Name: Mitokondri İzole Fare Heart Geçirgenliği Geçiş Gözenek Açma Multi-parametre ölçümü (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-07T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 42 s
Description: Öğrenin, izole fare kalp mitokondrilerinde mitokondri geçirgenlik geçiş gözenek açılmasını çok parametreli ölçümle nasıl karakterize edeceğinizi. Spektroflorometrik yöntemle kalsiyum tutma kapasitesi ve membran potansiyeli değerlendirilir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu eser HL094536 (BJH) tarafından desteklenmiştir.

1. Fare Kalpten Mitokondri İzolasyonu <ol><li> Kalp mitokondri izole etmek, uyutmak ve yerel Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından onaylanmış prosedürlere göre fareler kurban. </li></ol> Not: mitokondri izolasyon protokolü tüm adımlar buz üzerinde yapılmalıdır. Buz soğuk tamponlar ve ön soğutulmuş Petri kapları, Falcon tüpleri ve Eppendorf tüpleri kullanın. Protokolü verilen hacimleri 2 fare kalpleri içeren bir örnek içindir. <ol start="2"><li> , Kalpler kaldırma soğuk Mitokondri İzolasyonu tampon içine yerleştirin (300 mM sukroz, 10 mM Na-HEPES, 200 mM EDTA, pH 7.4) ve kan durulayın. </li></ol> Not: En iyi sonuçlar için, mitokondriyal tamponların pH KOH ve Asetik Asit ile ayarlanabilir olmalıdır. <ol start="3"><li> Soğuk bir Petri kabı koyun kalpleri, yağ ve atriyumlar çıkarın ve elde edene kadar bir bıçak kullanarak ince kıymahomojen bir ürün Ing. </li><li> Bir 50 ml Falcon tüp ile kıyılmış kalpler transfer, 0.1 mg / ml tripsin ile Mitokondri izolasyon Tamponu 10 mL eklemek ve numune 10 dakika için buz üzerinde sindirimi için izin verir. </li></ol> Not: izolasyon prosedürü sırasında Tripsin izole mitokondri verimi artırır ve mitokondriyal hazırlıkları arasında sabit tutulmalıdır. Biz izole hazırlıkları mitokondrial fonksiyonları test enzim işlevselliği etkilemez emin olmak için tripsin yokluğudur öneririz. <ol start="5"><li> % 0.1 yağ asidi serbest BSA ve 5 mg tripsin inhibitörü (soya) ile Mitokondri İzolasyon Buffer 10 ml ekleyin ve tripsin nötralize etmek için ters tüp birkaç kez karıştırın. </li></ol> Not: Mitokondri izolasyon Tampon önceden hazırlanır ve -20 ° C&#39;de saklanabilir Çözdürme sırasında pH kontrol edin. Tripsin, tripsin inhibitörü ya da BSA, bir olmalıdırDeney günü Mitokondri İzolasyon Buffer dded. <ol start="6"><li> 4 az 1 dakika ° C için düşük-orta hızlı santrifüjleme ile sindirilir doku Kurtar </li><li> Teflon havaneli (1,200-14,00 devirde 4-6 geçer) ile motorlu Dounce homojenizatör kullanarak% 0.1 yağ asitsiz BSA ve homojenize ile 8 ml Mitokondri İzolasyonu Tamponunda süspanse doku. Homojenizasyon sırasında buz üzerinde örnek tutun. </li><li> 4. 10 dakika için 800xg bir 15 ml Falcon tüp ve santrifüj içine Homojenat aktarın ° C pelet çekirdekler ve doku enkaz. </li><li> 4, 15 dakika boyunca 8000 x g ile santrifüj Eppendorf tüpleri içine mitokondri içeren süpernatan kurtarma ° C. </li><li> Dikkatli bir şekilde üst beyaz tabaka çıkarın ve 1 ml Mitokondri İzolasyon Tamponunda mitokondri içeren kalan koyu pelet yıkayın. </li><li> 4 &#39;de 15 dakika için 8000xg santrifüjleyin ° C. 150 ul Mitokondriyal Isola süpernatant ve tekrar süspansiyon pelet atın mitokondrition Tampon. Ileri testler için buz üzerinde mitokondri tutun. </li></ol> Not: Fonksiyonel testler sırasında en iyi sonuçları elde etmek için, izolasyon 4 saat içinde mitokondri kullanın. <ol start="12"><li> Bradford assay kullanarak mitokondriyal protein sayısal. </li></ol> 2. İzole Mitokondri Kalite Kontrolü 2.1. Solunum kontrolü oranı ölçümü (RCR) <ol><li> Maksimum oksijen hattı kurmak için hava doymuş su ile Oxytherm oksijen elektrodu kalibre. Oksijen kararlı seviyesi sıfır oksijen hattı kurmak için bir taze hazırlanmış olan 10 mM sodyum hidrosülfit çözeltisi 100 ul ekle elde edildiği zaman. 30 ° C&#39;de ölçümleri gerçekleştirin </li><li> Oda mühürlenir, Oxytherm oda 1 uM rotenon 2 ml Mitokondri solunum tamponu (125 mM KCI, 20 mM HEPES, 3 mM MgCl2, 400 uM EGTA, 300 uM DTT, 5 mM KH 2 PO 4, pH 7.2) ekleyin ve start recording. </li><li> Oksijen sinyali stabil olduğunda, 1 dakika süreyle 250 mitokondri mikrogram ve kayıt bazal solunum ekleyin. Mitokondri endojen substratların (Devlet 1 solunum) üzerine soluyarak olarak bu noktada solunum çok düşük olmalıdır. </li><li> 5 mM süksinat ve 1 dakika süreyle kayıt sinyali ekleyin. Oksijen tüketimi Devlet 2 solunum sırasında artmalıdır. </li><li> 150 mcM ADP ekleyerek Devlet 3 solunum øndükle. Bu noktada oksijen tüketimi ise oksidatif fosforilasyon yoluyla ATP sentezi nedeniyle