Yöntem makalesi

Maksiller Titanyum İmplantasyon Yerleştirme ve Porphyromonas Gingivalis-Ligatür İndüksiyonu ile Fare Peri-İmplantit Modelinin Oluşturulması

DOI:

10.3791/69682

⸱

6 Mart 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Prosthodontics, The Affiliated Stomatological Hospital, Southwest Medical University, 2School of Stomatology, Southwest Medical University, 3Institute of Stomatology, Southwest Medical University, 4Orofacial Reconstruction and Regeneration Laboratory, Southwest Medical University, 5The First People's Hospital of Yibin, 6The Second People's Hospital of Deyang, 7Department of Periodontics & Oral Mucosal Diseases, The Affiliated Stomatology Hospital, Southwest Medical University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, diş çekimini, titanyum fikstürlerinin cerrahi implantı ve iyileşme sonrası implant boynun etrafına Porphyromonas gingivalis'e ıslatılmış ligatür yerleştirme yoluyla iltihap kemik kaybının indüksiyonunu içeren peri-implantit için bir peri-implantit modeli oluşturdu.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Peri-implantit (PI), diş implantı başarısızlığının başlıca nedeni olup, inflamatuar yumuşak doku lezyonları ve ilerleyici kemik kaybı ile karakterize edilir; bu da mekanik ve terapötik araştırmalar için güvenilir hayvan modelleri gerektirir. Bu çalışma, mekanik tahriş ile bakteriyel enfeksiyonu sinerjik olarak birleştirerek insan PI'nin patogenezini daha iyi taklit eden yeni bir fare modeli oluşturdu. 12 erkek Sprague-Dawley faresinde (4 haftalık) çene birinci azı dişlerinin çıkarılmasının ve 8 haftalık iyileşme döneminin ardından titanyum implantlar yerleştirildi. 4 haftalık osseointegrasyondan sonra, PI grubu (n = 6) implant boyunlarının etrafında Porphyromonas gingivalis (P. gingivalis) ile ıslatılmış ligatürler alırken, negatif kontrol (NC) grubu (n = 6) ligatür tedavisi görmedi. İndüksiyondan iki hafta sonra, Mikro-bilgisayarlı tomografi (mikro-CT) ve histoloji analizleri , PI grubunda NC grubuna kıyasla belirgin inflamatuar hücre infiltrasyonu ve doku yok oluşu dahil olmak üzere belirgin alveolar kemik kaybı ve şiddetli yumuşak doku iltihabı olduğunu ortaya koydu. Bu doğrulanmış model, klinik PI'nin temel özelliklerini etkili bir şekilde özetledi. Sınırlamaları arasında, basitleştirilmiş mono-patojen mücadelesi ve insan PI'ya kıyasla daha hızlı hastalık süreci yer almaktadır. Buna rağmen, araştırma ve terapötik çalışmalar için sağlam ve klinik açıdan ilgili bir araç sağlar.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Protez diş hekimliğindeki gelişmelerle birlikte, diş implantları sürekli artan klinik uygulamagörür 1. Ancak, en yaygın komplikasyon olan peri-implantit (PI), diş implantlarının uzun vadeli hayatta kalma süresini önemli ölçüde tehlikeye atır ve hastaların ağız sağlığı üzerinde kalıcı zararlı etkilere yolaçar 2. PI, peri-implant dokularının patolojik bir iltihap durumudur ve esas olarak plak biyofilm mikrobiyomun disbiyozu nedeniyle oluşur ve peri-implant yumuşak dokularının ilerleyici iltihaplanması ile ardından destekleyici kemikkaybı ile karakterize edilir 3,4. Hasta düzeyinde ve implant düzeyinde yayılım oranları sırasıyla %19,53 ve %12,53 olarak tahminedilir 5 ve yönetiminin karmaşık ve maliyetli doğası göz önüne alındığında, PI'nin önemli bir klinik ve halk sağlığı yüküoluşturması gerekir 6.

