Mekano-Düğüm-Gözenek Algılama: Çok Parametreli Tek Hücreli Viskoelastik Ölçümler için Hızlı, Etiketsiz Bir Platform

Tek hücreler dinamik, viskoelastik malzemelerdir¹. Çok sayıda iç ve dış süreç (örneğin, mitozun başlangıcı veya hücre dışı matrisin [ECM] yeniden şekillendirilmesi), yapılarını ve kompozisyonlarını^{etkiler 2,3,4,} genellikle mevcut durumlarını tamamlayan farklı biyofiziksel özelliklerle sonuçlanır. Özellikle, mekanik özelliklerin hücresel gelişim, fizyoloji ve patolojinin önemli biyobelirteçleri olduğu ve kanonik moleküler ve genetik yaklaşımları destekleyebilecek değerli nicel bilgiler sağladığı gösterilmiştir ^5,6,7. Örneğin, Li ve ark. yakın zamanda ilaca dirençli ve ilaca duyarlı akut promiyelositik lösemi hücreleri arasındaki mekanik farklılıkları tanımlarken, aynı zamanda farklı şekilde eksprese edilen sitoiskeletle ilişkili genleri ortaya çıkarmak için RNA-seq kullanmışlardır⁸. Tek hücreli mekanik ve hücresel fonksiyon arasındaki karmaşık etkileşimi anlayarak, mekanofenotiplemenin temel bilim ve klinik teşhisin dönüştürülmesinde daha geniş uygulamaları vardır⁹.

Tek hücreli mekaniği ölçmek için en yaygın olarak benimsenen araç atomik kuvvet mikroskobudur (AFM). AFM, hücresel mekanik özelliklerin yüksek çözünürlüklü, lokalize bir ölçümünü mümkün kılarken, 0,01 hücre / s¹⁰ < bir verim ile sınırlı kalır. Alternatif olarak, asılı tek hücreleri 11 yakalamak ve deforme etmek için iki farklı lazer ışını kullanan optik sedyeler,^<1 hücre / s^12'nin marjinal olarak daha yüksek verimleriyle sınırlıdır. Mikroakışkan teknolojilerindeki son gelişmeler, hızlı, tek hücreli, mekanik değerlendirme için yeni nesil cihazları mümkün kılmıştır^12,13. Bu teknikler,^10-1.000 hücre / s 18 veriminde hücreleri hızlı bir şekilde deforme etmek için dar daralma kanalları 14,15, kesme akışı 16 veya hidrodinamik germe ¹⁷ kullanır. Bu yaklaşımların ölçüm oranı geleneksel tekniklerden oldukça hızlı olsa da, genellikle sınırlı mekanik okumalar için yüksek verimli yetenekler ticareti yaparlar (Ek Tablo 1). Yukarıda belirtilen tüm hızlı mikroakışkan yöntemler, yalnızca bir hücrenin elastik özelliklerini yansıtan geçiş süresi veya deforme olabilirlik oranları gibi temel, tek parametreli metriklere odaklanır. Bununla birlikte, tek hücrelerin içsel viskoelastik doğası göz önüne alındığında, hücrelerin sağlam ve kapsamlı bir mekanik karakterizasyonu, sadece elastik bileşenlerin değil, aynı zamanda viskoz tepkilerin de dikkate alınmasını gerektirir.

Mekano-düğüm-gözenek algılama (mekano-NPS)^2,8 (Şekil 1A), tek hücreli mekanofenotipleme ile mevcut sınırlamaları ele alan mikroakışkan bir platformdur. Bu yöntem, hücre çapı, bağıl deforme edilebilirlik ve deformasyondan geri kazanım süresi de dahil olmak üzere çoklu biyofiziksel parametrelerin aynı anda ölçülmesini sağlar ve 1-10 hücre/sn ılımlı bir verime sahiptir. Bu teknik, düğüm-gözenek algılama (NPS) 19,20,21,22,23,24 dayanmaktadır; bu^, "düğümler" olarak adlandırılan daha geniş bölgeler tarafından bölümlere ayrılmış bir mikroakışkan kanaldan geçen bir hücre tarafından üretilen modüle edilmiş akım darbesini ölçmek için dört noktalı bir prob ölçümü kullanılmasını içerir. Modüle edilmiş akım darbesi, hücrenin segmentlerdeki (yani "gözenekler") ve düğümlerdeki akım akışını kısmen bloke etmesinin bir sonucudur ve birincisinde ikincisinden daha fazla akım bloke edilir. Mekano-NPS'de, bir segment, "kasılma kanalı", bir hücre çapından daha dardır; Sonuç olarak, bir hücrenin tüm kanalı geçmek için deforme olması gerekir (Şekil 1B). Hücre çapı, hücre kasılma kanalından önce düğüm gözeneklerini geçtiğinde üretilen alt darbenin büyüklüğü ile belirlenebilir (Şekil 1B, C). Burada, |ΔI_np|, hücre gözenekteyken geçerli düşüş, hücrenin gözenek içindeki hacim oranıyla orantılıdır, V _hücresi / V_gözenek ^2,8,19. Hücre sertliği, hücre kasılma kanalını geçtiğinde üretilen önemli ölçüde daha büyük alt darbenin süresi olanΔ T c ile belirlenebilir (Şekil 1B_, C). Daha sert bir hücrenin kanalı geçmesi daha yumuşak bir hücreden^daha uzun sürecektir ^2,8. Son olarak, hücrenin deformasyon sonrası orijinal boyutuna ve şekline dönme kabiliyeti olan hücre "geri kazanımı", hücre kasılma kanalından sonra düğüm gözeneklerini geçerken üretilen alt darbeler dizisi ile belirlenebilir (Şekil 1B, C). İyileşme süresi, ΔT_r, mevcut alt darbelerin, hücre sıkıştırılmadan önce önceki alt darbelerin büyüklüğüne dönmesi için geçen süredir. Genel olarak, bir hücrenin mikroakışkan kanaldan geçişi olarak üretilen modüle edilmiş akım darbeleri, ilgili tek hücreli mekanik parametreleri çıkarmak için kaydedilir ve analiz edilir (Şekil 1D)^2,8.

