Name: Tek Drosophila Ommatidium Diseksiyon ve Görüntüleme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-19T12:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 16 s
Description: Öğrenin, tek Drosophila ommatidium diseksiyonu ve görüntüleme yöntemiyle nörodejenerasyon modellerinde hücre içi olayları incelemeyi. Bu teknik, primer nöronal hücre kültürleri oluşturarak ilaç tedavisi ve ileri görüntüleme olanakları sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz Bernard Charroux tartışmalar için teşekkür ederiz. Bu çalışma KCL Biyomedikal Okulu tarafından finanse edildi.

1. Drosophila retina diseksiyonu <ol><li> Bir iyi bir 3-Well Cam Slayt doldurun fosfat tamponlu salin (PBS 1X) ve sonra CO 2 sinekler uyutmak. Hem erkekler hem de bu deney için kullanılabilir. </li><li> Sinekler anestezi sonra, forseps kullanarak tek bir sinek pick up ve PBS küçük bir çanak içine bırakın. </li><li> Diseksiyon kapsamında, forseps ile burnumun çimdik, ve daha sonra ikinci bir forseps kullanarak boyun kesilmesinin vücut baş ayırmak. </li><li> Sol / sağ orta hat beyin ortaya çıkarmak için microscissors sinek kafası boyunca yarıya, burnumun Holding sinek kafası. </li><li> Retina pick up ve iyi bir Schneider orta dolu 3-Well Cam Slide ikinci transfer için bir kesme pipet kullanın. </li><li> Birincisi, daha sonra uzakta kabuğu kafa manikür ve forseps ile beyin kaldırmak. Lamina ve kornea arasında sıkışmış retina tutun. </li><li> Sonra, retina taze Schnieder orta cam slayt doğrudan yerleştirilen bir damla (50 ul) üzerine aktarın. </li></ol> 2. Ommatidia diseksiyonu <ol><li> Diseksiyon (anında görüntü veya kültür olsun) nihai amacı ve floresan mikroskop (doğrudan ya da ters) optik olarak, bu adımı bir mikroskop lamı üzerine veya 24 plaka ya alabilir. Bu diseksiyon nihai amacı için, ommatidia cam slayt üzerine doğrudan disseke olacaktır. </li><li> Ya forseps ile retinanın en dorsal veya ventral sonuna kavrayın. Microscissors kullanarak, gözün ortasında ommatidia / dorsal ventral orta hat boyunca ortaya çıkarmak için yarım retina kesti. </li><li> Gibi retina, kornea aşağı bakacak ve lamina ile karşı karşıya olduğunu kavramak için devam edin. Ince bir tungsten iğne kullanılması, lamina ve kornea ommatidia ayırın. </li><li> Tek ommatidia ve ommatidia gruplar, iyi veya slayt alt toplayacaktır. Devam etmeden önce toplanan olabilecek herhangi bir büyük enkaz çıkarın. </li></ol> 3. Tedavi, boyama ve görüntüleme <ol><li> Otofaji analiz etmek, 1:1000 Schneider açılan Lysotracker (sonra ilk seyreltik Schneider 01:10 ve slayt açılan 0.5 ul), mix sulandırmak ve 10 saniye bekleyin. </li><li> Ommatidia geride bırakmak için dikkatli olmak, slayt aşırı sıvı çıkarın. Bu ince bir jel yükleme ucu ile yapılır. </li><li> Ommatidia kapağı için Vectashield bir damla, bir oje ile lamel ve mühür uygulanır. </li></ol> 4. Temsilcisi Sonuçlar: Protokol iyi yürütme lamina parçaları ile birlikte tutulur ama güzel kornea tarafta ayrılmış, tek ommatidia ve ommatidia küçük gruplar bir dizi bırakmalısınız. Autophagosomes, lizozomlar ve autophagolysosomes (Şekil 3) gösteren, GFP ve Lysotracker: Bu Atg8 görselleştirmek için bu örnekte olduğu gibi görüntülü olabilir. Bu yöntem, canlı görüntüleme için kullanılabilir, ancak bu durumda Schneider orta otofloresans düşük yoğunluklu floresan sinyalleri ayırt etmek zor olacağı not edilmelidir. Ek bir sorun fotoreseptörlerin bağlı kalır pigment granülleri yoğun floresan, özellikle kırmızı kanal olmasıdır. Bir aydınlık resim gerçek organelleri onları ayırmak için gerekli olabilir. <img src="/files/ftp_upload/2882/2882fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1 sinek retina diseksiyonu işlem akış şeması, tek ommatidia veya küçük gruplar ommatidia elde etmek için . <img src="/files/ftp_upload/2882/2882fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2 Burada basit bir protokol olası varyasyonları sinek genetik içerir ve 24 saat diseksiyonu ilaç yönetimi downstream diseksiyon ve boyama veya kültür yukarı yaşlanma olduğunu açıklar. <img src="/files/ftp_upload/2882/2882fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3 Konfokal tarama aw disseke tek ommatidium autophagosomes ve lizozomlar; GMR-Gal4, UAS-Atro75QN; UAS-GFP:: Atg8 / + sinek poliglutamin Atrophin mutant ve yaşlı 12 gün ifade, 29 ° C Aydınlık paneli (sağ üstte) ommatidium neredeyse sağlam bir yapı gösterir ve çerçeve taranan bölgeyi gösterir. Iki organellerin füzyon sonucu kırmızı lekeler Lizozomlar, yeşil autophagosomes, oto-lizozomlar, sarı görünür. Ok autophagosomes ve lizozomlar arasında devam eden iki füzyon olayları göstermektedir.

