$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Rho-kinaz inhibitörleri içeren bakım ortamında indüklenmiş bir pluripotent kök hücre veya iPSC kültürü alın.
Büyüme faktörleri hücreleri farklılaşmamış halde tutarken, rho-kinaz inhibitörleri hücre sağkalımını artırır.
Ortamı, rho-kinaz inhibitörlerini çıkararak yeni bakım ortamıyla değiştirin. Kuluçkaya yatırın, koloni oluşumunu teşvik edin.
Düzenli olarak, kontrollü bir ortam sağlayan, nöral progenitörlere ve ardından beyin endotel hücrelerine iPSC farklılaşmasını tetikleyen ve ardından hücre proliferasyonunu tetikleyen koşulsuz medya ile değiştirin.
Retinoik asit ve fibroblast büyüme faktörleri içeren endotel hücre ortamı ile değiştirin. Kuluçkaya yatmak.
Fibroblast büyüme faktörleri hücre proliferasyonunu kolaylaştırırken, retinoik asit beyin endotel hücre olgunlaşmasını destekler.
Hücreleri ayırmak için proteolitik enzimler ekleyin. Hücreleri toplayın ve santrifüjleyin. Süpernatanı atın.
Hücreleri endotel ortamında yeniden süspanse edin ve bunları kollajen ve fibronektin ile kaplanmış çok kuyulu bir membran ekine tohumlayın.
Kuyu endotel ortamı içerir. Seçici beyin endotel hücresi yapışması için inkübe edin.
Daha fazla deney için ortamı takviye edilmemiş endotel ortamı ile değiştirin.
12 mililitre kök hücre bakım ortamında ve 10 mikromolar ROCK inhibitöründe 7.5 x10 5 hücreyi yeniden askıya alın. Bir T75 şişesinden matrisi aspire edin ve hücre süspansiyonunu şişeye aktarın. Hücreleri dağıtmak için şişeyi sallayın ve inkübatöre yerleştirin.
ROCK inhibitörünü çıkarmak ve kök hücre kolonilerinin büyümesini desteklemek için önümüzdeki iki gün boyunca medyayı her gün yenileyin. Üçüncü gün, medyayı koşulsuz bir ortama değiştirerek farklılaşmaya başlayın.
Önümüzdeki beş gün boyunca ortamı günlük olarak değiştirin. Farklılaşmaya başladıktan altı gün sonra, mililitre bFGF ve 10 mikromolar retinoik asit başına 20 nanogram ile endotel hücresine veya EC ortamına geçerek endotel hücre popülasyonunu seçici olarak genişletin. Hücreleri iki gün boyunca inkübe edin.
Kollajen IV ve Fibronektin çözeltisini el yazması talimatlara göre hazırlayın ve hücre kültürü plakalarını kaplamak için kullanın. EC ortamını hücrelerden aspire edin ve 12 mililitre hücre ayrışma reaktifi ekleyin. Hücrelerin% 90'ı ayrılana kadar şişeyi 37 santigrat derecede inkübe edin.
Kuluçka süresi boyunca, kaplama çözeltisini önceden hazırlanmış plakalardan çıkarın ve steril bir kaputta kurumaya bırakın. Hücreler ayrıldıktan sonra, tek hücreli bir süspansiyon oluşturmak için 10 mililitrelik bir pipet kullanın.
Hücreleri 50 mililitrelik bir tüpe aktarın ve eşit hacimde insan endotelyal serumsuz serbest ortamla seyreltin. Ardından, hücreleri bir hemositometre ile sayın. Hücreleri 10 dakika boyunca 1.500 g'da peletleyin. Daha sonra bunları mililitre başına 2 milyon hücre konsantrasyonu için bFGF ve retinoik asit ile taze hazırlanmış EC ortamında yeniden süspanse edin.
12 oyuklu bir ekin üstüne 500 mikrolitre hücre süspansiyonu ve altına 1,5 mililitre orta ekleyin. Hücreleri ek parça boyunca eşit olarak dağıtın ve plakayı 37 santigrat derece ve% 5 karbondioksitte inkübe edin. Ertesi gün, besiyerini bFGF veya retinoik asit içermeyen EC ile değiştirin.