Bu elektronik tabanlı mikroakışkan platformun tekrarlanabilirliği ve kullanım kolaylığı daha önce gösterilmiştir²⁵. Ek olarak, platform tek hücreli mekanofenotipleme için giriş için düşük bir engel sunar. Mikroakışkan cihazları imal etmek için standart yumuşak litografi kullanılır. Ölçüm donanımı, basit bir baskılı devre kartı (PCB), güç kaynağı, ön amplifikatör, veri toplama kartı (DAQ) ve bilgisayar dahil olmak üzere ucuz bileşenlerden oluşur. Son olarak, veri toplama ve analizi için kullanıcı dostu kod mevcuttur ve bu da basit bir uygulama sağlar. Bu mekanofenotipleme tekniği, malign olmayan ve malign meme ve akciğer epitel hücre hatlarının popülasyonlarını ayırt edebilir, primer insan meme epitel hücrelerinde alt soylar arasında ayrım yapabilir ve sitoiskelet pertürbasyonlarının ve diğer farmakolojik ajanların etkilerini karakterize edebilir ^2,8. Genel olarak, bu platform tek hücrelerin mekanofenotiplenmesi için etkili bir yaklaşımdır.

1. Tasarım cihazı geometrisi

1. Boyutlandırma ve geri kazanım segmentlerinin genişliğini, ölçülecek en büyük hücrelerin çapından daha geniş olacak şekilde seçin, ancak aynı zamanda yeterli bir sinyal-gürültü oranını (SNR) korur. Çeşitli hücre satırları için farklı boyutlandırma ve kurtarma segmenti genişliklerine örnekler için Ek Tablo 2'ye bakın.
2. Mekanofenotiplemeye tabi tutulacak hücrelerin ortalama boyutuna 0-@'lık bir gerinim uygulamak için büzülme segmenti genişliğini seçin. Gerinim, d'nin hücre çapı ve w_c'nin büzülme kanalı genişliği ^2,8 olduğu durumlarda tanımlanır. Çeşitli hücre hatları için farklı büzülme segmenti genişlikleri için Ek Tablo 2'ye bakın.
   NOT: Önemli ölçüde farklı çaplara sahip hücre tiplerini veya koşullarını karşılaştırmak istenirse, her hücre tipine / durumuna özgü büzülme segmenti genişlikleriyle ayrı cihaz tasarımları kullanılmalıdır.
3. Her benzersiz cihaz geometrisi için bir referans cihaz tasarlayın. Bu, mikroakışkan kanalın boyutlandırma gözenek segmentinin etkili çapı olan D_e'yi belirlemek için gereklidir.
   NOT: Referans cihaz, birincil cihazla aynı geometriyi kullanır. Tek değişiklik, büzülme segmentinin, bilinen bir boyuttaki polistiren boncuklarla kalibrasyona izin vermek için boyutlandırma gözenek segmentine genişlikte eşit olması gerektiğidir. Kasılmanın genişletilmesi, polistiren boncukların kalibrasyon sırasında kasılma kanalını tıkamasını önler. Kalibrasyon işlemi 4.1 ve 5.3.1 numaralı adımlarda daha ayrıntılı olarak açıklanmıştır. Kalibrasyon, piyasada satılan bir hücre sayacı kullanılarak da gerçekleştirilebilir, bu durumda referans cihazına gerek yoktur. Bu işlem adım 4.2'de açıklanmıştır.
4. Kanal yüksekliğini, ilgilenilen en büyük hücrelerin büzülme segmenti² içinde kısıtlama olmaksızın tamamen uzayabileceği şekilde seçin. Kanal yüksekliğinin h_min'den daha büyük olduğundan emin olun (bu, hücrenin küresel ön deformasyon olduğunu ve deformasyon sırasında kanal uzunluğu ve yüksekliği boyunca izometrik deformasyonun meydana geldiğini varsayar).
   NOT: Bir akım alt darbesinin büyüklüğü göz önüne alındığında, h_min ne kadar büyükse, genel SNR o kadar düşük olacaktır.
5. Seçilen kanal genişliklerine sahip bilgisayar destekli tasarım yazılımını kullanarak bir fotoğraf maskesi tasarlayın ve oluşturun. Ek Dosya 1'de örnek bir dosya verilmiştir. Negatif master'dan soyulduktan sonra polidimetilsiloksan (PDMS) büzülmesini hesaba katmak için mikroakışkan maske tasarımını% 1,5 oranında ölçeklendirin.
   NOT: Bir dizi cihaz, genel dizi gofret boyutunu aşmadığı sürece tek bir maskeye dahil edilebilir (Ek Şekil 1A).
6. Mikroakışkan cihaz akımının dört noktalı prob ölçümünü gerçekleştirmek için kullanılacak elektrotlarla bir fotomaske tasarlayın ve oluşturun (Şekil 1D). Ek Dosya 1'de örnek bir dosya verilmiştir.
   NOT: Bir elektrot dizisi, dizi cam kızağın boyutunu aşmadığı sürece tek bir maskeye dahil edilebilir (Ek Şekil 1B).