<ol><li>Marsh, J. L., Thompson, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+in+the+study+of+neurodegenerative+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Drosophila in the study of neurodegenerative disease.</a> Neuron. 52, 169-178 (2006).</li>
<li>Mizushima, N., Levine, B., Cuervo, A. M., Klionsky, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy+fights+disease+through+cellular+self-digestion%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Autophagy fights disease through cellular self-digestion.</a> Nature. 451, 1069-1075 (2008).</li>
<li>Nisoli, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurodegeneration+by+polyglutamine+Atrophin+is+not+rescued+by+induction+of+autophagy%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+Differ%22%5BJournal%5D)">Neurodegeneration by polyglutamine Atrophin is not rescued by induction of autophagy.</a> Cell Death Differ. 17, 1577-1587 (2010).</li>
<li>Charroux, B., Fanto, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fine+line+between+waste+disposal+and+recycling%3A+DRPLA+fly+models+illustrate+the+importance+of+completing+the+autophagy+cycle+for+rescuing+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">The fine line between waste disposal and recycling: DRPLA fly models illustrate the importance of completing the autophagy cycle for rescuing neurodegeneration.</a> Autophagy. 6, 667-669 (2010).</li>
<li>Hardie, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Voltage-sensitive+potassium+channels+in+Drosophila+photoreceptors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Voltage-sensitive potassium channels in Drosophila photoreceptors.</a> J Neurosci. 11, 3079-3095 (1991).</li>
<li>Lee, T., Luo, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mosaic+analysis+with+a+repressible+cell+marker+%28MARCM%29+for+Drosophila+neural+development%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+neurosciences%22%5BJournal%5D)">Mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) for Drosophila neural development.</a> Trends in neurosciences. 24, 251-254 (2001).</li>
<li>Xu, T., Rubin, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+genetic+mosaics+in+developing+and+adult+Drosophila+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Analysis of genetic mosaics in developing and adult Drosophila tissues.</a> Development. 117, 1223-1237 (1993).</li>
<li>Gambis, A., Dourlen, P., Steller, H., Mollereau, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-color+in+vivo+imaging+of+photoreceptor+apoptosis+and+development+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Two-color in vivo imaging of photoreceptor apoptosis and development in Drosophila.</a> Dev Biol. 351, 128-1234 (2011).</li>
<li>Napoletano, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyglutamine+Atrophin+provokes+neurodegeneration+in+Drosophila+by+repressing+fat%5BTitle%5D)+AND+%22The+EMBO+journal%22%5BJournal%5D)">Polyglutamine Atrophin provokes neurodegeneration in Drosophila by repressing fat.</a> The EMBO journal. 30, 945-958 (2011).</li>
<li>Ravikumar, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+mTOR+induces+autophagy+and+reduces+toxicity+of+polyglutamine+expansions+in+fly+and+mouse+models+of+Huntington+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Inhibition of mTOR induces autophagy and reduces toxicity of polyglutamine expansions in fly and mouse models of Huntington disease.</a> Nature. 36, 585-595 (2004).</li>
<li>Zou, S., Meadows, S., Sharp, L., Jan, L. Y., Jan, Y. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+study+of+aging+and+oxidative+stress+response+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Genome-wide study of aging and oxidative stress response in Drosophila melanogaster.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 13726-13731 (2000).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Burada sunulan tek ommatidium diseksiyonu Drosophila göz modellenen nörodejenerasyon gibi süreçleri hakkında derin hücre biyolojik bilgi toplama sağlar. Fotoreseptör nöronlar diğer nöronlarla daha kolay erişilebilir ve onlar sitoplazma, in vivo olarak nörodejenerasyon ölçmek için birçok model yetkin kullanılan çok aynı hücrelerde, özellikle büyük ve böylece vezikül dinamiklerini incelemek için uygun . Diseksiyon kritik yönü ağırlıklı olarak Sabitlenmemiş doku kadar kuru hava veya maruz asla bunu gerçek...