PI'nin karmaşık patogenezi ve etkili tedavilerin geliştirilmesi, temel olarak insan hastalığını sadakatle çoğaltan sağlam hayvan modellerinedayanır 7,8. Köpekler ve minipigler gibi büyük hayvan modelleri anatomik benzerlikler sunarken, derin mekanik araştırmalarda kullanımları yüksek maliyetler, etik ve konut endişeleri ile türe özgü moleküler araçların eksikliği nedeniylesınırlıdır 9. Buna karşılık, kemirgen modelleri maliyet etkinliği, daha kolay kullanım ve bol genetik manipüledilebilirlik avantajları sunar; bu da moleküler yolların ayrıntılı incelenmesinikolaylaştırır 10. Ancak fare modeli, küçük boyutu ve cerrahi işlemlerin teknik zorlukları nedeniyle genellikle sınırlıdır11. Bu sınırlamalar, fare periodontitis modellerinde yaygın olan odak yapı ve erken ligatür kaybı gibi yerleşik yöntemlerdeki prosedürel sorunlarla daha daağırlaşır. Fare, daha geniş bir operasyonel alan, kemik iyileşme araştırmalarında yerleşik bir fayda ve belirli genetik faktörleriincelemek için transgenik suşların bulunabilirliği sunan pragmatik bir uzlaşma olarak ortaya çıkar; bu da onu PI modellemesi için son derece uygun bir aday haline getirir. Potansiyeline rağmen, fare PI modellerinin benimsenmesi, cerrahi işlemlerdeki teknik karmaşıklıklar nedeniyle sınırlıdır; bunlara güvenilir diş çekimi ve tutarlı implant yerleştirme dahildir.

Mevcut fare model indüksiyon teknikleri arasında ipek ligatüryerleştirme 14,15, lokal patojenaşısı 16 ve lipopolisakkaritenjeksiyonu 17 yer almaktadır. Ağızdan bakteriyel yıkamaya dayanan önceki enfeksiyon modelleri genellikle kararsız biyofilm oluşumu ve tutarsız inflamatuar yanıtlara yolaçar 18. İpek ligatür yöntemi, hızlı plak birikimini teşvik etmek için yaygındır. Ancak, ligasyon tek başına fizyolojik olmayan mekanik bir hakaret oluşturur ve kontrollü bir patojenik zorluk içermez; PI19'un enfeksiyon hastalık etiyolojisini yeterince temsil etmez. Öte yandan, P. gingivalis gibi patojenlerle monoenfeksiyon genellikle stabil bir biyofilm oluşturmakta zorlanır ve sürekli olarak sağlam iltihaplanmaüretemeyebilir. Ligasyon prosedürünün çift hakaret sağladığını, ipek dikişin mekanik bir tahrişör ve karmaşık biyofilm oluşumu için bir iskelet olarak işlev gördüğünü, verilen anahtar patojenin ise P. gingivalis olarak disbiyotik inflamatuar yanıtı başlattığını vesürdürdüğünü varsayılıyoruz. Bu entegre çift patojenik yaklaşımı ve zamansal ilerleyişini görsel olarak özetlemek için, bu birleşik P. gingivalis-ligasyon fare modelinin oluşturulması için deneysel prosedür ve zaman çizelgesinin şematik bir özeti sunulmaktadır (Şekil 1). Bu makale, insan PI'nin kritik kemik ve yumuşak doku patolojisini güvenilir şekilde yeniden üretmek için tasarlanmış bu birleşik P. gingivalis-ligasyon modelinin kurulması ve doğrulanmasını detaylandırır; böylece modelin klinik önemini ve preklinik araştırmalar için faydasını artırır.

Şekil 1
Şekil 1: Bakteri yüklü dikiş ligasyon yöntemiyle indüklenen fare peri-implantit modeli oluşturmak için deneysel prosedür zaman çizelgesinin şematik diyagramı. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Örneklem büyüklüğü, daha önce yayımlanmış kemirgen peri-implantiti (PI) modellerinde yaygın uygulamalar ve mevcut kaynakların kısıtlamaları temelindebelirlenmiştir 22. On iki adet 4 haftalık erkek Sprague-Dawley faresi (Southwest Medical University Deneysel Hayvan Merkezi tarafından sağlanmıştır, Lisans No.: SCXK (Chuan) 2024-0046) diş çekimi, implant yerleştirme ve PI indüksiyonu için kullanılmıştır. Tüm fareler, farklı deneysel gruplardan hayvanlar ayrı ayrı yerleştirilerek standart belirli patojensiz (SPF) bariyer tesisinde tutuldu. Raf içindeki kafes konumları haftalık olarak rastgele belirlendi. Fareler, rastgele sayı üreteci kullanılarak ya negatif kontrol (NC) ya da PI grubuna (grup başına n = 6) atandı. Tüm fareler için cerrahi işlemlerin sırası rastgele belirlenmiştir. Tüm prosedürler Southwest Medical University Hayvan Araştırmaları Etik Komitesi tarafından onaylanmış (Onay No. 20241111-012) ve hayvan refahı yönergelerine uygundur. Bu çalışma, etik hayvan araştırmaları için 3R ilkelerine (Yerini Alma, Azaltma, Geliştirme) uygun olarak yürütülmektedir. Reaktifler ve kullanılan ekipmanlar Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir.

