Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Twisted Testisin Ankrajı: Testisin İskemi-Reperfüzyon Hasarının Sıçan Modeli

649 görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/67181

⸱

14 Kasım 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Physiology, Ladoke Akintola University of Technology, 2Department of Anaesthesia, Afe Babalola University, 3Department of Pharmacology, Bowen University, 4Reproductive Biology and Toxicology Research Laboratory, Oasis of Grace Hospital

Bu makalede

Özet

Bu makale, testiste iskemi-reperfüzyon hasarının patolojik mekanizmalarının incelenmesinde tekrarlanabilir bir testis torsiyonu modelinin üretilmesi için bir testis iskemi/reperfüzyon modeli oluşturmaya yönelik adım adım bir prosedürü açıklamaktadır.

Özet

İskemi-reperfüzyon (IR) yaralanmaları, testis yaralanması da dahil olmak üzere çeşitli patolojilerle ilişkilidir. İskemi elde etmek için spermatik kordun bükülmesini içeren testiküler IR'nin daha önceki hayvan modelleri, modelin tutarlı bir şekilde yeniden üretilememesine neden olan birçok teknik zorlukla doludur. Bu nedenle, kolayca kopyalanabilen bir sıçan modelinde testiküler IR'yi indüklemek için basit bir yöntem sunuyoruz.

Bu yöntem, gubernakulumun testisten ayrılmasını, skrotal poş oluşturulmasını, testisin alt kutbundan saat yönünde 720° döndürülmesini ve testisin skrotum tabanına sabitlenmesini içerir. Bu model testis damarlarını etkili bir şekilde daraltır ve testis iskemisini indükler. 1 saatlik iskemiden sonra ankraj dikişi çıkarılır ve testis çözülür. Kordon ve beraberindeki damarlar, açıklığı sağlamak için incelenir. IR sonrası testis toplanır ve histopatolojik değerlendirme için kesitlere ayrılır.

Testis histolojisi fokal hemorajik lezyonlar, vasküler konjesyon, genişlemiş interstisyel boşluk ve enflamatuvar hücrelerin infiltrasyonu açısından incelendi. Ayrıca oksidatif stres (malondialdehit, indirgenmiş glutatyon, katalaz ve süperoksit dismutaz), inflamasyon (MPO, TNF-α, IL-1β) ve apoptoz (kaspaz 3 ekspresyonu) belirteçleri test edildi. Bu yöntem, testis IR hasarının patofizyolojisini incelemek için daha basit ve kolay tekrarlanabilir bir model sağlar. Dahası, bu model testis IR hasarının tedavisinde potansiyel terapötik ajanları araştırmak için bir pencere açmaktadır.

Giriş

Testis torsiyonu (TT), spermatik kordun eşlik eden damarlarla birlikte bükülerek testisin iskemisi ile sonuçlandığı akut ürolojik bir acil durumdur. Şiddetli karın ağrısı, bulantı ve kusma ile karakterizedir1. İskemi, zamanında detorsiyonla çözülmezse, nekroz ve ilgili testisin kaybı ile sonuçlanır2. Bununla birlikte, testise kan akışının çözülmesi ve restorasyonu ile zamanında cerrahi müdahale, testisin ve fonksiyonlarının histolojik ve biyokimyasal bozulmasına neden olan iskemi-reperfüzyon hasarı (IRI) ile sonuçlanır 3,4.

TT'nin hayvan modelleri, her zaman TT'nin nekroza ilerlemesini önleme girişimlerinden kaynaklanan IRI mekanizmalarını araştırmak için yaygın olarak kullanılmıştır 5,6. TT'nin iki modeli vardır, spermatik kord kenetleme ve kordon büküm. Her ikisi de steril koşullar ve yeterli anestezi altında gerçekleştirilir. Kullanılan yaygın anestezik ajanlar arasında tek başına veya ksilazin7 ile kombinasyon halinde ketamin bulunur. Yaygın olarak kullanılan diğer anestezik ajanlar, genellikle intraperitoneal olarak uygulanan üretan ve tiyopental sodyumdur7. Bununla birlikte, her iki modelin de sınırlamaları vardır.