<table border="1"><tbody><tr><th> Reaktifin Adı </th><th> Şirket </th><th> Katalog numarası </th><th> Yorumlar (isteğe bağlı) </th></tr><tr><td> Taşınabilir CO2 Dispenseri </td><td> Flystuff </td><td> 59-150 </td><td> Bilgiler mevcut </td></tr><tr><td> DUMONT Cımbız No 5 </td><td> Bilimsel AGAR </td><td> T5034 </td><td></td></tr><tr><td> 3-Well Cam Slayt </td><td> EMS </td><td> 71561-01 </td><td></td></tr><tr><td> Mikro makas </td><td> VWR </td><td> HAMMHSB516-09 </td><td></td></tr><tr><td> Schneider Orta </td><td> VWR </td><td> 733-1663 </td><td></td></tr><tr><td> LysoTracker Kırmızı DND-99 </td><td> Invitrogen </td><td> L7528 </td><td></td></tr><tr><td> SuperFrost Slaytlar </td><td> VWR </td><td> 631-0108 </td><td></td></tr><tr><td> DAPI ile Vectashield </td><td> Vektör Labs </td><td> H-1200 </td><td></td></tr><tr><td> Lameller </td><td> VWR </td><td> 631-1336 </td><td></td></tr></tbody></table>

tek drosophila ommatidium diseksiyon ve görüntüleme

Single Drosophila Ommatidium Dissection and Imaging

Meyve sineği Drosophila melanogaster sinirbilim araştırması için çok değerli katkılarda bulunmuştur ve nörodejeneratif hastalıklar için çünkü güçlü genetik 1 bir model olarak yaygın olarak kullanılmaya başlanmıştır. Özellikle sinek göz Drosophila sinir sisteminin en erişilebilir ve yaşam vazgeçilebilir bir parçası olmak, nörodejenerasyon araştırma için tercih organı olmuştur . Ancak sağlam gözleri en önemli uyarı nörodejenerasyon anlamak için her şeyden otofaji dinamikleri 2 hücre içi olaylar gibi görüntüleme, çünkü pigment yoğun otofloresans zorluk. Biz son zamanlarda Dentatorubro-Pallidoluysian Atrofi bir sinek modeli (DRPLA) 3, 4 otofajik işlev bozukluklarının anlaşılması için gerekli olan tek ommatidia 3 diseksiyon ve kültür kullandık . Şimdi nörodejenerasyon için sinek modelleri olasılığını önemli ölçüde genişletmek için muhtemel elektrofizyolojik çalışmalar 5, uyarlanmış bu tekniği (Şekil 1), kapsamlı bir açıklama raporu . Bu yöntem, görüntü, canlı hücre içi olaylar ve fotoreseptör hücrelerinin (Şekil 2) üzerine etkili ilaç yönetimini izlemek için adapte edilebilir. , Mozaik teknikleri 6-8 ile birlikte kullanılması durumunda, hücrelerin genetik olarak farklı tepkiler (Şekil 2) paralel olarak test edilebilir .

Yetişkin kullanımı sınırlayıcı faktör<em&gt; Drosophila</em&gt; Göz nörodejenerasyon ve hücre biyolojisi çalışmada, hücre içi süreçlerin zor görüntüleme. Biz, ilaç tedavisi ve ileri görüntüleme konusu olabilir iyi niyetli bir primer nöronal hücre kültürü, oluşturmak için tek ommatidia diseksiyonu açıklar.

Tek Drosophila Ommatidium Diseksiyon ve Görüntüleme

Meyve sineği Drosophila melanogaster, nörobilim araştırmalarına paha biçilmez katkılarda bulunmuştur ve nörodejeneratif süreçler için yaygın bir model olarak kullanılmıştır...

