Name: Proteolitik Degradable 3 Boyutlu Sistem Yumurtalık Folikül Encapsulation ve Kültür Bir Yöntem (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 37 s
Description: Öğrenin, fibrin-aljinat ağında yumurtalık foliküllerini kapsülleme ve in vitro kültür yöntemini. Bu teknik, oosit gelişimini desteklerken hücre-hücre etkileşimlerini korur ve üreme biyolojisi araştırmalarına katkı sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma NIH (U54HD41857 ve PL1EB008542, Oncofertility Konsorsiyumu Yol Haritası hibe içinde P30 Biyomalzeme Çekirdek) tarafından finanse edildi.

1. Folikül İzolasyon Northwestern Üniversitesi kurallar ve düzenlemeler, Ulusal Sağlık Rehberi Enstitüleri tarafından belirlenen ve Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım için kurulan Kurumsal Hayvan Kullanımı ve Bakımı protokolü uyarınca hayvanlar üzerinde deneyler yapıldı. Optimal sonuçlar için, tüm diseksiyonları bakteriyel kontaminasyonu en aza indirmek için 37 ° C sıcaklık kontrolü için ısıtmalı aşamaları ve temiz bir bankta, CO 2 ortam düzeyde L15 medya pH kontrolü için yapılır. Diseksiyonu medya (DM), 50 IU / ml penisilin ve 50 ml / ml streptomisin ve% 1 FBS ile takviye L15 medya ile hazırlanmıştır. Bakım medya (AA) 50 IU / ml penisilin ve 50 ml / ml streptomisin ve% 1 FBS ile takviye αMEM medya ile hazırlanmıştır. <ol><li> 16 günlük fare taze disseke yumurtalıklar,% 0.1 kollajenaz ve% 0.1 DNaz içeren 1-2 ml MM ile yeni bir 35 mm Petri kabı içine aktarın. 37 ° C ve% 5 CO 2 bir inkübatör içinde 15 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Inkübasyondan sonra, kollajenaz çıkarın ve sonra taze DM 35 mm Petri kabında transfer DM birkaç yıkama adımları uygulayın. Yavaşça atılan şırınga bağlı iki 28 5 / 8 göstergesi iğneler kullanarak tüm yumurtalık (veya kesme) folikülleri uzak Flicking yumurtalık folikülleri izole edin. Folikülünün bütünlüğüne zarar vermeden, mümkün olduğu kadar çok stroma olarak çıkarın. Yumurtalık başına 20-40 ikincil foliküller (130-150mm) parçalara ayır. Bu foliküller genellikle 2-3 kat somatik hücre var. </li><li> 60 mm IVF (in vitro fertilizasyon) Petri kabı ve dış bilezik 3 mL MM merkezi için 1 ml MM ekleyin. Kısaca durulama IVF çanak dış halka bir pipet ile sağlam folikülleri aktarın ve sonra seçici (1.4 'e bakınız) merkezi bir kuyunun içine aktarabilirsiniz . Inkübatör bu IVF çanak saklayın. </li><li> Bütün kökler toplandıktan sonra, seçim adım 5-8x büyütme ile bir diseksiyon mikroskop altında yapılır. Sağlıklı folikülleri aşağıdaki morfolojik özellikleri: <ul><li> 2-3 somatik hücre tabakaları </li><li> 130-150 mm </li><li> Oosit ve somatik hücre arasında hiçbir ayrım </li><li> Bozulmamış ve yuvarlak oosit Kapsülleme için tüp bebek yemekleri merkezi haline sağlıklı folikülleri aktarın. </li></ul></li></ol> 2. Folikül Encapsulation, Yöntem 1 - "Bırak Yöntemi" <ol><li> IVF çanak ortasına 40 mM CaCl 2 ile 50 IU / ml trombin TBS içinde 1 ml ekleyin. Çözülme ve buz üzerinde fibrinojen stok tutmak (TBS 50 mg / ml). Fibrinojen hakkını kullanmak önce oda sıcaklığına kadar getirin. </li><li> Karıştırma 1x PBS,% 0.5 PBS çözüm aljinat ve 50 mg / ml fibrinojen çözüm 02:01:01 oranı 1.7 ml steril mikrosantrifüj tüp fibrinojen / aljinat çözeltisi hazırlayın. Çözüm kabarcıkları tanıtan kaçının. Yavaşça girdap ve spin-aşağı. Çözümü biraz bulanık görünür ve kullanmadan hemen önce hazırlanmalıdır. </li><li> Fibrinojen / Bir IVF çanağı dış halka aljinat çözüm iki damlacıkları: kapsülleme ve yıkama için 10 mcL damlacık için 90 mcL damlacık yerleştirin. Buharlaşma azaltmak için, ısıtma aşamasında diseksiyon mikroskobu kapatın. 200 mikron mikropipet ucu ve hızlı bir şekilde karıştırın kullanarak kültür ortamı (5 mcL) asgari bir miktarı ile 10 mcL damlacık içine transfer 10-15 folikülleri. Ilk damla çözüm en az bir miktarı (&lt;5 mcL) ve karışımı ile 90 mcL damlacık tüm foliküllerin içine aktarın. </li><li> Aynı zamanda bir folikülü IVF çanak trombin / Ca 2 + çözüm içine 10 mcL pipet, ve bırakın kullanarak fibrinojen / aljinat çözüm 5 mcL aspirat. Tüm foliküller kapsüllü kadar bu adımı tekrarlayın. </li><li> Cross-Link trombin / Ca 2 + çözüm 5-7 dakika boncuk. Boncuk fibrin jel veya koyu hale gelecektir. Ilk koyu boncuklar ile başlayan, AA içeren bir Petri kabı içine boncuk aktarın. 15-30 dakika kalan trombin durulayın inthe inkübatör için çanak inkübe edin. </li><li> Hemen 100 folikül gelişimi medya mcL ve görüntü içeren 96 kuyu kültür plaka içine boncuk aktarın. Büyüme ortamı (GM) rekombinant FSH 10 mIU / mL, 3 mg / ml BSA ile desteklenmiş αMEM medya ile hazırlanan, 1 mg / mL sığır fetuin, 5 mg / ml insülin, 5 mg / ml transferrin, 5 ng / ml selenyum. </li></ol> 3. Folikül Encapsulation, Yöntem 2 - "Parafilm Yöntemi" <ol><li> % 0.5 aljinat çözeltisi ve 50 mg / ml fibrinojen solüsyonu 1.7 ml steril mikrosantrifüj tüp 1:1 oranında karıştırılarak fibrinojen / aljinat çözüm hazırlayın. </li><li> 3 mm ayırıcılar ile parafilm kaplı cam slayt üzerine fibrinojen / aljinat karışımı Pipet 7.5 mcL damla. Bir minima her damla içine 1 folikül transferMedya l miktarı. </li><li> 7.5 mcL trombin / Ca 2 + çözüm, her bir damla ekleyin. Jel oluşturması nedeniyle neredeyse anında Karıştırma gereksizdir. </li><li> Ikinci parafilm kaplı cam slayt jeller Kapak, 100 mm Petri kabı baş aşağı slaytları koyun, 5 dakika boyunca inkübatör transfer. </li><li> AA içeren bir Petri kabı içine boncuk aktarın ve kültürünün yanı sıra daha önce açıklanan içine. Boncuklar birbirine yapışırsa, boncuklar arasında çapraz bağlantı nedeniyle, hafifçe forseps ile ayrılmış olabilir. </li></ol> 4. Folikül Görüntüleme ve Medya değiştir <ol><li> Her 2 günde bir, kültürlü foliküllerinin bir ışık mikroskobu ve folikülün çapı yazılım programı ImageJ ile ölçülür kullanarak görüntülü. </li><li> Her 2 günde bir, taze, ön-dengelenmiş büyüme medya tarafından, yarısı büyüme ortamı (50 mcL) değiştirilmiştir. </li></ol> 5. 