1. Ekstraksiyon öncesi hazırlık

  1. Tüm cerrahi aletleri (#5 diş kaşifi, iğne tutucu, oftalmik penset, tıbbi pamuk çubukları, doku pensleri vb.) otoklavlama ile sterilize edin. Aseptik koşulları korumak için Sınıf II biyogüvenlik kabininde tüm sonraki işlemleri gerçekleştirin.
  2. Kurumsal onaylı protokollere uygun olarak, fareleri anestezi etmek için intraperitoneal tribromoethanol (250 mg/kg) uygulanır. Arka pati çimdiklenmesine yanıt olarak yoksunluk refleksi olmamasıyla anestezik derinliğini doğrulayın.
  3. İşlemler sırasında korneanın kurumasını önlemek için oftalmik kayganlaştırıcı uygulayın.
  4. Tüm çalışma yüzeylerini %75 etanol solüsyolu kullanarak iyice dezenfekte edin.
  5. Fareyi stabil bir cerrahi platformda sırtüstü pozisyona getirin. Lastik bantlarla maksiller ve mandibular kesici dişleri geri çekerek maksimum ağız açılmasını sağlamak ve korumak için devam edin. Ağız boşluğunu cerrahi farla aydınlatın.
  6. Dili doku forsepsiyle nazikçe tutun ve bir tarafa çekin. Dilin güvenli tutulduğundan emin olun, böylece maksiller azi dişleri net ve engelsiz görünür.

2. Diş çekimi prosedürü

  1. Cerrahi bölgeyi povidon-iyot ile dezenfekte edin. Bir #5 diş kaşifini maksiller birinci azı dişin distal yüzeyine (birinci ve ikinci azı dişler arasındaki interproksimal boşluk) konumlandırın ve mezodistal kuvvet uygulayarak başlangıç lüksasyonu elde edin (Şekil 2A).
  2. Kaşifçiyi birinci azı dişin mesial yüzeyine yeniden konumlandırın ve dişi daha fazla harekete geçirmek için mezodistal kuvveti yeniden uygulayın (Şekil 2B).
  3. Kaşifin ucunu damak diş sulkusuna yerleştirin. Dişin uzun ekseni boyunca hafif bucco-palatal rotasyon hareketi ve sürekli oklüzal basınç kombinasyonunu uygulayın. Diş soketten tamamen çıkana kadar devam edin (Şekil 2C,D).
  4. Çekilmiş dişi doğrudan görüş altında dikkatlice inceleyerek tüm köklerin sağlam olduğundan ve kırığın bulunmadığından emin olun. Boş yuvayı, steril bir şırıngadan normal salin akışıyla nazikçe sulayarak kalan kan pıhtıları veya kalıntıları temizleyin (Şekil 2E,F).
  5. 1 dakika boyunca steril pamuk çubuğu basıncı uygulayarak hemostazı elde edin. Dili anatomik pozisyona geri getirin. Hayvanı anesteziden tamamen iyileşene kadar ısıtma pedinde tutun.
  6. Bir hafta boyunca yumuşak bir diyet ve antibiyotikli içme suyu (Amoksisilin 250 mg/kg) sağlayın.
    NOT: Luksasyon sırasında kontrollü, ilerleyici kuvvet uygulayın ve kök kırılması veya alveolar kemik hasarını önlemek için ani hareketlerden kaçının.

Şekil 2
Şekil 2: Diş çekim prosedürü. Periodontal bağlar (A,B) serbest bırakılmak için fare maksiller birinci azı dişinin distal ve proksimal kısımlarına bir diş probu yerleştirildi. Dişi luksatmak için dönme ve oklüzyon kuvvetlerin palatal uygulanması (C,D). Soket, herhangi bir kalıntı kök parçası (E) açısından titizlikle incelendi. Sağlam bir sıçan maksiller birinci azı dişi (F) gösterilmiştir. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.

3. İmplant yerleştirme ameliyatı

  1. Ekstraksiyondan sekiz hafta sonra, steril 12c bıçakla kırıntı üzerinde kemik yüzeyine nüfuz eden 5 mm mezodistal bir kesi oluşturun (Şekil 3A).
  2. Tam kalınlıktaki mukoperiostal flapları yükseltmek ve cerrahi bölgeyi açığa çıkarmak için #5 kaşifçisi kullanın (Şekil 3B).
  3. Bir tungsten karbür matkabını (1,5 mm çapında) manuel tornavida adaptörüne bağlayın ve termal kontrol için aralıklı tuzlu sulama ile saat yönünde manuel döndürerek osteotomi yapın; iyileşme aşamasında 4 mm derinliğinde implant alanı hazırlanır ve kortikal perforasyonu önlemek için sürekli dokunsal geri bildirim sağlanır (Şekil 3C).
  4. Saat yönünde dönerek özel hazırlanmış titanyum implant (1,8 mm çap, 3,2 mm uzunluk, işlenmiş yüzey) yerleştirin. Explorer uygulamasında hareketliliğin olmaması nedeniyle stabiliteyi doğrulayın (Şekil 3D-F).
  5. Daha önce belirtildiği gibi yumuşak diyet ve antibiyotik rejimine devam ederek bir haftalık iyileşme sürecine izin verin.
    NOT: Maksiller sinüs tabanının iatrojenik perforasyonunu önlemek için nazik cerrahi teknikler kullanın ve aşırı eksenel kuvvetten kaçının.

