Name: Mikro-Bilgisayarlı Tomografi ile Çıplak Fareler içine İnsan Yağ Enjeksiyonu Canlılığına Değerlendirilmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 13 s
Description: Öğrenin, mikro BT kullanarak çıplak farelerde yağ grefti hacim tutunumunu değerlendirmek için güvenilir bir fare modeli geliştirmeyi. Bu yöntem, greft hazırlama tekniklerini karşılaştırarak klinik sonuçları iyileştirir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, ACS Franklin H. Martin Fakültesi Araştırma Bursu, Hagey tarafından desteklenen Meşe Vakfı, Pediatrik Rejeneratif Tıp Hagey Laboratuvarı ve MTLDCW Ulusal Sağlık, Hibeler NIHR21DE019274, NIHR01DE019434, NIHR01DE021683 Enstitüsü ve NIHU01HL099776 tarafından desteklenen Pediatrik Rejeneratif Tıp ve Stanford Üniversitesi Çocuk Sağlığı Araştırma Enstitüsü Fakültesi Akademik Ödülü için laboratuvar. Mikro-CT İn Vivo Görüntüleme Yenilik Stanford Merkezi&#39;nde gerçekleştirildi.

NOT: Deneysel protokoller ve yağ elde etmek için hasta onam formları gözden ve Stanford Üniversitesi Kurumsal Değerlendirme Kurulu (Protokol # 2188) tarafından onaylanmıştır. Tüm hayvan prosedürleri Protokol # 9999 kapsamında Laboratuar Hayvan Bakımı (APLAC) Stanford İdari Heyeti tarafından kabul edildi. Tüm deneyler hayvan güvenliği ve insani bakım kurallarına sıkı sıkıya bağlı kalmanın ile yapılmıştır. 1. Yağ Toplama <ol><li> Coleman prosedür 17-19 kullanarak, seçmeli liposuction uygulanan sağlıklı kadın hastaların karın, kanadını, ve / veya uyluk bölgelerinden insan yağ dokusu edinin. </li><li> Aşılama için lipoaspirate işlemek için, yağ 30 dakika yerleşmek için izin vererek başlar. </li><li> Lipoaspirate genellikle altta üstündeki yağ, ortada yağ ve kan, üç katmanları içine yerleşir. Aspire ve üst petrol tabakası ve alt kan katmanı atın. </li><li> Ayrıca kalan tumesc kaldırmak içinent akışkan ya da hücre döküntüsü, 350 x g&#39;de 5 dakika 4 ° C yağ santrifüj ve alt sulu tabaka aspire. </li><li> % 20 dağıtım hata sağlayan, aşılama için gerekli olan yağ miktarını hesaplayın ve 50 ml konik (lar) istenen yağ hacmi aktarın. Aşılama için gerekli olan yağ mikrolitre elde etmek için çalışma fare sayısı olarak 400 ile çarpın. </li><li> Bu noktada, performans Celi Lipotransfer 20,21 Destekli ise, buz üzerinde aşılama için yağın yer hacmi. Sonra Zuk ve ark 22 tarafından tarif edilen standart tekniği kullanılarak, kalan yağdan yağ kaynaklı stromal hücreler (TSK) hasat. </li></ol> 2. Yağ Tırnak <ol><li> Kadın, deneysel çalışma için homozigot CD-1 çıplak fareler edinin. Yaş 12 hafta - 8 arası fareler seçin. </li><li> Yaklaşık 10 dakika boyunca, 2 L / dakika ile% 2.5 izofluran / oksijen karışımı ile bir portatif kutu içine anestezi yer fare teşvik etmek için. Tavsiye isof unutmayınlurane doz fare suşu ile değişir. </li><li> Fare solunum hızı yavaşladı zaman bir ayak tutam yeterli sedasyon onaylayın. Fare hem gözlere veteriner yağlama oftalmik merhem sürün. </li><li> Fare ayak tutam yanıt olarak korkmak etmez, bu anestezi yeterli bir düzlem teyit etmektedir. / Dak 1-2 L% 2.5 izofluran / oksijen karışımı teslim bir roket ucu konisi içine farenin burnunu yerleştirin. Fare ayak tutam gelen çekilir ise, 5 dakika sonra yok etme kutusu ve tekrar test dönün. </li><li> % 70 etanol solüsyonu ardından% 2.5 povidon-iyot ile kafa derisi sterilize sonra farenin altındaki steril alan ayarlayın ve. İki kez daha tekrarlayın. </li><li> Fare üzerinde cerrahi perdeler yerleştirin ve steril alan korumak için dikkatli olun. Steril cihazlar, eldiven ve PPE her zaman kullanılmalıdır. </li><li> Yağ hacmi, daha önce buz üzerine yerleştirildi aşılanmak için, önce teslim edilmeden önce oda sıcaklığına kadar ayarlamak için yağ sağlar. </li><li> 1 ml ile 1 ml Luer-kilit şırınga Backloadşişman. </li><li> Şırınganın ucuna bir 14 G, 8 cm uzunluğunda yağ grefti kanül bağlayın. </li><li> Yağ 200 ila 400 ul kadar şırınga itme asal sistem şırınga içinde kalır. Şırınga itme yaparken kanül tamamen uzak kanül delik çıkan yağ gözlemleyerek yağ ile dolu olduğunu onaylayın. </li><li> Ince forseps kullanarak, kafatasının kaudal-en yönü örten orta hatta dorsal cilt kaldırın. Ince makas kullanarak deride kesilmiş bir 1.5 mm yapın. </li><li> Daha sonra aşılama gerçekleştirildikten sonra yara araya kenarları getirmek için kullanılacak kesme ortasından tek 6-0 naylon dikiş yerleştirin. Sütürü. </li><li> Cilt kesisi ile kanül takılması ve örten deride herhangi bir bağ dokusu ekleri ücretsiz kafatası üzerinde bir yelpaze şeklinde desen ileri geri kanül geçirerek kafatası üzerinde deri altı cebe oluşturun. </li><li> Cep oluşturulduktan sonra, c konumunaDoğrudan ucu kadar kafatası üzerinde fare orta hatta annula sadece göz arasında çizilen bir çizginin gerisinde olmalıdır cebinden rostral-en yönü yatıyor. (Şekil 1A) </li><li> Yavaşça geri kanül çekerken pistonu ilerleyen, retrograd olarak yağ enjekte. Forseps kullanarak, bir araya yara kenarlarını getirmek ve cebinden sızmasını herhangi bir yağ tutmak için onları yukarı