3D Matrix ve in vitro Oosit Olgunlaşma Folikül Kurtarma (IVM ) <ol><li> Kültür 8 gün sonra, hidrojeller net bir fibrin bileşeni tamamlamak bozulması nedeniyle görünür ve köklerinin 300-400 mikron çapında genişletmek. Kalan aljinat aljinat liaz, özellikle aljinat düşürür ve hayvan hücreleri etkilemez bitki kaynaklı bir enzim tarafından parçalanır. </li><li> Boncuklar içeren kuyulardan büyüme ortamı çıkarın ve 10 IU / αMEM mL aljinat liaz 100 ml. Inkübatör plaka 25-30 dakika bırakın. </li><li> Künt bir son ucu ile çözünmüş boncuk folikülleri çıkarın. DM içeren bir IVF çanak dış halka ilk transferi ve daha sonra merkezi haline iyi yıkamak için DM içeren. </li><li> Yıkandıktan sonra, kıl foliküllerinin dış transferi, ve olgunlaşma medya içeren bir IVF çanak daha sonra iç bilezik, in vitro maturasyon medya (IVM) αMEM,% 10 FCS, hCG 1.5 IU / mL oluşur ve 5 ng / ml epidermal büyüme faktörü (EGF) </li><li> 15-16 saat CO 2 inkübatör aktarın. Kümülüs hücreleri genişlemesi için folikülleri inceleyin. Oosit kümülüs hücreleri çıkarmak, nihai konsantrasyonu hiyalüronidaz çözüm eklemek 0,1 mg / ml ve 2-3 dakika inkübatörde inkübe. Birkaç kez aşağı yukarı pipetleme kesme oosit kümülüs hücreleri 75 mm mikropipet ucu kullanın. Bir ışık veya bir diseksiyon mikroskobu altında oosit olgunlaşma aşamasında belirleyin. Olası aşamaları, en en olgun, <ul><li> Dejenere. Oosit, iki veya daha fazla parçalar halinde parçalanır. </li><li> Germinal vezikül (GV) evre. Oosit, oosit (GV) çekirdeğin varlığı ile devam açıktır hCG maruz yanıt mayoz devam etmedi. </li><li> Germinal vezikül dağılımı (GVBD). Nükleer membran oosit yoktur, ama kutup vücut mevcut yoktur. Bu nedenle, oosit mayoz-I halen devam etmektedir. </li><li> Metafaz-II tutuklandı oosit (MII). Oosit mayoz devam etti ve şimdi metafaz-II tutuklandı. Bir kutup vücudun bir ışık veya bir diseksiyon mikroskobu görünür olmalıdır. Daha sonraki deneylerde döllenmiş sürece oosit MII kalacaktır. </li></ul></li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar: (Şekil 1) in vitro kültür için bir FA-IPN over foliküllerinin bir roman kapsülleme yöntemi tanımladı. Over foliküllerinin somatik hücre bazı katmanlar tarafından çevrili bir oosit oluşur. Birden fazla hücre bölmeleri arasındaki iletişim sağlıklı folikül gelişimi ve oosit olgunlaşması için gereklidir. Folikül 9,11,12 mimarisi korurken 3D hidrojel Folikül kapsülleme folikül genişleme destekler. Folikül gelişmeye olduğu gibi, onların hacmi katlanarak genişler ve kapsülleme biyomateryal inhibe bir basınç kuvveti gelişimi olmadan bu genişleme izin vermelidir. FA-IPN fibrin plazmin tarafından folikül aktif ve aljinat (Şekil 2) 13 ve biyolojik olarak tesirsiz proteolitik parçalanabilir iki doğal malzemelerden yapılmış bir ağdır. Folikül gelişimi sırasında, fibrin yıkım folikül yakın yerel başlar ve fibrin hidrojel temizlenir kadar devam eder. Kültür dönemi boyunca bozulmadan kalır-bozunur olmayan aljinat bileşeni, hidrojel 3 boyutlu yapısını destekler. Foliküllerin gelişme ikinci aşama (150-180 mikron çapında) izole ve FA-IPN jeller gelişme antral aşamada 400 mm genişletildi. HCG stimülasyon, kültürlü folikülleri, cumulus hücre genişleme geçmesi ve oositlerin döllenme için metafaz II mayoz ve ilerlemeye devam edebilirsiniz. Bu sonuçlar, kapsülleme yöntemini ve kapsülleme malzemesi in vitro (Şekil 3) follikül kültür ve başarılı bir olgunlaşma izin öneririz . Encapsul etrafında fibrin yıkımated folikülleri kültürünün ilk günü başlar ve 6 günde tamamlanmıştır. Aprotinin, çözünen bir plazmin inhibitörü, fibrin yıkım değiştirmek ve kapsülleme malzemesi (Şekil 4) mekanik degrade uzatmak için kullanılabilir. Eğer foliküllerinin 0.01 TIU / ml aprotinin ile kültür, fibrin ilk 4 gün boyunca bozulmuş yavaş. Bununla birlikte, köklerinin hala antral aşamasına geliştirmek ve oosit aprotinin aprotinin removed.A yüksek konsantrasyonda (0.1 TIU / ml) sonra metafaz II mayoz devam etmek için yetkili kalır fibrin yıkım önemli ölçüde inhibe, matris sertlik folikül genişleme ve somatik hücre önler matriks içine işgali görülmektedir. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1. Oosit gelişimini desteklemek somatik hücre bir veya daha fazla katman ile çevrili merkezi bir oositin folikül gelişimi Akış Şeması. Yumurtalık folikülü oluşur. Folikülleri preovulatory antral aşamada ikincil gelişir, oosit çevreleyen somatik hücre ne zaman somatik hücre bitişik, çoğalırlar ve farklılaştırmak ve oosit büyüklüğü artar. In vitro maturasyon (IVM) folikül kültürü için son adım oosit, kümülüs hücreleri olarak adlandırılan, hCG stimülasyon sonra genişletin ve oosit mayoz bölünme devam eder ve bir metafaz II (MII) evre ilerler. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig2a.jpg" alt="Şekil 2a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2a"> Şekil 2a. In vitro 3D folikül kültür Aljinat ve fibrin-aljinat (a) Aljinatta nazik jelleşme ve biyokimyasal özellikleri, mesh boyutu, kontrol sertlik ve biyolojik inertlik nedeniyle in vitro folikül kültürü için uygun bir doğal biyomateryal. Aljinat α-L-guluronic asit (G) ve β-D-mannuronic asit (M) doğrusal bir polisakkarit kopolimer. Tekrar G monomerlerin Alanları, "G-blok" olarak adlandırdığı, kalsiyum, kalsiyum iyonlarının varlığında bir hidrojel oluşturmak için çapraz bağlanır. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig2b.jpg" alt="Şekil 2b" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2b"> Şekil 2b (iki) Küçük kapsüllü foliküllerinin kültürünün başında aljinat düşük basınç kuvveti deneyim. Ancak, folikül boncuk yerinden hacmi genişledikçe folikül genişleme ters yönde (b-ii) daha yüksek basınç kuvveti sonuçları artmaktadır. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig2c.jpg" alt="Şekil 2c" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2c"> Şekil 2c bireysel polimerlerin zincirleri çapraz bağlama önce fibrin aljinat çözüm tamamen dolaşmış. FA-IPN iki bileşenleri trombin ve kalsiyum karışımı maruz kalan hemen çapraz-bağlantı başlar. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig3a.jpg" alt="Şekil 3a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3a"> Şekil 3a. FA-IPN İkincil folikülleri folikül izolasyon ve kapsülleme Akış Şeması 16 günlük fare (Ai) izole edilmiştir. Üreme organları (A-ii) disseke ve izole foliküllerinin bir tabak bakım medya (A-iii) ile aktarılır. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig3b.jpg" alt="Şekil 3b" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3b"> Şekil 3b fibrinojen aljinat çözüm folikül kapsülleme bırak yöntemi (B: i-iv). İki damla fibrinojen-aljinat çözümü, durulama, damla (10 mcL) ve kapsülleme damla (90 mcL) çanak (Bi) pipetlenir. Sonraki 3-5 foliküllerinin bir durulama damla (B-ii) transfer edilir. Durulama ve medya kaldırma sonra, folikülleri kapsülleme açılan (B-iii) aktarılır. Her bir follikül 10 mcL pipet ucu ile 5 mcL fibrinojen-aljinat çözüm emişli ve sonra trombin / kalsiyum solüsyonu (B-iv) içine atılır. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig3c.jpg" alt="Şekil 3c" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3c"> Şekil 3c 5 dakika boncuk çapraz bağları. Parafilm fibrinojen aljinat çözüm folikül kapsülleme yöntemi (C: i-iii). Fibrinojen-aljinat çözeltisi (7.5 mcL) parafilm kaplı cam slayt pipetlenebilir ve (Ci, ii) durulandıktan sonra folikülleri ayrı ayrı her bir damla aktarılır. Trombin solüsyonu (7.5 mcL), (C-iii) her damla eklenir. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig3d_e.jpg" alt="Şekil 3d-e" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3d-e"> Şekil 3d e. damla ikinci bir parafilm kaplı cam slayt ile kaplıdır ve FA-IPN 5 dakika inkübatör çapraz. (D) 96-plaka kapsüllü foliküllerinin büyüme ortama aktarılır. (E) FA-IPN (beyaz ok) bir kapsüllü folikül bir görüntü. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig4.jpg" alt="Şekil 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 4"> Şekil 4. Büyüyen folli fibrin yıkımcle. Foliküllerin folikülü etrafında açık bir daire ile gösterilmiştir kültür dönemi boyunca, FA-IPN fibrin bileşeni bozulmasına yol açar. Folikül 3D mimarisi kalan aljinat tarafından desteklenmektedir. 0 (D0) fibrin hala bozulmamış ve folikülün etrafında matris bulutlu; kültür 1 gün folikülün etrafında açık halka görünür (D1) (beyaz ok) ve fibrin yıkım ön radyal gün genişletmeye devam ediyor sonra günü 2 (D2) ve kültür gün 4 (D4). <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig5.jpg" alt="Şekil 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 5"> Şekil 5. Folikül gelişimi Görüntüler gün 0 FA-IPN Temsilcisi görüntüleri ofsecondary folikül gelişimi (A), 4 (B), 6 (C) ve 8 (D) kültür. 8 gün sonra, antral foliküller in vitro olgunlaştı ve MII aşamada oosit (E, kutup vücut siyah ok ile gösterilen) gösterilmiştir. <img src="/files/ftp_upload/2695/2695fig6.jpg" alt="Şekil 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 6"> Şekil 6. Fibrin yıkım aprotinin inhibe olmuştur. Gün 2, 4, 10 ve 12 folikülleri büyüyen ilk satırda gösterilmiştir. Aprotinin konsantrasyonlarda 0.01 TIU / ml (ikinci satır) ve 0.1 TIU / ml kültür ortamı, 0, 2 ve 4 gün eklendi. Sadece aprotinin kaldırma sonra 0.01 TIU / ml aprotinin bozulmuş fibrin kültürler folikül ve antral aşamasına gelinmiştir. 0.1 kültür foliküllerin TIU / ml aprotinin FA-IPN büyümeye vermedi. <table border="1"><tbody><tr><td> Kısaltma </td><td> Tam adı </td></tr><tr><td> CO 2 inkübatör </td><td> % 5 CO 2 ile 37 ° C inkübatör </td></tr><tr><td> COC </td><td> Cumulus oosit kompleksi </td></tr><tr><td> 3D </td><td> Boyutlu 3 </td></tr><tr><td> DM </td><td> Diseksiyon medya </td></tr><tr><td> AGF </td><td> Epidermal büyüme faktörü </td></tr><tr><td> FA-IPN </td><td> Fibrin-aljinat nüfuz ağ </td></tr><tr><td> FBS </td><td> Fetal sığır serumu </td></tr><tr><td> GM </td><td> Büyüme medya </td></tr><tr><td> GV </td><td> Germinal vezikül </td></tr><tr><td> hCG </td><td> İnsan koryonik gonadotropin </td></tr><tr><td> ITS </td><td> İnsülin Transferrin selenyum takviyesi </td></tr><tr><td> IVF çanak </td><td> Iyi Center, in vitro fertilizasyon çanak 60 mm </td></tr><tr><td> AA </td><td> Bakım medya </td></tr><tr><td> MII aşamada oosit </td><td> Metafaz II aşamada oosit </td></tr><tr><td> rFSH </td><td> Rekombinant Folliküler Uyarıcı Hormon </td></tr><tr><td> TBS </td><td> Tris tamponlu salin </td></tr><tr><td> TIU </td><td> Tripsin inhibitör birimler </td></tr></tbody></table> Tablo 1 Kısaltmalar

