Name: Saf Yabanitip ve Mutant CFTR Protein Fonksiyonel Sulandırma ve Kanal Aktivite Ölçümleri (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 59 s
Description: Öğrenin, SF9 hücrelerinden saflaştırılan yabanitip ve mutant CFTR proteininin proteolipozomlara yeniden yapılandırılması ve iyot seçici elektrotla kanal aktivitesinin ölçülmesi yöntemini. Bu teknik, kistik fibroz tedavileri için modülatör moleküllerin etkisini değerlendirmeye yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarını olduğunu beyan ederim.

CFTR 1. Saflaştırma NOT: Bu protokolde kullanılan ekipman ve malzeme listesi için Malzeme Tablosu ve Ekipmanları bakınız. Detaylı bir protokol Sf 9-bakulovirüs sentezleme sistemi 17,28 insan Wt-CFTR aşırı ifadesi ve mutantların ihtiyaç duyulmaktadır. CFTR aşırı ifade eden ve bu protokole göre Sf&#39;ye 9 hücreleri topaklar hazırlamak. <ol><li> Kaba membran hazırlanması <ol><li> Taze elde edilir ya da standart hücre kültür olarak elde edilen aşırı eksprese eden bir C-terminali His 10 -tag ile wildtype-, F508del- veya G551D-CFTR proteini hücre 500 ml&#39;lik bir kültürden bir dondurulmuş Sf 9 hücre pelletini çözülme daha önce 17,28 tanımladı. Hücre topakları, yaklaşık 5 ml&#39;lik bir hacme ve yaklaşık 5 g ıslak ağırlığa sahip olacaktır. </li><li> Süspanse Sf sağlanması, 4 ° C&#39;de proteaz inhibitör kokteyli ile fosfat tamponlu tuzlu su içinde 20 ml (PBS), pH 7.4 (1 tablet 50 ml solüsyon) içinde 9 hücreleri,Numune görsel homojen görünür ve hücrelerin hiçbir kümeleri kalır. </li><li> Geçit başına 2 dakika boyunca 10.000 psi (tercihen 15.000-20.000 psi) az ulaşan bir yüksek basınçlı hücre Topu (Malzeme ve Ekipman Tablo) ile Hücreleri. Liziz ve 4 ° C &#39;de örnek tutun. <ol><li> Sonra hemen hücre Topu numuneyi yeniden lizis süre sonra buz üzerinde bir tüp içinde örnek toplayın. Tekrar parçalama işlemi 3 kez. % 10&#39;dan daha az sağlam kalmasını sağlamak için bir mikroskop altında incelenmesi. Not: vb cam boncuklar gibi başka yöntemler lize hücrelerin, sıkı, ancak bir kullanıcı, diğer bir yöntem, uygun gelebilir, bu sistem için incelenmiştir edilmemiştir. </li></ol></li><li> 20 dakika boyunca 2000 x g&#39;de yüksek hızlı santrifüj içinde 4 ° C&#39;de santrifüje hücre parçalama malzemesi. Süpernatant toplayın ve pelet atmayın. 20 tüp arasında süpernatan bölün ve ultracen masa üstü 125,000 x g&#39;de, 4 ° C&#39;de 1 saat süre ile numuneler santrifüjtrifuge. </li><li> Çıkarın ve kullanılana kadar az 2 ay boyunca -80 ° C de tüplerinde pelet ve mağaza peletler bozmamaya özen supernatant veya buz üzerinde muhafaza eden ve saflaştırılmadan devam edin. </li></ol></li><li> CFTR çözündürme <ol><li> 1-4 taze veya dondurulmuş Sf 9 Kaba membran pelet elde edilir ve Tampon 1, 1 ml her bir tekrar süspansiyon (% 2 fos -choline, tam bir tarifi için bakınız Tablo 1), buz üzerinde 4 ° C de, bir 25 G iğne ve 1 ile solüsyon kadar ml&#39;lik şırınga görünür hücre zarı kümeleri olmadan gözle homojen olduğunu. Birden fazla topak çözündürülmüş olan yerlerde, aşama 1.3.2 numuneler havuzu, paralel olarak aşağıda, tek bir pelet talimatlarına göre her bir örnek tedavi etmek için devam etmektedir. </li><li> 1 Tampon 2 ml 1 mini proteaz inhibitörü tablet çözülür (10 mM imidazol; bakınız Tablo 1) fos -choline 14 deterjan yoksun olan (proteaz inhibitörleri 10 katı daha sonra konsantrasyonlar olarakBu noktada tavsiye edilen seyreltme