kaldırın. </li><li> Daha önce ilk düğüm cilt hafifçe yatıyor emin, yerleştirildi dikiş kravat. Üç kare knot kravat ve 3 mm kuyruğu ile dikiş kesti. (Şekil 1B) </li><li> Görselleştirme ve cep doldurulmadığından ve cep örten deri gergin değildir manuel palpasyon ile onaylayın. Cep doldurursanız, dikiş kesim ve cebinden içinde tüm yağ çıkarmak. Fosfat tamponlu tuzlu su (PBS), pH 7.4 ile cep yıkayın ve yağ daha küçük bir hacmi yeniden enjekte edilir. </li><li> Bir fareyi çıkarınkendisi tarafından temiz bir kafes içinde onun arkasında veya yanında nesthesia ve yer. Düzenli nefes normal hareketler, kanama olmaması ve ağrı veya sıkıntı belirtileri hayvan izleyin. Hayvan acı ise kadar 48 saat boyunca buprenorfın 0.1 mg / kg subkutan her 6 saat yönetme. </li><li> Hayvan katılımsız ayrılmadan önce sternum yatma korumak için yeterince uyandı emin olun. Tamamen iyileşene kadar diğer hayvanlarla bir kafese hayvan koymayın. </li><li> 4 saat sonra, hayvan yemek ve içmek hareket ve normal nefes mümkün olduğundan emin olun ve ameliyat sitesinden kanama hiçbir olduğunu. Hayvan bakım tesisi için dönün. </li></ol> 3. Mikro-BT <ol><li> Tarama ameliyat sonrası 3. günde başlangıç ​​hacmi fareler ve ameliyat sonrası 2, 4, 6 ve 8 taramalar tekrarlayın. </li><li> Her zaman noktasında fareler görüntüleme yaparken, S daha önce belirtildiği gibi öncesi ve işlem sonrası sedasyon ve hayvan bakım yönergeleri izleyin2,2-2,4 ve 2,17-2,19 Teps&#39;in. </li><li> 100 mm veya daha iyi bir rekonstrüksiyon voksel boyutu ile bir mikro-CT tarayıcı taramalar yapın. </li><li> 80 kVp bir tepe X-ışını kilovoltajin 450 uA bir anot akımı, her bir fare için bir 9 dakika tarama sırasında yaklaşık 5 centiGy bir katyon dozunun tatbik edilmesi. Bu değerler tarama protokolü bağlı olarak değişebilir unutmayın. </li><li> İlk tarama yapmadan önce, hava, su ve kemik yoğunluğu arasında ayırım bir görüntüleme fantom mikro-BT kalibre. </li><li> İki üst fareler ve altta iki ile ventral pozisyonda tarayıcı içine dört fareler yerleştirin. Bir tarama yatak kolayca fare gövdesini ve burun konileri gibi 10 ml şırınga tutmak için 60 ml şırınga kullanılarak inşa edilebilir. 23 </li><li> Dakika başına 1-2 L% 2.5 izofluran / oksijen karışımı ile anestezi altında fareler koruyun. </li><li> Izci görüntü ile onaylayın ilk servikal vertebra için burundan ve kafatasının üst SKU tabanına fare tüm kafatası,ll, görüntülü edilecektir. </li></ol> 4. Mikro-BT Analizi <ol><li> Piksel yoğunluğu için eşikler kullanarak vokselleri seçerek İlgi Bölgeler oluşturulmasını sağlayan bir mikro-BT görüntüleme analiz yazılımı (ROI) ile yeniden görüntüleri açın. Yazılım ayrıca 3D oluşturulması seçilen voksellerin enterpolasyon yoluyla yüzeyleri ve hacim analizi için izin verir. </li><li> İki boyutlu (2D) koronal, aksiyel, sagital ve görünümlerde yeniden BT görüntüleri yükleyerek başlayın. (Şekil 2A) </li><li> Bir kılavuz olarak eksenel dilim kullanarak, yağ grefti en sol yanına gelir sagital dilim gidin. Yağ grefti karşılık gelen tüm vokselleri yakalar piksel yoğunluğu için bir üst ve alt eşiği seçin, ama bu çevredeki doku ve kemik dışlar. (Şekil 2B) </li><li> Daha önce tanımlanmış piksel yoğunluğu eşik kullanarak yağ grefti karşılık sagital görünümde bir ROI tanımlayın. Rgreft sağ-en-boy ulaşana kadar navigasyon, bu prosedürü her beşinci sagital dilim EPEAT. (Şekil 2C) </li><li> Tek bir birleşik 3D ROI içine tüm 2D ROI yıllardan seçilen vokselleri enterpolasyon. (Şekil 2B) </li><li> Yazılım tarafından hesaplanan Kayıt ROI hacmi. </li><li> Nihai yağ grefti hacmi görselleştirmek için 3D isosurface Render. (Şekil 2E) </li><li> Sonraki analizlerde, piksel yoğunluğu maksimum ve minimum eşik değerleri temel analizi için kullanılan aynı tutmak için emin olun. </li></ol> 5. Yağ Hasat <ol><li> Fareler hafta 8 24,25 zaman noktası için tarandıktan sonra, daha önce Steps 2,2-2,4 ve 2,17-2,19 yukarıda açıklandığı gibi fareler uyutmak. </li><li> APLAC yönergeleri izleyerek, onların omurilik sütunları ayırarak fareler euthanize. </li><li> Operatif alanda fare yerleştirin. Tenotominin makas kullanarak dikkatlice cep açın ve t teşrihO yağ grefti gelen deri ve bağ dokusu ekleri örten. </li><li> Bu noktada, greft ekstre yardımcı olmak için üstteki sırt derisi yaması çıkarılması için yardımcı olabilir. (Şekil 3A) </li><li> Hafifçe forseps ile greft üzerindeki çekişi muhafaza ve makas ile serbest gereken gerginlik ardışık noktaları görselleştirmek için bir taraftan diğerine greft çevirin. </li><li> Greft ile çekilen bağ dokusu en aza indirmek için eksize mümkün olduğu greft olarak yakın kalmak. (Şekil 3B) </li><li> Greft eksize sonra, en az 0.01 gram doğru bir daralı ölçekte kitle ölçün. </li><li> Ölçülen kütle değeri kullanılarak yağ greft hacmi ve bir dönüşüm oranı, insan yağ ortalama yoğunluğu (0.9 g / mi) hesaplayın. </li><li> Mikro-CT kullanılarak elde edilen yağ grefti hesaplanan hacmi karşılaştırın. </li><li> Gerekirse yağ greft histoloji veya daha fazla analiz için işlenebilir. </li></ol>

