$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Nükleer RNA bağlayıcı proteinler, RBP'ler, iyi tanımlanmış, üç boyutlu yapıya sahip sıralı bölgelerden ve daha az kararlı, içsel olarak düzensiz bölgelerden, IDR'lerden oluşan çok işlevli proteinlerdir.
Bazı nörodejeneratif hastalıklarda, IDR'ye özgü mutasyonlar, RBP'lerin sitoplazmada yanlış lokalize olmasına ve anormal bir şekilde zayıf etkileşimlere girmesine, dinamik, zarsız inklüzyonlar oluşturmasına neden olur - faz ayrılması adı verilen bir fenomen. Sonunda, bu inklüzyonlar toksik, çözünmeyen agregalara olgunlaşır ve bu da nöronal disfonksiyon ve dejenerasyon ile sonuçlanır.
Optogenetik kullanarak in vivo RBP faz ayrılmasını araştırmak için, uygun bir tamponda bir floresan raportöre ve mavi ışığa duyarlı bir fotoreseptör alanına kaynaşmış IDR mutasyona uğramış bir RBP'yi eksprese eden, anestezi uygulanmış, dekoryonlu bir transgenik zebra balığı larvası ile başlayın.
Daha sonra, omurilik görüntülemesi için larvaları erimiş bir agaroz damlasına yanal olarak monte edin. Larvaları hareketsiz hale getirerek agarozun katılaşmasına izin verin. Konfokal bir mikroskop kullanarak, nöronal çekirdekler içinde lokalize olan floresan RBP'leri görselleştirmek için omurilik görüntüleri elde edin.
Şimdi, larvaları agarozdan çıkarın ve tampon içeren çok kuyulu bir plakaya aktarın. Plakayı optimize edilmiş bir mavi ışık yayan diyot paneline yerleştirin ve larvaları aydınlatın.
Mavi ışığa maruz kaldıktan sonra, mutant RBP'ler, fotoreseptör alanlarının oligomerleştiği ve kümeler oluşturduğu sitoplazmaya yanlış lokalize olur, bu da RBP'lerin IDR'lerini yakınlaştırır ve zarsız inklüzyonlara kendi kendine ilişkilenmelerini kolaylaştırır.
Aydınlatma sonrası, larvaları agarozun içine gömün ve omuriliğini görüntüleyin. Floresan RBP'ler, nöronal sitoplazma içinde dağılmış ayrı bölmeler olarak görünür.
Optogenetik TDP-43 eksprese eden zebra balığı larvalarının görüntülenmesi için, çift transgenik balığı dekoryonlayın ve mikrolitre Trikan başına 250 mikrogram içeren E3 tamponunda uyuşturun.
Daha sonra, 42 santigrat derecede mikrolitre başına 250 mikrogram etil 3-aminobenzoat metansülfonat içeren% 1% düşük erime sıcaklıktaki agarozu önceden ısıtın, ardından cam taban kabına bir damla agaroz koyun. Cam tabak üzerindeki kubbe şeklindeki agaroz damlasının çapı 8 ila 10 milimetre olmalıdır.
Daha sonra, bir Pasteur pipeti kullanarak, anestezi uygulanmış balığı cam taban tabağı üzerindeki agaroza ekleyin. Balıkla birlikte agaroza eklenen E3 tamponu miktarını en aza indirin. Daha sonra birkaç kez pipetleme yaparak karıştırın.
Agarozun katılaşması sırasında, omurilik uygun bir yatay pozisyonda olacak şekilde bir şırınga iğnesi kullanarak balığı yan tarafında tutun. Agaroz katılaştıktan sonra, kubbe şeklindeki agaroza monte edilmiş balığın üzerine birkaç damla E3 tamponu ekleyin.
20x suya daldırma objektif lensi ile donatılmış bir konfokal mikroskop kullanarak, omuriliğin seri konfokal z kesitlerini elde edin. Zaman noktaları boyunca omurga segmentlerini tanımlamak ve karşılaştırmak için referans olarak balığın ventral tarafındaki kloakı ilgili bölgelere dahil edin.
Görüntüleme tamamlanır tamamlanmaz, agarozu dikkatlice kırmak ve balığı agarozdan çıkarmak için bir şırınga iğnesi kullanın. Balığın agaroza gömülme süresini mümkün olduğunca kısa tutun, ancak agarozun 30 dakikadan daha kısa süre gömülmesi balığın canlılığını etkilemez.
6 oyuklu bir tabağın bir oyuğuna 7,5 mililitre E3 tamponu ekleyin ve görüntülenen çift transgenik balığı bu kuyuya yerleştirin. Ardından, çanağı ve LED paneli bir ara parça ile 5 milimetre aralıklı tutarak çanağı LED panelin üzerine yerleştirin ve mavi LED ışığını açın.
Bazı çift transgenik balıkları, ışıksız kontrol balıkları için alüminyum folyo ile kaplı 6 kuyulu ayrı bir tabakta tutun. İstenen aydınlatma süresinden sonra, aydınlatılan balığın omuriliğini daha önce gösterildiği gibi görüntüleyin.