2. Fabrikasyon cihazları (Şekil 2)

1. Bir cam substrat üzerinde elektrot desenleri hazırlayın.
   1. Pozitif bir fotodirenci düz cam bir slayt üzerine ürün veri sayfasına göre püskürtün, desenleyin ve işleyin. Bu yordamın bir örneği Ek Dosya 2'de özetlenmiştir.
   2. Metal biriktirme, kaldırma ve altın aşındırma işlemlerini gerçekleştirin.
      1. Slayta 75 şTi, 250 şPt ve 250 şAu ince film biriktirme işlemi gerçekleştirin. Elektron tabancası buharlaşmasını kullanan bu prosedürün bir örneği Ek Dosya 3'te özetlenmiştir.
      2. Fazla metalin kaldırılmasını gerçekleştirmek için slaytı 15 dakika boyunca asetona batırın.
      3. Bir duman davlumbazında, Ek Şekil 2'de gösterildiği gibi, mikroakışkan kanala maruz kalacak elektrotların bölgesine altın kazıntıyı dökmek için tek kullanımlık bir pipet kullanın. Slaytın başka bir yerinde kazıntıların düşmesini önlemek için dikkatli olun.
         DİKKAT: Altın kazıma cilt ve göz tahrişine neden olabilir. Buharları solumayın ve yutmayın. Dikkatli kullanın, uygun kişisel koruyucu ekipman (KKD) giyin ve yerel bertaraf yönetmeliklerine göre atıkları atın.
      4. Slaytı deiyonize (DI) suyla durulayın ve kuru azotla (_N2) kurulayın.
   3. Aynı cam slayta birden fazla elektrot basılmışsa, slaytı tek tek yongalara doğrayın.
      1. Desenli elektrot sınırları boyunca slaytı puanlamak için bir cam kesici alet kullanın.
      2. Slaytı tek tek yongalara bölmek için camı skor boyunca kırın.
   4. Elektrotları mikroskop altında görsel olarak inceleyin. Tek tek elektrotların elektriksel olarak açık olmadığından veya elektrotların birlikte kısaltılmadığından emin olun.
2. Kanallar için negatif bir ana kalıp imal edin.
   1. Ürün veri sayfasına göre bir SU-8 epoksi direncini cilalı bir silikon gofret üzerine döndürün, desenleyin ve işleyin. Bu yordamın bir örneği Ek Dosya 2'de özetlenmiştir.
   2. Bir profilometre kullanarak özellik yüksekliklerini ölçün ve özellikleri mikroskop altında görsel olarak inceleyin (Ek Şekil 3). İstenilen geometrilerin iyi tanımlandığından emin olun.
3. Yumuşak litografi ile kalıp PDMS kanalları.
   1. Tek kullanımlık bir kapta bir elastomer ve bir çapraz bağlayıcıyı 10:1 kütle oranında tartarak PDMS'yi hazırlayın.
      NOT: Çapı 3 olan bir gofret için 30 g PDMS yeterlidir.
   2. PDMS kabarcıklarla opak olana kadar PDMS'yi tek kullanımlık bir çatalla 30 saniye boyunca kuvvetlice karıştırın.
   3. PDMS'yi bir vakum odasında yaklaşık 30-90 dakika boyunca veya PDMS görünür kabarcıklar olmadan şeffaf hale gelene kadar gazdan arındırın.
   4. Gofreti SU-8 ana kalıbı ile tek kullanımlık bir Petri kabına yerleştirin ve PDMS'yi gofretin ortasına dökün.
   5. PDMS ve gofret içeren Petri kabını bir vakum odasına yerleştirin ve yaklaşık 30 dakika boyunca veya PDMS'de kabarcık kalmayana kadar gazı çözün.
   6. PDMS'yi 80 °C'de bir fırında veya sıcak plakada 2 saat pişirin.
   7. Keskin bir bıçakla, PDMS'yi SU-8 negatif master'dan kesin ve çıkarın.
   8. Kalıplanmış PDMS levhayı keskin bir bıçak kullanarak ayrı kalıplara doğrayın
   9. Giriş ve çıkış erişim deliklerini tek kullanımlık bir biyopsi zımbalama kullanarak çekirdek oluşturun. En iyi sonuçları elde etmek için, her PDMS levhası için yeni bir zımba kullanın. Daha keskin bir zımba, pürüzsüz kenarlı delikler üreterek büzülme kanalını engelleyebilecek partikülleri en aza indirir.
      NOT: Erişim deliklerinin çapı, borunun dış çapından biraz daha az olmalıdır. Örneğin, dış çapı 1/32 inç olan politetrafloroetilen (PTFE) boru kullanılıyorsa, 1,5 mm'lik bir delik açılmalıdır.
4. PDMS kanallarına bir cam/elektrot substratı bağlayın.
   1. Elektrot camı kızaklarını metanol ile temizleyin (≥% 99.8). Kuru N_{2 ile kurulayın}.
   2. PDMS cihazını viski bandı ile temizleyin, ardından izopropil alkol (IPA) ve deiyonize su (DI; 18 MΩ /^cm2) ile durulayın. Kuru N_{2 ile kurulayın}. Ardından, viski bandı ile bir kez daha temizleyin.
   3. Cam substratı prefabrik elektrotlarla ve hazırlanan PDMS kalıbıyla (özellik tarafı yukarı) bir plazma temizleyiciye yerleştirin.
   4. Her ikisini de 2 dakika boyunca oksijen plazmasına maruz bırakın (100-300 mTorr, 30 W).
   5. PDMS kalıbını, özellik tarafı aşağı bakacak şekilde hizalayın ve prefabrik elektrotlarla cam alt tabakanın üzerine yerleştirin.
      NOT: Plazma ile işlenmiş PDMS ve cam temas ettiğinde yapıştırma anlıktır; sonuç olarak, daha fazla hizalama modifikasyonu mümkün olmayacaktır. Hizalamayı kolaylaştırmak için, DI suyundaki 2: 1 metanolün 20 μL'lik seyreltilmesi, plazma ile muamele edilmiş cam yüzeye pipetlenebilir. Metanol çözeltisi, işlenmiş cam ve PDMS arasında fiziksel bir bariyer görevi görerek hizalama ayarlamalarına izin verir. Metanol kullanıyorsanız, çözeltiyi buharlaştırmak ve yapıştırma işlemini tamamlamak için hizalanmış ve çiftleştirilmiş cihazı 50 ° C'de 2 saat pişirin.
   6. Bağlı cihazı mikroskop altında görsel olarak inceleyin. Elektrotların ve kanal geometrilerinin düzgün bir şekilde hizalandığından emin olun.

