Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Eşzamanlı Perfüzyon Haritalaması ile Ameroid Yılan Yerleştirme ile Kronik Miyokardiyal İskemisinin Klinik Olarak İlgili Bir Domuz Modeli

371 görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/68490

⸱

10 Ekim 2025

 ,  ,  ,  , 
1Department of Surgery, Division of Cardiothoracic Surgery, Warren Alpert Medical School, Brown University, 2Cardiovascular Research Center, Rhode Island Hospital

Bu makalede

Özet

Bu projenin amacı, proksimal sol sirkumfleks koroner arter (LCx) etrafına bir ameroid yılanın cerrahi olarak yerleştirilmesine ilişkin kapsamlı bir şekilde incelenmiş bir protokolü detaylandırmak, böylece kronik koroner arter hastalığını indüklemek ve izotop etiketli mikroküreler kullanarak iskemik bölgeyi hassas bir şekilde haritalamaktır.

Özet

Kardiyovasküler hastalıkların tedavisi için tıbbi ve prosedürel tedavilerdeki atılımlara rağmen, teşhis araçlarını ve tedavi stratejilerini araştırmak için translasyonel büyük hayvan modellerine olan ihtiyaç devam etmiştir. Domuzlar, kardiyak anatomileri ve fizyolojilerinin yanı sıra metabolik ve proteomik profilleri insanlarınkine çok benzediğinden, insan kardiyovasküler hastalıkları için kusursuz bir şekilde doğru ve uygun bir modeli temsil eder. Bir ameroid konstriktör kullanılarak miyokardın bir bölgesine kronik miyokardiyal iskemisinin indüklenmesi, insanlarda ateroskleroz gelişiminin ortak patofizyolojik sürecini ve ardından miyokardiyal yanıtı doğru ve kolay bir şekilde taklit eder. Ameroid yılanları, son 50 yılda geniş çapta incelenmiş ve kullanımı için kesin kanıtlar sağlamıştır; Ayrıca, bu prosedürü verimli ve düzgün bir şekilde yürütme konusunda yirmi yılı aşkın deneyime sahibiz. Bu protokoldeki önemli bir adım, izotop etiketli mikroküreler enjekte ederek en büyük iskemi alanını ve iskemisi olmayan alanları belirlemek için koroner kan akışı haritalaması yapmaktır. Koroner kan akımı haritalaması yapabilme yeteneği, perfüzyon çalışmaları ve iskemik bölgenin belirlenmesi için kardiyak MRI veya PET görüntülemenin gerekli ve emek yoğun kullanımını engeller. Bu yayının amacı, bir ameroid yılanının proksimal LCx üzerine doğru yerleştirilmesini ve ardından koroner perfüzyon haritalamasını detaylandırmaktır.

Giriş

Küresel olarak, iskemik kalp hastalığı (İHD) ölüm oranı ve hastalar ile sağlık sistemi üzerindeki yükü yalnızca artmıştır. Amerikan Kalp Derneği'ne göre 1990'dan 2021'e kadar İHD'ye atfedilebilecek ölümlerin sayısı dünya çapında %74 arttı1. Bu, Hastalık Kontrol Merkezi'nin yirmi yetişkinden birine koroner arter hastalığı (KAH) teşhisi konduğunu ve yaklaşık beş ölümden birinin kardiyovasküler hastalıktan kaynaklandığını belirttiği Amerika Birleşik Devletleri için de geçerlidir, bu da her 33saniyede bir kardiyovasküler hastalıktan ölen bir kişiye eşdeğerdir2. Bu hastalık yükü, 2019'dan 2020'ye kadar kardiyovasküler hastalığı olan hastalara 250 milyar doların üzerinde harcama yapılan sağlık sistemini zorluyor2. Kardiyovasküler hastalığın her yerde bulunan doğası ve hem hasta hem de sağlayıcı üzerindeki ciddi yük göz önüne alındığında, yenilikçi ve yeni terapötiklere yönelik araştırmalara devam etmek zorunludur.