daha puan) ve yeniden süspanse ham membran pelet 100 ul (proteaz inhibitörleri bu noktada tavsiye edilen seyreltme altındadır) ekleyin. Ters çevirme ile 5 kez her 5 dakika karıştırılarak, 45-60 dakika boyunca buz üzerinde bekletilir. </li><li> Santrifüj 125,000 x g ve 4 ° C&#39;de 25 dakika boyunca masa üstü bir ultrasantrifüjdeki Kaba membran pelet yeniden süspansiyon haline getirilmiştir. Çözünmüş CFTR içeren süpernatant, saklayın ve pelet atın. </li></ol></li><li> Kolon bağlayıcı, fosforilasyon ve elüsyon <ol><li> Nikel-NTA (nitrilotriasetik asit) agaroz bulamaç ya da Tampon 2, 1 ml eşdeğer reçine 400 ul yıkayın (10 mM imidazol; bakınız Tablo 1) deterjan yoksun olan, çözücü maddeyi ortadan kaldırmak ve 4 ° C&#39;de tampon. Tekrar yıkama iki kez daha. </li><li> (10 mM imidazol, Tablo 1 e bakınız), Tampon 2 ile 10 ml &#39;lik bir toplam çözündürülmüş CFTR, geri kalan proteaz inhibitörü (900 ul) ve nikel reçinesi (400 ul bulamaçtan) birleştirin ağırlıkarada tutarak bir ilave deterjan yoksundur. fos -choline 14 konsantrasyonu etkili bir şekilde (a / h) Bu adımda% 0.2 kadar seyreltilir. Birden çok boru varsa, çözündürülmüş CFTR, proteaz inhibitörleri, nikel-NTA reçinesi ve% 0.2 ihtiva eden tüm örnekler havuz (a / h) fos -choline-14 bu noktada. Nazik çalkalama ile 4 ° C&#39;de 60 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Küçük bir tarama kolonu (Tablo 1) veya eşdeğer bir boş sütun CFTR proteaz inhibitörü nikel NTA çözeltiyi geçirin. </li><li> Tampon 3 ilk pelet başına 4 ml ile, kolon içinde alıkonur ve nikel NTA reçinesi, yıkama (10 mM imidazol + DDM; bakınız Tablo 1) fos -choline 14 yoksun ama 1mM DDM (dodesil maltosit deterjan) içeren 4 ° C&#39;de ilave edildi. DDM deterjan eklenmesi önemli ölçüde bu tamponun pH değiştirmez. </li><li> 2500, protein kinaz A, katalitik alt birimi, cAMP-bağımlı U (p 25 ul MgATP (5 mM, nihai konsantrasyon) ilave etmek suretiyle, PKA-MgATP çözeltisi hazırlayınTablo 1) kolona, ​​Tampon 3 (10 mM imidazol + DDM 475 ul KA). Bir kapak ya da Parafilm ile sütunun alt ucunun kapatılmasını ve kullanılan her bir başlangıç ​​pelet için pKa MgATP çözeltisi 500 ul eklenmesiyle proteinin fosforile. </li><li> PKA, nikel NTA reçinesi bütün yüzeyi ile temas emin olmak için hafif karıştırma ile 1 ml pipet her 2 dakikada kullanılarak reçinenin yeniden süspansiyon haline getirilmesi ile 20 dakika boyunca oda sıcaklığında (20 ° C) inkübe edilir. </li><li> Kapağı çıkarın ve sütundan PKA / MgATP çözüm Zehir. Tampon 3 2 ml kolon yıkaması (10 mM imidazol + DDM; bakınız Tablo 1) 4 ° C&#39;de ilave edildi. </li><li> Izin kolona 4 ml tampon ilave edilerek 4 ° C&#39;de, (bakınız Tablo 1, 50 mM imidazol + DDM) Tampon 4 ml bu sayı 4. Yıkama kolon deneyde kullanılan peletler çarpın bu sütunun yanında 4 ml lik ekleyerek yoluyla ve hemen akmaya. </li><li&gt; Zehir 1 Tampon 5 ml (600 mM imidazol + DDM; bakınız Tablo 1) geçen protein kolon kuruması için bir duraklama olmadan aynı anda, sütun içinden 1 ml kullanılan başlangıç ​​pelet başına 4 ° C &#39;de, ve tek bir tüp içinde saflandırıldı CFTR içeren tüm eluat toplar. </li><li> 10 mi Tampon 6 arasında bir toplam, örneğin Malzeme ve Ekipman veya başka benzer bir cihaz, Tablo l&#39;de tarif edildiği gibi (100.000 molekül ağırlıklı bir kesim) bir santrifüj filtre cihazı kullanılarak imidazol ve düşük molekül ağırlıklı bozunma ürünlerinin ayrılması için protein örneği konsantre edin (75 mM ki + DDM; bakınız Tablo 1 2000 x g &#39;de santrifüj ile) ve 4 ° C, (non-iyodür akış deneyleri için Tamponu 7, 25 mM HEPES + DDM olarak Tablo 1) ya da 1mM DDM ihtiva eden tercih edilen bir başka tampon olabilir bakınız örnek kadar yaklaşık 20 dakika 200 ul ile elde edilebilirler. 