3. Hücreleri ölçün (Şekil 1D)

1. Basınç kaynağını, PCB'yi, tezgah üstü donanımı ve veri toplama yazılımını hazırlayın.
   1. Kelepçeyi kullanarak mikroakışkan cihazı PCB'ye bağlayın. PCB'nin bir örneği Ek Dosya 4'te (GERBER dosyaları) ve Ek Dosya 5'te (şematik, kart ve PCB parça listesi dosyaları) verilmiştir.
      1. Kelepçenin yaylı pimlerini mikroakışkan cihazdaki elektrot temas pedleriyle hizalayın ve kelepçenin başlık pimlerini PCB üzerindeki deliklerle hizalayın.
      2. Kelepçenin başlık pimlerini PCB deliklerine sıkıca yerleştirerek yaylı pimlerin elektrot temas pedleriyle aynı hizada kalmasını sağlayın.
   2. Elektronik donanımı kurun ve bağlayın.
      1. Güç kaynağının çıkış bağlantı noktalarından ikisini, çift muz fişli Bayonet Neill-Concelman (BNC) dişi adaptörü ve BNC kablosuyla PCB'nin besleme voltajı bağlantı noktasına bağlayın.
      2. Güç kaynağını açın. BNC'nin iç iletkenine bağlı çıkışı +15 V'a ayarlayın ve diğer çıkışı -15 V'a ayarlayın.
      3. Güç kaynağının çıkış bağlantı noktalarının üçüncüsünü BNC kablosuyla PCB'nin giriş voltajı bağlantı noktasına bağlayın. Çıkışı istenen uygulanan voltaja ayarlayın, ancak deneye başlayana kadar etkinleştirmeyin.
      4. PCB'nin çıkış akımı portunu bir BNC kablosuyla akım ön amplifikatörünün girişine bağlayın.
      5. Mevcut ön amplifikatörün çıkışını, bir BNC kablosuyla veri toplama sisteminin BNC terminal bloğundaki bir analog girişe bağlayın. İsteğe bağlı olarak, yüksek frekanslı paraziti filtrelemek için BNC kablosuyla aynı hizada bir analog alçak geçirgen filtre bağlayın.
         NOT: SNR'yi iyileştirmek için, PCB ve cihaz kalın bir metal muhafaza içine yerleştirilebilir. Tüm BNC kabloları ve akışkan borular, muhafazaya açılan deliklerden yönlendirilebilir.
   3. Gerekli yazılımı kişisel bilgisayara (PC) yükleyin ve kurun
      1. Basınç kontrol cihazını açın ve PC'ye bağlayın. Gerekli tüm basınç kontrol cihazı yazılımlarını üreticinin talimatlarına göre kurun.
      2. MATLAB'ı ve Veri Toplama Araç Kutusu'nu PC'ye yükleyin. MATLAB Veri Toplama Araç Kutusu arabiriminin algılayabilmesi için veri toplama sistemi için gerekli sürücülerin yüklendiğinden emin olun.
      3. Birlikte verilen veri toplama komut dosyası "NPS.m"yi https://github.com/sohnlab/node-pore-sensing-public'dan indirin.
   4. Veri alma komut dosyasını açın ve yapılandırın.
      1. Satıcı Kimliği, DAQ'ın Cihaz Kimliği ve analog giriş kanalı numarasını (dahil edilen komut dosyasında 34-36. satırlar) içeren veri toplama oturumunu başlatmak için doğru değerleri ayarlayın.
         NOT: Cihaz Kimliği, "daq.getDevices" veya "daqlist" işlevi kullanılarak bulunabilir.
      2. Edinme için istenen örnekleme hızını ayarlayın (dahil edilen komut dosyasında satır 23). En iyi sonuçlar için en az 10 kHz'e ayarlanmalıdır.
2. Hücre süspansiyonunu hazırlayın.
   1. 1x fosfat tamponlu salin (PBS) içinde% 2'lik bir fetal sığır serumu (FBS) çözeltisi hazırlayın ve 0.22 μm filtre ile filtreleyin.
   2. Hücreleri kültüre alır ve tercih edilen hücre hattının uygun hücre kültürü protokolüne göre hazırlar. Hazırlanan %2 FBS çözeltisindeki hücreleri, 1-5 x 10^{5 hücre/} mL konsantrasyonda 1x PBS içinde askıya alın. Deney süresince hücreleri buz üzerinde tutun.
3. Hücrelerin fiziksel özelliklerini ölçün.
   1. Hücre örneğini boruya yükleyin ve cihaz girişine bağlayın.
      1. 30 cm'lik PTFE borusunu tıraş bıçağı veya keskin bıçakla kesin.
      2. Borunun bir ucunu bir luer kilit şırıngasına takın. Hücre örneğini borunun diğer ucuna çekmek için şırıngayı kullanın.
      3. Boruyu cihazın girişine dikkatlice yerleştirin.
      4. Borunun karşı ucunu mikroakışkan basınç kontrol cihazına bağlayın.
         NOT: Basınç kontrolörüne sıvı geri akışını önlemek için mikroakışkan basınç kontrolörü ile boru arasına bir filtre eklenebilir.
   2. Denemeyi çalıştırın.
      1. Basınç kontrol cihazı yazılımı üzerinde istenen sabit sürüş basıncını ayarlayın ve numunenin cihazı doldurmasına izin verin.
         NOT: Basınç tipik olarak 2-21 kPa'dır. Akış hızı, açıkça tanımlanmış darbelere izin verecek kadar yavaş, ancak yeterli verime izin verecek kadar hızlı olmalıdır.
         1. Mikroakışkan kanallarda kabarcıklar oluşursa, çıkmaz doldurma kullanın: cihaz çıkışını takın ve gaz geçirgen PDMS'den havayı dışarı çıkmaya zorlamak için girişe düşük bir basınç uygulayın. Kanalda kabarcıklar bırakmak, dengesiz bir akım taban çizgisine yol açacak ve doğru ölçümleri önleyecektir.
         2. Enkaz mikroakışkan kanalı tıkarsa, sürüş basıncını uygularken PDMS cihazının üstüne hafifçe bastırarak, basıncı açıp kapatarak veya boruyu çıkarıp yeniden yerleştirerek daha yüksek bir basıncı "darbeleyerek" yerinden çıkarın. Enkaz kalırsa, yeni bir cihaza geçmek gerekebilir.
      2. Güç kaynağındaki Voltaj düğmesini döndürerek istediğiniz voltajı ayarlayın ve Açma düğmesine basarak voltajı etkinleştirin.
         NOT: Voltaj tipik olarak 1-5 V'tur. Yeterli bir SNR için gereken en düşük voltajı seçin. Karşılaştırılacak tüm koşullarda aynı voltaj kullanılmalıdır.
      3. Mevcut ön amplifikatörü açın ve hassasiyeti (A / V) mümkün olduğunca düşük ayarlayın; alternatif olarak, ön amplifikatörü aşırı yüklemeden veya DAQ'nın maksimum analog giriş voltajını aşmadan kazancı (V / A) mümkün olduğunca yükseğe ayarlayın. Bu çalışmada duyarlılık ^10-7 A/V olarak ayarlandı.
         NOT: Uygun hassasiyet/kazanç değeri, hem uygulanan voltaja hem de mikroakışkan kanalın temel direncine bağlı olacaktır.
      4. NPS.m veri toplama komut dosyasını başlatmak ve verileri örneklemeye ve kaydetmeye başlamak için MATLAB şerit menüsündeki yeşil Çalıştır düğmesine basın.
      5. Denemeyi sonlandırmak için, veri toplama komut dosyasını durdurmak üzere şekil penceresinin sol alt köşesindeki Durdur düğmesine basın. Açık düğmesine basarak güç kaynağı çıkışını devre dışı bırakın. Basınç kontrol cihazı yazılımında basınç kaynağını sıfır basınca ayarlayın.
      6. Bu noktada, deneme aşağıdakilerden birini veya birkaçını yapmak için duraklatılabilir:
         1. Mevcut cihazı yenisiyle değiştirin.
         2. Boruyu daha fazla hücre örneğiyle yeniden yükleyin.
            NOT: Numunenin çapraz kontaminasyonunu önlemek için, farklı tipteki veya koşullardaki hücreleri ölçmek üzere yeni cihazlar kullanın.
         3. Cihazı PCB'den çıkarın ve kanalın durumunu mikroskop altında inceleyin. Aynı cihazı kullanarak deneyi yeniden başlatmak için, hava kabarcıklarının ortaya çıkmamasına dikkat edilmelidir. Hücre örneğini cihaz girişine yerleştirirken tüpün en sonunda tutmak için şırınga pistonuna hafif basınç uygulamak gerekebilir.

