229.
  5. Ameliyat sonrası fistül açıklığını değerlendirmek için seri dupleks ultrason değerlendirmelerini kullanın; Fistül trombozu olan fareler, deneylerin amacı AVF olgunlaşma başarısızlığını karakterize etmek olmadıkça sonraki analizlerden hariç tutulur.
  6. İyileşme süresi boyunca lokal hemodinamik, kavrama kuvveti ve yürüme performansı gibi diğer postoperatif sonuç ölçümlerini belirleyin. Fedakarlık sırasında deneyin sonunda histomorfolojiyi değerlendirmek için fistül ve kas dokularını toplayın25,27.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Adenin diyetine maruz kalan hayvanlar, kazein bazlı chow alan hayvanlara kıyasla glomerüler filtrasyon hızlarını azaltmış (kontrol: 441.3 ± 54.2 μL / dak ile KBH: 165.1 ± 118.3 μL / dak, p < 0.05) ve artmış serum kan üre azot seviyeleri (kontrol: 20.39 ± 4.2 μL / dak vs KBH: 38.20 ± 10.65 μL / dak, p < 0.05) artmış ve arteriyovenöz fistül cerrahisinden önce böbrek yetmezliğinin varlığını doğrulamıştır.

AVF açıklığının doğrulanması
Teknik başarının i...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

AVF oluşumunu takiben AHB'li hemodiyaliz hastalarının prevalansı30,31 artmaya devam etmiştir. Gerçekten de, ağrı, halsizlik, parestezi ve / veya azalmış hareket açıklığı gibi çözülmemiş semptomatik komplikasyonlar 4,32,33,34,35,36 hasta refahını olumsuz yönde etkileyebilir ve yüksek kaliteli tekrarlayan hemodiyaliz tedavisi alma kapasitelerini tehdit edebilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.

Teşekkürler

Florida Üniversitesi Vasküler Cerrahi ve Endovasküler Terapi Bölümü'nden Dr. Guanyi Lu'ya, iliak AVF modelinin geliştirilmesi ve cerrahi eğitim konusundaki teknik destek için ve Florida Üniversitesi Uygulamalı Fizyoloji ve Kinesiyoloji Bölümü'nden Ravi Kumar'a canlı mikrocerrahi görüntüleri elde eden teknik destek için içtenlikle teşekkür ederiz.

Bu çalışma, Ulusal Sağlık ve Ulusal Kalp, Akciğer ve Kan Enstitüleri, R01-HL148697 Enstitü numaraları (S.T.S.'ye) ve Amerikan Kalp Derneği hibe numarası POST903198 (K.K.'ya) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 0.15 Adenin diyetiENVIGOTD.130899% 20 kazein,% 0.15 adenin,% 0.9 P
0.2% Adenin diyetiENVIGOTD.130900% 20 kazein,% 0.2 adenin,% 0.9 P
10-0 Naylon sütürAD cerrahiXXS-N1005T4
29 G iğne şırıngalarıExel International14-841-32
31 G iğne şırıngalarıAvukatU-100 insülin
4-0 ipek sütürAD cerrahiS-S41813
45 derece açılı dumont forsepsGüzel Bilim Araçları11253-25
5-0 PGA sütürAD cerrahiPSGU-518R13
6-0 ipek sütürAD cerrahiS-S618R13
Emilebilir jelatin süngerETHICON1975
Alkol müstahzarlarıCovidien5110-cs4000%70 izopropil alkol
BuprenorfinNANA0.01 g/mL
C57BL6/J farelerJaxon Laboratuvar
Kazein diyetiENVIGOTD.130898%20 kazein, %0.9
P Pamuklu çubuklarCONSTIXSC-9Orta tek uçlu yuvarlak pamuklu çubuk
Pamuklu çubuklarCONSTIXSC-4Küçük çift uçlu sert, keskin, sivri uçlu pamuklu çubuk
Curity dokumasız süngerler (2x2)Covidien9022
Kavisli Vannas yaylı makasGüzel Bilim Araçları15001-08
Doppler ultrasonVisualSonicsVevo 2100
Ekstra ince graefe forsepsGüzel Bilim Araçları11150-102 çift
Göz yağlayıcıCLCMEDICAOptixcare göz yağı
Heparin (5000 U/mL)Ulusal İlaç Kodları Listesi63739-953-25100 IU/mL
Sıcak boncuk sterilizatörüGüzel Bilim Araçları18000-50
Düşük sıcaklıkta koterBovieAA04
Kalem düzelticiWahl5640-600
Pudrasız cerrahi eldivenlerAnsell7824PF
Yuvarlak saplı iğne tutucularGüzel Bilim Araçları12076-12
Steril havlu örtüsüDynarexDY440-MI
Sterilize edilmiş %0,9 salinUlusal İlaç Kodları Listesi46066-807-25
Düz dumont forsepsGüzel Bilim Araçları11253-20
Düz iğne tutucuGüzel Bilimler AraçlarFST 12001-13
Düz vannas yaylı makasGüzel Bilim Araçları25001-08
TrizChLOR4Ulusal İlaç Kodları Listesi17033-279-50
şırınga