Bu tür hedeflere ulaşmak için, klinik olarak ilgili hayvan modelleri kullanılmalı, ancak tekrarlanabilir ve translasyonel araştırma standartlarını karşılamak için incelenmelidir. Hayvan modelleri, değişken farmakokinetiklere sahip farklı hayvan türleri, istenen hastalık durumunu indüklemek için farklı protokoller, ilaç dozu ve programlarındaki varyasyonlar, randomize hayvanların zayıf standardizasyonu, takip süresi ve araştırmacıların körleştirilmesi ve son olarak, küçük deneysel gruplamalar dahil olmak üzere çok sayıda nedenden dolayı sorgulanmıştır3. İHD'yi temsil etmek için yalnızca genel hayvan modelinin protokolünü değil, aynı zamanda cerrahi protokolü, hayvan randomizasyonunu, ilaç dağıtımını ve süresini ve sonraki sonuçları da deneysel olarak geliştirdik ve standartlaştırdık. İHD ile ilgili olarak, domuzlar, kalp anatomisi ve fizyolojisi açısından insanlara olan önemli benzerlikleri nedeniyle optimal bir hayvan modelini temsil eder. Daha da önemlisi, domuzlar insanlarla benzer koroner arter dağılımına ve minimum kollateral dolaşıma sahiptir, bu da iskeminin indüklenmesini insanlarda ateroskleroz gelişiminin güvenilir bir temsili haline getirir. Ek olarak, domuzlar insanlara benzer metabolizmaya, proteomik profile ve bağışıklık sistemine sahiptir, bu da terapötiklerin moleküler etkisini analiz etmeyi daha anlamlı hale getirir4. Bunu akılda tutarak, bu protokolde kullanılan hayvan modeli, insan kardiyovasküler patofizyolojisini tekrarlanabilir bir şekilde temsil etmek için en uygun olanıdır.

Laboratuvarımız, LCx üzerine bir ameroid yılanının cerrahi olarak yerleştirilmesini kullanır ve miyokard iskemisinin kronik indüksiyonuna izin verir. İskemiyi kronik olarak indüklemek için bu tekniğin kullanılması, akut ligasyona göre benzersiz avantajlar sağlar. Bunlardan biri, bu cihazı kullanan onlarca yıllık kapsamlı araştırma literatürüdür5. Ek olarak, insanlarda aterosklerotik gelişime bağlı kademeli koroner daralmanın güvenilir klinik simülasyonuna ve son olarak, kan akışının tamamen durması gereken miyokardın korunmasıyla hayvan ölümlerinde iyileşmeye izin verir6. Ameroid yılanın iki parçası vardır: bir titanyum dış halka ve bir iç higroskopik plastik katman. Koroner arterin etrafına yerleştirildiğinde, iç halka daha sonra vücut sıvılarını emecek ve iki ila dört haftalık bir süre boyunca kısıtlayıcı çelik manşon nedeniyle içe doğru şişecektir7. LCx'in etrafına yerleştirme stratejisi, üç ana koroner arterin en küçüğü olduğu ve miyokardın yaklaşık %20'sini etkilediği için mortalite faydaları sağlar7. İskemik alanı düzgün bir şekilde üretmek için, ameroid, geniş marjinal arterleri dallandırmadan önce LCx kalkışına yerleştirilmelidir.

Bu protokol tarafından kullanılan diğer hususlar, iskeminin indüklenmesini belirlemek için doğrulayıcı koroner kan akışı haritalaması ve terapötiklerin miyokardiyal etkilerinin araştırılmasında doğru bölgenin kullanılmasıdır. Bu amaçla, LCx tamamen tıkandığında ameroid yerleştirme sırasında BioPhysics Assay Laboratory, Inc.'den altın mikroküre enjeksiyonu kullanıyoruz. Altın mikrokürelerin en düşük niceliğine sahip bölüm, daha sonra en iskemik sol ventrikül bölgesini temsil edecektir. Deneysel tedavi ile üretilen moleküler modifikasyonları belirlerken haritalamanın önemi göz ardı edilemez. Ek olarak, izotop etiketli mikrokürelerin kullanımı, miyokard perfüzyonunun belirlenmesi için kardiyak manyetik direnç görüntülemeye kıyasla uygun maliyetli bir yöntem sağlar8.