4. Mikroakışkan cihazı kalibre edin

1. 1. Seçenek: Referans cihazlardaki polistiren boncukları ölçün.
   1. Boyutlandırma kanalından daha küçük bir polistiren boncuk boyutu seçin.
   2. Hücre deneyleri sırasında kullanılan filtrelenmiş PBS ve FBS çözeltisine, 1-3 x 10 5 boncuk / mL konsantrasyonunda%^1,5 Ara ve polistiren boncuklar ekleyin.
   3. Bölüm 3'te belirtildiği gibi, adım 1.3'te açıklanan referans cihazı kullanarak deneye devam edin ve deneme sırasında kullanılan voltajın aynısını uygulayın. Bölüm 5'te açıklandığı gibi, boncuklar boyutlandırma gözeneklerini geçerken üretilen mevcut düşüşün ortalama büyüklüğünü ve D _e'yi hesaplamak için boncukların bilinen çapını kullanın.
2. 2. Seçenek: Hücre boyutunu ayrı bir ölçüm cihazıyla bağımsız olarak ölçün.
   1. Adım 4.1'deki protokolü takip etmek yerine, numunedeki hücrelerin ortalama boyutunu ölçmek için ticari olarak temin edilebilen bir hücre boyutu ölçüm cihazı kullanın. Bu durumda, referans cihazına gerek yoktur. Bölüm 5'te açıklandığı gibi D e'yi hesaplamak için hücreler boyutlandırma gözeneklerini ve ölçülen ortalama hücre çapını geçerken üretilen ortalama akım düşüşünü kullanın.

5. Hücre fenotiplerini çıkarmak için verileri analiz edin

NOT: Veri işleme, mNPS_procJOVE https://github.com/sohnlab/NPS-analysis-JOVE.m adresindeki MATLAB komut satırı arabirim program dosyası kullanılarak gerçekleştirilebilir. Daha fazla talimat için Ek Dosya 6'ya bakın.

1. Verileri önceden işleyin (Şekil 3A).
   1. Akım-gerilim preamplifikatöründe kullanılan kazanç değerini DAQ tarafından elde edilen ham verilere uygulayarak ölçülen elektrik akımını hesaplayın.
   2. Ham akım ölçümüne dikdörtgen yumuşatma fonksiyonu ve/veya alçak geçirgen filtre uygulayarak yüksek frekanslı gürültüyü giderin. Ardından, filtrelenen verileri daha düşük bir örnekleme hızına yeniden örnekleyin. Ayrıca, karşılık gelen zaman damgası verilerini bu düşük örnekleme hızında hesaplayın.
   3. ^26'yı yumuşatan asimetrik en küçük kareler gibi bir yöntem uygulayarak takılı bir taban çizgisi akım sinyalini hesaplayın.
   4. Sonraki veri noktaları arasındaki farkı alarak önceden işlenmiş geçerli verilerin yaklaşık ilk türevini (fark sinyali) hesaplayın.
2. Hücre olaylarını tanımlayın ve alt darbe verilerini ayıklayın (Şekil 3B).
   1. Önceden işlenmiş verileri inceleyerek aday hücre olaylarını arayın. Diğer hücre olaylarıyla (yani, tesadüf olayları) çakışan hücre olaylarını reddedin (Ek Şekil 4), zayıf bir taban çizgisi uyumu sergileyen veya beklenmeyen ya da hatalı bir darbe şekline sahip olan (örneğin, kanalda bir tıkanıklık mevcut olabilir).
   2. Her hücre olayı için alt darbe verilerini ayıklayın.
      1. Her düğüm-gözenek segmenti, genel sinyal darbesi içinde karşılık gelen bir alt darbe olarak görünecektir (Şekil 1B, C). Fark sinyali yerel bir minimum değere ulaştığında zaman noktasını hesaplayarak her bir alt darbenin başlangıcını tanımlayın. Fark sinyali yerel bir maksimum değere ulaştığında zaman noktasını hesaplayarak her bir alt darbenin sonunu tanımlayın.
      2. Her bir alt darbenin genişliğini, başlangıç ve bitiş zaman noktaları arasında geçen süre olarak belirleyin. Başlangıç ve bitiş zaman noktaları arasındaki tüm veri noktaları için ölçülen akım ile taban çizgisi akımı arasındaki farkın ortalamasını hesaplayarak her bir alt darbenin genliğini belirleyin.
3. Alt darbe verilerine dayanarak her hücre olayı için hücre mekanofenotipini belirleyin.
   1. Deblois ve Bean²⁴ tarafından tanımlanan denkleme dayanarak d hücre çapını belirleyin:
      
      burada ΔI / I , boyutlandırma alt darbelerinde alt darbe genliğinin taban çizgisi akımına ortalama oranıdır, D_e kanalın etkin çapıdır (adım 4'te ölçülür) ve L , düğüm-gözenek kanalının toplam uzunluğudur.
      1. D e, bilinen bir çaptaki (hücreler veya boncuklar, bkz. adım 4) bir dizi parçacık tarafından üretilen ortalama ΔI / I'nin hesaplanmasıyla, bilinen çapı d olarak kullanarak ve D_e için Eq 1'i çözerek belirlenir_.
   2. Hücrenin deformasyona karşı direncini ölçün.
      1. Bilinen segment uzunluklarını ve her bir alt darbenin ölçülen süresini kullanarak, boyutlandırma alt darbelerindeki ortalama hücre hızını hesaplayarak akışkan hızı U_akışını belirleyin.
      2. Kim ve ^ark.2 tarafından tanımlanan tüm hücre deforme edilebilirlik indeksini (wCDI) belirleyin:
         
         burada L_c , büzülme segmentinin uzunluğu, h_kanalı kanal yüksekliği ve ΔT_c , büzülme alt darbesinin süresidir.
   3. Hücrenin, boyutlandırma alt darbesi^2'den ortalama genliğin% 8'inde bir genliğe sahip ilk kurtarma alt darbesi olarak tanımlanan deformasyondan iyileşme süresini tanımlayın.
   4. Kasılma segmenti içindeki hücrenin enine deformasyonunu hesaplayın.
      1. Kim ve ^ark.2 tarafından tanımlandığı gibi büzülme segmentinin (D_e,c) etkin çapını hesaplayın: burada w _c, büzülme segmentinin genişliğidir ve w_np, diğer tüm segmentlerin genişliğidir.
      2. Kasılma içindeki hücrenin eşdeğer küresel çapını d c'yi, Deblois ve Bean²⁴ tarafından tanımlanan denklemi kullanarak tekrar hesaplayın:
         
         burada ΔI c/I c, büzülme alt darbesindeki alt darbe genliğinin temel akıma oranıdır ve L_c, büzülme segmentinin uzunluğudur.
      3. Kim ve ^ark.2 tarafından açıklandığı gibi hücrenin uzama uzunluğu L'nin_deforme olduğunu hesaplayın:
         