artmalıdır. Rekor sinyal solunum ADP tüketimi ve 4 solunum Devlet geçiş gösteren, yavaşlatır kadar. En az 1 dakika süreyle kayıt durumu 4 solunum. </li><li> 1 uM CCCP ve 1 dakika süreyle kayıt sinyali ekleyin. Kuplajsız solunum maksimal olmalıdır. </li></ol> Not: mitokondriyal solunum üzerinde CCCP etkileri doza bağımlıdır: CCCP yüksek konsantrasyonlu oksijen tüketimi inhibe edebilir ve bu nedenle t özenle olmalıdıritrated. <ol start="7"><li> Devlet 4 solunum sırasında oksijen tüketimi oranıyla Devlet 3 solunum sırasında oksijen tüketim oranına bölünmesi ile solunum kontrolü oranı (RCR) hesaplayın. Bir hedef RCR ≥ 4 olmalıdır. </li></ol> 2.2. Mitokondrial membran bütünlüğünün Değerlendirilmesi (sitokrom c testi) <ol><li> İyice% 70 etanol ve su ile Oxytherm odasına yıkayın ve adımları 2.1.2 -2.1.4 tekrarlayın. </li><li> 1 mM ADP ve 1 dakika süreyle kayıt oksijen tüketimi ekleyin. </li><li> 10 uM sitokrom c ekleyin. Sitokrom c bozulmamış mitokondriyal membran geçirmez olduğundan, solunum artışı kırık veya hasarlı mitokondriyal membran gösterir. </li></ol> 3. Mitokondriyal Geçirgenlik Geçiş Gözenek Açılış Ölçümü <ol><li> MtPTP açıklığın çok parametre için ölçüm spectrofluorometer ayarlayın. FelixGx programını kullanarak, yeni bir donanım yapılandırması oluşturmak (Quanta ana sabit state) ışık kaynağı, uyarma monokromatör, numune kompartımanı ve uyarma monokromatör (Şekil 4) ile ilgili olarak 90 ° ve 270 ° &#39;de konumlandırılmış iki dedektör oluşan. Maksimal zaman çözünürlüğü elde etmek için, hem emisyon monokromatörler (90 ° ve 270 °) devre dışı bırakılır ve numune kompartımanı 90 ° ve 270 ° &#39;de emisyon filtresi donanım yapılandırması menüsü etkin olmalıdır. Bu adım emisyon dalga boylarında motor kontrol kaldırın ve belirli bir dalga boyunda her monokromatör çözecektir. Emisyon monokromatörler devre dışı değilse, her dedektör dalgaboyu ve yinelenen ölçümler arasında hem döngüsü kaydedilecektir olacaktır. </li><li> Çoklu Boya türünü kullanarak yeni bir satın alma protokolü oluşturun ve aşağıdaki boyalar girin: <ul><li> Fura (yüksek Ca + +): eksitasyon 340 nm, emisyon 525 nm (dedektör 1) </li><li> Fura (düşük Ca + +): eksitasyon 380 nm, emisyon 525 nm (dedektör 1) </li><li> JC1 (agrega): eksitasyon 543 nm, Emisyon 595 nm (dedektör 2) </li><li> JC1 (monomer): eksitasyon 498 nm, emisyon 525 nm (dedektör 1) </li><li> Şişme: eksitasyon 525 nm, emisyon 525 nm (dedektör 1) </li></ul></li><li> 37 ° C ve 1 nm eksitasyon ve emisyon yarıklar ve sıcaklık ayarlama </li><li> Fura ve JC-1 için rasyometrik sinyali elde etmek için, iki türetilmiş izleri oluşturur: Fura (yüksek Ca + +) / Fura (düşük Ca + +) ve JC1 (agrega) / JC1 (monomer). </li><li> Elle sırasıyla, dedektör 1 ve 2 ile 525 nm ve 595 nm emisyon dalga boyu ayarlayın. </li><li> Karıştırın 1 uM rotenon, 5 mM süksinat ve tek kullanımlık bir 4-yönlü, 800 nM Fura FF ile 1 ml mitokondri, tahlil tamponu (120 mM KCI, 10 mM NaCI, 1 mM KH 2 PO 4, 20 mM HEPES-Tris, pH 7.2) metakrilat küvet. Numune kompartımanı içinde 250 mikrogram mitokondri ve yerde örnek ekleyin. Manyetik karıştırıcı açık olduğundan emin olun. </li><li> Kayda başlayın. 1 dakika sonra, elde etme duraklatabilir, 500 nM JC-1 eklenir ve daha sonra bir yenidencquisition. JC-1 oranı sinyali aktif mitokondrilerde dye uptake gösteren artmalıdır. JC-1 sinyali bir plato (genellikle 5 dakika içinde) ulaşana kadar kayıt devam edin. </li><li> 20 uM CaCI2 ekleyin. Fura FF oran sinyali içinde bir ani artış, mitokondriyal Ca 2 + alımını dolayı bir kademeli azalma ardından, tayin tamponu içinde artan Ca +2 varlığında tarafından dikkate alınmalıdır. JC-1 oranı sinyali hafif mitokondrial membran depolarizasyon göstergesi kısa süreli azalmaya sergilemesi gerekir. </li><li> Önce başka bir CaCl 2 pulse (1-1.5 dk) eklenmesi ile bazal seviyeye Fura FF oranı sinyali dönene kadar bekleyin. Mitokondri Ca 2 birikmez kadar sabit aralıklarla darbe Devam + ve + deney tamponu içine Ca 2 bırakmadan başlar. mtPTP açılması nedeniyle Ca 2 Fura FF oran sinyali eş zamanlı artış ile görüntülenmiştir + serbest bırakma, membran pote bağlı olarak JC-1 sinyal oranında azalmantial çöküşü ve mitokondriyal şişme nedeniyle ışık saçılması bir azalma (Şekil 5). </li><li> MtPTP aktivasyonu takiben, 1 mM EGTA, 1 uM CCCP ve 5 ug / ml alamethicin ile sırasıyla Fura FF, JC-1 ve şişme sinyallerin özgüllüğünü teyit. </li><li> MtPTP açma özgüllük doğrulamak için tekrar adımları 3.6 - Siklofilin D inhibitörü siklosporin 1 uM&#39;si varlığında, 3.9 A (Siklofilin D mtPTP bir bileşenidir.) Siklosporin varlığında, mtPTP