Manyetik Aktive Hücre Sıralaması Kullanılarak CD31+ Endotelyal Öncü Hücrelerin Saflaştırılması

0 views • 5:32 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Beyin mikrovasküler endotel hücrelerinin öncüleri olan endotelyal progenitör hücrelerin veya EPC'lerin yapışık bir kültürünü alın.

Pluripotent kök hücrelerin ayırt edilmesiyle elde edilen kültür, yüzey belirteci CD31 için pozitif EPC'leri ve kontamine CD31 negatif hücreleri içerir.

Hücreleri ayırmak için bir ayrışma reaktifi ile inkübe edin ve tek hücreli bir süspansiyon elde etmek için süzün.

Enzimleri nötralize etmek için bir ortam ekleyin, süpernatanı atmak için santrifüjleyin ve hücreleri bir tamponda yeniden süspanse edin.

Hücresel Fc reseptörlerini inhibe etmek için bir bloke edici reaktif ile inkübe edin ve spesifik olmayan etiketlemeyi önleyin.

CD31 için spesifik bir florofor konjuge antikor ekleyin ve EPC'leri etiketlemek için inkübe edin.

Bağlanmamış antikorları santrifüjleyin ve atın. Floroforlara bağlanan bir antikor içeren antikor kompleksleri ile inkübe edin.

Polimer kaplı manyetik nanopartikülleri tanıtın ve inkübe edin, nanopartiküllerin komplekslerin ikinci antikoruna bağlanmasına izin verin.

Bir manyetik alan kullanarak, nanoparçacığa bağlı hücreleri izole edin.

Süspansiyonu etiketlenmemiş CD31 negatif hücrelerle atın ve saflaştırılmış hücreleri bir ortamda yeniden süspanse edin. CD31 pozitif EPC'ler, sonraki analizler için hazırdır.

Endotelyal progenitör hücre kültürünün 5. gününde, ortamı kuyucuklardan aspire edin ve her oyuğa 1 mililitre ayrışma reaktifi ekleyin. Plakayı 37 santigrat derecede 6 ila 8 dakika inkübe edin. Bir mikropipet kullanarak, hücreleri ayırın ve tekilleştirin, ardından hücre süspansiyonunu 10 mililitre DMEM / F-12 ortamı içeren 50 mililitrelik bir tüpe filtrelemek için 40 mikrometrelik bir hücre süzgecinden geçirin.

Sindirim reaksiyonunu durdurmak için, 50 mililitre işaretine kadar DMEM / F-12/10 10 ortamı ekleyin. Hücreleri saymak için iyice pipetleyin ve 10 mikrolitre ayırın. Hücreleri peletlemek için 50 mililitrelik tüpü 200 g'da 20 ila 25 santigrat derecede 5 dakika santrifüjleyin. Santrifüjlemeden sonra, süpernatanı çıkarın ve hücre peletini 10 mililitre DMEM / F-12/10 ortamı ile yeniden süspanse edin.

Hücre süspansiyonunu 15 mililitrelik yeni bir tüpe aktarın. Hücreleri tekrar pelet yapmak için 200 g'da 20 ila 25 santigrat derecede beş dakika santrifüjleyin. Ardından, hücre peletini akış tamponu 1'e yeniden süspanse edin. Ardından, FcR bloke edici reaktifi 1'e 100 oranında ekleyin ve 5 dakika inkübe edin. Ardından, 1 ila 200 oranında seyreltilmiş floresein izotiyosiyanat veya FITC etiketli CD31 antikoru ekleyin.

Süspansiyonu karanlıkta 20 ila 25 santigrat derece arasındaki bir sıcaklıkta 30 dakika inkübe edin. İnkübasyonun sonunda, numuneye 10 mililitre akış tamponu 1 ekleyin ve CD31 pozitif hücrelerin fraksiyonunu belirlemek için akış sitometrisi analizi için 10 mikrolitre süspansiyon ayırın. Hücreleri 200 g'da 20 ila 25 santigrat derecede 5 dakika santrifüjleyin. Santrifüjlemeden sonra, hücreleri akış tamponu 1 çözeltisi ile yeniden süspanse edin.