<ol><li>Gir, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fat+grafting%3A+evidence-based+review+on+autologous+fat+harvesting%2C+processing%2C+reinjection%2C+and+storage%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Fat grafting: evidence-based review on autologous fat harvesting, processing, reinjection, and storage.</a> Plast Reconstr Surg. 130 (1), 249-258 (2012).</li>
<li>Kaufman, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+fat+transfer+national+consensus+survey%3A+trends+in+techniques+for+harvest%2C+preparation%2C+and+application%2C+and+perception+of+short-+and+long-term+results%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Autologous fat transfer national consensus survey: trends in techniques for harvest, preparation, and application, and perception of short- and long-term results.</a> Plast Reconstr Surg. 119 (1), 323-331 (2007).</li>
<li>Smith, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+human+fat+grafting%3A+effect+of+harvesting+and+preparation+techniques+on+adipocyte+graft+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Autologous human fat grafting: effect of harvesting and preparation techniques on adipocyte graft survival.</a> Plast Reconstr Surg. 117 (6), 1836-1844 (2006).</li>
<li>Eppley, B. L., Dadvand, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injectable+soft-tissue+fillers%3A+clinical+overview%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Injectable soft-tissue fillers: clinical overview.</a> Plast Reconstr Surg. 118 (4), 98e-106e (2006).</li>
<li>Yarborough, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+treatment+of+soft+tissue+defects+with+injectable+collagen%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">The treatment of soft tissue defects with injectable collagen.</a> Am J Med Sci. 290 (1), 28-31 (1985).</li>
<li>Baumann, D. P., Butler, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soft+tissue+coverage+in+abdominal+wall+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Surg+Clin+North+Am%22%5BJournal%5D)">Soft tissue coverage in abdominal wall reconstruction.</a> Surg Clin North Am. 93 (5), 1199-1209 (2013).</li>
<li>Tukiainen, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chest+wall+reconstruction+after+oncological+resections%5BTitle%5D)+AND+%22Scand+J+Surg%22%5BJournal%5D)">Chest wall reconstruction after oncological resections.</a> Scand J Surg. 102 (1), 9-13 (2013).</li>
<li>Zan, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+treatment+of+facial+soft-tissue+deformities+in+postburn+patients%3A+a+proposed+classification+based+on+a+retrospective+study%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Surgical treatment of facial soft-tissue deformities in postburn patients: a proposed classification based on a retrospective study.</a> Plast Reconstr Surg. 132 (6), 1001e-1014e (2013).</li>
<li>Bucky, L. P., Percec, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+science+of+autologous+fat+grafting%3A+views+on+current+and+future+approaches+to+neoadipogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Aesthet+Surg+J%22%5BJournal%5D)">The science of autologous fat grafting: views on current and future approaches to neoadipogenesis.</a> Aesthet Surg J. 28 (3), 313-321 (2008).</li>
<li>Lee, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+pressure+and+shear+on+autologous+fat+grafting%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">The effect of pressure and shear on autologous fat grafting.</a> Plast Reconstr Surg. 131 (5), 1125-1136 (2013).</li>
<li>Kirkham, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+impact+of+liposuction+cannula+size+on+adipocyte+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">The impact of liposuction cannula size on adipocyte viability.</a> Ann Plast Surg. 69 (4), 479-481 (2012).</li>
<li>Medina, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3rd+et+al.+Polymer+therapy%3A+a+novel+treatment+to+improve+fat+graft+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">3rd et al. Polymer therapy: a novel treatment to improve fat graft viability.</a> Plast Reconstr Surg. 127 (6), 2270-2282 (2011).</li>
<li>Horl, H. W., Feller, A. M., Biemer, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+for+liposuction+fat+reimplantation+and+long-term+volume+evaluation+by+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Technique for liposuction fat reimplantation and long-term volume evaluation by magnetic resonance imaging.</a> Ann Plast Surg. 26 (3), 248-258 (1991).</li>
<li>Har-Shai, Y., Lindenbaum, E. S., Gamliel-Lazarovich, A., Beach, D., Hirshowitz, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+integrated+approach+for+increasing+the+survival+of+autologous+fat+grafts+in+the+treatment+of+contour+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">An integrated approach for increasing the survival of autologous fat grafts in the treatment of contour defects.</a> Plast Reconstr Surg. 104 (4), 945-954 (1999).</li>
<li>Fontdevila, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+the+long-term+viability+of+facial+fat+grafts%3A+an+objective+measure+using+computed+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Aesthet+Surg+J%22%5BJournal%5D)">Assessing the long-term viability of facial fat grafts: an objective measure using computed tomography.</a> Aesthet Surg J. 28 (4), 380-386 (2008).</li>
<li>Meier, J. D., Glasgold, R. A., Glasgold, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+fat+grafting%3A+long-term+evidence+of+its+efficacy+in+midfacial+rejuvenation%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Facial+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Autologous fat grafting: long-term evidence of its efficacy in midfacial rejuvenation.</a> Arch Facial Plast Surg. 11 (1), 24-28 (2009).</li>
<li>Coleman, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+fat+grafts%3A+the+ideal+filler%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Structural fat grafts: the ideal filler.</a> Clin Plast Surg. 28 (1), 111-119 (2001).</li>
<li>Coleman, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+fat+grafting%3A+more+than+a+permanent+filler%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Structural fat grafting: more than a permanent filler.</a> Plast Reconstr Surg. 118 (3 Suppl), 108S-120S (2006).</li>
<li>Pu, L. L., Coleman, S. R., Cui, X., Ferguson, R. E., Vasconez, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autologous+fat+grafts+harvested+and+refined+by+the+Coleman+technique%3A+a+comparative+study%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Autologous fat grafts harvested and refined by the Coleman technique: a comparative study.</a> Plast Reconstr Surg. 122 (3), 932-937 (2008).</li>
<li>Matsumoto, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-assisted+lipotransfer%3A+supportive+use+of+human+adipose-derived+cells+for+soft+tissue+augmentation+with+lipoinjection%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Cell-assisted lipotransfer: supportive use of human adipose-derived cells for soft tissue augmentation with lipoinjection.</a> Tissue Eng. 12 (12), 3375-3382 (2006).</li>
<li>Yoshimura, K., Suga, H., Eto, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose-derived+stem%2Fprogenitor+cells%3A+roles+in+adipose+tissue+remodeling+and+potential+use+for+soft+tissue+augmentation%5BTitle%5D)+AND+%22Regen+Med%22%5BJournal%5D)">Adipose-derived stem/progenitor cells: roles in adipose tissue remodeling and potential use for soft tissue augmentation.</a> Regen Med. 4 (2), 265-273 (2009).</li>
<li>Zuk, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilineage+cells+from+human+adipose+tissue%3A+implications+for+cell-based+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies.</a> Tissue Eng. 7 (2), 211-228 (2001).</li>
<li>Habte, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+a+multiple+mice+holder+on+quantitation+of+high-throughput+MicroPET+imaging+with+and+without+Ct+attenuation+correction%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Impact of a multiple mice holder on quantitation of high-throughput MicroPET imaging with and without Ct attenuation correction.</a> Mol Imaging Biol. 15 (5), 569-575 (2013).</li>
<li>Chung, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-computed+tomography+evaluation+of+human+fat+grafts+in+nude+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+C+Methods%22%5BJournal%5D)">Micro-computed tomography evaluation of human fat grafts in nude mice.</a> Tissue Eng Part C Methods. 19 (3), 227-232 (2013).</li>
<li>Thanik, V. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+murine+model+for+studying+diffusely+injected+human+fat%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">A murine model for studying diffusely injected human fat.</a> Plast Reconstr Surg. 124 (1), 74-81 (2009).</li>
</ol>