Testis arterinin mikrovasküler klipsler 8,9 ile doğrudan klemplenmesi, klemplerin çıkarılmasıyla reperfüzyon indüksiyonundan önce belirli bir süre (genellikle 1 saat) iskemiyi indüklemenin bir yolu olarak kullanılmış olsa da, yöntem testis10'un burulmasının klinik görünümünü doğru bir şekilde taklit etmez. Ayrıca, iskemi11,12'yi elde etmek için spermatik kordun cerrahi olarak bükülmesi klinik sunumu daha iyi temsil etse de, konuyla ilgili makalelerin yöntemler bölümünde karşılaşılan kısa açıklamalarla ele alınmayan birçok teknik zorlukla doludur.

Sıklıkla karşılaşılan açık bir teknik zorluk, iskemi döneminde çözülmeyi önlemek için testisin skrotumun tabanına geri döndürülmesi ve sabitlenmesi olmuştur. Bazı araştırmacılar testisin skrotal duvara13,14 sabitlenmesinden bahsetmezken, diğerleri tunika albuginea'nın dikilmesiyle testisin skrotal duvara sabitlenmesini önermektedir 15,16,17. Testisin skrotal duvara sabitlenmesi işleminin açıklamaları genel olarak çok kısa ve açık değildir 7,18. Bu nedenle, önceki makalelerin yöntem bölümlerinde açıklanan prosedürleri çoğaltma girişimleri, tunika albuginea'nın delinmesi nedeniyle testisin yaralanması ve testisin aşırı basınç uygulamadan skrotuma geri döndürülememesi gibi ciddi pratik zorluklarla karşılanmıştır. Ayrıca, pratik anlamda, testisin torsiyon indüklendikten sonra skrotal keseye geri dönmesi, deneysel TT'yi cerrahi olarak indükleme girişimlerimizde büyük bir zorluk olmuştur. Bu tür teknik zorluklar, modelin farklı araştırmacılar arasında tutarlı bir şekilde yeniden üretilememesine neden olmuştur.

Bu nedenle, sıçanlarda bir TT modeli oluşturmak için bu çalışmada açıklanan prosedür, önceki modellerde karşılaşılan teknik zorlukları tanımlar ve bunlar için çözümler sunar. Bu model, kolayca tekrarlanabilen ve insan deneyimini taklit eden basit bir teknik sağlar. Bu nedenle model, IRI'den kaynaklanan patolojik mekanizmaların incelenmesinde güvenilir ve tekrarlanabilir bir başlangıç noktasıdır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Çalışma, Nijerya'nın Oyo Eyaleti, Ogbomoso, Ladoke Akintola Teknoloji Üniversitesi Temel Tıp Bilimleri Fakültesi Etik İnceleme Komitesi tarafından onaylandı (ERCFBMSLAUTECH:033/05/2024). Bu çalışma için 10-12 haftalık ve 180 ± 10 g ağırlığında yirmi erkek albino Wistar sıçan kullanıldı. 2 hafta boyunca alıştırıldılar ve daha sonra rastgele ya sahte ameliyat grubuna (SO) ya da burulma/detorsiyon grubuna (T/D) ayrıldılar (n = grup başına 10 sıçan). SO sıçanları, tıpkı T/D sıçanları gibi benzer bir ameliyat geçirdi, ancak testisler T/D'yi indüklemek için bükülmedi veya sabitlenmedi.

1. Ameliyat öncesi hazırlık ve anestezi

  1. Hayvanları (SO ve T/D grupları) ameliyattan önce gece boyunca 12 saat oruç tutun.
  2. Ameliyat günü, hayvanları (SO ve T/D grupları) intraperitoneal olarak 50 mg/kg ketamin ve 10 mg/kg ksilazin kombinasyonu ile uyuşturun ve hayvanların pati pedi basıncına ve bıyıkların ışık uyarımına yanıt vermediğini gözlemleyerek anestezinin yeterliliğini ve derinliğini doğrulayın.
  3. Hayvanların sol skrotal, perineal ve kasık bölgelerini (SO ve T/D grupları) tıraş edin ve ardından metil ispirto ve povidon antiseptik solüsyonu ile temizleyin.