Son olarak, burada açıklanan model, kardiyovasküler hastalık gelişiminde ve ardından terapötik yanıtta cinsiyetler arasındaki iyi bilinen varyasyonu dikkate alır. Çoğu zaman, klinik öncesi hayvan modelleri, insan popülasyonundaki farklılıkları aslına uygun olarak temsil etmekte başarısız olur; Böylece, dişi ve sağlam erkek domuzlar arasında kontrol ve deney gruplarında kullanılan domuzların cinsiyetini eşleştiriyoruz. Bunu daha önce yeni tedavilere cinsiyete dayalı yanıtları belirlemek için kullanmıştık9. Bu protokolün çevrilebilirliğine ek olarak, tedavi gruplarının randomizasyonunun kullanılması ve her domuzun kardiyak fonksiyonel ve miyokardiyal perfüzyon parametrelerini analiz eden araştırmacının körleştirilmesi de söz konusudur.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Aşağıda ayrıntıları verilen cerrahi prosedür, Rhode Island Hastanesi ve Brown Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylanmıştır.

1. Hayvan modeli

  1. İdeal olarak yaklaşık 11 haftalık ve tipik olarak yaklaşık 15 kg ağırlığında olan hem yavru dişi hem de sağlam erkek Yorkshire domuzlarını kullanın.

2. Ameliyat öncesi prosedürler

  1. Domuzların ameliyattan 1 gün önce başlayıp ameliyattan 5 gün sonrasına kadar günlük ameliyat öncesi ve sonrası aspirin (10 mg/kg) aldığından emin olun.
  2. Ameliyat sabahı domuzların yiyeceksiz olduğundan emin olun.
  3. Ameliyat günü, kas içi telazol (4.4 mg / kg) ve ksilazin (2.2 mg / kg) enjeksiyonları kullanarak anestezi indükleyin.
  4. Domuzu uygun boyutta (tipik olarak 7-0) kelepçeli bir endotrakeal tüp ile entübe edin.
  5. Aynı zamanda 0,03 mg/kg buprenorfin vererek ve fentanil yaması (4 μg/kg) uygulayarak analjezi elde edin.
  6. Büyük kulak damarına 20-22 G intravenöz (IV) kateter yerleştirin.
  7. IV sıvılara (% 0.9 salin) 5 mL / kg / saat hızında başlayın.
  8. Geniş spektrumlu bir sefalosporin antibiyotiği olan seftiofur uygulayın. Bu tipik olarak tek dozluk bir IM enjeksiyonu olarak insizyondan sonraki 30 dakika içinde yapılır.
  9. Domuzu ameliyat bölgesinde (sol omuzdan göbeğe kadar) ve elektrokardiyogram (EKG) izleme kurşun pozisyonlarında tıraş edin.
  10. Domuzu ameliyathaneye taşıyın ve %0.75-3.0 izofluran ile anesteziyi sürdürün.
  11. Domuzu EKG monitörüne bağlayın ve elektrokoter topraklama pedleri uygulayın.
  12. Domuzu ameliyat masasına düzgün bir şekilde yerleştirin: sağ tarafı aşağı, sol ön ayak uzatılmış ve masaya bağlanmış ve masanın sağ tarafı yukarı eğik.
  13. Ameliyat bölgesini %2 kloroheksidin peelingi ile hazırlayın.
  14. Kesi bölgesini dört küçük yapışkan örtü ve bir büyük laparotomi örtüsü ile örtün.