Daha sonra, hücre süspansiyonunun 100 mikrolitresi başına 5 mikrolitre FITC seçim kokteyli ekleyin. Solüsyonu pipetleyerek iyice karıştırın ve karanlıkta 20 ila 25 santigrat derece arasındaki bir sıcaklıkta 15 dakika inkübe edin. Daha sonra, 100 mikrolitre hücre süspansiyonu başına 5 mikrolitre manyetik nanopartikül ekleyin. Karışımı iyice pipetleyin ve karanlıkta 20 ila 25 santigrat derecede 10 dakika inkübe edin.

Hücre süspansiyonunu 5 mililitrelik bir akış sitometri tüpüne aktarın ve toplam 2,5 mililitrelik bir hacim elde etmek için akış tamponu 1 ekleyin. Ardından, akış sitometri tüpünü beş dakika boyunca mıknatısın içine yerleştirin. Sürekli bir hareketle, mıknatısı ters çevirin ve FITC-CD31 antikoru etiketlenmemiş hücreler içeren hücre süspansiyonunu boşaltın. Mıknatısı ve tüpü 2 ila 3 saniye ters konumda tutun ve ardından kalan sıvıyı çıkarın.

Tüpü dik konuma getirmeden önce tüp kenarındaki damlacıkları aspire edin. Akış sitometri tüpünü mıknatıstan alın ve kalan CD31 pozitif hücreleri yıkamak için 2,5 mililitre akış tamponu 1 ekleyin. Hücreleri yeniden süspanse etmek için iki veya üç kez nazikçe yukarı ve aşağı pipetleyin. Ardından, akış tüpünü beş dakika boyunca mıknatısın içine yerleştirin.

FITC-CD31 etiketlenmemiş hücreleri tüpten çıkarmak için yıkamayı en az dört kez tekrarlayın. Akış tüpünü mıknatıstan çıkarın ve saflaştırılmış CD31 pozitif hücreleri istenen miktarda uygun bir ortamla yeniden süspanse edin. Süspansiyonun iki adet 1 mikrolitrelik alikotunu, biri hücre sayımı için, ikincisi ise manyetik sonrası aktive edilmiş hücre sıralama örneklerinde CD31 pozitif hücrelerin saflığını değerlendirmek için akış sitometrisi analizi yapmak için ayırın.

08:43

Kalp Damar Cerrahisi sonra serum Örnekleri etkilenerek Sağlıklı Gönüllüler ve Bunların Göçmen Potansiyelden Endotel Ata Hücreleri İzolasyon

Related Videos

0 Views

07:26

Yalıtım endotelyal Progenitor Hücre insan göbek kordon kanı

Related Videos

0 Views

10:20

Manyetik aktif hücre stratejileri yalıtmak ve Sinovyal sıvı elde edilen mezenkimal kök hücre bir tavşan modelinden arındırmak için sıralama

Related Videos

0 Views

04:41

Manyetik Olarak Aktive Edilmiş Hücre Sıralama: c-Kit Pozitif Hücreleri İzole Etmek İçin Bir Yöntem

Related Videos

0 Views

05:40

Melanom Kök Hücre İzolasyonu: Manyetik Aktivasyonlu Hücre Sıralaması Kullanılarak CD133 Pozitif ve Negatif Melanom Hücreleri Elde Etmek İçin Bir Yöntem

Related Videos

0 Views

12:16

Hasta Türetilen Hücre Kültürü ve CD133 İzolasyonu + sağlayan olası Kanser Kök Hücreleri

Related Videos

0 Views

12:06

Periferik kan Hematopoetik Progenitör Hücreleri İnsan Sinir Kök Hücre Doğrudan İndüksiyon

Related Videos

0 Views

08:52

İzolasyon ve Roman Yüzey Etiket Kombinasyon ile tanımlanır Karaciğer progenitör Alt Grupları zenginleştirilmesi

Related Videos

0 Views

11:57

Birincil fare iskelet kas mikrovasküler endotel hücre izolasyon

Related Videos

0 Views

09:03

İnsan Kaynaklı Pluripotent Kök Hücrelerin Olgun Bir İmmün Fenotipli Beyin Mikrovasküler Endotel Hücre Benzeri Hücrelere Farklılaşması

Related Videos

0 Views

Last updated: 1 August 2026