açılması kontrol numuneleri (Şekil 6) önemli ölçüde daha fazla CaCl2 darbe gerektirir. </li></ol> 4. Temsilcisi Sonuçlar Şekil 2, mitokondri izole edilmiş fare kalbinde tipik solunum kontrol göstermektedir. State 3 solunum süksinat üzerinde mitokondri Solunum için ADP ilavesi ile elde edilir, ve substra göre önemli ölçüde artmıştır oksijen tüketimi ile karakterize ediliryalnız te. Tükenmesi oksijen tüketimi yavaşlatır ve ADP ilavesinden önce ulaşmış oranları karşılaştırılabilir sırasında ADP inisiyeler Devlet 4 solunum, ekledi. RCR State 4 solunum bu göre State 3 solunum için oksijen tüketim hızı bölünmesi ile elde edilir. Sitokrom c testi deneyi dış mitokondrial membran bütünlüğünün için kullanılır: sitokrom c süksinat ve ADP, gözlenen solunum ilave bir artış üzerine mitokondri Solunum eklendiğinde, sağlam bir dış mitokondriyal membranların (Şekil 3) gösterir. Mitokondri içinde izole edilmiş kalp mtPTP açılması için temsili bir görüntü Şekil 4 &#39;de gösterilmiştir. Bu durumda, açma mtPTP 1.5 dk aralıklarla 4 CaCl2 puls (20 uM her biri) ilavesi ile tetiklenmiştir. mtPTP açılış mitokondrial Ca 2 yakın eşzamanlı yayın + (Fura FF oranı sinyal artışı), mitochond çöküşü ile açıktırriyali membran potansiyeli (JC-1 oranı sinyal azalması) ve artmış mitokondriyal hacmi (şişlik sinyal azalması). Bir ilave edildiğinde siklosporin, ki mtPTP ve Siklofilin D bileşeni bağlanır, mtPTP açma CaCl2 yerine 4 7 darbeleri (Şekil 5) gerektirir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/4131/4131fig1.jpg" /> Şekil 1. Mitokondri izole kalp için çok parametre mitokondriyal permeabilite geçiş gözenek açılması protokolü akış şeması. Kalp farelerin hasat edilir ve mitokondri diferansiyel santrifüjleme yoluyla izole edilmiştir. Mitokondriyal hazırlama sonra niteliksel olarak sitokrom c varlığında solunum kontrol oranı ve mitokondrial zarın sağlamlık polarografik ölçümü ile değerlendirildi. Izole mitokondride mitokondriyal permeabilite geçiş gözenek açılması sıralı cac tarafından tetiklenenl 2 eklemeler ve mitokondri membran potansiyeli çöküşü Ca 2 + sürüm izleme ve mitokondrial matriks şişmesi ile spectrofluorometer ile ölçülür. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/4131/4131fig2.jpg" /> Şekil 2. Ölçümü mitokondri izole kalp, solunum kontrolü oranı (RCR). Mitokondri izole kalp oksijen tüketimi süksinat ve ADP varlığında Devlet 3 solunum sırasında ölçülen ve ADP tüketiminden sonra Devlet 4. solunum sırasında. Edilir Eşleşmeyenler ile izole mitokondri tepki CCCP ilavesi ile ölçülür. Grafikteki Numaraları nmol / dk / mg protein izole mitokondrilerde oksijen tüketimi oranları vardır. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/4131/4131fig3.jpg" /> Şekil 3. Tedbir<html> mitokondri izole kalp membran bütünlüğünün Ment. Mitokondrial membran bütünlüğü süksinat ve ADP varlığında ve sitokrom c ilave edildikten sonra izole mitokondri içinde oksijen tüketimi ölçmek suretiyle belirlenir. Grafikteki Numaraları nmol / dk / mg protein izole mitokondrilerde oksijen tüketimi oranları vardır. <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/4131/4131fig4.jpg" /> MtPTP açıklığın çok parametre ölçümleri için Şekil 4&#39;te. Spectrofluorometer donanım konfigürasyonu. Spectrofluorometer ve donanım yapılandırması bir ışık kaynağı, bir uyarım monokromatör, bir numune kompartımanı ve 525 nm ve 595 nm dalga boyunda sabit emisyon dalga boylarında iki dedektörleri içerir. Detektör 1 Fura FF, yüksek ve düşük Ca2 +, JC-1 monomer sinyal algılama ve şişme sinyali için kullanılır. Dedektör 2 JC-1 toplam sinyal ölçer. jove_content &quot;fo: keep-together.within-page =&quot; always &quot;&gt; <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/4131/4131fig5.jpg" /> Şekil 5. Mitokondri izole kalp mtPTP açılış Multi-parametre ölçümü. mtPTP açılışı 20 mcM CaCl 2 sıralı eklemeler tetikledi ve Ca 2 ile karakterize edilmiştir + mitokondri, mitokondrial membran potansiyeli çöküşü salınımı ve mitokondrial matriks hacmi (şişlik) artmıştır. Extramitochondrial Ca 2 + ve membran potansiyeli rasyometrik göstergeleri Fura FF (yeşil iz) ve JC-1 (kırmızı iz) ile ölçüldü. Mitokondrinin şişmesi 525 nm (siyah iz) de ışık saçılması kayıt ile ölçüldü. JC-1 Özgünlük ve şişme sinyaller 1 uM CCCP ve 5 mg / ml alamethicin (mikrobiyal toksin) ile test edildi. <img alt="Şekil 6" src="/files/ftp_upload/4131/4131fig6.jpg" /> Şekil 6. ÇokluSiklosporin A. Siklosporin varlığında mitokondri izole kalp mtPTP açılış-parametre ölçümleri A (1 uM) mitokondri izole kalp mtPTP açmak için gerekli CaCl2 darbe sayısını artırır.