2. Testis iskemisinin indüksiyonu

  1. Testisin mobilizasyonu
    1. Sol testisi (hem SO hem de T/D gruplarından) skrotuma itmek için karın üzerine hafifçe aşağı doğru baskı uygulayın.
    2. Sol testisi (hem SO hem de T/D gruplarından) sıkıca kavrayın ve tunika vaginalis (TV) içindeki alttaki testisi ortaya çıkarmak için ~1,5 cm uzunluğunda yüksek bir skrotal kesi yapın.
    3. Testisin alt kutbunu (hem SO hem de T/D gruplarının), özellikle kauda epididimini bulun ve üstteki TV'de küçük diseksiyon makasıyla bir çentik açın.
    4. Makası TV'nin altına yerleştirin ve TV'nin iki kenarını gösterecek şekilde hafifçe genişletin ve ardından kavisli sivrisinek arter forsepsleri ile her iki taraftaki kenarları kavrayın. Bu hem SO hem de T/D grupları için geçerlidir.
      NOT: Bu adım, torsiyon indüksiyonundan sonra testisin skrotuma kolayca geri dönmesini sağlayacak bir doku düzlemi oluşturduğu için çok önemlidir.
    5. TV'deki insizyonu (hem SO hem de T/D gruplarının) proksimalde ~0,5 cm uzatın.
    6. Testisi (hem SO hem de T/D gruplarının) dışarıya çıkarmak için alt karın bölgesine hafif bir baskı uygulayın.
    7. Sadece T/D grubu için testisi mobilize edin ve gubernakulum testisini tanımlayın, ardından testisi skrotum tabanından ayırmak için kesin.
      NOT: Bu adım, testisin bükülmesine izin verdiği için önemlidir. Gubernakulum, testisin kaudal ucundan kasık kanalına uzanan ve topuz benzeri bir genişleme19,20 ile biten bağ olarak tanımlanır.
    8. Testisi (T/D hayvanlarının) alt kutbundan (kauda epididiminin bulunduğu yer) kavrayın ve saat yönünde 720° çevirin ve zamanı kaydedin (iskeminin başlangıcını işaret eder).
  2. İskemik testisin sabitlenmesi
    1. Bükülmüş testisi (T/D hayvanlarının) yerinde tutarak ve bir kese oluşturmak için uzun diseksiyon makasını TV'nin altındaki doku düzlemi boyunca skrotuma doğru aşağı doğru iterek bir skrotal kese oluşturun.
    2. Sadece T/D hayvanları için, makası yerinde tutarak ve daha önce oluşturulan skrotal poşun en alt noktasının dışından kromik 2-0 sütür kullanarak bir ankraj dikişi yerleştirerek ankraj dikişini yerleştirin. Dikişi testisin alt kutbundaki bağ dokusuna yerleştirin ve tekrar kesenin içine ve ilk giriş noktasının yanına getirin.
    3. Torslanmış testisi (T/D hayvanlarının) skrotuma çekerek ve sütürün iki ucuna hafifçe aşağı doğru çekiş uygulayarak testisi skrotumun tabanına sabitleyin ve ardından sütürün iki ucunu skrotal cilde sıkıca bağlayın.
    4. Skrotal insizyonu (SO ve T/D hayvanlarının) kromik 2-0 kullanarak sürekli bir kese ipi sütürü ile kapatın.
      NOT: Bu, reperfüzyon yapılacağı zaman kolay çıkarılması için önerilir.

3. Biyokimyasal ve histopatolojik araştırmalar

NOT: Biyokimyasal tahlilleri ve histopatolojik incelemeleri yapan araştırmacıların çalışma protokolüne kör olduğundan emin olun.