Bu prosedürün genel amacı, nörodejenerasyon modellerindeki hücre içi olayları incelemek için tekil drosophila veya matia'yı diseke etmek ve görüntülemektir. Bu işlem, öncelikle sinek başının gövdenin geri kalanından ayrılması ve ardından kesilerek açılmasıyla gerçekleştirilir.Ardından, beyin ve diğer dokular kafanın içinden çıkarılır. Daha sonra kütikül uzaklaştırılır ve her bir retina ikiye bölünür. Prosedürün son adımı, tungsten bir iğne ile O'yu oyup çıkarmak ve bunları bir lama yerleştirmektir.Sonuç olarak, floresan konfokal mikroskopi aracılığıyla sitoplazmik otofajik organelleri gösteren bulgular elde edilebilir. Bu tekniğin temel avantajı, şimdiye kadar bu alanda yalnızca genetik içgörüler sunabilen nörodejenerasyon drosophila modellerinde yüksek çözünürlüklü hücre biyolojik analizine olanak tanıması ve prosedürün değişkenlik göstereceğini kanıtlamasıdır. Laboratuvarımdan bir lisansüstü öğrenci, merkezdeki bir histoloji ve mikroskopi teknisyeni olan Daniel Mackay'in yardımıyla çalışmayı gerçekleştirmiştir.Başlamak için, üç kuyucuklu bir cam lamın bir kuyucuğunu fosfat tamponlu salin ile doldurun, ardından sinekleri karbondioksit ile anesteziye alın. Sinekler anesteziye alındıktan sonra, bir pens yardımıyla tek bir sineği seçin ve PBS içeren küçük kabın içine bırakın. Bir diseksiyon mikroskobu altında, probosisi pensle sıkıştırın ve ardından boyun kısmını keserek kafayı gövdeden ayırın.Sinek başını probosis kısmından tutan ikinci bir pens kullanarak, başı mikro makasla lateral rostral orta hat boyunca ikiye bölün. Beyni açığa çıkarmak için, kesilmiş bir pipet ucuyla başı kaldırıp retinayı tutturun ve Schneider medium ile dolu başka bir kuyuya aktarın. Baş kütikülünün büyük kısmını pensle soyun ve ardından beyni çıkarın.Retinayı lamina ve kornea arasında sıkıştırılmış halde tutun. Ardından, retinayı 50 µL taze Schneider ortamı damlasına aktarın. Doğrudan bir lam üzerine yerleştirilmiş olan retinanın en dorsal veya ventral ucunu, mikro makas kullanarak forsepsle kavrayın.Gözün ortasındaki AMIA'yı açığa çıkarmak için retinayı dorsal ventral orta hattı boyunca ikiye kesin. Kornea aşağıya, lamina ise yukarıya bakacak şekilde retinayı tutmaya devam edin. İnce bir tungsten iğne kullanarak, önce oia'yı laminadan, ardından korneadan ayırın.Tekil oia'lar ve OIA grupları kuyucuğun veya lamın tabanında toplanacaktır. Devam etmeden önce toplanmış olabilecek daha büyük kalıntıları temizleyin. Otofajiyi analiz etmek için, LysoTracker'ı bir damla Schneider ortamında 1:1000 oranında seyreltin, karıştırın ve 10 saniye bekleyin.Slayttaki fazla sıvıyı uzaklaştırın. AMIA'nın orada kaldığından emin olun. AMIA'yı kaplamak için bir damla vector shield ekleyin.Konfokal mikroskopi kullanarak bir kapatma camı yerleştirin ve oje ile sızdırmaz hale getirin; hem GFP-ATG8 ile işaretlenmiş otofagozomlar hem de LysoTracker ile işaretlenmiş lizozomlar, atropin mutant formu eksprese eden bir sinekten diseke edilmiş tek bir tediumda görselleştirilebilir. Sağ üstteki brightfield paneli, tediumun neredeyse bozulmamış yapısını göstermekte olup çerçeve taranan alanı belirtmektedir. Burada kırmızı lizozomları, yeşil ise otofagozomu işaretlemektedir.İki organelin kaynaşması sonucu oluşan oto-lizozomlar sarı renkli görünür. Bu prosedürlerin ardından, farklı genetik yapılara sahip nöronal hücrelerdeki otofaji belirteçleri üzerindeki etkili bileşikler gibi farklı soruları yanıtlamak için materyal kültürü ve ilaç uygulaması gibi diğer yöntemler gerçekleştirilebilir.Drosophila genetiğinin avantajlarını, hücre kültüründe mümkün olan bazı gelişmiş hücre biyolojik analizlerle birleştirmek.

single-drosophila-ommatidium-dissection-and-imaging

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Böcekler, oenocytes cuticular hidrokarbon bileşikleri üretir. Bu bileşikler kuruma karşı korumak ve kimyasal iletişimi kolaylaştırmak. Burada yetişkin oenocytes izole etmek için kullanılan bir diseksiyon tekniği...