Yazarların hiçbirinin rapor edecek herhangi bir rakip mali çıkarı yoktur.

Bu noktaya kadar, pek çok araştırmacı yağ greftlerinin uzun süreli sağkalım ölçmek olmayan görüntüleme yöntemleri dayanıyordu, ancak bu yöntemler çalışma hayvanın kurban gerektirir ve sadece tek bir ölçüm elde var. 3,10-12 Çalışmamız temsil bir fare modelinde yağ aşı yaşamda kalması amacı, gerçek zamanlı kantitatif izin geliştirilmiş bir analiz metodu. Bu süreçte kritik bu sağlam bağışıklık sistemine sahip fare kullanıldığında ortaya çıkabilecek greft reddini engellemektedir yeter...

Yumuşak doku defektleri travma, tümör rezeksiyonu, yaşlanma ve konjenital anomali gibi çeşitli nedenlerle ortaya çıkar. Hastalar için zayıflatıcı olabilirler ve rekonstrüktif cerrahlar için en yaygın, ancak zorlu sorunlardan birini temsil ederler. Yumuşak doku eksikliklerini gidermek için lokal ve serbest flepler, kollajen enjeksiyonları ve sentetik dolgu maddeleri gibi birçok yöntem mevcuttur. 4-8 Bununla birlikte, 1893'te Neuber tarafından belgelenen ilk kullanımından buyana1, otolog yağ transferi, kullanıma hazır, toplanması kolay ve güvenli ve doğal olarak uyumlu olduğu için yumuşak doku açıklarının onarımı için altın standart olmaya devam etmektedir. 1,2
Bu avantajlara rağmen, otolog yağ greftleri, zaman içinde %10-80 arasında değişen tutma oranları ile öngörülemeyen ve değişken sağkalımdan muzdariptir. 1-3,9 Bu beklenen hacim ve simetri kaybını hesaba katmak için, cerrahlar yumuşak doku defektlerini doldururken genellikle aşırı düzeltme yapmalı veya birden fazla takip prosedürü uygulamalıdır.
Kötü vaskülarize greft yatakları bu doku rezorpsiyonundan kısmen sorumludur. Ek olarak, greft sağkalımını karşılaştırmak için bir kıyaslama analiz yönteminin olmaması da rapor edilen sonuçlardaki tutarsızlığa katkıda bulunabilir. Greft hacmini ölçmek için kesin bir yöntem, tutma oranlarını değerlendirirken ölçüm hatasını azaltacaktır. Bu da araştırmacıların greft sağkalımını etkileyen nedensel faktörleri daha doğru bir şekilde belirlemelerine yardımcı olacaktır. Birçok laboratuvar hayvanı modeli, insan yağ grefti sağkalımının hem nicel hem de kalitatif değerlendirmesini kolaylaştırmış olsa da, çoğu histolojik ve biyokimyasal araçlara dayanır ve tek bir ölçüm elde etmek için çalışma hayvanının feda edilmesini gerektirir. 3,10-12 İn vivo yağ grefti hacim retansiyonunu belirlemek için görüntüleme tekniklerinin kullanımı hakkında çok az şey bildirilmiştir.
Bir avuç klinik çalışma, görüntüleme kullanarak daha etkili ölçüm teknikleri göstermiştir. Manyetik Rezonans Görüntüleme (MRG) Hörl ve arkadaşları tarafından kullanıldı.yağ grefti sağkalımını ölçmek için13 ve BT Har-Shai ve ark. tarafından kullanıldı.ve Fontdevila ve ark. HIV'den muzdarip hastalarda aşılama sonrası hacim tutma analizlerinde. 14,15 Üç boyutlu (3D) görüntüleme yazılımı kullanan Meier ve ark. Otolog yağ grefti sonrası insanlarda preoperatif ve postoperatif döneme ait görüntüleri karşılaştırarak hacim kalıcılığı ölçüldü. 16
Ancak, yağ grefti sağkalımını ölçmek için görüntüleme kullanan standart bir yöntem temel bilim araştırmalarında eksiktir. Yağ greftlerinin hacimlerini değerlendirmek için yüksek çözünürlüklü bir görüntüleme yaklaşımı, yalnızca doğru ve tekrarlanabilir hacim ölçümlerine değil, aynı zamanda yağ grefti sağkalımının evriminin gerçek zamanlı bir şekilde görselleştirilmesine olanak tanıyan tekrarlanan ölçümlere de izin verecektir.