3. Cerrahi prosedür

  1. Beklenen kesi bölgesine deri altına %2 lidokain enjekte ederek başlayın.
  2. Ardından, #10 neşter kullanarak aksiller deri kıvrımının yakınından eğik olarak başlayarak kabaca 5 cm'lik bir kesi yapın ve yanal olarak ilerleyin; Bu, 2. ila 3. interkostal boşluk civarındadır.
  3. Fasyal tabakaya ulaşılana kadar bu kesiyi kas tabakası boyunca devam ettirmek için #10 neşter kullanın.
  4. Şu anda, cilt ve kasın hemostazını sağlamak için elektrokoter kullanın.
  5. Klavikula palpe edilene kadar fasyal yeri üst kısımda kör bir şekilde açın.
  6. Bu elde edildikten sonra, kaburga boşluklarını palpe edin ve 2. kaburga boşluğunun tanımlandığından emin olun.
    NOT: Tipik olarak, 2. interkostal boşluk, alanın biraz daha üstün bir görünümünü elde ederek ameroid yılanın daha kolay proksimal yerleştirilmesine izin verir. Bazen domuz anatomisi nedeniyle 3. interkostal boşluğa girilmesi gerekir.
  7. İnterkostal kası elektrokoter ile puanlayın ve büyük bir Kelley kelepçesi ile plevral boşluğa girin.
  8. Bu açıklığı elektrokoter ile medial ve lateral olarak uzatın, akciğeri ve perikardları kılavuz olarak büyük Kelley klempi ile koruyun.
  9. Kaburgaları birbirinden ayırmak için küçük bir Finochietto ekartörü tanıtın.
  10. Akciğeri sol plevral boşluğa geri itmek için ıslak bir gazlı bez yerleştirin. Bu, perikardın görünümünü genişletir.
  11. Perikardın etrafını sarmak için Debakey forseps kullanın ve Metzenbaum makası ile küçük bir kesi yapın. Sol atriyal apendiksi ortaya çıkarmak için bunu medial ve lateral olarak uzatın. Akciğere doğru yanal olarak uzanırken, akciğeri ve frenik siniri tanımlayın ve koruyun.
  12. 3-0 ipek sütür kullanarak perikardın gerektiği gibi tutturulmasını sağlayın.
  13. Küçük bir Satinsky kelepçesi kullanarak, sol atriyal uzantının distal bir kısmını kavrayın ve bu kısmı 0 ipek bir kravat kullanarak bağlayın. Küçük bir hemostat ile, LCx ve LAD'yi ortaya çıkarmak için uzantıyı geri çekin (Şekil 1A).
  14. Damarlar açığa çıktığında, Gerald forsepslerine geçin ve sol ana koroner arterden kalkışına yakın LCx'in üzerindeki epikardiyal yağda Metzenbaum makası ile küçük bir çentik açın.
  15. Allis kelepçelerinde küçük bir dik açı ve fıstık süngerleri kullanarak LCx'i dikkatlice inceleyin. Arterin etrafını dik açıyla dolaştıktan sonra, tamamen izole etmek için bir damar halkası yerleştirin. İki ucuna küçük bir kanama durdurucu yerleştirin.
  16. Bu sırada, trombüs oluşumunu önlemek için domuzu sistematik olarak 80 IU/kg ile heparize edin.
  17. Miyokard perfüzyon haritalamasını gerçekleştirin.
    NOT: Bu prosedür iki asistan gerektirir. Birinin 2 dakika zaman ayıracak bir ameliyathane teknisyeni olduğundan emin olun. Diğeri ise cerrahi asistan olmalıdır.
    1. Asistanlara, LCx'i tamamen tıkamak için damar halkasını yavaşça geri çekmelerini söyleyin. EKG monitöründe ST segmentini ve/veya T dalgası değişikliklerini görüntüleyerek oklüzyonu onaylayın.
    2. Oklüzyonun ilk 30 saniyesinde, sol atriyal apendikse 28 G'lik bir iğne kullanarak 5 mL altın mikroküre enjekte edin (Şekil 1B). Kanı görselleştirmek için şırıngayı enjeksiyonun yarı noktasına geri çekin; Bu, iğnenin sol atriyum içinde doğru konumlandırılmasını ve ardından doğru haritalamayı sağlamak için kritik öneme sahiptir.
    3. Enjeksiyonu tamamladıktan sonra, hemostaz sağlanana kadar enjeksiyon bölgesine baskı uygulamak için bir fıstık süngeri kullanın. Basınçla hemostaz sağlanamıyorsa, 6-0 polipropilen sütür ile küçük bir sekiz rakamı sütür yerleştirin.
    4. Cerrahi asistana, EKG değişikliklerini görselleştirirken 2 dakika boyunca damar halkasını geri çekmeye devam etmesini ve LCx'in tıkanmasını sağlamasını söyleyin.
  18. 2 dakika sonra ve EKG değişiklikleri azaldığında, proksimal LCx damarının etrafına bir ameroid yılan yerleştirin. Boyutlandırma, genellikle 2,0 mm ila 2,75 mm arasında değişen görsel incelemeye dayanır. Ameroidin bir Allis kelepçesi veya Kelly kelepçesi üzerinde tutulması daha kolay uygulama sağlar (Şekil 1C). Ameroidin iyi yağlandığından emin olun.
  19. Cerrahi asistanın, alanı açmak için diseksiyondan oluşturulan cebi Gerald forseps ve/veya fıstık süngeri ile geri çekmesini sağlayın. Ameroidi anahtar deliğinden yavaşça artere yönlendirin ve anahtar deliğinin dışa doğru döndürüldüğünü onaylayın (Şekil 1D).
  20. Ameroidin konumlandırmasında mümkün olduğunca proksimal olduğunu doğrulayın. Bu, yerleşimde ve sonraki iskemik alanda tekdüzeliğin korunmasına yardımcı olur.
  21. Damar halkasını çıkarın ve daha fazla vazospazmı önlemek için artere topikal nitrogliserin (~ 2 mL) püskürtün.
  22. Atriyal uzantıdaki bağı kesin ve yerine geri düşmesine izin verin.
  23. Ters eğimli (RB) bir iğne üzerinde çalışan 3-0 emilebilir bir sütür kullanarak perikardın kapatılmasını sağlayın.
  24. Islak gazlı bezi çıkarmayı, akciğeri geri çekmeyi ve herhangi bir yaralanma olup olmadığını kontrol etmeyi unutmayın.
  25. Kör uçlu bir iğne üzerinde 0 Polidioksanon sütür (PDS) kullanarak kaburga boşluğunu yeniden yaklaştırın.
  26. Kas tabakasını 3-0 emilebilir bir dikişle kapatın ve neredeyse kapandığında, plevral boşluğa emmek için bağlı küçük kırmızı bir kauçuk kateter sokun. Birincil cerrah son dikişi bağlarken, nefesini tutun ve asistanın kırmızı kauçuğu boşluktan geri çekmesini sağlayın. Bu, plevral boşluk içindeki havanın boşaltılmasını sağlar.
  27. Deri altı tabakasını 3-0 emilebilir dikişle ve cildi çalışan bir subkütiküler 4-0 Monocryl sütür ile kapatın.
  28. Kesi bölgesine steril bir pansuman yerleştirin.