<ol><li>Cortvrindt, R., Smitz, J., VanSteirteghem, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In-vitro+maturation%2C+fertilization+and+embryo+development+of+immature+oocytes+from+early+preantral+follicles+from+prepuberal+mice+in+a+simplified+culture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">In-vitro maturation, fertilization and embryo development of immature oocytes from early preantral follicles from prepuberal mice in a simplified culture system.</a> Human Reproduction. 11, 2656-2666 (1996).</li>
<li>Smitz, J., Cortvrindt, R., Hu, Y. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidermal+growth+factor+combined+with+recombinant+human+chorionic+gonadotrophin+improves+meiotic+progression+in+mouse+follicle-enclosed+oocyte+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Epidermal growth factor combined with recombinant human chorionic gonadotrophin improves meiotic progression in mouse follicle-enclosed oocyte culture.</a> Human Reproduction. 13, 664-669 (1998).</li>
<li>Xu, M., Banc, A., Woodruff, T. K., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secondary+Follicle+Growth+and+Oocyte+Maturation+by+Culture+in+Alginate+Hydrogel+Following+Cryopreservation+of+the+Ovary+or+Individual+Follicles%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Secondary Follicle Growth and Oocyte Maturation by Culture in Alginate Hydrogel Following Cryopreservation of the Ovary or Individual Follicles.</a> Biotechnology and Bioengineering. 103, 378-386 (2009).</li>
<li>Smitz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+achievements+and+future+research+directions+in+ovarian+tissue+culture%2C+in+vitro+follicle+development+and+transplantation%3A+implications+for+fertility+preservation%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction+Update%22%5BJournal%5D)">Current achievements and future research directions in ovarian tissue culture, in vitro follicle development and transplantation: implications for fertility preservation.</a> Human Reproduction Update. 16, 395-414 (2010).</li>
<li>Shikanov, A., Xu, M., Woodruff, T. K., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interpenetrating+fibrin-alginate+matrices+for+in+vitro+ovarian+follicle+development%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Interpenetrating fibrin-alginate matrices for in vitro ovarian follicle development.</a> Biomaterials. 30, 5476-5485 (2009).</li>
<li>West, E. R., Xu, M., Woodruff, T. K., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+properties+of+alginate+hydrogels+and+their+effects+on+in+vitro+follicle+development%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Physical properties of alginate hydrogels and their effects on in vitro follicle development.</a> Biomaterials. 28, 4439-4448 (2007).</li>
<li>Kreeger, P. K., Fernandes, N. N., Woodruff, T. K., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+mouse+follicle+development+by+follicle-stimulating+hormone+in+a+three-dimensional+in+vitro+culture+system+is+dependent+on+follicle+stage+and+dose%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Regulation of mouse follicle development by follicle-stimulating hormone in a three-dimensional in vitro culture system is dependent on follicle stage and dose.</a> Biology of Reproduction. 73, 942-950 (2005).</li>
<li>Pangas, S. A., Saudye, H., Shea, L. D., Woodruff, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+approach+for+the+three-dimensional+culture+of+granulosa+cell-oocyte+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Novel approach for the three-dimensional culture of granulosa cell-oocyte complexes.</a> Tissue Engineering. 9, 1013-1021 (2003).</li>
<li>Xu, M., West, E., Shea, L. D., Woodruff, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+stage-specific+permissive+in+vitro+culture+environment+for+follicle+growth+and+oocyte+development%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Identification of a stage-specific permissive in vitro culture environment for follicle growth and oocyte development.</a> Biology of Reproduction. 75, 916-923 (2006).</li>
<li>Xu, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Encapsulated+Three-Dimensional+Culture+Supports+Development+of+Nonhuman+Primate+Secondary+Follicles%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Encapsulated Three-Dimensional Culture Supports Development of Nonhuman Primate Secondary Follicles.</a> Biology of Reproduction. 81, 587-594 (2009).</li>
<li>West, E. R., Shea, L. D., Woodruff, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+the+follicle+micro+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Seminars+in+Reproductive+Medicine%22%5BJournal%5D)">Engineering the follicle micro environment.</a> Seminars in Reproductive Medicine. 25, 287-299 (2007).</li>
<li>Xu, M., Kreeger, P. K., Shea, L. D., Woodruff, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+follicles+produce+live%2C+fertile+offspring%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered follicles produce live, fertile offspring.</a> Tissue Engineering. 12, 2739-2746 (2006).</li>
<li>Ebisch, I. M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+of+the+role+of+the+plasminogen+activator+system+and+vascular+endothelial+growth+factor+in+subfertility%5BTitle%5D)+AND+%22Fertility+and+Sterility%22%5BJournal%5D)">Review of the role of the plasminogen activator system and vascular endothelial growth factor in subfertility.</a> Fertility and Sterility. 90, 2340-2350 (2008).</li>
</ol>