<table><tbody><tr><td>SAL lipoaspirat</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj</td><td>Beckman Coulter, Inc., Pasadena, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>50 ml konik tüpler</td><td>BD Biosciences, San Jose, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CD-1 çıplak fareler (Crl: CD1-Foxn1 nu)</td> <td>Charles River Laboratories, Inc., Wilmington, MA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>Henry Schein, Dublin, OH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>% 2.5 Betadine</td><td>Purdue Pharma, LP, Stamford, CT</td><td></td><td></td></tr>% <tr><td>70 Etanol çözeltisi&nbsp;</td><td>Altın Kalkan, Hayward, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1cc luer-lock şırınga</td><td>BD Biosciences, San Jose, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>14 gauge kanül</td><td>Shippert Medical, Centennial, CO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forseps</td><td>Güzel Bilim Araçları, Heidelberg, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tenotomi makası</td><td>Güzel Bilim Aletleri, Heidelberg, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-0 naylon sütür</td><td>Ethicon, Mavi Kül, OH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fosfat tamponlu salin</td><td>Gibco, Carlsbad, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>mikro-CT tarayıcı&nbsp;</td><td>Siemens Sağlık, Pleasanton, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fantom&nbsp;</td><td>TriFoil Imaging, Northridge, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Görüntüleme analiz yazılımı</td><td>IRW, Siemens Healthcare, Pleasanton, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scale&nbsp;</td><td>Mettler-Toledo Uluslararası Uluslararası, Inc., Columbus, OH</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

mikro-bilgisayarlı tomografi ile Çıplak fareler içine İnsan yağ enjeksiyonu canlılığına değerlendirilmesi

Assessment of Viability of Human Fat Injection into Nude Mice with Micro-Computed Tomography

Lipotransfer vücutta yumuşak doku eksikliklerinin tedavisinde cerrahın araçları arasında önemli bir araçtır. Yağ o, hazır kolayca elde ucuz ve doğal biyo-uyumlu olarak ideal bir yumuşak doku dolgu olduğunu. 1 Ancak, gelişen popülariteye rağmen, yağ grefti 10 yerde değişen yayınlanan tutma oranları ile, öngörülemeyen sonuçlara ve değişken greft sağkalım tarafından engellenmektedir -80%. 1-3 Yağ grefti ile ilgili soruşturma kolaylaştırmak için, biz bu nedenle enjekte yağ hacmi tutma gerçek zamanlı analiz için izin veren bir hayvan modeli geliştirdik. Kısaca, küçük bir kesik, bir CD-1 çıplak farenin derisi yapılır ve işlenmiş lipoaspirate 200-400 ul kafatası üzerine yerleştirilir. kafa derisi çünkü yardımları kafatasında tarafından sağlanan mükemmel arka plan kontrast, nedeniyle yerli deri altı yağ onun yokluğunda alıcı yeri olarak seçilen veAnaliz süreci. Mikro-bilgisayarlı tomografi (mikro-CT) başlangıçta greft ve bundan sonra her iki haftada bir tarama için kullanılır. BT görüntüleri yeniden inşa edilir ve bir görüntüleme yazılımı greft hacimlerini ölçmek için kullanılır. Geleneksel teknikler ex vivo fiziksel ölçümleri ile greft ağırlık ve hacim sadece tek bir değerlendirme sağlamak için çalışma hayvanı euthanizing zorunlu olan yağ grefti hacmini değerlendirmek için. Biyokimyasal ve histolojik karşılaştırmaları aynı şekilde ötenazi için çalışma hayvanı gerektirmiştir. Bu tarif görüntüleme tekniği çalışması hayvan kurban zorunda kalmadan görselleştirme ve objektif ilk aşılama sonrası çoklu zaman noktalarında hacmi miktarının avantajı sunuyor. tekniği büyük greftler, risk deri ve yağ nekrozu olarak enjekte edilmesi mümkün greft boyutu ile sınırlıdır. Bu yöntem yağ grefti canlılığını ve hacim tutma değerlendiren tüm çalışmalar için yarar vardır. Özellikle providi çok uygundurYağ grefti bir görsel temsilini ng ve zamanla hacim değişiklikleri takip.