Şekil 3
Şekil 3: İmplant yerleştirme prosedürü. No. 12 kavisli bıçak (A) kullanılarak meziodistal kesi yapıldı. Mukoza flep, diş probu (B) ile yansıtıldı. El matkabına (C) bağlı 1,5 mm tungsten karbid matkap ucu kullanılarak osteotomi yapıldı. İmplant, özel bir implant taşıyıcısı (D) aracılığıyla çene kemiğine yerleştirildi. İmplantasyondan sonra, hareket kabiliyetini kontrol etmek için bir prob kullanıldı (E,F). Özel yapımı titanyum implant (düz yüzeyli iplik, çapı 1,8 mm, uzunluk 3,2 mm), ilgili implant taşıyıcı (G,H) ve mini el matkapı (I). Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.

4. P. gingivalis - ligated dikiş hazırlığı

  1. Kültür P. gingival , 5 mL beyin kalp infüzyonu (BHI) çorbasında 37 °C'de anaerobik olarak 109 CFU/mL (OD600 =1.0) seviyesine ulaşana kadar devam eder.
  2. 1:20 seyreltme ile süspansiyonu 10 mL taze BHI orta moduna aktarın.
  3. Steril 3-0 ipek dikişleri tamamen aşılanmış ortama batırın. Olgun bir biyofilm oluşturmak için 37 °C'de 48-72 saat anaerobik olarak kuluçka yapın.

5. PI indüksiyonu

  1. İmplantasyondan dört hafta sonra, steril iğne tutucusu ile implant boynundaki P. gingivalis'e ıslatılmış bir dikiş bağlayın. Diş dokusuna bitişik üçlü bir düğümle sabitlenin (Şekil 4A-D).
  2. Ligatürü 2 hafta boyunca koruyarak inflamatuar ilerlemeyi takip edin.
  3. Günlük bağ denetimi yapın. Gevşediyse veya kaybolursa aseptik bir teknikle değiştirin.
    NOT: Düğüm bağlarken, yumuşak dokuyu yırtılmayı önlemek için nazikçe ayırın ve dikiş düğümünün subgingiviv konumda olduğundan emin olun.

Şekil 4
Şekil 4: Dikiş kaynaklı PI prosedürü: Hazırlanan bakteriyel dikiş ipliği (3-0), implantın distal ucunda (A) subgingival pozisyona yerleştirildi. İlk düğüm, düğüm çıkıntısını önlemek için bir iğne tutucuyla bağlandı ve sabitlendi. Daha sonra, dikiş kaymasını önlemek için üçlü bir düğüm bağlayın (C,D). Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.

6. Ötenazi ve örnek toplama

  1. 2 haftalık bir indüksiyon döneminden sonra , hayvanları derin izofluran anestezi altında servikal dislokasyon yoluyla ötenazi yapın (kurumsal onaylı protokollere doğru). Sağlam maksillaları implantlarla keskin aletlerle disseksiye edin.
  2. Numuneleri hemen %4 paraformaldehite batırarak 24 saat fiksasyon yapın. Kalan yumuşak dokuları PBS yıkama ile çıkarın ve %70 etanolde depolayın.
    NOT: Bu aşamada deney %70 etanolde 4 °C'de uzun süreli depolamayla duraklatılabilir.