FA-IPN sunulan over folikül kapsülleme yöntemi, in vitro 3D ortamda folikül kültür sağlar . FA-IPN ilk mekanik özellikleri hem fibrin ve aljinat kombinasyonu tarafından belirlendiği bir dinamik, duyarlı hücre-matriks. Kültür sırasında, kapsüllü folikül sadece kültür sonunda kalan aljinat katkıda yavaş yavaş azalan bir jel sertlik sonuçları IPN sadece bir bileşeni, fibrin, aşağılamak proteazlar aktive eder. FA-IPN ile elde edilen dinamik mekanik özellikleri, gelişmekte olan köklerinin doğal çevre ile tutarlı olm...

<table><tbody><tr><td>Fetuin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F3385</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Invitrogen</td><td>10082-139</td><td></td></tr><tr><td>Aprotinin</td><td>Roche Group</td><td>10236624001</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Wako Pure Chemical Industries, Ltd.</td><td>039-00475</td><td>40 mM</td></tr><tr><td>EGF</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A412</td><td></td></tr><tr><td>rFSH</td><td>National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases</td><td></td><td></td></tr><tr><td>hCG</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CG-5</td><td></td></tr><tr><td>Hyalüronidaz</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A1603</td><td></td></tr><tr><td>ITS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I1884-1VL</td><td></td></tr><tr><td>L-15</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11415</td><td></td></tr><tr><td>&amp;alpha;MEM+Gluta MAX</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>32561</td><td></td></tr><tr><td>Pen-Strep</td><td>Cellgro</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>TBS</td><td>Pierce, Thermo Scientific</td><td>28379</td><td></td></tr><tr><td>Tisseel Fibrin kiti</td><td>Baxter Internationl Inc.</td><td>921030</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Aljinat</td><td>FMC BioPolymers</td><td>LF200DL</td><td>Mw 418kDa</td></tr></tbody></table>

proteolitik degradable 3 boyutlu sistem yumurtalık folikül encapsulation ve kültür bir yöntem

A Method for Ovarian Follicle Encapsulation and Culture in a Proteolytically Degradable 3 Dimensional System

Seks hormonları salgılar yumurtalık fonksiyonel ünitesi over folikül ve oosit olgunlaşma destekleyen in vitro folikül teknikleri temel biyoloji araştırmak için model folikül gelişimi için bir araç sağlar ve fertiliteyi korumak için bir teknik olarak daha da geliştirilmektedir. kliniği 1-4. Bizim in vitro kültür sistemi, hücre-hücre etkileşimleri ve parakrin sinyal, doğrudan folikül gelişimi 5 3D foliküler mimarisini koruyarak doğal yumurtalık ortamı taklit etmek için hidrojeller kullanmaktadır. Daha önce, folikülleri başarıyla aljinat, kalsiyum iyonları ile jelleşme 6-8 uğrar inert bir alg elde edilen polisakkarit kültüre edildi . 0.25% w / v bir konsantrasyon meydana Aljinatta hidrojeller folikül kültürü için en müsamahakar olduğunu ve en yüksek gelişim yeterlik 9 korudu. Aljinat hidrojeller böylece folikül gelişimi 10 etkisi folikül bir basınç kuvveti folikülün çapı sonuçları, parçalanabilir bir artış değildir. Biz daha sonra fibrin ve aljinat bir karışımını aynı anda jel olduğu bir fibrin aljinat nüfuz ağ (FA-IPN) dayalı bir kültür sistemi geliştirdi. Bu kombinasyon, her iki bileşen başlangıçta matris katılık katkıda bulunmak için, dinamik bir mekanik ortam sağlar, ancak artan folikül tarafından salgılanan proteazlar destek sağlamak için sadece aljinat bırakarak matris fibrin düşürür. NPI, aljinat içeriği% 0.25 &#39;lik, tek başına 5 aljinat ile mümkün değildir altına düşebilir. Böylece, folikül genişledikçe, azaltılmış katı madde içeriği nedeniyle daha düşük bir basınç kuvveti yaşayacaksınız. Burada, bir kapsülleme yöntemi ve FA-IPN içinde yumurtalık folikülleri için bir in vitro kültür sistemi açıklanmaktadır. Dinamik mekanik ortamda küçük foliküller katı bir korteks ikamet eden ve bir daha müsamahakar medulla geçmek boyutu 11 artış olduğu doğal yumurtalık ortamı taklit eder. Parçalanabilir bileşeni insan folikülleri normalde in vivo geçmesi hacim olarak daha büyük 10 6 kat artış desteklemek amacıyla özellikle klinik çeviri için kritik olabilir.

3D fibrin aljinat nüfuz ağ over folikül kapsülleme için yeni bir yöntem açıklanmıştır. Bu sistem, olgun oosit üretmek için olgunlaşmamış köklerinin gelişimini desteklemek için proteolitik degradasyon ile yapısal destek birleştirir. Bu yöntem, hücre-hücre genişleme sınırlayıcı olmadan kişileri korumak için kültürü hücre agrega uygulanan olabilir.

Proteolitik Degradable 3 Boyutlu Sistem Yumurtalık Folikül Encapsulation ve Kültür Bir Yöntem

Over folikülü, seks hormonları salgılayan ve oosit olgunlaşmasını destekleyen overin fonksiyonel birimidir. In vitro folikül teknikleri ... sağlar.