Yağ greftler giderek Hafta 8 tarama bitiminde 8. Hafta (Şekil 4A) tarafından% 62.2 ortalama sağkalım 24 sonuçlanan, çalışma boyunca hacmi azaldı, her yağ grefti tek parça ekstre edildi. Bir Wilcoxan rank sum testi ya mikro-BT ile elde edilen veya fiziksel kitle hesaplanan yağ greft hacmi ölçümleri arasındaki farkı karşılaştırmak için kullanıldı. Anlamlı bir fark bu iki yöntem (iki taraflı p-değeri = 0,9362) arasında bulunmuştur. (Şekil 4B) <p class="jove_content"...

Yağ grefti, yumuşak doku açıklarının yeniden yapılandırılması için önemli bir tekniktir. Bununla birlikte, değişken greft sağkalımı ile karakterize öngörülemeyen bir prosedür olmaya devam etmektedir. Amacımız, farklı yağ grefti hazırlama ve uygulama teknikleri arasındaki hacim tutulmasını karşılaştırmak için yeni bir görüntüleme yöntemi kullanan bir fare modeli tasarlamaktı.

Mikro-Bilgisayarlı Tomografi ile Çıplak Fareler içine İnsan Yağ Enjeksiyonu Canlılığına Değerlendirilmesi

Lipotransfer is a vital tool in the surgeon&#8217;s armamentarium for the treatment of soft tissue deficits of throughout the body. Fat is the ideal soft ...