Kaynaklar

  1. Gameiro, J., Ibeas, J. Factors affecting arteriovenous fistula dysfunction: a narrative review. The Journal of Vascular Access. 21 (2), 134-147 (2020).
  2. Culleton, B. F., Asola, M. R. The impact of short daily and nocturnal hemodialysis on quality of life, cardiovascular risk and survival. Journal of Nephrology. 24 (4), 405(2011).
  3. Huber, T. S., et al. Access-related hand ischemia and the hemodialysis fistula maturation study. Journal of Vascular Surgery. 64 (4), 1050-1058 (2016).
  4. Rehfuss, J. P., et al. The spectrum of hand dysfunction after hemodialysis fistula placement. Kidney International Reports. 2 (3), 332-341 (2017).
  5. Caplice, N. M., et al. Neoangiogenesis and the presence of progenitor cells in the venous limb of an arteriovenous fistula in the rat. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 293 (2), 470-475 (2007).
  6. Castier, Y., et al. Characterization of neointima lesions associated with arteriovenous fistulas in a mouse model. Kidney International. 70 (2), 315-320 (2006).
  7. Croatt, A. J., et al. Characterization of a model of an arteriovenous fistula in the rat: the effect of L-NAME. The American Journal of Pathology. 176 (5), 2530-2541 (2010).
  8. Guzman, R. J., Krystkowiak, A., Zarins, C. K. Early and sustained medial cell activation after aortocaval fistula creation in mice. Journal of Surgical Research. 108 (1), 112-121 (2002).
  9. Kojima, T., et al. The relationship between venous hypertension and expression of vascular endothelial growth factor: hemodynamic and immunohistochemical examinations in a rat venous hypertension model. Surgical Neurology. 68 (3), 277-284 (2007).
  10. Misra, S., et al. The rat femoral arteriovenous fistula model: increased expression of matrix metalloproteinase-2 and -9 at the venous stenosis. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 19 (4), 587-594 (2008).
  11. Nath, K. A., Kanakiriya, S. K., Grande, J. P., Croatt, A. J., Katusic, Z. S. Increased venous proinflammatory gene expression and intimal hyperplasia in an aorto-caval fistula model in the rat. The American Journal of Pathology. 162 (6), 2079-2090 (2003).
  12. Nath, K. A., et al. The murine dialysis fistula model exhibits a senescence phenotype: pathobiological mechanisms and therapeutic potential. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 315 (5), 1493-1499 (2018).
  13. Yamamoto, K., et al. The mouse aortocaval fistula recapitulates human arteriovenous fistula maturation. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 305 (12), 1718-1725 (2013).
  14. Yang, S. T., et al. Adult mouse venous hypertension model: common carotid artery to external jugular vein anastomosis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (95), e50472(2015).
  15. Wong, C. Y., et al. A novel murine model of arteriovenous fistula failure: the surgical procedure in detail. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (108), e53294(2016).
  16. Krishnamoorthy, M. K., et al. Anatomic configuration affects the flow rate and diameter of porcine arteriovenous fistulae. Kidney International. 81 (8), 745-750 (2012).
  17. Wang, Y., et al. Venous stenosis in a pig arteriovenous fistula model-anatomy, mechanisms and cellular phenotypes. Nephrology Dialysis Transplantation. 23 (2), 525-533 (2008).
  18. Loveland-Jones, C. E., et al. A new model of arteriovenous fistula to study hemodialysis access complications. The Journal of Vascular Access. 15 (5), 351-357 (2014).
  19. Nugent, H. M., et al. Perivascular endothelial implants inhibit intimal hyperplasia in a model of arteriovenous fistulae: a safety and efficacy study in the pig. Journal of Vascular Research. 39 (6), 524-533 (2002).
  20. Butterfield, A. B., et al. Inverse effect of chronically elevated blood flow on atherogenesis in miniature swine. Atherosclerosis. 26 (2), 215-224 (1977).
  21. Kwei, S., et al. Early adaptive responses of the vascular wall during venous arterialization in mice. The American Journal of Pathology. 164 (1), 81-89 (2004).
  22. Berru, F. N., et al. Chronic kidney disease exacerbates ischemic limb myopathy in mice via altered mitochondrial energetics. Scientific Reports. 9 (1), 15547(2019).
