$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Tümörler için kemoterapötik tedavi genellikle yüksek oranda proliferatif hücreleri hedef alır ve kök hücre popülasyonunun küçük bir alt kümesini geride bırakarak tümörün yeniden kapsüllenmesine yol açar. Bu kök hücrelere yan popülasyon denir. Yan popülasyon spesifik hücre belirteçlerinden yoksun olduğundan, onları diğer tümör hücrelerinden izole etmek için bir boya akış testi kullanıyoruz.
Başlamak için, izole edilmiş zebra balığı tümör hücrelerine Hoechst boyası ekleyin. Hoechst çekirdeğe girer ve DNA'nın küçük oluğundaki A-T açısından zengin bölgeye bağlanır. Hücrelerin yan popülasyonu, yüzeyde daha yüksek bir ABC taşıyıcı konsantrasyonuna sahiptir, bu da boyanın hücre dışına hızlı bir şekilde akmasına ve düşük floresan göstermesine neden olur.
Hoesct ile tedavi edilmiş tümör hücrelerinin başka bir şişesini alın ve buna verapamil ekleyin. Bu flakon bir kontrol görevi görür, çünkü verapamil ABC taşıyıcılarını bloke ederek hoechst akışında bir azalmaya neden olur, bu nedenle yan popülasyonda floresan artar.
Hem kontrol hem de numune hücrelerini karanlıkta inkübe edin. Daha sonra, yalnızca ölü hücrelerin çekirdeğine giren ve DNA bazları arasında ara tabaka oluşturan ve ölü hücreleri kırmızıya boyayan propidyum iyodür ile hücreleri boyayın. Son olarak, floresanla aktive edilmiş bir hücre sıralayıcı kullanarak hücreleri sıralayın. Aşağıdaki protokolde, tümör hücrelerinin yan popülasyonunu zebra balığından izole edeceğiz.
- Hücre boyamadan önce, mililitre çalışma çözeltisi başına bir miligram elde etmek için Hoechst boyasını nükleaz içermeyen bir suda seyreltin. Hazırlanan çözeltiyi alüminyum folyo ile kaplı olarak 4 santigrat derecede saklayın, daha sonra 100 mikromolar inhibitör çözeltisi elde etmek için 49.1 miligram verapamil'i bir mililitre DMSO'da çözün
.
Daha sonra, FBS / PBS 2.5 mikrolitre DMSO, mililitre Hoechst boyası başına 15 mikrolitre bir miligram ve altı tümör hücresine 10 ila 10 ekleyerek numuneyi bir mililitre nihai hacme sahip bir FACS tüpüne hazırlayın.
Kontrolü hazırlamak için FBS/PBS, 2,5 mikrolitre 100 milimolar verapamil, mililitre Hoechst boyası başına 15 mikrolitre bir miligram ekleyin. 6 tümör hücresine 10 ekleyin, son hacmi bir mililitredir.
Numuneyi ve kontrolü karanlıkta 28 santigrat derece su banyosunda 120 dakika inkübe edin. Kuluçkadan sonra, hücreleri hemen buzun üzerine yerleştirin ve karanlıkta tutun.
Hücreleri altı dakika boyunca 300 kez G, 4 santigrat derecede santrifüjleyin. Sonra süpernatanı çıkarın ve hücreleri bir mililitre FBS / PBS ile yıkayın. Hücreleri bir kez daha altı dakika boyunca 300 kez G, 4 santigrat derecede döndürün.
Hücreler peletlendikten sonra, süpernatanı çıkarın ve hücreleri bir mililitre FBS / PBS'de yeniden süspanse edin. Hücre sıralanana kadar numuneleri 4 santigrat derecede tutun. Hücre sıralamasından 15 dakika önce, hücre süspansiyonunun her bir mililitresi için mililitre propidyum iyodür stok çözeltisi başına iki mikrolitre bir miligram ekleyin. Ardından, numuneleri iyice girdaplayın.
Floresanla aktive edilen bir hücre sıralayıcı kullanarak lekeli zebra balığı T-ALL hücre süspansiyonlarını analiz edin. Hoechst boya analizi için bir UV lazeri ve propidyum iyodür veya GFP pozitif T-ALL hücrelerinin tespiti için 488 nanometre lazerle numuneleri uyarın.
- Hücre sayısı, boya konsantrasyonu, inkübasyon sıcaklığı ve inkübasyon uzunluğunun, kullanılan her farklı hücre tipi için optimize edilmesi gerekebilir ve bu koşulların her birinde yapılan değişiklikler, tahlilin sonuçlarını büyük ölçüde değiştirebilir.