7. Mikro-bilgisayarlı tomografi (mikro-BT) analizi

  1. Mikro-bilgisayarlı tomografi kullanılarak örnekleri yerleşikmetodolojiye göre taranmalıdır 24.
  2. Tarayıcıyı ve bilgisayarı aç. Satın alma yazılımını başlatın. Radyasyon güvenliği simgesine tıklayın ve 15 dakikalık bir ısınma izin verin.
  3. Tarama odasını aç. Örneği, düşük yoğunluklu köpükle stabilize edilmiş 15 mL'lik konik bir tüpe monte edin, ardından tüpü döner aşamaya sabitleyin ve tarama odasına yerleştirin.
  4. X-ışını kaynağını başlatın (90 kV, 80 μA). Optimal konumlandırmayı doğrulamak için önizleme simgesine tıklayın. Parametreleri ayarlayın: 12 μm çözünürlük, 20 Hz pozlama, toplam 4000 kare
  5. Recon 1.7.4.0 yazılımı kullanılarak görüntüleri yeniden oluşturun.
  6. Avatar 1.7.4.0 yazılımında aşağıdaki kemik parametrelerini, maksiller birinci azı diş bölgesinde bir yatırım getirisi belirleyerek analiz edin: kemik hacmi fraksiyonu (BV/TV), kemik yüzeyi-kemik hacmi oranı (BS/BV), trabeküler kalınlık (Tb.Th) ve trabeküler sayı (Tb.N).

8. Histolojik işleme

  1. Sabit örnekleri %10 EDTA (pH 7.4) ile dekalsifiye ederek her 72 saatte bir 4 hafta boyunca çözelti değişimleri yapılabilir. İğne delme testiyle tamamlandığını doğrulayın.
  2. Etanol serisi aracılığıyla örnekleri kurutmayın: %75 etanol 4 saat, %85 etanol 2 saat, %90 etanol 2 saat, %95 etanol 1 saat ve %100 etanol değişimi her biri 30 dakika süre.
  3. Numuneleri 10 dakika boyunca iki değişiklikle ksilen ile temizleyin. Parafinle inceleyin, her biri 1 saat süren üç değişiklikle.
  4. Dokuları erimiş parafine gömüp -20 °C donma aşamasında soğutun. Blokları kesin ve 4 °C'de 10 saat boyunca saklayın, ardından kesimlere ayrılın.
  5. 5 μm kalınlıkta parafin blokları kesit. Yüzdürme bölümleri 45 °C su banyosuna yerleştirilir ve cam kaydıraklara monte edilir. 37 °C'de 1 saat kuru kaydırma.
  6. Bölümleri iki kez ksilen değişimiyle 5 dakika boyunca deparaffize edin. Dereceli etanol serisi ile yeniden hidratla: 5 dakika boyunca %100 etanol, 5 dakika %90 etanol, 5 dakika %80 etanol ve 5 dakika %70 etanol.
  7. Bölümleri damıtılmış suyla 1 dakika durulayın. Hematosilinle 8 dakika boyan, sonra akan musluk suyunda durulayın.
  8. %1 asit alkolü 3 saniye boyunca ayırt edin. Mavilendirmek için akan musluk suyunda durulayın. 5 dakika boyunca eosin ile karşı leke uygula.
  9. Dereceli etanol serileriyle bölümleri kurutma: 10 saniye için %70 etanol, 10 saniye %80 etanol, 10 saniye %90 etanol ve 10 saniye %100 etanol. Her biri 5 dakika boyunca iki kez ksilen değiştirerek temizlemek.
  10. Kapak kapaklarını nötr balsamla monte edin ve ışık mikroskobu altında inceleyin.
    NOT: Ksilen tehlikelidir. Uygun PPE'lerle bir duman davlumbazında kullanın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Çalışmaya katılan on iki 4 haftalık Sprague-Dawley sıçanı tüm cerrahi işlemleri başarıyla tamamladı ve ligasyon öncesinde stabil osseointegrasyon gösterdi; böylece komplikasyonsuz iyileşme için önceden belirlenmiş dahil etme kriterini karşıladı. Hiçbir hayvan analizden çıkarılmıştır. Fareler, rastgele sayı üreteci kullanılarak NC veya PI grubuna (n = 6 grup) atalar. Mikro-BT nicel ve histopatolojik değerlendirmeler yapan araştırmacılar, sonuç değerlendirmesi ve veri analizi boyunca grup atamalarına kör kalır. Tüm implant...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mevcut çalışma, P. gingivalis ile ıslatılmış dikişler kullanılarak bir fare modelinde PI'nin indüklenmesinin mümkün olduğunu göstermekte ve ilgili cerrahi işlemlerin ayrıntılı bir dokümantasyonunu sunmaktadır. Kemirgen modelleri, özellikle sıçanlarda, erişilebilirlikleri, düşük bakım maliyeti ve yüksek üreme verimliliği nedeniyle periodontit ve PI incelemelerinde diş araştırmalarında iyi yer almıştır; mevcut literatür15,25