      4. Son olarak, hücrenin enine deformasyonunu hesaplayın δ Kim ve ^ark.2 tarafından tanımlanan _deforme .

Burada sunulan mekanofenotipleme platformu, orta verime sahip tek hücrelerin biyofiziksel özelliklerini ölçmek için basit ve çok yönlü bir yaklaşımdır. Hücreler, sabit basınç güdümlü akış kullanılarak mikroakışkan kanaldan (Şekil 1A) akar. Hücreler geçiş yaparken, mikroakışkan kanalın uzunluğu ve üretilen akım darbeleri, veri toplama donanımı kullanılarak kaydedilir. Elde edilen sinyal (Şekil 1B, C) daha sonra ilgili tek hücreli mekanik özellikleri çıkarmak için MATLAB'daki özel yazılım kullanılarak işlenir. Şekil 1D , deneysel protokolün grafiksel bir genel bakışını sunmaktadır.

Cihazları imal etmek için, başlangıçta negatif bir ana kalıp oluşturulur ve PDMS'yi dökmek için kullanılır (Şekil 2). Ek Şekil 3'te gösterilen başarılı ana kalıplar, pürüzsüz, dikey yan duvarlar içerir ve mikroakışkan kanalda kusur içermez (Şekil 4Ai). Bu ilk ana kalıbın imalatında dikkatli olunmalıdır, çünkü kötü imal edilmiş gofretlerde (Ek Şekil 3), herhangi bir kusur sonraki tüm PDMS dökümlerine (Şekil 4Aii) aktarılacak ve kullanılamaz hale gelecektir. Başarılı PDMS dökümleri daha sonra desenli elektrotlarla cam slaytlara plazma ile bağlanır (Şekil 1A).

Deneyler için, bir cihazın elektrot pedleri, akım ölçümünü sağlamak için PCB'ye (Şekil 1D) bağlanır. Bir hücre örneği içeren boru daha sonra cihaz girişine yerleştirilir ve bir mikroakışkan akış kontrolörüne bağlanır, böylece mikroakışkan kanaldan basınca bağlı bir hücre akışı sağlanır. Önemli olarak, bir deney sırasında mevcut ölçümün canlı bir okuması görüntülenir. Bu, kullanıcıların cihazlarının amaçlandığı gibi çalıştığından emin olmalarını sağlar. Başarılı hücre geçişi olayları, kolayca ayırt edilebilen alt darbelerden oluşur (Şekil 4Bi). Tıkanma gibi komplikasyonlar deney sırasında ortaya çıkabilir ve anormal nabız şekillerine sahip olayların canlı olarak okunmasıyla tanımlanabilir (Şekil 4Bii).

Veri analizi için, her hücre geçiş olayı için çıkarılması gereken kritik sinyal parametreleri Şekil 1B'de ayrıntılı olarak açıklanmıştır ve adım 5.2.2'de açıklanmıştır. Ham sinyal, gürültüyü filtrelemek ve önemli bileşenleri çıkarmak için yeterli SNR'ye sahip olmalıdır (Şekil 3A). Kritik olarak, her düğümden gelen akım sinyal yükselişi, alt darbelerin fark sinyalinden kolayca tanımlanabilecek kadar sağlam olmalıdır ∂ I / ∂t (Şekil 3B).

Ölçülen wCDI ve iyileşme süreleri, hücreler veya koşullar arasında doğrudan karşılaştırmalar yapmak için kullanılabilir. Spesifik olarak, wCDI , elastik modülle ters orantılı olan hücre sertliğinin göreceli bir göstergesidir (Ek Şekil 5); Böylece, wCDI'nın daha büyük bir değeri daha yumuşak bir mekanik fenotipe karşılık gelir. Örneğin, Şekil 5A'da, malign MCF-7 hücreleri, malign olmayan MCF-10A hücrelerinden daha büyük bir wCDI dağılımına sahiptir, bu da malign MCF-7 hücrelerinin malign olmayan MCF-10A muadillerinden daha yumuşak olduğunu gösterir. Bu, kanser hücrelerinin malign olmayan meslektaşlarından daha yumuşak olduğunu gösteren çok sayıda ampirik çalışma ile tutarlıdır27. Benzer şekilde, Şekil 5B'de, latrunkülin ile tedavi edilen MCF-10A ve MCF-7 hücreleri wCDI'da bir artış göstermektedir. Latrunculin, aktin sitoiskeleti28'i bozan güçlü bir farmakolojik ajandır. Sonuç olarak, bu ilaçla tedavi edilen hücrelerde daha büyük bir wCDI ve dolayısıyla daha yumuşak bir fenotip gözlemlemek tutarlıdır. Son olarak, Şekil 5C'de wCDI , iki insan meme epitel hücre alt soyu olan luminal epitel (LEP) ve miyoepitelyal (MEP) arasında karşılaştırılmıştır. Bu karşılaştırmada, bir kez daha iki birincil hücre tipini farklılaştıran ve LEP hücrelerinin MEP hücrelerinden daha yumuşak olduğunu gösteren farklı bir wCDI dağılımı vardır. wCDI'nın ötesinde, hücre viskozitesinin göreceli bir göstergesini sağlamak için iyileşme süreleri de ölçülebilir. Daha uzun bir iyileşme süresi daha viskoz bir fenotipi gösterir. Şekil 5D, Şekil 5A-C'deki koşulların her biri için üç ayrı kategoriye ayrılmış kurtarma sürelerini sunar. Tedavi edilmemiş MCF-10As ve MCF-7'ler, anında iyileşen hücrelerin daha büyük bir oranına sahiptir (ΔTr = 0), latrunkülin ile muamele edilmiş muadillerinden daha düşük bir viskoziteye işaret eder.

wCDI ve geri kazanım süresi, tek hücreli elastikiyet ve viskozitenin göreceli ölçümleridir. Bu nedenle, burada sunulan yöntem, ilgilenilen birden fazla örnek arasındaki diferansiyel yanıtı karakterize etmek için en uygun yöntemdir. Mevcut haliyle, burada sunulan protokol, Young modülü gibi tanımlanmış mekanik parametrelerin mutlak niceliklerini sağlamamaktadır.