Bu protokol, in vitro kültürleme amacıyla over foliküllerinin fibrin alginat iç içe geçmiş ağ yapısı içine kapsüllenmesine yönelik yeni bir yöntemi açıklamaktadır. Sekonder folikül, oosit gelişimini destekleyen birkaç somatik hücre katmanıyla çevrili, merkezle yerleşimli oositlerden oluşur; folikülün üç boyutlu bir ortamda kapsüllenmesi ve kültürü, çoklu hücresel bölmeler arasındaki iletişimi desteklerken ve folikülün bu küresel yapısını korurken folikül genişlemesine olanak tanır. Bu protokolün ilk adımında, damla yöntemi için 16 günlük fare overlerinden sekonder folikülleri izole edin.Folikülleri durulayın ve bir enkapsülasyon solüsyonuna aktarın. Her bir folikülü fibrinojen aljinat solüsyonu ile aspire ederek trombin kalsiyum solüsyonuna pipetleyin ve paraform yöntemi için boncukların çapraz bağlanmasına izin verin. Münferit folikülleri, paraform kaplı bir cam lam üzerindeki fibrinojen aljinat solüsyonu damlacıklarına aktarın ve F-A-I-P-N çapraz bağlanmasını başlatmak için trombin solüsyonu ekleyin.Ardından, kapsüllenmiş folikülleri bir büyüme ortamına aktarın ve FA IPN içindeki kapsüllenmiş folikülü görüntüleyin. Bu sistem, olgunlaşmamış foliküllerin yumurta üretmek üzere büyümesini ve gelişimini desteklemek için yapısal desteği biyolojik yanıtla birleştirdiğinden, genişlemeyi sınırlamadan hücre-hücre temaslarını korumak amacıyla hücre agregatı kültürlerinde uygulanabilir. Merhaba, adım Lonnie Shea ve üç kurumla yaptığımız bir iş birliği aracılığıyla, over foliküllerinin in vitro olgunlaştırılması için bir kültür sistemi geliştirdik.Ve bu kültür çalışması, biyomühendislik ile üreme biyolojisi arasındaki gerçek bir iş birliğini yansıtmaktadır. Bugün, bu kültür sistemini fiilen geliştiren kişiler yöntemleri size sunacaklar. İlk olarak, biyomalzeme sistemini geliştiren biyomühendislik alanında doktora sonrası araştırmacı Ariel Checkoffle beraberiz.Sıradaki kişi, yumurtalık dokusunun işleme prosedürlerini geliştiren, Kadın Hastalıkları ve Doğum Bölümü'nde reprodüktif biyolog olarak çalışan Minsu'dur. Birlikte size, yumurtalık dokusunun kapsüllenmesi ve kültürü için kullanılan yöntemleri sunacaklar. Açıklanan bu tekniğin, düz plastik yüzey üzerindeki standart kültür gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, fibrin alginat sisteminin folikül için üç boyutlu mimariyi desteklemesi ve aynı zamanda hızla genişleyen folikül için mekanik olarak dinamik bir ortam sunmasıdır.Mevcut yöntemdeki dinamik mekanik mikroçevre, bu teknoloji fare modelinden potansiyel klinik uygulamaya aktarıldığında ek avantajlar sağlar; çünkü insan foliküllerinin, optimal sonuçlar için olgun ve döllebilir yumurtalar üretebilmesi amacıyla çok daha kapsamlı bir büyümeye ihtiyacı vardır. Tüm diseksiyonları, pH kontrolü için L 15 tabanlı besiyerinde, sıcaklık kontrolü için 37 °C'ye ısıtılmış platformlarda ve bakteriyel kontaminasyonu minimize etmek için temiz bir çalışma alanında (clean bench) gerçekleştirin. Taze disekte edilen yumurtalıkları, %0,1 kollagenase ve %0,1 DNase içeren 1-2 mL bakım besiyerinin bulunduğu yeni bir 35 mm'lik Petri kabına aktarın ve bir karbondioksit inkübatöründe 15 dakika boyunca inkübe edin.Kollajenazı uzaklaştırmak için örnekleri DM ile yıkayın ve ardından folikülleri yumurtalıktan izole etmek amacıyla taze DM içeren 35 milimetrelik bir Petri kabına aktarın. İnsülin şırıngalarına takılmış 28-30 gauge iğneler kullanarak folikülleri yumurtalıktan nazikçe ayırın. Folikül bütünlüğüne zarar vermeden mümkün olduğunca fazla stroma hücresini uzaklaştırın.Her ovaryumdan çapları 130 ila 150 mikron arasında olan 20 ila 40 adet sekonder folikülü diseke edin. Bu foliküller genellikle iki ila üç katman granulozis hücresine sahiptir. Şimdi bir IVF kabının orta kuyucuğuna bir mililitre mm ve dış halkasına üç mililitre mm ekleyin.Bozulmamış folikülleri pipet yardımıyla IVF tabağının dış halkasına aktarın. Bu IVF tabağını 37 °C ve %5 karbon dioksit içeren inkübatörde tutun. Tüm foliküller toplandıktan sonra.Numuneleri beş ila sekiz kat büyütmeli bir diseksiyon mikroskobu altında inceleyin; iki ila üç granüloza hücre tabakası içeren, oosit ile granüloza hücreleri arasında ayrılma görülmeyen ve oositleri sağlam ve yuvarlak olan, 130 ila 150 mikron boyutunda sağlıklı morfolojiye sahip folikülleri seçin. Sağlıklı folikülleri, enkapsülasyon için başka bir IVF kabının merkezine aktarın. Folikül enkapsülasyonunun damla yöntemi için, bir IVF kabının orta kuyucuğuna mililitre başına 50 uluslararası ünite trombin çözeltisinden bir mililitre ekleyin; fibrinojen stok çözeltisini çözdürün ve buz üzerinde tutun.Enkapsülasyondan hemen önce fibrinojeni oda sıcaklığına getirin. Kullanımdan hemen önce, 1x PBS %0,5 aljinat ve 50 mg/mL fibrinojeni karıştırarak fibrinojen aljinat solüsyonunu hazırlayın.Fibrinojeni 1,7 mililitrelik steril bir mikro santrifüj tüpü içerisinde ikiye bir oranında ekleyin. Buharlaşmayı azaltmak için hafif bulanık çözeltiyi nazikçe vorteksleyin ve santrifüjleyin. Diseksiyon mikroskobundaki ısıtma tablasını kapatın ve bir IVF tabağının dış halkasının köşesine yerleştirin.Kapsülleme için 90 µL fibrinojen aljinat çözeltisi ve yıkama adımı için 10 µL'lik ikinci bir damla hazırlayın. 