  1. Deney süresinin sonunda, hayvanlara gece boyunca 12 saat aç kalın ve ötenazi yapın (50 mg/kg ketamin ve 10 mg/kg ksilazin ip).
  2. Sol testisleri yapışan yapılardan çıkarın ve ayırın.
  3. Her gruptan 10 testis dokusundan beşini homojenizasyon tamponunda (0.25 M sükroz, 0.5 mM EDTA, 5 mM histidin ve PBS, pH 7.4 içinde çözünmüş PI) homojenize edin ve kalan beş testis dokusunu histolojik değerlendirme için Bouin solüsyonunda sabitleyin.
  4. Biyokimyasal analizler için süpernatantı elde etmek için homojenatları soğuk bir santrifüjde 4 °C'de 15 dakika boyunca 10.000 × g'da döndürün.
  5. Testiküler ksantin oksidaz (XO) aktivitesini, üreticinin yönergelerini izleyerek standart laboratuvar kitleri kullanarak enzimatik kolorimetrik bir testle belirleyin.
  6. Kolorimetri21 ile testis testiküler malondialdehit (MDA) içeriğini test edin.
    1. Lipid peroksidasyonu sırasında üretilen tiyobarbitürik asit reaktif maddeler (TBARS) kullanılarak lipid peroksidasyon konsantrasyonu tayini
      NOT: Bu yöntem, lipid peroksidasyonunun bir son ürünü olan 2-tiyobarbitürik asit (TBA) ile malondialdehit arasındaki reaksiyona dayanmaktadır. Asidik pH'ta ısıtma, 532 nm'de absorbansı ölçülen pembe bir kromojen kompleksi ([TBS] 2-malondialdehit eklentisi) verir.
      1. 200 μL numuneyi 500 μL Trikloroasetik asit (TCA) ile deproteinize edin ve 10 dakika boyunca 3.000 rpm'de santrifüjleyin.
      2. 0,1 mL süpernatanta 1 mL %0,75 TBA ekleyin, 100 °C'de 20 dakika su banyosunda kaynatın ve buzlu suyla soğutun.
      3. Boşluğa karşı bir spektrofotometre kullanarak numunenin/standardın 532 nm'deki absorbansını okuyun. Standart eğriden ekstrapolasyon yapılarak üretilen TBARS konsantrasyonunu belirleyin.
  7. Süperoksit dismutaz (SOD)22, katalaz23 ve glutatyon peroksidazın (GPx)24 testis aktivitelerini daha önce bildirildiği gibi yerleşik protokoller kullanarak test edin.
    1. SOD tayini
      1. 10'da 1 seyreltme yapmak için numunenin 1 mL'sini 9 mL damıtılmış su içinde seyreltin. Spektrofotometre dengelemesi için bu seyreltilmiş numunenin 0,2 mL'sini 2,5 mL 0,05 M karbonat tamponuna (pH 10,2) ekleyin.
      2. Karışıma 0,3 mL taze hazırlanmış 0,3 mM adrenalin ekleyerek reaksiyonu başlatın ve ters çevirerek hızla karıştırın.
      3. Referans küvetine 2,5 mL tampon, 0,3 mL substrat (adrenalin) ve 0,2 mL su ekleyin.
      4. 480 nm'de 150 saniye boyunca her 30 saniyede bir absorbanstaki artışı izleyin.
    2. Katalaz tayini
      1. Numunenin 1:29 oranında seyreltilmesini sağlamak için testis homojenatının 1 mL süpernatanını 19 mL seyreltilmiş su ile karıştırın.
      2. 10 mL'lik düz tabanlı bir şişede 4 mLH2O2çözeltisi (800 μmol) ve 5 mL fosfat tamponu alın.
      3. Uygun şekilde seyreltilmiş enzim preparatının (adım 4.6.3.1) 1 mL'sini reaksiyon karışımı (adım 4.6.3.2) ile 37 °C'de hafif bir döndürme hareketi kullanarak karıştırın. Reaksiyon karışımından 1 mL çekin ve 60 s aralıklarla 2 mL dikromat/asetik asit reaktifine ekleyin.
      4. 653 nm'deki absorbansı sertifikalı bir katalaz standardınınkiyle karşılaştırarak numunedeki katalaz seviyelerini belirleyin.
    3. GPx testi
      1. Numuneyi içeren reaksiyon karışımını 37 °C'de 3 dakika inkübe edin, 0,5 mL %10 trikloroasetik asit (TCA) ekleyin ve 3.000 rpm'de 5 dakika santrifüjleyin.
      2. 1 mL süpernatanta 2 mL fosfat tamponu ve 1 mL 5'-5'-dithiobis-(2-dinitrobenzoik asit (DTNB) çözeltisi ekleyin ve absorbansı 412 nm'de bir boşluğa karşı okuyun.
      3. Standart eğriyi çizerek ve kalan GSH konsantrasyonunu eğriden tahmin ederek glutatyon peroksidaz aktivitesini belirleyin.
  8. MPO ve tümör nekroz faktörü-alfa (TNFa) testi
    NOT: Bu tahlil, hidrojen peroksit varlığında guaiacol'ün oksitlenmiş guaiacol'e oksidasyonunu içerir. Guaiacol oksitlenmiş formunda, 470 nm'de fotometrik olarak ölçülen kahverengi bir renge sahiptir.
    1. Testiküler miyeloperoksidaz (MPO) aktivitesi21,25 ve tümör nekroz faktörü-alfa (TNF-α) düzeylerini belirlemek için standart ELISA kitlerini kullanın.
  9. Hematoksilen ve eozin (H&E) boyası26,27 kullanılarak histopatolojik inceleme ve kaspaz 3 ekspresyonu için immünohistokimya
    1. Testis dokusunu Bouin sıvısında koruyun; dokuyu toluen ile yıkayın, parafin mumuna batırın ve gece boyunca 60 °C'de inkübe edin.
    2. ~5 μm kalınlığında kesitler alın, bunları deparafinize edin ve yeniden sulandırın, önceden ısıtılmış sitrat tamponu kullanarak antijeni alın ve 30 dakika soğumaya bırakın.
    3. Slaytları laboratuvar mendilleriyle temizleyin, kesit alanlarını hidrofobik bir kalemle işaretleyin ve slaytları nemli bir odaya yerleştirin.
    4. Hidrojen peroksit kullanarak endojen peroksidaz aktivitesinin blokajını takiben slaytları 10 dakika inkübe edin. Slaytları PBS ile bir kez durulayın, protein bloğunu uygulayın ve 10 dakika inkübe edin.
    5. Slaytları PBS 2x ile durulayın, karşılık gelen birincil antikorları (kaspaz 3) uygulayın, slaytları 45 dakika inkübe edin ve 2x PBS ile durulayın.
    6. İkincil antikoru uygulayın, 25 dakika inkübe edin, PBS 2x ile durulayın ve HRP polimerini ekleyin. İnkübasyon döngüsünü 25 dakika boyunca tekrarlayın ve PBS ile 2 kez durulayın.
    7. Kesitleri diaminobenzidin (DAB) substratında 5 dakika inkübe edin, PBS ile 2x durulayın, Hematoksilin ile karşı boyama yapın ve damıtılmış su ile durulayın.
    8. Bölümlere mavileştirme solüsyonu uygulayın, durulayın, kurutun, temizleyin ve kalitatif inceleme için monte edin.
    9. Dokuları ışık mikroskobu altında inceleyin ve mikroskoba bağlı bir dijital kamera ile 100x ve 400x büyütmede fotomikrograflar çekin.