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar, bu makalede bildirilen çalışmayı etkileyebilecek potansiyel çıkar çatışmaları olmadığını doğrulamaktadır.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Sichuan Tıp Derneği (Grant No. S2024052) tarafından verilen hibelerle desteklenmektedir; Luzhou Bilim ve Teknoloji Bürosu (Hibe No. 2024JYJ070) ve Southwest Medical University Bağlı Stomatoloji Hastanesi (Hibe No. 2025DS03) tarafından desteklenmiştir. Yazarlar ayrıca Southwest Medical University Hayvan Deney Merkezi'nin teknik desteğini minnettarlıkla takdir ediyor. Bilimsel diyagram BioRender ile oluşturulur.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
#5 diş kaşifiZhengzhou Kangdetai Medical Co., Ltd., Zhengzhou, CN6970327120856Diş luksasyonu ve çekimi
%1 asit alkolSinopharm Kimyasal Reaktif Co., Ltd, Şanghay, CN10000018 (Etanol) & 10000118 (Hcl)Hematoksilin farklılaşması
%10 EDTA (pH 7.4)Servicebio Technology Co., Ltd, Wuhan, CNG1105Kemik kalsifikasyonu
%100 etanol çözeltisiMacklin Biyokimyasal Teknoloji Co., Ltd., Şanghay, ÇinE708068Tam dehidrasyon ve çözücü hazırlama
12c bıçak ve cerrahi skalpelTianda Medical Co., Ltd., Huaian, CN6951933811154Mukoperiostal flep oluşumu
3-0 ipek ligatürleriJinhuan Tıp Merkezi, Şanghay, CNNC9201232Bağ
%4 paraformaldehitBiosharp, Hefei, CNBL539ADoku fiksasyonu
%70 etanolLaboratuvar hazırlığı-Örnek depolama
%75 etanol çözeltisiMacklin Biyokimyasal Teknoloji Co., Ltd., Şanghay, ÇinE885996Yüzey dezenfeksiyonu ve İlk dehidrasyon
Amoksisilin 50 μ g/mLNorth China Pharmaceutical Co., Ltd, Shijiazhuang, CNH13020635İçme suyunda antibiyotik takviyesi
Avatar yazılımıAvatar Integrated Systems Inc, Münih, DE-Kemik parametreleri analizi
BHI ortamıCrown Lab Supplies Inc, British Columbia, CA110052P. gingivalis kültürü
CT-VoxelBruker Corporation, Billerica, MA, ABD-Mikro-CT görüntü görselleştirme
EosinPekin Solarbio Bilim & Technology Co., Ltd, Pekin, CN
G1100		Sitoplazmik boyama
Etanol serisi (%80, %90, %95)Laboratuvar hazırlığıDokuların kademeli dehidrasyonu/yeniden hidratlanması
GraphPad PrizmasıGraphPad Software, Inc., San Diego, CA, ABDSürüm 9.0.0İstatistiksel analiz ve grafik oluşturma
FarShenzhen Supfire Lighting Co., Ltd, Shenzhen, CNHL23-XAğız içi aydınlatma
HematoksilinPekin Solarbio Bilim & Technology Co., Ltd, Pekin, CNH8070Nükleer boyama
İmplant taşıyıcıSichuan Weisida Medical Device Co., Ltd, Sichuan, CNBenzersiz ürünManuel implant yerleştirme
İzofluranRWD Life Science Co., Ltd, Shenzhen, CNR510-22-10 İnhalasyonel anestezi bakımı
Manuel tornavida adaptörüDiqin Dekoratif Malzemeler A., Ltd, Hangzhou, CNDQ-80013Osteotomi
Tıbbi pamuk çubuklarıKekang Pharmaceutical Co., Ltd, Suzhou, CNHN-02Hemostaz
Micro-CT tarayıcıServicebio Technology Co., Ltd, Wuhan, CNVNC-102μ BT taramaları
İğne tutacağıShanghai Medical Instruments Co., Ltd, Şanghay, CNJ32110Dikiş ligasyonu
Nötr balsamPekin Solarbio Bilim & Technology Co., Ltd.
Pekin, CN		G8590Histolojik kesit montajı
Oftalmik forsepsSolingmed Technology Co., Ltd, Shenzhen, CNSS-5002Bağ yerleşimi
ParafinAmin Noori General Trading LLC, Dubai, AE8012-95-1Doku gömülmesi
PBSProcell Yaşam Bilimi & Technology Co., Ltd, Wuhan, CNPB180327Doku sulama
Porphyromonas gingivalisEşdeğer-İltihap indüksiyonu
PovidoneiodineChengdu Yong'an İlaç Şirketi, Ltd, Chengdu, CNH51023539Dezenfeksiyon
Keşif yazılımıRecon Technology Ltd, Cayman Adaları, GBSürüm 1.7.4.0Mikro-CT görüntü rekonstrüksiyonu
Lastik bantZhejiang Yueyi Kauçuk Ürünleri A., Ltd, Taizhou, CNVYR43*1.4Çene çekişi ve fiksasyonu
SD RatsSouthwest Medical University Deneysel Hayvan Merkezi, Luzhou, CNSCXK(Chuan)2024-0046Cerrahi işlemler
Keskin cerrahi makasHunan Cofoe Medical Technology Co., Ltd., Changsha, CN1.0806E+13İplik kesme
Doku forsepsiFine Science Tools, Foster City, CA, ABD11000-12Dil çekişi ve fiksasyonu
Titanyum implantlar (Ø 1.8& kez; 3.2mm)Sichuan Weisida Medical Device Co., Ltd, Sichuan, CNBenzersiz ürünTitanyum implantı
Tribromoetanol (Avertin)Henan Saihou Biotechnology Ltd., Zhengzhou, CN-İntraperitoneal anestezi
KsilenSinopharm Kimyasal Reaktif Co., Ltd, Şanghay, CN10023418Doku temizleme ve mumdan arındırma