10 ila 15 folikülü, minimum miktarda kültür medyumu ile birlikte 10 µL'lik damlaya aktarın, ardından bunları minimum miktarda çözelti ile hızlıca karıştırın; tüm folikülleri 90 µL'lik damlaya aktarıp karıştırın. 10 µL'lik bir uç kullanarak, 5 µL fibrinojen aljinat çözeltisi içerisinde tek bir folikülü aspire edin ve fibrinojen aljinat çözeltisini folikülle birlikte IVF tabağının ortasındaki trombin çözeltisine bırakın. Tüm foliküller kapsüllenene kadar bu adımı tekrarlamaya devam edin.Jelin trombin kalsiyum çözeltisinde çapraz bağlanması için boncukları beş ila yedi dakika bekletin. Fibrin oluştukça boncuklar koyulaşacaktır. Boncukları, önce daha koyu olanlardan başlayarak bakım ortamına aktarın.Önce 37 °C'de 15 ila 30 dakika boyunca inkübe edin ve kalan trombini yıkayarak uzaklaştırın. Son olarak, boncukları bir kültür plağına aktarın ve görüntüleyin. %0,5 aljinat ve 50 mg/mL karıştırarak fibrinojen aljinat çözeltisini hemen hazırlayın.Bire bir oranındaki Fibrinogen'i 1,7 mL'lik steril bir mikro santrifüj tüpüne alın; fibrinogen alginat karışımından 7,5 µL'lik damlaları parfüm kaplı cama damlatın. Üç mm'lik bir ara parçalı lam kullanarak, minimal miktarda besiyeri ile her bir damlanın içine bir folikül aktarın.Jel neredeyse anında oluştuğu için, her bir damlaya foliküle dokunmadan veya karıştırmadan 7,5 µL trombin solüsyonu ekleyin. Jellerin üzerini ikinci parafilm kaplı camla örtün. Kaydırarak bir 100 mm'lik petride ters şekilde beş dakika boyunca inkübatöre yerleştirin.Yapışkan boncukları, gerekirse penset kullanarak bakım medyasına ve ardından her iki günde bir bir kültür kuyusuna aktarın. Kültürlenen folikülleri bir ışık mikroskobu kullanarak görüntüleyin ve folikül çapını Image J ile ölçün. Ayrıca, her iki günde bir büyüme medyasının yarısını taze Dengelenmiş büyüme medyası ile değiştirin. Sekiz günlük kültürleme süresinin ardından, fibrin bileşenlerinin tamamen degrade olması nedeniyle hidrojel şeffaf görünmelidir ve foliküller 400 mikronun üzerindeki nihai boyutlarına ulaşabilir. Büyüme medyasını uzaklaştırın ve mililitre başına 10 uluslararası ünite içeren 100 mikrolitre ekleyin.Aljinatı parçalamak için alginat liyaz içeren alpha mem ekleyin. Plakayı 25 ila 30 dakika boyunca bir inkübatörde bekletin. Ardından folikülleri, kısmen çözünmüş boncukların arasından küt uçlu bir pipet ucuyla alın.Alginat bağlarını temizlemek için folikülleri, diseksiyon medyumu içeren bir IVF tabağının dış halkasına aktarın ve ardından iç halkaya transfer edin. Şimdi, antral folikülleri, HCG ve EGF içeren olgunlaştırma medyumu ile IVF tabağının önce dış sonra da iç halkasına aktarın ve 15 ila 16 saat boyunca karbondioksit inkübatöründe inkübe edin. Kumulus hücrelerini uzaklaştırmak için kültürleri kumulus hücre genişlemesi açısından inceleyin.Yüksek IDE solüsyonunu 0.1 mg/mL final konsantrasyonuna ulaşacak şekilde ekleyin ve %5 CO2 içeren 37 °C'de iki ila üç dakika inkübe edin. Oositleri kumulus hücrelerinden ayırmak için ağız pipeti kullanın ve son olarak mikroskop altında olgunlaşma evrelerini belirleyin.Alginat; gözenek boyutu, kontrol edilebilir sertliği ve biyolojik inertliği gibi biyokimyasal özellikleri ve nazik etkileşimi nedeniyle in vitro folikül kültürü için uygun olan doğal bir biyomalzemedir. Alginat içine kapsüllenen küçük foliküller, kültürün başlangıcında düşük sıkıştırma kuvvetine maruz kalır. Ancak, folikül genişledikçe boncuk içindeki yer değiştiren hacim artar ve bu durum, folikül genişlemesinin ters yönünde daha büyük bir sıkıştırma kuvvetiyle sonuçlanır.Çapraz bağlanma öncesinde, bireysel polimer zincirleri fibrillin alginat çözeltisi içinde tamamen birbirine karışmış haldedir. F-A-I-P-N'nin her iki bileşeni, trombin ve kalsiyum karışımına maruz kaldıkları anda çapraz bağlanmaya başlar; kültür süresince foliküller, F-A-I-P-N'nin fibrin bileşenini degrade eder ve bu durum folikül etrafındaki belirgin bir halka ile gösterilir. Folikülün 3D mimarisi, geri kalan alginat tarafından desteklenir.Bu görüntüler, F-A-I-P-N'de 0, 4, 6 ve 8. günlerdeki sekonder folikül gelişimini ve sonuçtaki M iki evre X'i polar cisimle birlikte göstermektedir. Aprotinin, fibrin yıkımını yavaşlatmak için kültür ortamına eklenebilen bir proteaz inhibitörüdür. İlk dört gün boyunca kültür ortamına mililitre başına 0.01 TIU aprotinin eklendiğinde, foliküller matrisi yıkamazlar. Aprotinin uzaklaştırıldıktan sonra foliküller büyümeye devam eder ve antral evreye ulaşırlar.Ancak, başlangıçta daha yüksek konsantrasyonlu aprotinin içinde kültüre edilen foliküllerde büyüme inhibe olmuştur. Bugün, folikül enkapsülasyonunu ve üç boyutlu bir fibrin alginat ağı içinde in vitro kültürünü çeşitlendirmek için yeni bir teknik gösterdik. Bu sistem, kültür boyunca folikül yapısını sağlam tutmakla kalmayıp, aynı zamanda in vitro ortamda başarılı folikül gelişimini destekleyerek M iki aşama O sahasıyla sonuçlanmaktadır.Bu teknoloji, over folikülünün nasıl çalıştığını keşfetmek açısından önemlidir ve daha genel anlamda genç kanser hastalarına fertilite seçenekleri sunma potansiyeline sahiptir. Bu kültür sistemi, hücre kümelerinin kültürü veya hücrelerin yapılar oluşturacak şekilde organize oldukları kültürler için kullanılabilir. Bu 3D kültür sistemleri, doku büyümesini moleküler düzeyde incelemek için değerli araçlar sağlayacaktır.