Yetişkin gelen Oenocytes diseksiyonu Drosophila melanogaster</em

Yetişkin hazırlamak için standart bir...

Yetişkin hazırlanması Drosophila Gözler İnce Kesit ve Mikroskobik Analizi

Bu protokolde açıklanan dik görüntüleme yöntemi, gelişmekte olan bir Drosophila melanogaster yumurtasının kutuplarının ayrıntılı olarak görüntülenmesine olanak sağlar.  Bu uçtan bakış, foliküler epitelde çoklu hücre tiplerinin düzenlemelerine ve morfolojilerine yeni bir bakış açısı sağlar.

Dik Görüntüleme<em&gt; Drosophila</em&gt; Yumurta Odaları

Drosophila yumurtalık kök hücre niş geliştirme eğitim için mükemmel model bir sistemdir. Larva ve yetişkin yumurtalık dissekan için yöntemleri yayımlanmış olsa, Pupa yumurtalık diseksiyonlarının ayrıntılı olarak yayınlanmamıştır farklı teknikler gerektirir. Burada diseksiyon, boyama ve pupa yumurtalık montaj için bir protokol anahat.

Diseksiyon ve Drosophila pupa yumurtalık boyama

Bu protokol, meyve sineği metamorfoza uğrarken Drosophila abdominal epitelde hücre oryantasyonu ve doku büyüme dinamiklerinin görüntülenmesi ve analizi için tasarlanmıştır. Burada açıklanan metodoloji Drosophila veya diğer model organizmalarda farklı gelişimsel aşamaların, dokuların ve hücre altı yapıların incelenmesine uygulanabilir.

Pupal Evrelerinde Gelişen Drosophila Epitelinde Doku Oryantasyonu ve Büyüme Dinamiğinin Görüntülenmesi ve Analizi

Mikro bilgisayarlı tomografi kullanılarak gelişimin herhangi bir aşamasında bozulmamış Drosophila melanogaster'ın görselleştirilmesine izin veren bir protokol sunulmaktadır.

Mikro bilgisayarlı Tomografi kullanılarak Drosophila melanogaster'ın Tüm Hayvan Görüntülemesi

Burada, geç embriyonik Drosophila erkek gonadını canlı olarak görüntülemek için gerekli bir diseksiyon protokolü sunuyoruz. Bu protokol, normal koşullar altında veya transgenik veya farmakolojik manipülasyondan sonra dinamik hücresel süreçlerin gözlemlenmesine izin verecektir.

Geç Embriyonik Drosophila Gonad'ın Diseksiyonu ve Canlı Görüntülemesi

Drosophila'da, oosit çekirdeği oogenez sırasında mikrotübül bağımlı göçe uğrar. Burada, yumurta odaları ex-vivo üzerinde canlı görüntüleme yaparak göçü takip etmek için geliştirilen bir protokolü açıklıyoruz. Prosedürümüz, iplik disk konfokal mikroskopi kullanarak çok konumlu 3D hızlandırılmış filmler elde etmek için yumurta odalarını 12 saat boyunca canlı tutar.

Drosophila Oosyte'de Nükleer Göç

Burada, Drosophila yumurtalık nişindeki germ hattı kök hücrelerinin (GSC'ler) asimetrik bölünmesinin canlı görüntülemesini gerçekleştirmek için ayrıntılı bir protokol sunuyoruz. Spektrozom proteini Par-1'in yeşil floresan proteini (GFP) füzyonunu her yerde ifade eden bir transgenik çizgi kullanıyoruz.

Kadın Drosophila melanogaster Germline Kök Hücre Nişlerinin Genişletilmiş Canlı Görüntülenmesi

Burada, desenlenme ve büyüme kusurlarını ölçmek için yetişkin Drosophila gözlerinin yüksek çözünürlüklü görüntülemesi için hızlı, düşük maliyetli bir iş akışı sunuyoruz. Nokta montajı, yüksek çözünürlüklü görüntü elde etme ve görüntü analizi ile numune hazırlama protokolümüzü açıklıyoruz.

Harici yetişkin Drosophila yapılarının miktarının belirlenmesi için hızlı ve basit bir iş akışı

Öğrenin, tek Drosophila ommatidium diseksiyonu ve görüntüleme yöntemiyle nörodejenerasyon modellerinde hücre içi olayları incelemeyi. Bu teknik, primer nöronal hücre kültürleri oluşturarak ilaç tedavisi ve ileri görüntüleme olanakları sunar.

Tek Drosophila Ommatidium Diseksiyon ve Görüntüleme

Daha fazla video keşfet