JoVE Encyclopedia of Experiments
Sinirbilim
0 görüntüleme • 3:10 dk • July 8th, 2025
Nemli bir hücre süzgecine bir murin retinası yerleştirin ve retina hücrelerini hücre dışı matristen ayırmak için dairesel hareketlerle yumuşatın.
Süzgeci bir toplama tüpüne aktarın.
Hücreleri yıkamak ve toplamak için süzgecin içine bir fosfat tamponu ve serum solüsyonu ekleyin.
Hücreleri yerleştirmek için santrifüjleyin. Süpernatanı atın ve hücreleri bir fosfat tamponu ve serum çözeltisi içinde yeniden süspanse edin.
Hücreler üzerindeki Fc reseptörlerine bağlanan bloke edici antikorlar ekleyin, hedef antikorların spesifik olmayan bağlanmasını önleyin.
Daha sonra, çeşitli hücre tiplerinde spesifik hücre yüzeyi belirteçlerine bağlanan floresan etiketli ve etiketsiz birincil antikorları ekleyin.
Bağlanmamış antikorları çıkarmak için yıkayın.
Etiketlenmemiş birincil antikora bağlanmak için floresan etiketli bir ikincil antikor ekleyin.
Bağlanmamış antikorları çıkarmak için yıkayın.
Etiketli hücrelerin farklı floresan sinyallerini yakalamak ve retinal ganglion hücrelerini çeşitli retinal hücre popülasyonlarından sıralamak için floresanla aktive edilen hücre sıralaması veya FACS gerçekleştirin.
PBS ve FBS ile nemlendirilmiş steril 70 mikronluk naylon süzgecin üzerine 12 retinaya kadar yerleştirin ve dairesel bir hareket kullanarak retinayı 10 mililitrelik bir şırınga pistonunun arka ucuyla nazikçe yumuşatın. Tüm hücreler ayrıldığında, süzgeci bir polipropilen toplama tüpünün üzerine yerleştirin ve hücreleri süzgeçten toplama tüpüne filtrelemek için bir P1000 pipeti kullanın.
Süzgeci PBS ve FBS ile durulayın, yıkamayı toplama tüpünde toplayın. Son hacmi retina başına 1 mililitre çözeltiye getirmek için yeterli PBS artı FBS ekleyin ve hücreleri santrifüjleme ile toplayın. Daha sonra, peleti PBS artı FBS'de 5 retina konsantrasyonu başına 1 mililitre ortamda yeniden süspanse edin. Daha sonra, oda sıcaklığında 10 dakika boyunca 1 x 106 hücre başına 1 mikrolitre anti-fare CD16 / 32 antikoru ile her tüpteki spesifik olmayan FC reseptör bağlanmasını bloke edin.
Bloke edici inkübasyonun sonunda, ışıktan korunan buz üzerinde 30 dakikalık bir inkübasyon için nazik pipetleme ile ilgilenilen antikor kokteylini hücrelere ekleyin. Daha sonra, hücreleri 4 mililitrelik son PBS ve FBS hacminde iki kez yıkayın. Hücreleri ışıktan korunan buz üzerinde 30 dakika daha uygun bir ikincil antikorla etiketleyin, ardından PBS artı FBS'de 2 yıkama yapın ve numune tüpünü akış sitometresine yükleyin.
Bu makale, floresanla aktive edilen hücre ayıklama (FACS) yöntemi kullanılarak fare retinalarından retinal ganglion hücrelerinin izole edilmesine yönelik bir protokolü detaylandırmaktadır. Yöntem; retinal hücrelerin dissosiyasyonunu, spesifik olmayan bağlanmanın engellenmesini ve ayıklama işlemi için hücrelerin antikorlarla işaretlenmesini içermektedir.
Primer retinal ganglion hücrelerinin izole edilmesi, fonksiyonel analizler için saflaştırılmış ve hastalıkla ilişkili bir sistem sağlayarak, nörodejeneratif hastalık hedef doğrulamalarında mekanizmaya dayalı risk azaltımına olanak tanır. Bu yaklaşım, RGC'ye özgü yolakların ve terapötik hipotezlerin doğrudan sorgulanmasına imkan vererek, erken keşif aşamasındaki öngörü güvenini destekler. Yöntem, görsel nörobilim programlarında hedef tanımlamadan preklinik modellemeye kadar olan translasyonel sürekliliği artırır.
Bu yöntem, hedef doğrulamadan assay geliştirmeye ve preklinik değerlendirmeye kadar uzanan keşif sürekliliğine uyum sağlayarak, RGC'ye özgü okumalar temelinde terapötik adayların yinelemeli olarak geliştirilmesine olanak tanır.
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
İlgili videolar
0 Görüntüler
Son güncelleme: 22 Ağustos 2026