JoVE Encyclopedia of Experiments
Biyolojik Teknikler
0 görüntüleme • 3:39 dk • July 8th, 2025
Miyozin - bir motor protein - filamentli bir protein olan aktin ile etkileşime giren küresel bir kafa alanına sahiptir. Bu etkileşim, miyozinin aktin filamentleri boyunca translokasyonu için gereklidir. Bu bağlanmayı in vitro olarak incelemek için, yüzeye bağlı aktin üzerinde ters çevrilmiş bir miyozin motilite testi yapın.
Başlamak için, kaplanmış yüzey içeriye bakacak ve odanın üst kısmını oluşturacak şekilde bir mikroskop lamı üzerine biyotinile polietilen glikol - PEG kaplı bir lamel yerleştirerek bir tahlil odası monte edin.
Bir glikoprotein olan avidin içeren bir çözeltiyi odadan geçirin. Avidin, aktin yapışmasını artıran yüksek afinite ile biyotine bağlanır. Daha sonra, kırmızı bir florofor ile etiketlenmiş biyotin etiketli aktin filamentlerinde akış. Biyotin ligandı avidin'e bağlanarak lamel yüzeyindeki filamentleri hareketsiz hale getirir.
Son olarak, adenozin trifosfat veya ATP molekülleri içeren bir tampona yeşil floresan proteini etiketli miyozin 5A proteinleri ekleyin. Bir takip eden ve bir ön kafa içeren çift başlı miyozin 5A, hareketsizleştirilmiş aktin filamentleri ile etkileşime girer. Miyozinin takip eden başı bir ATP'ye bağlanır ve aktinden ayrılır.
ATP'nin hidrolizi, bir güç stroku oluşturur ve arka kafanın filament boyunca önde gelen kafanın önündeki bir konuma bağlanmasını sağlar. Ardışık güç vuruşları sayesinde, miyozin, hareketsizleştirilmiş aktin filamenti boyunca ayrılmadan hareket eder.
Floresan mikroskobu kullanarak, yeşil miyozin moleküllerinin kırmızı aktin filamentleri üzerindeki hareketini kaydedin.
Miyozin 5a ters motilite testi için solüsyonları hazırlayın ve buz üzerinde tutun.
Hazneyi DTT ile 10 mikrolitre motilite tamponu ile yıkayın. DTT ile motilite tamponunda mililitre BSA'da 1 miligramlık 10 mikrolitre akıtın. Üçüncü yıkamadan sonra bir dakika bekleyerek bunu iki kez tekrarlayın. Kağıdın köşesini akış odası çıkışına nazikçe yerleştirerek çözeltiyi kanaldan fitillemek için kağıt mendil veya filtre kağıdı kullanın.
Ardından, hazneyi 10 mikrolitre motilite tamponu ile DTT ile üç kez yıkayın. 10 mikrolitre NeutrAvidin solüsyonunu DTT ile motilite tamponunda akıtın ve bir dakika bekleyin. Ardından, bu solüsyondan 10 mikrolitre ile üç kez yıkayın.
Büyük delikli bir pipet ucu kullanarak DTT ile 10 mikrolitre bRh-aktin içeren motilite tamponu içinde akıtın ve bir dakika bekleyin. Daha sonra 10 mikrolitre motilite tamponu ile DTT ile üç kez yıkayın.
10 nanomolar miyozin 5a ile 30 mikrolitre son tamponu akıtın ve hemen toplam iç yansıma floresan mikroskobuna yükleyin. TIRF görüntüleme için optimum odak bulunduğunda kayda başlayın.
Bu makale, bir motor protein olan miyozin ile aktin filamentleri arasındaki etkileşimi incelemek için kullanılan tersine çevrilmiş bir hareketlilik analizini tanımlamaktadır. Bu analiz, floresan mikroskobu kullanılarak miyozinin immobilize edilmiş aktin boyunca hareketinin gözlemlenmesine olanak tanır.
Bu tersine çevrilmiş hareketlilik testi, miyozin-aktin motor protein etkileşimlerinin doğrudan görselleştirilmesini sağlayarak kuvvet üretimi ve translokasyon dinamikleri hakkında mekanistik içgörüler sunar. Aktin-miyozin arayüzünün kontrollü bir in vitro sistemde izole edilmesi sayesinde bu test, motor protein odaklı terapötik hipotezlerin hedef doğrulamasını ve risklerinin azaltılmasını destekler. Hareket hızının ve prosessivitenin kantitatif okuması, hücre iskeleti düzenleyicilerini hedefleyen erken keşif programları için öngörücü değer sağlar.
Bu analiz, hedef doğrulamadan öncü bileşik optimizasyonuna kadar uzanan keşif sürekliliğine uyum sağlayarak, hücresel ve biyokimyasal analizları tamamlayan biyofiziksel ortogonal bir okuma sunmaktadır.
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
Son güncelleme: 29 Ağustos 2026