4. Ameliyat sonrası bakım ve iyileşme

  1. İzofluranı sütten kesmeye başlayın.
  2. Domuzun uyanmasını beklerken, kesi bandajını gazlı bez ve elastik sargı ile sabitleyin.
  3. Domuz kendi kendine nefes almaya başladığında, endotrakeal tüpü çıkarın.
  4. Domuzun, ısı destekli yastıklı bir kurtarma kafesinde veteriner ekibinin gözetimi altında iyileşmesine izin verin.
  5. Yine trombotik riski azaltmak için postoperatif 5. güne kadar aspirine devam edilir. Ameliyat öncesi yerleştirilen ve 3 gün boyunca yerinde kalan fentanil yaması ile analjezi elde edin.
  6. 3 gün boyunca domuzların ameliyat sonrası günde iki kez kontrollerini tamamlayın. Tipik olarak, domuzlar bu dönemde aritmi veya enfarktüs yaşamazlar.
    NOT: Postoperatif 14. gün civarında, erken ameroid kapanması ve / veya spontan ventriküler aritmi oluşma olasılığının daha yüksek olduğunu unutmayın. Gruplar, tartışmada gözden geçirilen amiodaron veya lidokain gibi profilaktik antiaritmik ilaçlarla bu süreyi giderebilir. Ek olarak, sürekli EKG izleme kullanılabilir; ancak oldukça emek yoğundur ve domuzlarda bakımı zordur.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

figure-results-1

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bir ameroid yılanı kullanmanın temel avantajı, cihazın basitliğidir; ancak bu, kapanma oranlarının veya koroner arter çevresindeki darlık derecesinin kontrol edilememesi açısından sınırlamalar sunar. Bu, miyokard iskemisinin indüklenmesinde değişkenliğe yol açabilir. Ameroid daraltıcıların kullanımına alternatifler arasında ipek bağların, hidrolik tıkayıcıların kullanımı veya akış problarının 12,13,14,15,16 seri yerleştirilmesi yer alır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların herhangi bir açıklaması veya çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