4. İstatistiksel analiz

  1. Tercih ettiğiniz yazılımla istatistiksel analiz yapın. Normalliği test etmek için Anderson-Darling testi, D'Agostino ve Pearson testi ve Shapiro-Wilk testi yapın.
  2. Her iki grup arasındaki anlamlı farkı test etmek için eşleştirilmemiş bir t-testi yapın: SO ve T/D.
  3. Verileri, ortalamanın standart hatası ± ortalama olarak sunun. Anlamlılık düzeyini p < 0,05, p < 0,01 ve p < 0,001 olarak ayarlayın (şekil açıklamalarında bildirildiği gibi).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

XO aktivitesi, MDA seviyesi ve testiste SOD, katalaz ve GPx aktiviteleri oksidatif stresin belirteçleri olarak kullanıldı. Torsiyon/detorsiyon (T/D), T/D sıçanlarda XO aktivitesini ve MDA düzeylerini belirgin şekilde arttırdı ve sahte ameliyat edilen sıçanlara kıyasla SOD, katalaz ve GPx'in testis aktivitelerini azalttı (Şekil 1), T/D kaynaklı yaralanmada oksidatif stresin rolünü göstermektedir.

Ayr...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu makale ve beraberindeki video, ankraj yaklaşımı kullanılarak testiküler IRI çalışması için TT'nin cerrahi indüksiyonunun ayrıntılı bir adım adım açıklamasını vermektedir. Yöntem, klempleme teknikleri7 ile testisin uzun süreli dışsallaşmasını ortadan kaldırması ve aynı zamanda insanlarda TT'nin klinik sunumunu daha yakından modellemesi10,12 açısından özellikle yararlıdır.

Öngö...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların beyan edecekleri herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