<ol><li>Kroemer, G., Galluzzi, L., Brenner, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+Membrane+Permeabilization+in+Cell+Death%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial Membrane Permeabilization in Cell Death.</a> Physiol. Rev. 87, 99-163 (2007).</li>
<li>Elrod, J., Wong, R., Mishra, S., Vagnozzi, R. J., Sakthievel, B., Goonasekera, S. A., Karch, J., Gabel, S., Farber, J., Force, T., Brown, J. H., Murphy, E., Molkentin, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclophilin+D+controls+mitochondrial+pore-dependent+Ca2%2B+exchange%2C+metabolic+flexibility%2C+and+propensity+for+heart+failure+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Cyclophilin D controls mitochondrial pore-dependent Ca2+ exchange, metabolic flexibility, and propensity for heart failure in mice.</a> J. Clin. Invest. 120, 3680-3687 (2010).</li>
<li>Hom, J. R., Quintanilla, R. A., Hoffman, D. L., de Mesy Bentley, K. L., Molkentin, J. D., Sheu, S. S., Porter, G. A. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+permeability+transition+pore+controls+cardiac+mitochondrial+maturation+and+myocyte%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">The permeability transition pore controls cardiac mitochondrial maturation and myocyte.</a> 21, 469-478 (2011).</li>
<li>Halestrap, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+is+the+mitochondrial+permeability+transition+pore%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+and+Cellular+Cardiology%22%5BJournal%5D)">What is the mitochondrial permeability transition pore.</a> Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 46, 821-831 (2009).</li>
<li>Wei, A. C., Liu, T., Cortassa, S., Winslow, R. L., O'Rourke, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+Ca2%2B+influx+and+efflux+rates+in+guinea+pig+cardiac+mitochondria%3A+low+and+high+affinity+effects+of+cyclosporine+A%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial Ca2+ influx and efflux rates in guinea pig cardiac mitochondria: low and high affinity effects of cyclosporine A.</a> Biochim. Biophys. Acta. 1813, 1373-1381 (2011).</li>
<li>Saks, V. A., Kuznetsov, A. V., Kupriyanov, V. V., Miceli, M. V., Jacobus, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creatine+kinase+of+rat+heart+mitochondria.+The+demonstration+of+functional+coupling+to+oxidative+phosphorylation+in+an+inner+membrane-matrix+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Creatine kinase of rat heart mitochondria. The demonstration of functional coupling to oxidative phosphorylation in an inner membrane-matrix preparation.</a> J. Biol. Chem. 260, 7757-7764 (1985).</li>
<li>Boehm, E. A., Jones, B. E., Radda, G. K., Veech, R. L., Clarke, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+uncoupling+proteins+and+decreased+efficiency+in+palmitate-perfused+hyperthyroid+rat+heart%5BTitle%5D)+AND+%22AJP+-+Heart%22%5BJournal%5D)">Increased uncoupling proteins and decreased efficiency in palmitate-perfused hyperthyroid rat heart.</a> AJP - Heart. 280, 977-983 (2001).</li>
<li>Fontaine, E., Eriksson, O., Ichas, F., Bernardi, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+the+Permeability+Transition+Pore+in+Skeletal+Muscle+Mitochondria%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Regulation of the Permeability Transition Pore in Skeletal Muscle Mitochondria.</a> J. Biol. Chem. 273, 12662-12668 (1998).</li>
<li>Berman, S. B., Watkins, S. C., Hastings, T. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+biochemical+and+ultrastructural+comparison+of+mitochondrial+permeability+transition+in+isolated+brain+and+liver+mitochondria%3A+evidence+for+reduced+sensitivity+of+brain+mitochondria%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Quantitative biochemical and ultrastructural comparison of mitochondrial permeability transition in isolated brain and liver mitochondria: evidence for reduced sensitivity of brain mitochondria.</a> Exp. Neurol. 164, 415-425 (2000).</li>
<li>Panov, A., Dikalov, S., Shalbuyeva, N., Hemendinger, R., Greenamyre, J. T., Rosenfeld, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Species-+and+tissue-specific+relationships+between+mitochondrial+permeability+transition+and+generation+of+ROS+in+brain+and+liver+mitochondria+of+rats+and+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Species- and tissue-specific relationships between mitochondrial permeability transition and generation of ROS in brain and liver mitochondria of rats and mice.</a> Am. J. Physiol. Cell Physiol. 292, 708-718 (2007).</li>
<li>Frezza, C., Cipolat, S., Scorrano, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organelle+isolation%3A+functional+mitochondria+from+mouse+liver%2C+muscle+and+cultured+filroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Organelle isolation: functional mitochondria from mouse liver, muscle and cultured filroblasts.</a> Nature Protocols. 2, 287-295 (2007).</li>
<li>Pallotti, F., Lenaz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+subfractionation+of+mitochondria+from+animal+cells+and+tissue+culture+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines.</a> Methods Cell Biol. 80, 3-44 (2007).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Burada sunulan protokol mitokondri izole kalp (Şekil 1 ve Şekil 4) permeabilite geçiş gözenek açılması değerlendirmek için gerekli deney adımları açıklar: fare kalp mitokondri izolasyon prosedürü, bütünlük ve işlevselliği sağlamak solunum kontrolleri, mitokondriyal parametreleri sırasında takip mtPTP açılış ve ölçüm için kullanılan boyalar, spektrofluorometrik enstrümantasyon, kurma ve mtPTP açılış karakterizasyonu. Bu protokol istihdam spectrofluorometer aynı anda bu üç parametrenin hı...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td></tr><tr><td> Tripsin </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T3030 </td></tr><tr><td> Tripsin inhibitörü (soya) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T9128 </td></tr><tr><td> Sodyum hidrosülfit </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 71699 </td></tr><tr><td> Rotenon </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> R8875 </td></tr><tr><td> Sitokrom c </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C7752 </td></tr><tr><td> Alamethicin </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A4665 </td></tr><tr><td> CCCP </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C2759 </td></tr><tr><td> Bir Siklosporin </td><td> Calbiochem </td><td> 239835 </td></tr><tr><td> Fura FF </td><td> Invitrogen </td><td> F14180 </td></tr><tr> &lt;td&gt; JC-1 </td><td> Invitrogen </td><td> T3168 </td></tr><tr><td> Doku değirmeni Teflon havaneli 15 ml Potter-Elvehjem </td><td> Wheaton Sektörler </td><td></td></tr><tr><td> Tepegöz karıştırıcı </td><td> Wheaton Sektörler </td><td> 903475 </td></tr><tr><td> Oxytherm (sıcaklık kontrollü oksijen elektrodu) </td><td> Hansatech Aletleri </td><td></td></tr><tr><td> QuantaMaster 80 çift emisyon spectrofluorometer </td><td> Foton Technology International, Inc </td><td></td></tr></tbody></table>