Bu prosedürün genel amacı, yağ grefti hazırlama ve verme erteleme teknikleri arasındaki hacim tutulmasını karşılaştırmak için mikro BT kullanan bir fare modelini tanımlamaktır. Bu, greftlemeye hazır yağ elde etmek için önce insan lipo aspiratının işlenmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, CD bir timik çıplak farenin kafa derisine yağ greftleri yerleştirmektir.Daha sonra, yağ grefti sağkalımı, BT tarama fareleri, görüntülerin yeniden yapılandırılması ve hacim tutulmasının ölçülmesi ile haftalık olarak analiz edilir. Son adım, sekiz haftanın sonunda yağ greftini planlamak ve bunları ağırlık ve histolojiye göre karşılaştırmaktır. Sonuç olarak, yağ grefti kalitesi ve sağkalımındaki farklılıkları göstermek için mikro BT ve histoloji kullanılır.Bu tekniğin, yağ greftlerinin tartılması gibi mevcut yöntemlere göre ana avantajı, çalışma hayvanını feda etmek zorunda kalmadan ilk greftlemeden sonra birden fazla zaman noktasında yağ grefti hacminin görselleştirilmesine ve objektif olarak ölçülmesine izin vermesidir. Bu yöntem için ilk olarak calva defektlerini analiz etmek için mikro BT kullanmaya başladığımızda aklımıza geldi. Bu tekniğin çıkarımları, yağ grefti, retansiyonu ve canlılığını değerlendiren tüm çalışmalar için cerrahi bir model sunmasıdır.Genel olarak, bu yönteme yeni olan kişiler mücadele edecektir çünkü yağ greftini kafa derisinin üzerinde doğru pozisyonda tutmak zordur. Bu tekniğin görsel olarak gösterilmesi kritiktir, çünkü greftleme ve rekonstrüksiyon adımlarının öğrenilmesi zordur, çünkü teknikteki küçük bir sapmanın sonucu değiştirebileceği çok sayıda aşama vardır. Coleman prosedürünü kullanarak, elektif liposuction uygulanan sağlıklı kadın hastaların karın, yan ve uyluk bölgelerinden insan yağ dokusu elde edin.Greftleme için lipo aspiratını işlemek için, yağın 30 dakika boyunca oturmasına izin vererek başlayın. Lipo aspirat tipik olarak üstte yağ, ortada yağ ve altta kan olmak üzere üç katmana yerleşir. Üst yağ tabakasını ve ardından alt kan tabakasını aspire edin ve atın.Kalan şişen sıvıyı veya hücre kalıntılarını daha fazla çıkarmak için, yağı 350 Gs ve dört santigrat derecede beş dakika santrifüjleyin. Santrifüjlemeyi takiben, alt kan tabakası ve üst yağ tabakası aspire edilir. Metin protokolünde açıklandığı gibi greftleme için gereken yağ miktarını hesaplamak için, yağ grefti yapmak için dişi homozigot CD bir çıplak fare elde edin.Deneysel çalışma için, anesteziyi indüklemek için sekiz ila 12 haftalık fareleri seçin. Fareyi, farenin solunum hızı yavaşladığında yaklaşık 10 dakika boyunca dakikada iki litre olmak üzere% 2,5 flor oksijen karışımı içeren bir knockdown kutusuna yerleştirin. Bir ayak parmağı tutamıyla yeterli sedasyonu onaylayın.Farenin her iki gözüne de veteriner yağlama oftalmik merhem sürün ve farenin burnunu bir burun konisine yerleştirin ve dakikada bir ila iki litre oranında% 2,5 ISO flor oksijen karışımı sağlayın. Ardından, farenin altında steril bir alan oluşturun. Daha sonra bir kafa derisini %2.5 povidon iyot ve ardından %70 etanol çözeltisi ile sterilize edin.Sterilizasyonu iki kez daha tekrarlayın. Oda sıcaklığına dengelenmiş, bir mililitre yağ içeren bir mililitrelik yem kilit şırıngasını geri yükleyin. Şırınganın ucuna 14 gauge sekiz santimetre uzunluğunda bir yağ grefti kanülü bağlayın.Şırıngada 200 ila 400 mikrolitre yağ kalana kadar şırınga pistonuna bastırarak sistemi hazırlayın. Şırınga pistonuna bastırırken, ince forseps kullanarak distal kanül deliğinden çıkan yağı gözlemleyerek kanülün tamamen yağ ile dolduğunu doğrulayın. Kafatasının en çok yönünün üzerinde yer alan orta hatta sırt derisini kaldırın.İnce makas kullanarak deride 1,5 milimetrelik bir kesi yapın. Kesiğin ortasına, daha sonra yara kenarlarını bir araya getirmek için kullanılacak olan altı oh naylon sütür yerleştirin. Greftleme yapıldıktan sonra dikişi bağlamayın.Daha sonra, kanülü cilt kesisinden sokarak ve kanülü kafatasının üzerinde fan şeklinde bir desende ileri geri geçirerek kafatası üzerinde deri altı bir cep oluşturun, böylece cep oluşturulduktan sonra üstteki deriye herhangi bir bağ dokusu ekini serbest bırakın, kanülü farenin orta hattına, uç cebin theramos yönüne gelene kadar doğrudan kafatasının üzerine yerleştirin, gözler arasına çizilen bir çizginin hemen arkasında olmalıdır. Kanülü geri çekerken pistonu ilerleterek yağı geriye dönük bir şekilde yavaşça enjekte edin. Forseps kullanarak, yara kenarlarını bir araya getirin ve herhangi bir yağın cepten sızmasını önlemek için yukarı kaldırın.Daha önce yerleştirilmiş olan dikişi bağlayın ve ilk düğümün cilde hafifçe dayandığından emin olun. Üç kare düğüm daha bağlayın ve dikişi üç milimetre kuyrukla kesin. Fareyi anesteziden çıkarın ve metin protokolünde ayrıntılı olarak açıklandığı gibi kurtarmaya devam edin.İlk taramayı gerçekleştirmeden önce, mikro BT'yi hava, su ve kemik yoğunluğu arasında ayrım yapan bir görüntüleme fantomu ile kalibre edin. Kalibrasyonu takiben. Dört fareyi ventral pozisyonda, ikisi üstte ve ikisi altta olacak şekilde tarayıcıya yerleştirin.Bir tarama yatağına yerleştirin. Daha önce fare gövdesini tutmak için 60 mililitrelik şırıngalardan ve burun konisi olarak 10 mililitrelik şırıngalardan yapılmıştır. Burundan ilk servikal omura ve kafatasının tepesinden kafatasının tabanına kadar farenin tüm kafatasının görüntüleneceğini bir izci görüntüsü ile onaylayın.Metin protokolünde ayrıntılı olarak açıklandığı gibi taramaya devam edin. Piksel yoğunluğu eşiklerini kullanarak vokselleri seçerek ilgi bölgelerinin veya ROI'lerin oluşturulmasına izin veren bir mikro CT görüntüleme analiz yazılımı ile yeniden yapılandırılmış görüntüleri açın. Yeniden yapılandırılmış BT görüntülerini iki boyutlu, koronal, aksiyel ve sagital görünümlerde yükleyerek başlayın.Eksenel dilimi kılavuz olarak kullanarak, yağ greftinin en sol yönüne karşılık gelen sagital dilime gidin. Yağ greftine karşılık gelen tüm vokselleri yakalayan, ancak çevredeki dokuyu ve kemiği hariç tutan piksel yoğunluğu için bir üst ve alt eşik seçin. Sagital görünümde yağ greftine karşılık gelen bir ROI tanımlayın.Önceden tanımlanmış piksel yoğunluğu eşiklerini kullanarak, greftin en sağ yönüne ulaşılana kadar her beşinci sagital dilimde bir bu prosedürü tekrarlayın. Ardından, tüm 2D ROI'lerden seçilen vokselleri tek bir birleşik 3D ROI'ye enterpolasyon yapın, yazılım tarafından hesaplanan ROI hacmini kaydedin. Son yağ grefti hacmini görselleştirmek için 3D izoyüzeyi işleyin.Sonraki analizde, maksimum ve minimum piksel yoğunluğu değerlerini, fareler sekizinci hafta zaman noktası için tarandıktan sonra temel analiz için kullanılanlarla aynı tuttuğunuzdan emin olun. Fareleri metin protokolünde açıklandığı gibi ötenazi yapın. Fareyi tenotomi makası kullanarak ameliyat alanına yerleştirin, cebi ve üstteki deri ve bağ dokusu eklerini yağ greftinden dikkatlice açın.Bu noktada, greftin çıkarılmasına yardımcı olmak için üstteki sırt derisinin bir yamasının çıkarılmasına yardımcı olabilir. Greft eksize edildikten sonra greftten alınan bağ dokusunu en aza indirmek için eksize ederken grefte mümkün olduğunca yakın kalın. Kütleyi en az 0.01 grama kadar doğru olan yırtık bir ölçekte ölçün.Yağ greftleri, çalışma süresince hacim olarak kademeli olarak azaldı ve sekizinci haftaya kadar ortalama %62.2 sağkalım ile sonuçlandı. Sekizinci hafta taramasının tamamlanmasının ardından, her bir yağ grefti tek parça halinde çıkarıldı. Mikro BT ile elde edilen veya fiziksel kütleden hesaplanan yağ greftinin hacim ölçümleri arasındaki farkı karşılaştırmak için bir WIL koksin sıra toplamı testi kullanıldı.Bu iki yöntem arasında anlamlı bir fark bulunamamıştır. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik uygun şekilde yapılırsa seans başına iki saat içinde gerçekleştirilebilir. Bu prosedürü denerken, bu prosedürü takiben ameliyatları ve rekonstrüksiyonları her seferinde aynı şekilde yapmayı unutmamak önemlidir.İmmüno boyama ve Q-R-T-P-C-R gibi diğer yöntemler, vaskülarite ve gen ekspresyonunun farklı greftleme yöntemlerinden nasıl etkilendiği gibi ek soruları yanıtlamak için gerçekleştirilebilir. Bu videoyu izledikten sonra, greftleme için lipo aspiratın nasıl işleneceğini, in vivo olarak BT taraması greftlerinin nasıl işleneceğini, greft sağkalımının nasıl değerlendirileceğini ve ağırlık histolojisi için greftlerin nasıl planlanacağını ve geliştirildikten sonra gelecekteki analizleri iyi anlamış olmalısınız. Bu teknik, plastik cerrahi alanındaki araştırmacıların aynalama modelinde yağ greftini keşfetmelerinin yolunu açtı.

assessment-viability-human-fat-injection-into-nude-mice-with-micro

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

MicroCT tarafından Kontrastlı küçük hayvan damar görüntüleme seri için hızlı, düşük maliyetli ve yüksek verimli...