Araştırma, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından aşağıdaki hibe numaralarıyla finanse edildi: T32HL16051703 (K.C.M., C.S., D.D.H, M.K.), R01HL46716 (F.W.S) ve R01HL128831 (F.W.S.). Rhode Island Hastanesi ve Brown Üniversitesi'ndeki veteriner personeline, çok sayıda projemizdeki olağanüstü çalışmaları ve destekleri için teşekkür ederiz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
#10 NeşterMedlineMDS15310
%0,9 Tuzlu SuDechra/Vetivex17033-492-50Oran: Kasa sırasında 5 mL/kg
0-İpek KravatlarEtik SimgeSA76GSol Atriyal Uzantıyı Bağlayın
CT Künt Uçta 1-0 PDS IIEtik SimgeZ359T SerisiKaburga boşluğunu kapatın
%2 LidokainAnkaDozaj: 2– 5 mg/kg
2-0 SH Taper üzerinde ipek sütürEtik SimgeK833H SerisiPerikard
28 ayar iğnePatterson Veteriner78032728Mikroküre enjeksiyonu için
3 18G İğnePatterson Veteriner78032793İlaç çekmek için
3-0 RB Konikliğinde VicrylEtik SimgeVCP215HYakın perikard
3-0 Vicryl Ters KesimEtik SimgeVCP442HKas ve derin dermal katmanları kapatın
4-0 MonocrylEtik SimgeMCP496GCildi kapatın
6-0 Polipropilen SütürSharePointJS617N SerisiAtriyumun acil onarımı için
Tüm Cerrahi AletlerSteris ve MedlineSatış Temsilcisi GerektirirHepsi genellikle hastane ameliyathanelerinde bulunur
AmeroidResearch Instruments SW, Inc. CS-2.00-TITip: titanyum (2,0 cm ila 3,0 cm)
Analjezi: BuprenorfinHospiraMarka Adı: BupredineDozaj: 0,03 mg/kg
Analjezi: Fentanil YamasıKoyu Renkli77870Dozajlama: 4 mg/kg
Anestezi: TelazolZoetis(tiletamin ve zolazepam)Dozaj: 4,4 mg/kg
Anestezi: ksilazin (Rompun)Dechra HakkındaYOKDozajlama: 2,2 mg/kg
Klorheksidin %4BD E-Z Fırçalama371073Cerrahi Hazırlık
Kelepçeli Endotrakeal TüpRUŞTipik olarak 7-0Domuz boyutuna ve ağırlığına bağlı olarak farklı boyutlara ihtiyaç duyabilir
EKG İzleme SistemiOrta İşaretYOKÇok Parametreli Monitör
ElektrokoterBovie Uzmanı Pro1250'LER
Excede (Ceftiofur)Koyu Renkli23814Tek doz IM enjeksiyonu
Altın STERIspheres BioPAL, Inc.C-15H20 SerisiMiktar: Ameliyat başına 5cc
İzofluran, USPDechra HakkındaDozajlama: 0.75%– 3.0%
Mini Beyaz Damar Döngüleri (X-ışını Tespit Edilebilir)DeRoyal30-711LCx'i izole etmek için
Çoklu 5cc ŞırıngalarMedlineTMOSS05LÇoklu enjeksiyonlar için
NitrogliserinBaxter%5 dekstroz enjeksiyonunda nitrogliserin (200mcg/mL)Sprey 2– Topikal olarak 3 cc
Kırmızı Kauçuk KateterKardinal Sağlık888766008Havayı çıkarmak için göğsün içine yerleştirin
Steril EldivenlerEncore820955
Emiş SistemiGOMCO4042Kendi tesisinin duvar emişi daha iyi
Emme ucu: YankauerMedlineDYND50130
Cerrahi ÖrtülerPatterson Veteriner Genel Cerrahi Paketi789294364 küçük yapışkan örtü ve bir büyük laparotomi örtüsü
Cerrahi KayganlaştırıcıSurgiLube Hakkında0281-0205-43Steril olmalı
Sistemik HeparinKoyu Renkli82496Dozaj: 80 IU/kg
Yorkshire DomuzuCBSET, Inc.YOKİdeal olarak yaklaşık 11 haftalık