Şekil 1: Mekanofenotipleme platformuna genel bakış. (A) Mikroakışkan cihazın görüntüsü. (B) Kanal geometrisi, tek bir hücre geçişi olayından temsili bir akım darbesi ile. Δ I np, gözeneklere giren hücreden gelen akım düşüşünü temsil eder ve ΔI c, daralmaya giren hücreden gelen akım düşüşünü temsil eder. Δ T p, hücrenin gözenekten geçmesi için gereken süreyi temsil eder, Δ T c, hücrenin kasılma kanalını geçmesi için gereken süreyi temsil eder ve Δ T r, hücrenin iyileşmesi için gereken süreyi temsil eder. (C) Bir hücre transit olayından gelen gerçek akım darbesi. (D) Deneysel iş akışı: (1) hücreler PBS'de askıya alınır ve (2) mikroakışkan cihazdan sabit basınçla sürülür. Hücreler mikroakışkan kanalı geçirirken, (3) akım darbeleri veri toplama donanımı kullanılarak ölçülür. (4) Mevcut darbeler, çoklu tek hücreli mekanik özellikleri çıkarmak için analiz edilir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 2: Cihaz imalatına genel bakış . (A) Negatif ana kalıplar (1) fotolitografi kullanılarak imal edilir. (2) PDMS daha sonra negatif ana kalıplara dökülür. (3) Kalıplanmış cihazlar, giriş ve çıkış delikleri delinmiş olarak doğranır. (B) Aynı zamanda, cam slaytlar (1) metal elektrotlar üretmek için desenlidir. (2) E-ışını buharlaşması, metali kızak üzerine biriktirmek için kullanılır, ardından fazla metali çıkarmak için (3) bir kaldırma işlemi yapılır ve istenen metal elektrotları geride bırakır. (C) PDMS cihazı ve metal elektrotlu cam daha sonra imalat işlemini tamamlamak için oksijen plazması kullanılarak birbirine bağlanır. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 3: Veri işleme ve analiz . (A) Ham akım verileri (solda), dikdörtgen bir yumuşatma işlevi ve düşük geçişli filtre uygulanarak önceden işlenir (sağda), ardından daha düşük bir örnekleme hızına yeniden örnekleme yapılır. Temel akım sinyali daha sonra26'yı yumuşatan asimetrik en küçük karelerle donatılmıştır. (B) Her bir alt darbenin başlangıcındaki ve sonundaki zaman noktaları, fark sinyalinde sırasıyla yerel minimumlar ve maksimumlar olarak tanımlanır ∂ I/∂t (solda). Her bir alt darbe için, Δt genişliği, başlangıç ve bitiş arasında geçen süre ile belirlenir ve genlik ΔI , ölçülen akım ile taban çizgisi akımı arasındaki ortalama farkla belirlenir. Çıkarılan alt darbe verileri dikdörtgenleştirilmiş bir sinyal olarak temsil edilebilir (sağda); her alt darbe, cihaz geometrisindeki bir segmente karşılık gelir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 4: İmalat ve deney sırasında başarılı ve kusurlu sonuçlara örnekler . (A) İki farklı negatif-ana kalıptan alınan daralma segmentlerinin PDMS dökümlerinin görüntüleri. (i) pürüzsüz yan duvarlara, iyi tanımlanmış geometriye ve gözle görülür kusurlara sahip iyi imal edilmiş bir kanal örneğidir. (ii) büzülme kanalında (kırmızı dikdörtgenlerle özetlenen) önemli kusurları olan, parçacık akışını tamamen veya kısmen engelleyecek (ölçek çubukları = 150 μm) kötü imal edilmiş bir kanal örneğidir. (B) Veri toplama sırasında "NPS.m" tarafından üretilen filtrelenmiş akım darbelerine örnekler. (i) Bir hücrenin kanalı amaçlandığı gibi geçirdiği başarılı bir hücre olayı örneği. (ii) Cihaz "tıkandığında" üretilen akım darbelerine örnek. Bu durumda, enkaz kanalın ikinci gözenekindeki hücre akışını engeller. Bu, ikinci boyutlandırma darbesinin ortasında "kesilmiş" (kırmızı çizgi ile belirtilen) görünen hücre olaylarına yol açar. "Kesme" yi takiben akımdaki düşüşler (mavi çizgilerle gösterilir), tıkanıklığın etrafında biriken parçacıklardan (enkaz veya hücreler) kaynaklanır ve bu nedenle akım akışının daha büyük bir bölümünü bloke eder. Akımdaki keskin bir aşağı doğru ani artış (yeşil dikdörtgen ile gösterilir), tıkanıklığın etrafında geçebilen ve bu nedenle akımın yalnızca daha büyük bir bölümünü geçici olarak bloke edebilen bir parçacığı yansıtır. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 5: Çeşitli koşullar arasında wCDI ve hücre kurtarma örnekleri. (A) İki meme epitel hücre hattı, malign olmayan MCF-10A ve malign MCF-7 arasındaki wCDI dağılımı. (B) MCF-10A veya MCF-7'nin wCDI'sı , burada her hücre tipi tedavi edilmedi, Lat-A ile tedavi edildi ve Lat-B ile tedavi edildi. (C) İki primer insan meme epitel alt soyu arasındaki wCDI dağılımı: miyoepitelyal (MEP) ve luminal epitel (LEP) hücreleri. (D) A, B ve C arasındaki dört koşula karşılık gelen iyileşme süreleri, görüntüleme kolaylığı için bağlandı. Tüm koşullar n = 99 hücrelik bir örneklem büyüklüğüne sahipti. Bu rakam Kim ve ark.2'nin izniyle çoğaltılmıştır. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Ek Şekil 1: Hem mikroakışkan kanallar hem de elektrotlar için cihaz dizilerine örnekler. Saydamlık maskeleri olarak temsil edilen her iki görüntü, fotodirencin UV'ye maruz kalacağı bölgelerde beyaz, UV ışınlarına maruz kalmasının engelleneceği bölgelerde ise siyah ile tasarlanmalıdır. (A) "Cihaz" (dikdörtgen) başına iki paralel kanala sahip, 3 inç Si gofret üzerine düzenlenmiş bir dizi mikroakışkan kanal. En sağdaki cihaz "ref" olarak etiketlenmiştir ve kalibrasyonda kullanılmak üzere adım 1.3'te açıklandığı gibi tasarlanmıştır. (B) Cihaz başına iki elektrot içeren bir elektrot dizisi, böylece (A)'dan bir cihazdaki her iki kanal da (B)'den gelen her elektrot tasarımı üzerinde hizalanacaktır. Bu dizi, cam slaytta 2 inç x 3 için düzenlenmiştir. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Şekil 2: Elektrot tasarımının bölgelerini ve altının doğru şekilde nasıl kazınacağını gösteren şemalar (adım 2.1.2.3). Altının üst tabakası ölçüm elektrotlarından çıkarılmalıdır, aksi takdirde ölçüm sırasında biyolojik kirlenme ve elektroliz meydana gelir. Bununla birlikte, altın temas pedleri üzerinde kalmalıdır, çünkü yumuşak altın pogo pim konektörünün pimleriyle üstün bir elektrik bağlantısı sağlar. (A) Mikroakışkan kanalın (mavi renkte) desenli metal (siyah) ile nasıl kesiştiğini gösteren şematik. Belirtildiği gibi, mikroakışkan kanala dik ve doğrudan altındaki metal, altının kazınması gereken ölçüm elektrotlarıdır, kanalın yanındaki büyük metal dikdörtgenler, altının kalması gereken temas pedleridir. (B) Desenli metale altın kazımanın nereye uygulanması gerektiğini ve nerede uygulanmaması gerektiğini gösteren şematik. Yeşil bölge aşındırmanın gerekli olduğu yerleri, sarı bölge aşındırmanın nerede gerçekleşebileceğini ve cihazın etkinliğini etkilemeyeceğini ve kırmızı bölge altının kazınmaması gereken yerleri gösterir. (C) Tipik, başarıyla kazınmış bir cihazı gösteren şematik. Sarı, altının hala mevcut olduğu bölgeleri gösterir ve gri, platin tabakasının açığa çıktığı bölgeleri gösterir. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Şekil 3: Başarılı ve kötü imal edilmiş kasılma kanallarının görüntüleri. (A) İki ayrı Si gofretinden negatif ana kalıplar üzerindeki büzülme kanallarının görüntüleri. (i) Şekil 4Ai'de gösterildiği gibi ideal bir PDMS kanalı üretecek iyi imal edilmiş bir ana kalıp örneği. (ii) Şekil 4Aii'de gösterilen PDMS kanalını oluşturmak için kullanılan, kötü imal edilmiş bir ana kalıp örneği. Kırmızı dikdörtgenlerle özetlenen bölgeler, Şekil 4Aii'de belirtilen kusurlara karşılık gelir ve kusurların ana kalıptan PDMS mikro kanallarına (ölçek çubukları = 150 μm) aktarıldığını gösterir. (B) Farklı kalıpların yüksekliğini ve genişliğini gösteren PDMS büzülme kanallarının kesitinin görüntüleri. Bu kesitler, PDMS büzülme kanalının akış yönüne dik olarak dilimlenmesiyle elde edildi. (i) (Ai) bendinde gösterilen gofret kullanılarak oluşturulan, düzgün dikey yan duvarlar gösteren iyi imal edilmiş bir PDMS kalıbı örneği. (ii) (Aii)'de gösterilen gofret kullanılarak oluşturulan ve eğimli yan duvarları gösteren kötü imal edilmiş bir PDMS kalıbı örneği (ölçek çubukları = 20 μm). Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Şekil 4: Bir tesadüfi hücre olayı örneği (aynı anda birden fazla hücre kanaldan geçerken üretilir). Sinyal, protokolün 5. bölümündeki 5.1.1-5.1.3 numaralı adımlara göre işlenmiştir. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Şekil 5: wCDI ile elastik modül 20,29,30,31,32,33,34,35 arasındaki ilişki. (A) Bu teknikle ölçülen Jurkat, MCF7 ve MCF10A hücrelerinin mikropipet aspirasyonu ile karşılaştırılması. wCDI, kortikal gerilimle ters orantılıdır. (B) Bu teknikle ölçülen MCF7 ve MCF10A hücrelerinin yayınlanmış AFM verileriyle karşılaştırılması. (C) Bu teknikle ölçülen A549 ve BEAS-2B hücrelerinin yayınlanmış AFM verileriyle karşılaştırılması. Birden fazla hücre tipi üzerinde, wCDI elastik modülle ters orantılıdır. Bu rakam Kim ve ark.2'nin izniyle çoğaltılmıştır. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Tablo 1: Tek hücreli mekanofenotipleme tekniklerine örnekler ve bunların mekano-NPS ile karşılaştırılması. Teknikler, artan verim12,2,36,37 sırasına göre listelenmiştir. Mekanik bilgi, cihazın her hücrenin hem elastik hem de viskoz mekanik özelliklerini ölçüp ölçemeyeceğini ifade eder. Bu tabloyu indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Tablo 2: Farklı hücre çizgileri için boyutlandırma, büzülme ve kurtarma segmenti genişliklerine örnek. MEP ve LEP, primer insan meme epitel hücrelerinin iki soyuna atıfta bulunurken, MEP miyoepitel hücrelerine ve LEP, luminal epitel hücrelerine 2,8 atıfta bulunur. Bu tabloyu indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Dosya 1: AutoCAD tasarım örneği. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Dosya 2: Fotolitografi işleme için örnek protokol. Fotorezistin veya SU-8 epoksinin desenlenmesi ve işlenmesi için iki örnek protokol özetlenmiştir. Birincisi, elektrot üretimi için kurban edilen bir tabaka olarak hareket etmek üzere bir cam slayt üzerinde pozitif fotodirencin uygulanmasını açıklar. İkincisi, PDMS mikroakışkan kanallarının kalıplanması için kabartma yapıları oluşturmak üzere SU-8 epoksinin bir silikon gofret üzerine uygulanmasını açıklar. Bu protokoller, üreticinin MF-321 ve SU8 3000 veri sayfalarından uyarlanmıştır. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Dosya 3: Elektron ışını buharlaşması kullanılarak 75 şTi, 250 şPt ve 250 şAu ince film birikimi için örnek protokol. Bir elektron ışını evaporatörü kullanarak 75 şTi, 250 şPt ve 250 şAu ince film birikimi gerçekleştirmek için örnek bir protokol özetlenmiştir. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Dosya 4: GERBER dosyaları Bu Dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.

Ek Dosya 5: Şematik, kart ve PCB parça listesi dosyaları Bu Dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.

Ek Dosya 6: MATLAB komut satırı arabirimi. Bu dosya, MATLAB komut satırı arabirimi26'yı kullanarak veri işleme için ayrıntılı yönergeler içerir. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

L. L. S, ABD patent No. 11,383,241'e sahiptir: "Mechano-node-pore sensing", J. Kim, S. Han ve L. L. Sohn, 12 Temmuz 2022'de yayınlanmıştır.