Prosedürün filme alınmasına ve düzenlenmesine yardımcı olan Sağlık Bilimleri Fakültesi görsel-işitsel birim başkanı Bay Ojeniran'ın yardımını burada kabul ediyoruz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
1 cc şırıngalarUygulanamazUygulanamazanestezik için
2-0 krom sütürUygulanamazUygulanamazCerrahi için
Bard Parker bıçak sapıUygulanamazUygulanamazCerrahi için
Eğik Sivrisinek arter forsepsUygulanamazUygulanamazCerrahi için
Diseksiyon makasıUygulanamazUygulanamazCerrahi için
GraphPad Prism (sürüm 8.0.2)
Ketamine enjeksiyonuSwiss Parenterals LTD Gujarat Hindistan2321154Anestezik
Parasetamol enjeksiyonuShanxi Zhongbao Pharmaceuticals, Çin220637Ağrı kesici
PovidonJAWA International limited Nijerya135SAntiseptik yıkama
Prokain penisilin tozuAnhui Chengshi Pharmaceutical Co Ltd Çin201906Cerrahi için
Cerrahi bıçakUygulanamazUygulanamazCerrahi için
Cerrahi eldivenZhenjiang huayang lateks ürünleri Çin210325
Dikiş makasıUygulanamazUygulanamazCerrahi için
Dişli diseksiyon forsepsUygulanamazUygulanamazCerrahi için
Xilazin enjeksiyonuBioveta Çek Cumhuriyeti396228AAnestezik
Hafif MikroskopNovel Mikroskop, ÇinUygulanamazHistopatolojik değerlendirme için
Dijital KameraHayear, ÇinUygulanamazHistopatolojik değerlendirme için
TNF-α kitiElabscience, ABDE-EL-H0109Assay için
Thermo Fischer kiti (kaspaz 3 ekspresyonu için anti-fare kaspaz 3 monoklonal)Thermo Fischer Scientific Inc., ABDUygulanamazİmmünohistokimya için (kaspaz 3)

