$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Bir alerjene - patojenik olmayan antijene - maruz kaldıklarında, antijen sunan hücreler alerjeni işler ve tip 2 yardımcı T-lenfositlere sunar. Bu T-lenfositler, B-lenfositleri plazma hücrelerine farklılaşmak ve dolaşımdaki bazofillerin - granül içeren salgı hücrelerinin yüzeyindeki yüksek afiniteli IgE'ye özgü Fc reseptörlerine bağlanan immünoglobulin E, IgE antikorları üretmek için tetikler.
Alerjene daha sonra maruz kaldıktan sonra, IgE-Fc kompleksleri alerjeni tanır ve çapraz bağlanır, bazofilleri aktive eder, sitokinler gibi aracılar ve β-hekzosaminidaz dahil lizozomal enzimler içeren granülleri serbest bırakır ve güçlü bir inflamatuar yanıt uyandırır.
Bir test antijeninin alerjik potansiyelini in vitro olarak taramak için, insan IgE'ye özgü Fc reseptörlerini eksprese eden transdüksiyonlu sıçan kanserli bazofillerinin bir süspansiyonu ile başlayın. Alerjik bir donörden alınan IgE içeren insan serumu ile tedavi edin. IgE antikorları, bazofil Fc reseptörlerine bağlanır ve onları duyarlı hale getirir.
Daha sonra, duyarlı bazofillere tampon ve yeterli miktarda test antijeni ekleyin. Antijen, Fc reseptörlerine bağlı IgE afinitesine bağlı olarak, antikorlarla çapraz bağlanır ve bazofil degranülasyonunu başlatarak çözeltiye β-heksosaminidaz dahil mediatörleri serbest bırakır.
Çözeltiyi, β-heksosaminidaz florojenik bir substrat içeren taze bir çok kuyulu plakaya toplayın ve inkübe edin. β-heksosaminidaz, substratı hidrolize ederek bir floresan ürün oluşturur. İnkübasyon sonrası, β-heksosaminidaz aktivitesini inhibe etmek ve reaksiyonu durdurmak için yüksek pH tamponu ekleyin.
Bir mikroplaka okuyucu kullanarak, salınan β-heksosaminidaz aktivitesinin göstergesi olan oluşan ürünün floresansını ve buna bağlı olarak antijenin bazofil degranülasyonunu indükleme alerjik potansiyelini ölçün.
Önceden inkübe edilmiş Ag8 / serum süspansiyonunu santrifüjleyin ve 50 mikrolitre santrifüjlenmiş Ag8 / serum süspansiyonunu, Ag8 hücre peletini bozmadan insanlaştırılmış RBL hücreleri içeren her bir kuyucuğa aktarın.
Alt sinyal platosu veya arka planın göstergesi için antijen kontrolü olmayan hassaslaştırılmış, uyarılmamış hücreleri kullanın ve arka planı ve maksimum lizis kontrol kuyularını hassaslaştırmayın. Plakayı kapakla örtün ve gece boyunca 37 santigrat derece ve% 5 ila% 7 karbondioksitte inkübe edin.
Sera içeren hücre ortamını aspire edin. İnsanlaştırılmış RBL hücrelerini yıkamak için plakayı boşaltmak için plakayı emici kağıda ters çevirin ve hafifçe vurun. Kuyucuk başına 200 mikrolitre Tyrode tamponu ekleyerek hücreleri üç kez yıkayın ve ilk iki yıkama için yıkama başına yaklaşık 30 saniye inkübe edin. Tyrode'un tamponunu üçüncü kez ekledikten sonra, tamponu aspire edin ve antijen seyreltmesini eklemeye hazır olana kadar çözeltiyi kuyucuklarda bırakın.
Önceden duyarlılaştırılmış, insanlaştırılmış RBL hücrelerini içeren her bir oyuğa 100 mikrolitre antijen çözeltisi aktarın, ancak maksimum lizis ve duyarlı olmayan arka plan hücrelerini antijenle uyarmayın.
Maksimum lizis kontrol kuyularına, hassaslaştırılmamış arka plan kontrol kuyularına ve hassaslaştırılmış antijen içermeyen kuyulara 100 mikrolitre Tyrode tamponu ekleyin. Hücreleri 37 santigrat derece ve% 5 ila% 7 karbondioksitte bir saat inkübe edin.
Maksimum lizis kontrol kuyucuklarını oyuk başına 10 mikrolitre% 10 Triton X-100 ile tedavi edin ve beta-heksosaminidazın% 100 salınımı için hücreleri tamamen parçalamak için uygun şekilde karıştırın. Bağlayıcı olmayan 96 oyuklu yeni bir plakaya 50 mikrolitre substrat çözeltisi ekleyin.
İnsanlaştırılmış RBL hücreleri içeren plakanın kuyucuklarından 50 mikrolitre süpernatanı, substrat çözeltisini içeren yeni plakaya aktarın ve florojenik substratın dönüştürülmesine izin vermek için plakayı 37 santigrat derecede bir saat inkübe edin.
Oyuk başına 100 mikrolitre durdurma çözeltisi ekleyin ve metin el yazmasında açıklandığı gibi floresansı ölçün.