Kontrast Geliştirilmiş Gemi Görüntüleme MicroCT kullanarak

Yağ içerik analizi rutin fare obezite modellerinde kullanan çalışmalar yapılır. Küçük hayvan CT görüntüleme ve analiz Gelişen yöntemleri boyuna ayrıntılı zengin yağ içeriği analiz için sağlanmaktadır. Küçük hayvan BT görüntüleme, analiz ve görselleştirme gerçekleştirmek için adım prosedürleri Burada detaylı bir adım.

Segmentasyon ve Mürin Obezite Modelleri Yağ Hacimleri ölçümü X-ray Bilgisayarlı Tomografi Kullanımı

Fare kahverengi adipoz doku (BAT) işlevsel görüntüleme için bir yöntem olup BAT 18F-Florodeoksiglukoz soğuk-uyarılmış alımı (FDG) invaziv olmayan standart bir protokol micro-PET/CT ile değerlendirilmiştir olduğu tarif edilmektedir. Bu yöntem, fare modellerinde BAT faaliyetlerinde farklılıkları tespit etmek için sağlam ve hassastır.

FDG micro-PET/CT ile Fare Brown Fat Fonksiyonel Görüntüleme

Bu makalede, meme kanseri hücrelerini meme yağ yastığına enjekte ederek dişi farelerde bir meme kanseri modelinin nasıl oluşturulacağını tartışıyoruz. Örnek protokol ortotopik enjeksiyonu göstermektedir.

Meme Yağ Yastığına Ortotopik Enjeksiyon: Farelerde Meme Kanseri Oluşumu

Kanser tümörü çevreleyen dokunun hem de yerel pro- ve anti-inflamatuar aracılar tarafından etkilenir kompleks bir hastalıktır. Bu nedenle, daha çok deri altı modellere göre ortotrop enjeksiyon modelleri, bir şekilde daha iyi taklit eden insan patoloji kanser ilerlemesinin incelemek için yararlı olabilir.

Farelerin Meme Fat Pad içine Meme Kanseri Hücreleri Ortotopik Enjeksiyon Tümör Büyüme Eğitim için.

Mikro bilgisayarlı tomografi kullanarak bir adenokarsinom fare modelinin akciğerlerinde tümör nodülü gelişiminin saptanması için bir yöntem ve bunun zaman içinde ve tedaviye yanıt olarak nodül boyutundaki değişiklikleri izlemek için kullanımını açıklıyoruz. Değerlendirmenin doğruluğu son nokta histolojik kantizasyonu ile doğrulandı.

Tümör Gelişim Değerlendirme Mikro bilgisayarlı Tomografi ile ve Takibi Tedavi Yanıtın Akciğer Kanseri Fare Modeli

Burada, biz meme kanseri hücrelerinin basit, daha az invaziv ve ele kolay bir şekilde meme yağ yastığı içine implant için bir protokol mevcut ve bu fare orthotopic meme kanseri model uygun meme yağ yastığı yapısına sahip çeşitli yönlerini incelemek için kullanılabilir kanser.

Fareler meme yağ yastığı içine meme kanser hücrelerinin Orthotopic enjeksiyon

Mikro-PET/MR görüntüleme tabanlı bir yaklaşım kullanılarak farelerde termojenik yağ depolarının fonksiyonel görüntülenmesi ve kantitasyonu.

[18F]FDG Micro-PET/MR Görüntüleme Kullanılarak Farelerde Kahverengi ve Bej Yağ Dokularının Görselleştirilmesi ve Ölçülmesi

Burada, hepatik arter ligasyonu olan ve olmayan ortopik hepatosellüler karsinom ksenogreftleri oluşturmak ve [18 F]Floromisonidazol ([18 F]FMISO) ve [18 F]Florodeoksiglukoz ([18F]FDG) kullanılarak tümör hipoksisinin non-invaziv pozitron emisyon tomografisi (PET) görüntülemesini gerçekleştirmek için bir protokol sunuyoruz.

Hepatosellüler Karsinomun Ortotopik Fare Modelinde Non-İnvaziv PET/MR Görüntüleme

Diyete bağlı alkolsüz yağlı karaciğer hastalığı (NAFLD) fare modeli kullanarak, NAFLD'nin progresyon aşamalarını değerlendirmek için non-invaziv bir yöntem olarak yeni in vivo mikro-bilgisayarlı tomografi görüntüleme tekniklerinin kullanımını, ağırlıklı olarak hepatik vasküler ağa odaklanarak tanımladık.

Alkole Bağlı Olmayan Yağlı Karaciğer Hastalığının Progresyonunu Değerlendirmek İçin Yeni In Vivo Mikrobilgisayarlı Tomografi Görüntüleme Teknikleri

Bu protokol, küçük hayvanlarda iskelet kası ve iç organ dokusu, yağ dokusu ve iskelet dokusu dahil olmak üzere yağsız kütlenin uygun maliyetli bir şekilde ölçülmesini sağlamak için mikro bilgisayarlı tomografi kullanır. Biyomedikal araştırmalar için, özellikle küçük hayvanlarda yapılan translasyonel araştırmalarda önemli avantajlar sunan yağsız ve yağ dokusu arasında ayrım yapar.

Mikro Bilgisayarlı Tomografi Kullanılarak Küçük Hayvanlarda Non-İnvaziv İskelet Kası Miktar Tayini

Öğrenin, mikro BT kullanarak çıplak farelerde yağ grefti hacim tutunumunu değerlendirmek için güvenilir bir fare modeli geliştirmeyi. Bu yöntem, greft hazırlama tekniklerini karşılaştırarak klinik sonuçları iyileştirir.

Mikro-Bilgisayarlı Tomografi ile Çıplak Fareler içine İnsan Yağ Enjeksiyonu Canlılığına Değerlendirilmesi

Daha fazla video keşfet