mitokondri İzole fare heart geçirgenliği geçiş gözenek açma multi-parametre ölçümü

Multi-parameter Measurement of the Permeability Transition Pore Opening in Isolated Mouse Heart Mitochondria

Mitokondriyal permeabilite geçiş gözenek (mtPTP) 1.5 kDa daha küçük bir moleküler kütleye sahip çözünenlerin taşımak için iç mitokondrial membran oluşturan bir non spesifik kanalıdır. Gözenek kesin moleküler kimlik tartışmasının altında hala olmasına rağmen, bu tür Siklofilin D VDAC ve ANT gibi proteinlerin oluşumunu mtPTP katkıda bulunur. Hücre ölümü mtPTP açılış tutulumu iyi 1 yerleşmiş olmakla birlikte, biriken kanıtlar mtPTP mitokondrial Ca 2 + homeostaz 2, biyoenerji ve redoks 3 sinyal sırasında bir fizyolojik rol oynar belirtir. mtPTP açılış matrisi Ca 2 ile tetiklenir + ama faaliyet gibi oksidatif stres, adenin nükleotid tükenmesi, Pi yüksek konsantrasyonlarda, mitokondriyal membran depolarizasyon veya ayrılmasının ve 4 uzun zincirli yağ asitleri gibi diğer bazı faktörler tarafından modüle edilebilir. vitro, mtPTP yılında açılması ACH olabilirCa 2 + eksojen eklemeler (kalsiyum tutma kapasitesi) ile mitokondrial matriks içine Ca 2 + konsantrasyonu arttırarak ieved. Ca 2 mitokondri içindeki + düzeyleri belirli bir eşiğin ulaştığınızda, mtPTP açar ve Ca 2 kolaylaştırır + sürümü, proton itici güç yitimi, membran potansiyeli çöküşü ve sonuçta rüptürü yol mitokondrial matriks hacmi (şişlik) bir artış dış mitokondriyal membran ve organel fonksiyon geri dönüşümsüz kaybı. Burada mitokondri izole fare kalbinde mtPTP açılış kapsamlı karakterizasyonu sağlar florometrik tahlil açıklar. Mitokondrial Ca 2 + işleme (as Ca 2 tarafından tahlil orta + konsantrasyonu ölçülen alımı ve salınımı,), mitokondrial membran potansiyeli ve mitocho: assay mtPTP açılış oluşur değişmiş 3 mitokondriyal parametrelerin eş zamanlı ölçümü içerirndrial hacmi. Ca2 için kullanılan renklendiriciler deney ortamı ile mitokondriyal zar potansiyeli + ölçüm Fura FF, bir zar laktobionat, Ca 2 + ve JC-1, bir katyonik varlığında uyarma dalga boyunda bir değişim geçirir rasyometrik gösterge vardır sırasıyla, düşük ve yüksek membran potansiyelinde yeşil monomerlerin veya kırmızı agregaları rasyometrik göstergesi. Mitokondriyal hacmindeki değişiklikler mitokondriyal süspansiyon ışık saçılması kaydederek ölçülür. Yüksek kaliteli, fonksiyonel mitokondri mtPTP açılış tahlil için gerekli olduğundan, biz de sağlam, son derece birleştiğinde ve fonksiyonel izole kalp mitokondri elde etmek için gerekli adımları açıklar.

Mitokondri izole fare kalbinde mitokondriyal permeabilite geçiş gözenek açılması ölçümü için bir spektrofluorometrik protokolü sunulmuştur. Tahlil mitokondri Ca eşzamanlı ölçüm içerir<sup&gt; 2 +</sup&gt; Taşıma, mitokondriyal membran potansiyeli ve mitokondriyal hacmi. Mitokondri, yüksek kaliteli ve fonksiyonel kalp elde edilmesi için işlem de tarif edilmektedir.

Mitokondri İzole Fare Heart Geçirgenliği Geçiş Gözenek Açma Multi-parametre ölçümü

Mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözenekleri (mtPTP), çözünen maddeleri taşımak amacıyla mitokondri iç zarında oluşan spesifik olmayan kanallardır...