a-method-for-ovarian-follicle-encapsulation-culture-proteolytically

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Üç boyutlu bağlamında normal hücreleri Kültür, hücresel dönüşüm ve tümörogenez için gerekli erken olayları incelemek için alternatif bir yöntem temsil eder. Bu yöntem, normal yumurtalık ve yumurtalık kanseri oluşumu erken olayları incelemek için oviductal hücreleri büyümek için kullanılır.

Yumurtalıklar ve fallop borularında Üç Boyutlu Organ Kültür Aljinatta Hidrojeller

Bu videoda, bir 3D kültür oluşturmak için domuz kümülüsü-oosit komplekslerinin (COC'ler) fibrin-aljinat boncuklarda kapsüllenmesi için protokoller açıklanmaktadır. Bu in-vitro olgunlaşma sistemi, normal hücreden hücreye iletişimi sürdürerek oosit olgunlaşmasını sağlar ve canlılığı korur.

Domuz COC'lerinin 3D Kültürü: Fibrin-aljinat Polimer Hidrojel Boncuklarda Kümülüs Oosit Komplekslerini Kapsüllemek İçin Bir Prosedür

Bu videoda, hidrofobik mikrobiyoreaktörlerde domuz oositlerinin kapsüllenmesi için bir protokol açıklıyoruz.

Sıvı Mermer Mikrobiyoreaktör Sistemi: Domuz Oositlerinin Kapsüllenmesi için Bir 3D Kültür Protokolü

Bu protokol yenidoğan farelerde ve prepubertal farelerden alınan bireysel yumurtalık folikülleri gelen yumurtalıklarını kullanarak, fare yumurtalık dokusunun primer kültür / ko-kültür açıklar. kültür teknikleri yumurtalık üzerindeki dışsal ajanların etkisi soruşturma olanak veren yüksek fizyolojik bir şekilde gelişimini desteklemek ve yumurtalık foliküllerinin arasındaki etkileşimlerin.

Kültür ve Co-Kültür Mouse Yumurtalıklar ve Yumurtalık Foliküller

Burada 3D kültür koşullarında domuz oositkapsülasyonu için iki protokol sunulmuştur. İlk olarak, kümülüs-oosit kompleksleri (COCs) fibrin-aljinat boncuklar kapsüllenir. İkincisi, florlu etilen propilen toz parçacıkları (mikrobiyoreaktörler) ile çevrilidir. Her iki sistem de 3B organizasyonlarını sürdürmek için en uygun koşulları sağlar.

Proteolytically Bozulmuş Aljinat Hidrojeller ve Porcine Oosit Kapsülleme için Hidrofobik Mikrobiyoreaktörler

Bu protokol, fare yumurtalığından preantral folikülleri kapsüllemek ve kültürlemek için tiramin bağlantılı bir hyaluronan hidrojel kullanan yeni bir üç boyutlu (3 D) kültür modelini açıklar. Ayrıca vitrifikasyon yoluyla yumurtalık folikülü kriyoprezervasyonuna yönelik iki yaklaşımı da detaylandırıyoruz.

Üç Boyutlu Folikül Kültürü için Yeni Bir Hyaluronan Hidrojelin Uygulanması ve Fare Yumurtalık Folikülü Kriyoprezervasyonu için Metodoloji

İn vitro gametogenezi tamamlayan yeni bir iskelesiz agaroz kalıbında yumurtalık foliküllerini kültürleme yöntemlerini açıklıyoruz.

İskelesiz Fare Yumurtalık Folikül Kültürü için Özelleştirilebilir Agaroz Kalıplarının Üretimi ve Kullanımı

Fare yumurtalık somatik hücrelerinin stroma ile zenginleştirilmiş bir yumurtalık fraksiyonundan izole edilmesi ve iskelesiz bir yaklaşımla fare yumurtalık somatik organoidleri üretme yöntemlerini açıklıyoruz.

Yumurtalık Mikro Ortamını İnceltmek: Fare Yumurtalık Somatik Hücrelerinin İzolasyon, 2D Kültür ve Organoid Kültürü Yöntemleri

Bir yöntem olup kollajen tip I ve primer insan fibroblast oluşan bir 3-boyutlu matrisi hazırlanması için tarif edilmektedir. Bu doku stroma temel özelliklerini taklit eder ve mikroskopi birçok formları için müsait olduğundan bu organotipik jel invaziv hücre göçü değerlendirmek için yararlı bir substrat olarak hizmet vermektedir.

Organotipik Kollajen Ben Assay: 3-Boyutlu Bağlamında Hücre Davranışı değerlendirin A Dövülebilir Platformu

Uzun zincirli altın Alkan tiyoller oluşan Kendinden monte mono tabakaları (SAMs), protein desen ve hücre hapsi oluşumu için iyi tanımlanmış substratları sağlar. Microcontact baskı ile dolgu takip polidimetilsiloksan (PDMS) damga kullanarak hexadecanethiol glikol-sonlandırılır Alkan tiyol monomer damgalı hexadecanethiol bölgede sadece protein ve hücreler adsorbe bir desen üretir.

Protein ve hücre Etrafının İki Boyutlu Desenli Yüzeyler Oluşturma

Öğrenin, fibrin-aljinat ağında yumurtalık foliküllerini kapsülleme ve in vitro kültür yöntemini. Bu teknik, oosit gelişimini desteklerken hücre-hücre etkileşimlerini korur ve üreme biyolojisi araştırmalarına katkı sağlar.

Proteolitik Degradable 3 Boyutlu Sistem Yumurtalık Folikül Encapsulation ve Kültür Bir Yöntem

Daha fazla video keşfet