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Gupta, R., Gupta, N., Weber, D. K. Dental implants. , StatPearls Publishing LLC. Treasure Island (FL). Copyright 2025 (2025).
  2. Lee, C. T., Huang, Y. W., Zhu, L., Weltman, R. Prevalences of peri-implantitis and peri-implant mucositis: Systematic review andmeta-analysis. J Dent. 62, 1-12 (2017).
  3. Berglundh, T., et al. Peri-implant diseases and conditions: Consensus report of workgroup 4 of the 2017 world workshop on the classification of periodontal and peri-implant diseases and conditions. J Clin Periodontol. 45 (Suppl 20), S286-S291 (2018).
  4. Schwarz, F., Derks, J., Monje, A., Wang, H. L. Peri-implantitis. J Clin Periodontol. 45 (Suppl 20), S246-S266 (2018).
  5. Diaz, P., Gonzalo, E., Villagra, L. J. G., Miegimolle, B., Suarez, M. J. What is the prevalence of peri-implantitis? A systematic review and meta-analysis. BMC Oral Health. 22 (1), 449(2022).
  6. Herrera, D., et al. Prevention and treatment of peri-implant the EFP S3 level clinical practice guideline. J Clin Periodontol. 50 (Suppl 26), 4-76 (2023).
  7. Fu, J. H., Wang, H. L. Breaking the wave of peri-implantitis. Periodontol. 84 (1), 145-160 (2020).
  8. Sant'anna, H. R., et al. Peri-implant repair using a modified implant macrogeometry in diabetic rats: Biomechanical and molecular analyses of bone-related markers. Materials (Basel). 15 (6), 2317(2022).
  9. Ribitsch, I., et al. Large animal models in regenerative medicine and tissue engineering: To do or not to do. Front Bioeng Biotechnol. 8, 972(2020).
  10. He, Q., et al. Development of a rat model for type 2 diabetes mellitus peri-implantitis: A preliminary study. Oral Dis. 28 (7), 1936-1946 (2022).
  11. DeAraújo Silva, D. N., et al. Experimental model of ligature-induced peri-implantitis in mice. J Vis Exp. (207), e66316(2024).
  12. Chadwick, J. W., Glogauer, M. Robust ligature-induced model of murine periodontitis for the evaluation of oral neutrophils. J Vis Exp. (155), e59667(2020).
  13. Kantarci, A., Hasturk, H., Van Dyke, T. E. Animal models for periodontal regeneration and peri-implant responses. Periodontol. 68 (1), 66-82 (2000).
  14. Varon-Shahar, E., et al. Peri-implant alveolar bone resorption in an innovative peri-implantitis murine model: Effect of implant surface and onset of infection. Clin Implant Dent Relat Res. 21 (4), 723-733 (2019).
  15. Hiyari, S., et al. Ligature-induced peri-implantitis and periodontitis in mice. J Clin Periodontol. 45 (1), 89-99 (2018).
  16. Tzach-Nahman, R., Mizraji, G., Shapira, L., Nussbaum, G., Wilensky, A. Oral infection with Porphyromonas gingivalis induces peri-implantitis in a murine model: Evaluation of bone loss and the local inflammatory response. J Clin Periodontol. 44 (7), 739-748 (2017).
  17. Pirih, F. Q., et al. Ligature-induced peri-implantitis in mice. J Periodontal Res. 50 (4), 519-524 (2015).
  18. Pirih, F. Q., et al. A murine model of lipopolysaccharide-induced peri-implant mucositis and peri-implantitis. J Oral Implantol. 41 (5), e158-e164 (2015).
  19. Reinedahl, D., Chrcanovic, B., Albrektsson, T., Tengvall, P., Wennerberg, A. Ligature-induced experimental peri-implantitis-a systematic review. J Clin Med. 7 (12), 492(2018).
  20. Gao, L., Yu, X. Q., Cai, Y. Effect of molar ligation and local Porphyromonas gingivalis inoculation on alveolar bone loss in the mouse. Beijing Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 49 (1), 31-35 (2017).
  21. Wongtim, K., et al. Overexpression of PD-L1 in gingival basal keratinocytes reduces periodontal inflammation in a ligature-induced periodontitis model. J Periodontol. 93 (1), 146-155 (2022).