Kaynaklar

  1. Martin, S. S., Aday, A. W., Almarzooq, Z. I., et al. heart disease and stroke statistics: a report of US and global data from the American Heart Association. Circulation. 149 (8), e347-e913 (2024).
  2. Tsao, C. W., Aday, A. W., Almarzooq, Z. I., et al. heart disease and stroke statistics-2023 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 147 (8), e93-e621 (2023).
  3. Pound, P., Ebrahim, S., Sandercock, P., Bracken, M. B., Roberts, I. Where is the evidence that animal research benefits humans. BMJ. 328 (7438), 514-517 (2004).
  4. Jia, H., Chang, Y., Song, J. The pig as an optimal animal model for cardiovascular research. Lab Anim (NY). 53 (6), 136-147 (2024).
  5. Litvak, J., Siderides, L. E., Vineberg, A. M. The experimental production of coronary artery insufficiency and occlusion. Am Heart J. 53 (4), 505-518 (1957).
  6. Keeran, K. J., et al. A chronic cardiac ischemia model in swine using an ameroid constrictor. J Vis Exp. (128), e56190(2017).
  7. Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. Translational physiology: porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis. J Appl Physiol. 94 (5), 1689-1701 (2003).
  8. Reinhardt, C. P., Dalhberg, S., Tries, M. A., Marcel, R., Leppo, J. A. Stable labeled microspheres to measure perfusion: validation of a neutron activation assay technique. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 280 (1), H108-H116 (2001).
  9. Harris, D. D., et al. Proteomic analysis and sex-specific changes in chronically ischemic swine myocardium treated with sodium-glucose cotransporter-2 inhibitor canagliflozin. J Am Coll Surg. 238 (6), 1045-1055 (2024).
  10. Sabe, S. A., et al. Sitagliptin therapy improves myocardial perfusion and arteriolar collateralization in chronically ischemic myocardium: a pilot study. Physiol Rep. 11 (11), e15744(2023).
  11. Stone, C. R., et al. Crafting a rigorous, clinically relevant large animal model of chronic myocardial ischemia: what have we learned in 20 years. Methods Protoc. 7 (1), 17(2024).
  12. Chen, C., et al. Functional and structural alterations with 24-hour myocardial hibernation and recovery after reperfusion: a pig model of myocardial hibernation. Circulation. 94 (3), 507-516 (1996).
  13. Chen, C., et al. Impact of delayed reperfusion of myocardial hibernation on myocardial ultrastructure and function and their recoveries after reperfusion in a pig model of myocardial hibernation. Cardiovasc Pathol. 9 (2), 67-84 (2000).
  14. Fallavollita, J. A., Perry, B. J., Canty, J. M. Jr 18F-2-deoxyglucose deposition and regional flow in pigs with chronically dysfunctional myocardium: evidence for transmural variations in chronic hibernating myocardium. Circulation. 95 (7), 1900-1909 (1997).
  15. Liedtke, A. J., Renstrom, B., Nellis, S. H., Hall, J. L., Stanley, W. C. Mechanical and metabolic functions in pig hearts after 4 days of chronic coronary stenosis. J Am Coll Cardiol. 26 (3), 815-825 (1995).
  16. Young, L. H., Renfu, Y., Russell, R., et al. Low-flow ischemia leads to translocation of canine heart GLUT-4 and GLUT-1 glucose transporters to the sarcolemma in vivo. Circulation. 95 (2), 415-422 (1997).
  17. Bolukoglu, H., et al. An animal model of chronic coronary stenosis resulting in hibernating myocardium. Am J Physiol. 263 (1 Pt 2), H20-H29 (1992).
  18. Radke, P. W., et al. Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies. Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).
  19. Remme, W. J., et al. Acute hemodynamic and antiischemic effects of intravenous amiodarone. Am J Cardiol. 55 (6), 639-644 (1985).
  20. Nawada, T., et al. Evaluation of negative inotropic and antiarrhythmic effects of class 1 antiarrhythmic drugs. Int J Clin Pharmacol Ther. 32 (7), 347-355 (1994).
  21. Paslawska, U., et al. Normal electrocardiographic and echocardiographic (M-mode and two-dimensional) values in Polish Landrace pigs. Acta Vet Scand. 56 (1), 54(2014).
  22. Robich, M. P., et al. Anti-angiogenic effect of high-dose resveratrol in a swine model of metabolic syndrome. Surgery. 148 (2), 453-462 (2010).
  23. Salerno, M., Beller, G. A. Noninvasive assessment of myocardial perfusion. Circ Cardiovasc Imaging. 2 (5), 412-424 (2009).
  24. Qayyum, A. A., Kastrup, J. Measuring myocardial perfusion: the role of PET MRI and CT. Clin Radiol. 70 (6), 576-584 (2015).
  25. Sirajuddin, A., et al. Ischemic heart disease: noninvasive imaging techniques and findings. Radiographics. 41 (4), 990-1021 (2021).
  26. Hecht, S., Adams, W. H., Narak, J., Thomas, W. B. Magnetic resonance imaging susceptibility artifacts due to metallic foreign bodies. Vet Radiol Ultrasound. 52 (4), 409-414 (2011).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Koroner Kan Akzotopla aretli Mikrok relerKardiyovask ler Hastal kB y k Hayvan ModeliKoroner Perf zyonMiyokardiyal Yan t

Bu makale yayımlandı

Video yakında

Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.