  23. Khattri, R. B., Thome, T., Ryan, T. E. Tissue-specific 1H-NMR metabolomic profiling in mice with adenine-induced chronic kidney disease. Metabolites. 11 (1), 45(2021).
  24. Thome, T., et al. Impaired muscle mitochondrial energetics is associated with uremic metabolite accumulation in chronic kidney disease. Journal of Clinical Investigation Insight. 6 (1), 139826(2021).
  25. Kim, K., et al. Development of a murine iliac arteriovenous fistula model for examination of hemodialysis access-related limb pathophysiology. Journal of Vascular Surgery-Vascular Science. 2, 247-259 (2021).
  26. Castro, B., Kuang, S. Evaluation of muscle performance in mice by treadmill exhaustion test and whole-limb grip strength assay. Bio-protocol. 7 (8), 2237(2017).
  27. Kim, K., et al. Skeletal myopathy in CKD: a comparison of adenine-induced nephropathy and 5/6 nephrectomy models in mice. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 321 (1), 106-119 (2021).
  28. Yang, B., Shergill, U., Fu, A. A., Knudsen, B., Misra, S. The mouse arteriovenous fistula model. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 20 (7), 946-950 (2009).
  29. Brenes, R. A., et al. Toward a mouse model of hind limb ischemia to test therapeutic angiogenesis. Journal of Vascular Surgery. 56 (6), 1669-1679 (2012).
  30. Bello, A. K., et al. Assessment of global kidney health care status. Journal of the American Medical Association. 317 (18), 1864-1881 (2017).
  31. Levin, A., et al. Global kidney health 2017 and beyond: a roadmap for closing gaps in care, research, and policy. The Lancet. 390 (10105), 1888-1917 (2017).
  32. Hassabi, M., et al. Comparing strength and range of motion of the upper limb with AV fistula access with the contralateral upper limb among patients treated with hemodialysis. Researcher Bulletin of Medical Sciences. 22 (1), 1(2017).
  33. Capitanini, A., Galligani, C., Lange, S., Cupisti, A. Upper limb disability in hemodialysis patients: evaluation of contributing factors aside from amyloidosis. Therapeutic Apheresis and Dialysis. 16 (3), 242-247 (2012).
  34. Altintepe, L., et al. Physical disability, psychological status, and health-related quality of life in older hemodialysis patients and age-matched controls. Hemodialysis International. 10 (3), 260-266 (2006).
  35. Castaneda, C., et al. Resistance training to reduce the malnutrition-inflammation complex syndrome of chronic kidney disease. American Journal of Kidney Diseases. 43 (4), 607-616 (2004).
  36. Hurton, S., et al. Upper extremity complications in patients with chronic renal failure receiving haemodialysis. Journal of Renal Care. 36 (4), 203-211 (2010).
  37. Mazumder, M. K., Giri, A., Kumar, S., Borah, A. A highly reproducible mice model of chronic kidney disease: Evidences of behavioural abnormalities and blood-brain barrier disruption. Life Sciences. 161, 27-36 (2016).
  38. Jia, T., et al. A novel model of adenine-induced tubulointerstitial nephropathy in mice. BioMed Central Nephrology. 14, 116(2013).
  39. Kieswich, J. E., et al. A novel model of reno-cardiac syndrome in the C57BL/ 6 mouse strain. BioMed Central Nephrology. 19 (1), 346(2018).
  40. Abassi, Z., Goltsman, I., Karram, T., Winaver, J., Hoffman, A. Aortocaval fistula in rat: a unique model of volume-overload congestive heart failure and cardiac hypertrophy. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 729497(2011).
  41. Brower, G. L., Levick, S. P., Janicki, J. S. Inhibition of matrix metalloproteinase activity by ACE inhibitors prevents left ventricular remodeling in a rat model of heart failure. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 292 (6), 3057-3064 (2007).
  42. Francis, B. N., Abassi, Z., Heyman, S., Winaver, J., Hoffman, A. Differential regulation of ET (A) and ET (B) in the renal tissue of rats with compensated and decompensated heart failure. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 44, 362-365 (2004).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Arterioven z Fist lKronik B brek HastalVask ler Eri imN romotor FonksiyonDoppler UltrasonEkstremite skemisiKavrama Kuvveti Testi
Hemodiyaliz Erişimi ile İlişkili El Disfonksiyonunun Bir Murine Modeli
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.