Antijene Özgü CD8+ T Hücrelerinin Nanopartikül Bazlı Zenginleştirilmesi ve Genişletilmesi

0 görüntüleme5:41 dk • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fare dalağını ve lenf düğümlerini bir hücre süzgeci üzerinde yumuşatın. Splenositleri ve lenfositleri toplamak için süzgeci uygun bir tamponla yıkayın.

Hücreleri, CD8 + olmayan hücrelere bağlanan biyotinile edilmiş bir antikor kokteyli ve manyetik anti-biyotin mikro boncukları ile inkübe edin.

Hücre süspansiyonunu manyetik bir sütundan geçirin. Manyetik kuvvet sayesinde, boncuk bağlı CD8+ olmayan hücreler kolon duvarına bağlanırken, CD8+ T hücreleri dışarı çıkar.

Ayrıştırılmış hücreleri yapay antijen sunan hücreler, aAPC'ler ile inkübe edin. Bunlar, antijen yüklü majör histouyumluluk kompleksi-immünoglobulin füzyon proteini, MHC-Ig ve anti-CD28 antikoru ile işlevselleştirilmiş manyetik nanopartiküllerdir.

Antijen yüklü MHC-Igs, antijene özgü CD8 + T hücreleri üzerindeki farklı reseptörlere bağlanır. Anti-CD28 antikorları, T hücresi CD28 reseptörleri ile etkileşime girerek T hücresi aktivasyonunu başlatır.

Manyetik nanopartiküller ve hücre karışımı içeren tüpü manyetik bir stand üzerine yerleştirin. aAPC'ye bağlı CD8 + T hücreleri manyetik alana çekilirken, spesifik olmayan CD8 + T hücreleri askıda kalır. Süpernatanı çıkarın.

Tüpü manyetik standdan çıkarın. T hücresi büyüme faktörü içeren ortamda aAPC'ye bağlı hücreleri yeniden süspanse edin. Onları çok kuyulu bir tabağa tohumlayın.

Büyüme faktörleri antijene özgü CD8 + T hücresi genişlemesini indükler.

Antijene özgü CD8 pozitif T hücrelerini izole etmek için, sık sık PBS durulamaları ile steril bir 70 mikrometre hücre süzgeci aracılığıyla vahşi tip C57Black / 6j farelerden dalakları ve lenf düğümlerini yumuşatın ve CD8 pozitif olmayan T hücrelerini ortadan kaldırmak için üreticinin talimatlarına göre temassız bir CD8 pozitif T hücresi izolasyon kiti kullanın.

Saydıktan sonra, izole edilmiş CD8 pozitif T hücrelerini santrifüjleme ile toplayın ve peleti% 0.5 sığır serum albümini ve 2 milimolar EDTA ile desteklenmiş 100 mikrolitre PBS içinde yeniden süspanse edin.

Daha sonra, hücreleri nanopartikül yapay antijen sunan hücrelerle, steril 5 mililitrelik polistiren yuvarlak tabanlı bir tüpte steril 5 mililitrelik polistiren yuvarlak tabanlı bir tüpte 1 x 10 6 izole CD8 pozitif T hücresi başına 1 x10 11 peptit yüklü MHC-Ig olacak şekilde inkübe edin sürekli karıştırma ile 4 santigrat derecede 1 saat.

İnkübasyonun sonunda, nanopartikül hücre süspansiyonunu gösterildiği gibi manyetik stand üzerinde üç kez yıkayın, yapay antijen sunan hücreleri ve zenginleştirilmiş CD8 pozitif T hücrelerini 500 mikrolitre taze takviyeli ortamda yeniden süspanse edin. % 1 T hücresi büyüme faktörü, son yıkamadan sonra.

Maksimum hücre geri kazanımı için, hücrelerdeki partikülleri en az 2 dakika boyunca manyetik kolon üzerinde bırakmak, manyetik alana maruz kalan partikülleri ve hücreleri bozmadan tamponu dikkatli bir şekilde aspire etmek kritik öneme sahiptir.

Saydıktan sonra, 2.5 x 105 zenginleştirilmiş CD8-pozitif T hücresi ve 160 mikrolitre takviye edilmiş ortam başına manyetik parçacık karışımı artı 96 oyuklu U tabanlı bir plakada% 1 TCGF tohumlayın. Üçüncü günde, hücreleri oyuk başına% 2 T hücresi büyüme faktörü ile 80 mikrolitre takviye edilmiş ortamla besleyin ve plakayı dört gün daha hücre kültürü inkübatörüne geri koyun.

Yedinci günde, uyarılan hücreleri saymak için 5 mililitrelik yuvarlak tabanlı bir tüpe toplayın ve hücreleri santrifüjleme ile toplayın. Peletleri, sayım için% 0.05 sodyum azid ve% 2 fetal sığır serumu ile desteklenmiş 0.5 mililitre PBS'de yeniden süspanse edin ve antijene özgü boyama için 5 x 10 4 ila 5x 10 5 hücreleri yeni 5 mililitrelik yuvarlak tabanlı tüplere alikot edin.

Uygun tüpleri biyotinile MHC-Ig ve anti-fare CD8a ile 4 santigrat derecede 1 saat boyunca etiketleyin, ardından fazla biyotinile immünoglobulini çıkarmak için taze PBS'de bir santrifüj yıkaması yapın. Daha sonra, numuneleri uygun bir streptavidin konjuge ikincil antikor ve 4 santigrat derecede 15 dakika boyunca uygun bir canlı / ölü sabitlenebilir ölü hücre boyası ile boyayın ve antijene özgü CD8 pozitif T hücrelerinin özgüllüğünü ve sayısını belirlemek için hücreleri bir akış sitometresinde okuyun.

09:45

Algılama Trypanosoma brucei Varyant Yüzey Glikoprotein Değiştirme

İlgili videolar

0 Görüntüler

07:55

Manyetik Boncuk Kullanarak Mekanik Gerilim Cevabı Hücre Yüzey Yapışma Modelleme Analizi

İlgili videolar

0 Görüntüler

10:16

Yönbağımlı polimer yapay antijen hücreleri CD8 + T Hücre aktivasyonu için sunma imalatı

İlgili videolar

0 Görüntüler

10:44

Genişleme, Saflaştırılması, ve İnsan Periferik Kan NK Hücrelerinin Fonksiyonel Değerlendirme

İlgili videolar

0 Görüntüler

07:18

Verimli HLA-Ig Tabanlı Yapay antijen sunan hücrelerin Ex vivo Genleşme

İlgili videolar

0 Görüntüler

13:18

Yapay Antijen Hücre (AAPC) Aracılı Aktivasyon ve Doğal Öldürücü T hücreleri genişletilmesi Presenting

İlgili videolar

0 Görüntüler

13:58

Peptid: Epitop-spesifik T-hücrelerinin MHC tetramer bazlı Zenginleştirme

İlgili videolar

0 Görüntüler

11:07

Nanopartikül Aşılama sonrası analizi antijene özgü CD8 + T hücresi tepkileri için tüm hayvan Görüntüleme ve Akış Sitometrisi Teknikleri

İlgili videolar

0 Görüntüler

09:01

Fare Dalak Değişmeyen Doğal Öldürücü T Hücreleri İzolasyon ve Yaygınlaştırılması için optimize Yöntemi

İlgili videolar

0 Görüntüler

09:25

Fenotip ve Fonksiyon Analizi için algılama ve Nadir zenginleştirilmesi antijene özgü B hücreleri

İlgili videolar

0 Görüntüler

Son güncelleme: 15 Ağustos 2026