Bu videonun amacı, fare kalbinden izole edilen mitokondrilerde mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözeneklerinin açılmasını karakterize etme prosedürünü açıklamaktır. İlk olarak, fare kalplerinden mitokondriler izole edilir.Diferansiyel santrifüj yöntemi kullanılarak izole edilen mitokondrilerin kalitesi, solunum kontrol oranını ölçmek ve mitokondriyal membran bütünlüğünü değerlendirmek amacıyla bir bilgisayara bağlı oksijen elektrodu kullanılarak belirlenir. Ardından, spektroflorometrik cihazlar kullanılarak kalsiyum yönetimi, mitokondriyal membran potansiyeli ve mitokondriyal hacmin eş zamanlı ölçümleri, geçirgenlik geçiş gözeneklerinin açılma durumunu belirlemek için kullanılır.Elde edilen veriler, kalsiyum tutma kapasitesi ve mitokondriyal geçirgenlik geçişinde farklılıklar göstermiştir. İzole mitokondrilerin düşük hassasiyeti ve mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözeneklerinin açılması, mitokondriyal fizyoloji ve anatomide birkaç düzeyde meydana gelen değişiklikleri içeren karmaşık bir fenomendir.Bu tekniğin mevcut yöntemlere göre temel avantajı, aynı anda birden fazla parametrenin ölçülmesinin, kalsiyum, mobilizasyon veya şişme gibi tekil parametrelerin tek başına ölçülmesine kıyasla fenomene dair daha kapsamlı bir tablo sunmasıdır. Prosedüre başlamadan önce, mitokondri izolasyon tamponunu çözdürün ve pH değerinin 7.4 olması gerektiğini kontrol edin. Ardından, kullanılacak tüm tamponları, kapları ve tüpleri buz üzerine yerleştirin. Mitokondri izolasyon protokolünün tüm adımlarının buz üzerinde gerçekleştirilmesi gerektiğini unutmayın.Ötanazi uygulanmış farelerin kalplerini bir Petri kabına yerleştirin ve üzerindeki kanı soğuk mitokondri izolasyon tamponu ile durulayın. Ardından, kalpleri bir bistüri yardımıyla yeni bir Petri kabına aktarın, yağ dokusunu ve atriyumları uzaklaştırın, daha sonra homojen bir ürün elde edilene kadar kalpleri ince ince kıyın.Kıyılmış kalpleri 50 milliliter'lik konik tüpe aktarın. İçeriğinde 0.1 milligram per milliliter tripsin bulunan 10 milliliter mitokondri izolasyon tamponu ekleyin ve örneğin buz üzerinde 10 dakika boyunca sindirilmesini sağlayın. Tripsin kullanımının izole edilen mitokondri verimini artırdığını ve mitokondri hazırlıkları arasında sabit tutulması gerektiğini unutmayın.Bununla birlikte, enzimin iyonlarla etkileşime girmediğinden emin olmak için, izole edilen mitokondrilerin fonksiyonelliğinin tripsin kullanılmadan elde edilen preparatlar üzerinde test edilmesini öneririz. İnkübasyon sonrası, %0,1 yağ asidi içermeyen BS, a ve beş miligram tripsin inhibitörü içeren 10 mililitre mitokondri izolasyon tamponu ekleyin ve tüpü birkaç kez ters çevirerek karıştırın. Tripsini nötralize etmek için, sindirilmiş dokuyu düşük ila orta hızda, dört derece Celsius'ta bir dakika santrifüj ederek geri kazanın.Santrifüj sonrası resüspansiyondan sonra, örneği buz üzerinde tutarak, %0,1 yağ asidi içermeyen BSA içeren sekiz mililitre mitokondri izolasyon tamponunda süspande edin. Örneği, Teflon havan eli olan motorlu bir Dounce homojenizatör kullanarak 1.200 ile 1.400 RPM arasında dört ila altı geçişle homojenize edin. Homojenatı 15 mililitrelik konik bir tüpe aktarın ve 4 °C'de 10 dakika boyunca 800 ×g'de santrifüjleyin.Çekirdekleri ve doku kalıntılarını çöktürmek için. Santrifüjden sonra, mitokondri içeren süpernatantı mikro santrifüj tüplerine aktarın ve 4 °C'de 15 dakika boyunca 8,000 ×g hızında santrifüjleyin. Santrifüj sonrası, pelletin üzerinde beyaz bir tabaka oluşacaktır.Mitokondriyal peletin üzerindeki beyaz tabakayı dikkatlice aspire etmek ve uzaklaştırmak için bir vakum sistemi kullanın. Ardından, mitokondrileri içeren geri kalan daha koyu renkli peleti bir mililitre mitokondri izolasyon tamponu içerisinde yeniden süspanse edin.Ardından, mitokondriyaları 4 °C'de 10 dakika boyunca 8,000 ×g'de santrifüj edin. Süpernatanı uzaklaştırın ve mitokondri pelletini 150 µL mitokondri izolasyon tamponu içerisinde yeniden süspande edin; mitokondriyaları buz üzerinde muhafaza edin.İzole mitokondrilerin solunumu, bir bilgisayara bağlı ve oxy. The plus yazılımı ile kontrol edilen bir oxy thermal oksijen elektrodu ile ölçülür. Oksijen elektrodu, deney günü kalibre edilmelidir. Son konsantrasyonu 1 µM rotenon içeren iki mL mitokondri solunum tamponu oxy odasına ekleyin, odayı mühürleyin ve oksijen sinyalinin kaydına başlayın.Sistem tarafından kaydedilen ve bilgisayar ekranında görüntülenen sinyal, oxy therm haznesindeki oksijen konsantrasyonu ile orantılıdır. Oksijen sinyali stabilize olduğunda, 250 µg mitokondri ekleyin ve bir dakika boyunca bazal respirasyonu kaydedin. Mitokondriler endojen substratlar üzerinde solunum yaptıkları için, bu noktadaki respirasyon çok düşük olmalıdır.Bu, durum bir solunumdur. Kompleks iki'de mitokondriyal solunumu başlatmak için final konsantrasyonu 5 mM olacak şekilde süksinat ekleyin ve sinyali bir dakika boyunca kaydedin. Durum iki solunumu sırasında oksijen tüketimi artmalıdır.Durum respirasyonunu indüklemek için, final konsantrasyonu 150 micromolar olacak şekilde DP ekleyin. Bu noktada, oksidatif fosforilasyon yoluyla TP sentezi nedeniyle oksijen tüketimi artmalıdır. Respirasyon yavaşlayana kadar sinyali kaydedin; bu durum DP tüketimini ve durum dört respirasyon kaydına geçişi gösterir.Dördüncü aşama, en az bir dakika boyunca respirasyon. Final konsantrasyonu 1 µM olacak şekilde CCCP ekleyin ve sinyali bir dakika boyunca kaydedin. Bu noktada, ayrık (uncoupled) respirasyon maksimum seviyede olmalıdır.Durum üç solunumu sırasındaki oksijen tüketim hızını, durum dört solunumu sırasındaki oksijen tüketim hızına bölerek solunumsal kontrol oranını (RCR) hesaplayın; hedef RCR değeri dörtten büyük olmalıdır. Ardından, mitokondriyal membran bütünlüğünü değerlendirmek için, yeni bir mitokondri örneğine final konsantrasyonu 1 mM olacak şekilde DP ekleyerek durum üç solunumunu başlatın.Ardından bir dakika boyunca oksijen tüketimini kaydedin, 10 µM sitokrom C ekleyin ve iki ila üç dakika boyunca oksijen tüketimini tekrar kaydedin. İyi bir mitokondri hazırlığında, sitokrom C sağlam mitokondriyal membranlardan geçemeyeceği için respirasyonda bir artış olmaz veya çok küçük bir artış görülür. Respirasyondaki artış, mitokondriyal membranların parçalandığını veya hasar gördüğünü gösterir.Mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözeneklerinin çok parametreli ölçümü için kullanılan düzenek, Felix GX programı tarafından bilgisayar kontrollü bir kuantum master çift emisyonli spektroflorimetreden oluşmaktadır. Felix GX programını kullanarak çok boyutlu bir veri toplama protokolü oluşturun ve rasyometrik boyalar olan Forer ve JC-1 için kalsiyum, mitokondriyal membran potansiyeli ve şişme ölçüm parametrelerini girin; Forer oranı ve JC-1 oranı için türetilmiş izler oluşturun. Tek kullanımlık dört taraflı meth ACRL vete'ye, final konsantrasyonu 1 µM rotenon, 5 mM süksinat ve 800 nM olan 1 mL mitokondri assay tamponu karıştırın. Forer için 250 µg mitokondri ekleyin ve numuneyi spektroflorimetrenin numune bölmesine yerleştirin.Bir dakika sonra floresan sinyallerini kaydetmeye başlayın, veri toplamayı durdurun, 500 nanomolar JC-1 ekleyin ve ardından veri toplamayı yeniden başlatın. JC-1 oran sinyali, aktif mitokondriler tarafından boya alımını belirtecek şekilde artmalıdır. JC-1 sinyali bir platoya ulaşana kadar kayda devam edin.Genellikle beş dakika içinde, final konsantrasyonu 20 micromolar olacak şekilde kalsiyum klorür ekleyin. Analiz tamponunda artan kalsiyum varlığını temsil eden Fluor FF oran sinyalinde anlık bir artış, ardından mitokondriyal kalsiyum alımı nedeniyle kademeli bir azalma görülmelidir. JC one oran sinyali, hafif mitokondriyal membran depolarizasyonuna işaret eden kısa süreli ve geçici bir azalma göstermelidir.ER FF oranı sinyali, genellikle 20 µM kalsiyum klorür uygulamasının ardından bir ila 1,5 dakika içinde bazal seviyeye döndüğünde, mitokondriler kalsiyum biriktiremeyip kalsiyumu analiz tamponuna salmaya başlayana kadar sabit aralıklarla darbeler vermeye devam edin. Mitokondriyal geçirgenlik geçiş porunun açılması, kalsiyum salınımı nedeniyle URA FF oranı sinyalindeki eş zamanlı artışla gözlemlenir. C 56 black six J farelerinden izole edilen mitokondrilerde, membran potansiyelinin çökmesi nedeniyle JC one sinyal oranında bir azalma ve mitokondriyal şişme nedeniyle ışık saçılımında bir azalma görülür.Bu videoda gösterildiği gibi, oksijen tüketimi daha sonra süksinat ve ADP varlığında durum üç solunumu sırasında ve burada gösterildiği üzere ADP tüketiminden sonra durum dört solunumu sırasında ölçülmüştür; ADP eklemesi, oksidatif fosforilasyon nedeniyle oksijen tüketimini artırır ve ardından oksijen tüketimi yavaşlar. Tüm ADP tüketildiğinde, izole mitokondrilerinle ilgili eşleşmeyi bozma tepkisi, CCCP eklenmesiyle CCCP varlığında ölçülür. İzole mitokondrilerin membran bütünlüğünü değerlendirmek için oksijen tüketim hızı, durum üç solunumu sırasındakinden daha yüksektir.Oksijen tüketimi, süksinat ve a DP varlığında ve sitokrom C eklemesinden sonra ölçüldü. Burada görüldüğü üzere, sitokrom C eklenmesi, a DP ve süksinata kıyasla oksijen tüketimini anlamlı şekilde artırmamaktadır; bu durum, bozulmamış mitokondriyal membranların sitokrom C'ye geçirgen olmadığını göstermektedir. Mitokondriyal geçirgenlik geçişini değerlendirmek için, izole kalp mitokondrilerinde mitokondriyal kalsiyum tutma kapasitesinin bir göstergesi olarak düşük açılım (poor opening) incelenmiştir. Mitokondriyal geçirgenlik geçişindeki düşük açılım, 20 µM'lık ardışık eklemelerle tetiklenmiştir.Kalsiyum klorür, ekstramitokondriyal kalsiyum ve membran potansiyeli rasyometrik indikatörler ile ölçülmüştür. Yeşil izle gösterilen URA FF ve kırmızı izle gösterilen JC-1 kullanılmıştır; mitokondri şişmesi, siyah izle gösterilen 525 nanometredeki ışık saçılımının kaydedilmesiyle ölçülmüştür. JC-1 ve şişme sinyallerinin özgüllüğü, 1 µM CCCP ve 5 µg/mL mikrobiyal toksin etin ile test edilmiştir; burada görüldüğü üzere, mitokondriler tarafından kalsiyum alımına mitokondriyal membranın hafif bir depolarizasyonu eşlik etmektedir.Dört kalsiyum pulsundan sonra, mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözeneklerinin açılması, kalsiyum salınımını belirten URA FF artışı olarak görülür. Membran potansiyeli çöküşünü belirten JC-1 azalması ve mitokondriyal matris hacmindeki artış, mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözenekleri açılmasının özgüllüğünü doğrulamak için şişme belirteci olarak ışık saçılımındaki azalma şeklinde izlenir. Aynı ölçümler, mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözenekleri bileşeni siklofillin D'ye bağlanan siklosporin A varlığında gerçekleştirilmiştir. Bu şekildete gösterildiği gibi, bir mikromolar siklosporin A varlığı, kontrol örneğine kıyasla mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözeneklerini açmak için gereken kalsiyum klorür pulslarının sayısını artırır.Bu videoyu izledikten sonra, izole kalp mitokondrilerinde mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözeneklerinin açılmasının nasıl değerlendirileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Bu prosedürün en zor yönü, iyi kalitede izole mitokondri elde etmektir. Bu nedenle, mitokondrileri daha ileri deneyler için kullanmadan önce kalite kontrol ölçümlerinin yapılması önemlidir.