  22. Koutouzis, T., Eastman, C., Chukkapalli, S., Larjava, H., Kesavalu, L. A novel rat model of polymicrobial peri-implantitis: A preliminary study. J Periodontol. 88 (2), e32-e41 (2017).
  23. Veríssimo, L. F., et al. Cardiovascular effects of early maternal separation and escitalopram treatment in rats with depressive-like behaviour. Auton Neurosci. 256, 103223(2024).
  24. Kim, Y., Brodt, M. D., Tang, S. Y., Silva, M. J. MicroCT for scanning and analysis of mouse bones. Methods Mol Biol. 2230, 169-198 (2021).
  25. Kuraji, R., Hashimoto, S., Ito, H., Sunada, K., Numabe, Y. Development and use of a mouth gag for oral experiments in rats. Arch Oral Biol. 98, 68-74 (2019).
  26. Lu, S., et al. Effect of ovariectomy on tissue-level changes in rat maxilla. Int J Oral Maxillofac Implants. 34 (4), 865-872 (2019).
  27. Heitzer, M., et al. Establishing a new periodontitis-like intrabony maxillary defect in rats for investigation on bone regeneration. Sci Rep. 15 (1), 39358(2025).
  28. Moiseev, D., et al. A new way to model periodontitis in laboratory animals. Dent J (Basel). 11 (9), 219(2023).
  29. Marchesan, J., et al. An experimental murine model to study periodontitis. Nat Protoc. 13 (10), 2247-2267 (2018).
  30. Nasution, D. L. I., Tjahajawati, S., Indriyanti, R., Amaliya, Anti-inflammatory effectiveness of Peperomia pellucida (l.) kunth in rats induced with periodontitis. Biochem Biophys Rep. 40, 101856(2024).
  31. Meng, L. W., et al. Comparison of three methods for establishing rat peri-implantitis model. Beijing Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 55 (1), 22-29 (2023).
  32. Zhang, H., et al. Application of immediate implant placement techniques in peri-implantitis modeling. J Craniofac Surg. 34 (8), 2544-2550 (2023).
  33. Ortiz-Sánchez, B. J., Juárez Avelar, I., Rodriguez-Sosa, M. Murine model of advanced periodontitis induced by nylon ligature in the second upper molar. J Vis Exp. (219), e67848(2025).
  34. Lafaurie, G. I., et al. Microbiome and microbial biofilm profiles of peri-implantitis: A systematic review. J Periodontol. 88 (10), 1066-1089 (2017).
  35. Zhang, Q., Liu, J., Ma, L., Bai, N., Xu, H. Lox-1 is involved in TLR2-induced RANKL regulation in peri-implantitis. Int Immunopharmacol. 77, 105956(2019).
  36. Qiao, S., et al. Oral microbial profile variation during canine ligature-induced peri-implantitis development. BMC Microbiol. 20 (1), 293(2020).
  37. De Avila, E. D., Van Oirschot, B. A., Van Den Beucken, J. Biomaterial-based possibilities for managing peri-implantitis. J Periodontal Res. 55 (2), 165-173 (2020).
  38. Iizumi, T., et al. Effect of antibiotic pre-treatment and pathogen challenge on the intestinal microbiota in mice. Gut Pathog. 8, 60(2016).
  39. Heitz-Mayfield, L. J. A., Salvi, G. E. Peri-implant mucositis. J Clin Periodontol. 45 ((Suppl 20)), S237-S245 (2018).
  40. Javed, F., Romanos, G. E. Efficacy of photobiomodulation in the management of experimentally-induced peri-implant osseous defects: An evidence-based review of studies on animal models. J Dent. 159, 105833(2025).
  41. Yu, S., et al. Adjunctive diode laser therapy and probiotic lactobacillus therapy in the treatment of periodontitis and peri-implant disease. J Vis Exp. (183), e63893(2022).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

S an mplant ModeliAlveoler Kemik KaybYumu ak Doku nflamasyonuMikro BT AnaliziHistolojik AnalizDental mplant Ba ar s zl
Video yakında

İlgili makaleler