Kaynaklar

  1. Obi, A. O., Okeke, C. J., Ugwuidu, E. I. Acute testicular torsion: A critical analysis of presentation, management, and outcome in southeast Nigeria. Niger J Clin Pract. 23 (11), 1536-1541 (2020).
  2. Yang, C., Song, B., Tan, J., Liu, X., Wei, G. H. Testicular torsion in children: a 20-year retrospective study in a single institution. Sci World J. 14 (11), 362-368 (2011).
  3. Ganjiani, V., Ahmadi, N., RaayatJahromi, A. Protective effects of Stevia rebaudiana aqueous extract on experimental unilateral testicular ischaemia/reperfusion injury in rats. Andrologia. 52 (2), e13469(2020).
  4. Afolabi, O., Alabi, B., Omobowale, T., Oluranti, O., Iwalewa, O. Cysteamine mitigates torsion/detorsion-induced reperfusion injury via inhibition of apoptosis, oxidative stress and inflammatory responses in experimental rat model. Andrologia. 54 (1), e14243(2022).
  5. Taskinen, S., Taskinen, M., Rintala, R. Testicular torsion: orchiectomy or orchiopexy. J Ped Urol. 4 (3), 210-213 (2008).
  6. Cost, N. G., Bush, N. C., Barber, T. D., Huang, R., Baker, L. A. Pediatric testicular torsion: demographics of national orchiopexy versus orchiectomy rates. J Urol. 185 (6S), 2459-2463 (2011).
  7. Akhigbe, R. E., Odetayo, A. F., Akhigbe, T. M., Hamed, M. A., Ashonibare, P. J. Pathophysiology and management of testicular ischemia/reperfusion injury: Lessons from animal models. Heliyon. 10, e27760(2024).
  8. Kehinde, E. O., et al. Significance of determining the point of reperfusion failure in experimental torsion of testis. Int J Urol. 12 (1), 81-89 (2005).
  9. Dokmeci, D., et al. Protective effect of L-carnitine on testicular ischaemia-reperfusion injury in rats: Cellular biochemistry and its modulation by active agents or disease. Cell Biochem Funct. 25 (6), 611-618 (2007).
  10. Ellati, R. T., Kavoussi, P. K., Turner, T. T., Lysiak, J. J. Twist and shout: a clinical and experimental review of testicular torsion. Kor J Urol. 50 (12), 1159-1167 (2009).
  11. Ranade, A. V., et al. Effect of vitamin E administration on histopathological changes in rat testes following torsion and detorsion. Sing Med J. 52 (10), 742-746 (2011).
  12. Jafari, A., Ghasemnejad-Berenji, H., Nemati, M., Ghasemnejad-Berenji, M. Topiramate: A novel protective agent against ischemia reperfusion-induced oxidative injury after testicular torsion/detorsion. Am J Em Med. 44, 257-261 (2021).
  13. Turner, T. T. Acute experimental testicular torsion: no effect on the contralateral testis. J Androl. 6 (1), 65-72 (1985).
  14. Baker, L. A., Turner, T. T. Leydig cell function after experimental testicular torsion despite loss of spermatogenesis. J Androl. 16 (1), 12-17 (1995).
  15. Salmasi, A. H., et al. Effect of morphine on ischemia-reperfusion injury: experimental study in testicular torsion rat model. Urology. 66 (6), 1338-1342 (2005).
  16. Karakaya, E., Ateş, O., Akgür, F. M., Olguner, M. Rosuvastatin protects tissue perfusion in the experimental testicular torsion model. Int Urol Nephrol. 42 (2), 357-360 (2010).
  17. Ikebuaso, A. D., Yama, O. E., Duru, F. I., Oyebadejo, S. A. Experimental testicular torsion in a rat model: effects of treatment with Pausinystalia macroceras on testis functions. J Repro Infertil. 13 (4), 218(2012).
  18. Esmaeilsani, Z., Barati, F., Mohammadi, R., Shams-Esfandabadai, N., Karimi, I. Effects of curcumin nanoparticles on the tissue oxidative stress following testicular torsion and detorsion in rat model. Iran J Vet Surg. 14 (2), 97-104 (2019).
  19. Samy, A., et al. The potential protective and therapeutic effects of platelet-rich plasma on ischemia/reperfusion injury following experimental torsion/detorsion of testis in the Albino rat model. Life Sci. 256, 117982(2020).
  20. Schumacher, J. Testis. Equine Surgery. Auer,, Stick, J. A., Saunders, J. A. W. B. , 775-810 (2006).
  21. Desser, R. K., et al. Guinea pig heterophil and eosinophil peroxidase. Arch Biochem Biophys. 148 (2), 452-465 (1972).
  22. Hp, M. The role of superoxide anion in the autoxidation of epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase. J Biol Chem. 247, 3170-3175 (1972).
  23. Euler, H. V., Josephson, K. Uber catalase. IS European. J Org Chem. 452, 158-181 (1972).
  24. Rotruck, J. T., et al. Selenium: biochemical role as a component of glutathione peroxidase. Science. 179 (4073), 588-590 (1973).
  25. Akhigbe, R. E., et al. Testicular toxicity in cisplatin-treated Wistar rats is mitigated by Daflon and associated with modulation of Nrf2/HO-1 and TLR4/NF-kB signaling. J Trace Elem Med Biol. 85, 127489(2024).
  26. Ricken, A. M., Hamed, M. A., Akhigbe, R. E. Histopathological evaluation of infertility: Lessons from laboratory rodents. Histol Histopathol. 39, 671-690 (2024).
  27. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. In vivo exposure to codeine induces reproductive toxicity: role of HER2 and p53/Bcl-2 signaling pathway. Heliyon. 6 (11), e05589(2020).
  28. Ricken, A. M., Hamed, M. A., Akhigbe, R. E. Histopathological evaluation of infertility: Lessons from laboratory rodents. Histol Histopathol. 39, 671-690 (2024).
  29. Aldhabaan, S., Hudise, J. Y., ALqarny, M., Alarfaj, A. Catgut versus polypropylene sutures for transcolumellar incision closure in open rhinoplasty: a retrospective cohort study. Cureus. 8, e9769(2020).
  30. Afolabi, O. A., et al. Atorvastatin-mediated downregulation of VCAM-1 and XO/UA/caspase 3 signaling averts oxidative damage and apoptosis induced by ovarian ischaemia/reperfusion injury. Redox Rep. 27 (1), 212-220 (2022).
  31. Akhigbe, R. E., et al. Omega-3 fatty acid rescues ischaemia/perfusion-induced testicular and sperm damage via modulation of lactate transport and xanthine oxidase/uric acid signaling. Biomed Pharmacother. 142, 111975(2021).
  32. Wei, S. M., Yan, Z. Z., Zhou, J. Curcumin attenuate ischemia-reperfusion injury in rat testis. Fertil Steril. 91, 271-277 (2009).
  33. Ritchey, M. L., Bloom, D. A. Modified dartos pouch orchiopexy. Urology. 45 (1), 136-138 (1995).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Testis İskemisiSpermatik Kordon TorsiyonuTestis HistolojisiOksidatif Stres Belirteçleriİnflamatuar BelirteçlerApoptoz BelirteçleriSkrotal KeseHistopatolojik Değerlendirme
Twisted Testisin Ankrajı: Testisin İskemi-Reperfüzyon Hasarının Sıçan Modeli
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.