multi-parameter-measurement-permeability-transition-pore-opening

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Örnekler arasındaki mitokondriyal membran potansiyelinin karşılaştırılması, hücresel durum hakkında değerli bilgiler verir. Mitokondriyi izole etmek ve floresan kullanarak inhibitörlere ve ayrıştırıcılara yanıtı değerlendirmek için ayrıntılı adımlar açıklanmaktadır. Bu protokolün yöntemi ve faydası, bir hücre kültürü ve hücresel stresin hayvan modeli kullanılarak gösterilmiştir.

İzolasyon ve Kültür Hücrelerinin ve Fare Doku gelen Mitokondri Fonksiyonel Analizi

Mitokondri onları sitozolik Ca şekillendirmek için 2+ hücre içinde sinyal sağlayan (2+ Ca) kalsiyum tecrit kendi iç zarı (Δ Ψm) arasında elektrokimyasal potansiyeli kullanabilir. Floresan boyalar ve konfokal mikroskopi kullanılarak canlı hücreler eş zamanlı olarak ölçüm mitokondri Ca 2 + alımı ve ΔΨ m için bir yöntem tarif eder.

Floresan Mikroskopi Canlı hücreler Potansiyel Mitokondriyal Kalsiyum ve Mitokondriyal Membran Eşzamanlı Ölçümü

Burada, iki protokol mitokondrial Ca2 + akını izole mitokondri ve kültürlü hücreleri ölçümü için mevcut. İzole mitokondri için biz bir plaka okuyucu tabanlı Ca2 + alma detaylı tahlil Ca2 + hassas kullanarak boya kalsiyum yeşil-5N. Kültürlü hücreler için Ca2 + boya Rhod-2/AM kullanarak bir confocal mikroskopi yöntemi açıklanmaktadır.

Mitokondrial kalsiyum akını izole mitokondri ve kültürlü hücreleri analizleri

Burada, hipoksi/reoxygenation veya koruyucu bir ajan olmadan maruz sonra hücreleri mitokondrial membran potansiyelini değerlendirmek için Dizayn Merkezi-1 boya kullanan bir iletişim kuralı mevcut.

Kardiyak miyositler mitokondrial membran potansiyeli hipoksi/Reoxygenation sonra ölçmek için akış sitometresi tabanlı tahlil

Burada gösterdi (1) taze olduğu gibi beyin endotel "boru" ve endotel kalsiyum ve membran endotel kaynaklı hyperpolarization sırasında potansiyel (2) eşzamanlı ölçümler sorunlarının yalıtılması iletişim kurallarıdır. Ayrıca, bu yöntemler farmakolojik endotel hücre kalsiyum ve bireysel veya etkileşimli deneysel değişkenler olarak elektrik sinyali ayarlamak için izin verir.

Hücre içi kalsiyum ve taze izole ve olduğu gibi fare serebral endotel membran potansiyeli eşzamanlı ölçümler

Bu çalışmada, mikro plaka bazlı respirometri ile birlikte rekombinant perfringolysin O kullanarak mitokondriyal solunum substrat akısını test etmek için değiştirilmiş bir protokol açıklıyoruz. Bu protokol ile metforminin iki farklı tümör hücre hattının mitokondriyal solunumunu nasıl etkilediğini gösteriyoruz.

Rekombinant Perfringolysin O-Permeabilized Hücrelerde Mitokondriyal Substrat Akılarının Ölçülmesi

Sürekli perfüzyon modunda hiperpolarize 13C etiketli metabolitin izole perfüze edilmiş bir fare kalbine uygulanması için deneysel bir kurulum tanımladık. Özel bir 13C-NMR edinme yaklaşımı, metabolik enzim aktivitesinin gerçek zamanlı olarak nicelleştirilmesini sağladı ve multiparametrik 31P-NMR analizi, doku ATP içeriğinin ve pH'ının belirlenmesini sağladı.

Hiperpolarize [1-13 C] Piruvat ve13 C/31P NMR Spektroskopisi ile İzole Perfüze Fare Kalbinde Kardiyak Metabolizmanın İncelenmesi

Bu yöntem, mitokondriyal geçirgenlik geçiş gözeneklerinin düşük iletkenlikli proton sızıntısına katkısından, vahşi tip kontrolüne kıyasla artmış kardiyomiyosit mitokondriyal koenzim Q içeriğine sahip yenidoğan kırılgan X sendromlu farelerde gözenek açılması için voltaj eşiğini belirlemek için kullanır.

Mitokondriyal Geçirgenlik Geçiş Gözünün Koenzim Q Fazlalığı Ortamında Açık Olasılığının Değerlendirilmesi

Bu protokol, kısmen segmente edilmiş fonksiyonel CoQ havuzlarının varlığını incelemek için Na + 'nın varlığında veya yokluğunda mitokondriyal karmaşık aktiviteler CI + CIII ve CII + CIII kullanan karşılaştırmalı bir tahlili tanımlar.

İç Mitokondriyal Membranın Na+' ya Duyarlılığı Kısmen Segmente Edilmiş Fonksiyonel CoQ Havuzlarını Ortaya Çıkarır

Burada, insan veya fare kasından taze geçirgen iskelet kası liflerinde mitokondriyal oksidatif fosforilasyonu ölçmek için kapsamlı bir yöntem açıklıyoruz. Bu yöntem, mevcut mitokondriyal ağları ve membran bütünlüğünü korurken mitokondriyal solunumun gerçek zamanlı olarak ölçülmesine ve yakıt tercihinin ve metabolik esnekliğin değerlendirilmesine olanak tanır.

İnsan ve Fare İskelet Kası Liflerinde Mitokondriyal Solunumun Yüksek Çözünürlüklü Respirometri ile Ölçülmesi

Öğrenin, izole fare kalp mitokondrilerinde mitokondri geçirgenlik geçiş gözenek açılmasını çok parametreli ölçümle nasıl karakterize edeceğinizi. Spektroflorometrik yöntemle kalsiyum tutma kapasitesi ve membran potansiyeli değerlendirilir.

Mitokondri İzole Fare Heart Geçirgenliği Geçiş Gözenek Açma Multi-parametre ölçümü

Daha fazla video keşfet