10 ml örnek seyreltilir ve konsantrasyon adımı tekrarlanır. NOT: Bizim tecrübelerimize göre (yayımlanmamış), imidazol anlamlı INHICFTR ATPaz aktivitesi bitleri ve örnek fonksiyonel ölçümler için kullanılacak ise, en az iki kat seyreltme ve konsantrasyon ile bu aşamada çıkarılmalıdır. </li><li> Konsantre arıtıldı CFTR toplayın. 1-2 gün içinde kullanıma kadar DDM tamponu mevcudiyetinde 4 ° C&#39;de tutun veya sulandırma aşamasından hemen devam edin. Biz düşük aktivite gözlemlemek bizim deneyim gibi, saflaştırılmış protein dondurma etmeyin. </li></ol></li></ol> CFTR 2. Sulandırma <ol><li> Lipid Preparasyonu Not: CFTR başarılı Yumurta PC, POPC içine 2 yeniden edilmiştir: 1 Yumurta PC (ağırlık / ağırlık): POPC (1: 1 a / a) karışımı, veya PE bir karışımı: PS: PC: ergosterol, 5: 2 : 2: 1 (a / a). <ol><li> Iyodür akış deneyleri, kuru Yumurta PC 5 mg payreks bir ya da düz (non-borosilikat oda sıcaklığında 20 dakika boyunca bir argon gazı akışı altında (25 mg / ml stok, 200 ul, Malzeme ve Ekipman Tablo) ) cam tüp. </li><li> 280 nm&#39;de emicilik kullanılarak, bir ELISA, birssay veya başka bir yöntem olup, saflaştınlmış CFTR proteini numune konsantrasyonunun tahmin edilmektedir. 1 lipid oranı: 300-1: 3000 yeterli bir sinyal üretmek için (a / a) vahşi tipli CFTR iyodür akış deneyler için, bir protein kullanırlar. Akış aktivitesi tespit etmek için 1,200 (ağırlık / ağırlık): 200-1: Yaklaşık 1 lipid oranının: G551D- ve F508del-CFTR, bir protein kullanırlar. </li><li> Her bir sistem için lipit oranı: Protein Optimize. Gerekli saflaştırılmış protein miktarını hesaplayın. = Tampon hacmi (protein gerekli çözeltinin hacmi) - 1 mi, örneğin, 1 ml &#39;lik bir son hacim için gerekli olan, 1 mM DDM ile tampon hacim hesaplanır. <ol><li> Kurutulmuş lipid 1 mM DDM ile istenilen tampon sisteminin hesaplanan hacim ekleme (ancak şu anda CFTR proteini katmayan) ve Parafilm ile cam tüp kapağı. Iyodür akış deneyler için, tampon 6 lipitleri tekrar süspansiyon (75 mM ki + DDM; bakınız Tablo 1). Diğer deneyler Tampon 8 tekrar süspansiyon için (25 mM HEPES + DDM, bkzTablo 1) ya da 1mM DDM ihtiva eden bir başka istenen iç tampon eklendi. </li><li> Oda sıcaklığında 2 dakika vorteksleyin DDM tamponu içinde yağ ve süspansiyon yardımcı olmak için. Seçenek olarak ise, vorteks önce 1-2 dakika süre ile 37 ° C örnek ısıtın. </li></ol></li><li> Lipid film tüpü kenarlarında görünür hale gelene kadar 1 ml şırınga ve 25 G iğne ile oda sıcaklığında arka arkaya lipid süspanse edin. Ince kabarcıklar üretmek ve iyodür ve lipidlerin oksidasyonu yardımcı olur solüsyon içine hava enjekte kaçının. </li><li> Parafilm içinde süspansiyon haline getirilmiş lipit bir sonikatör banyosu ihtiva eden bir buz içinde 20 sn kaymasının tüpü kapalı sonikasyon, ve daha sonra 1 dakika boyunca buz hemen aktarın. 3 kez tekrarlayın. NOT: Yoğun sonication oksidasyon nedeniyle sarı iyodür çözümler döner. Bu nedenle aşırı sonikasyon kaçının. Renk değişiklikleri için örnek izleyin. Bir renk değişimi tespit edilirse, örnek atmak ve tekrar hazırlamak. nedeniyle bazı oksidasyonu renk değişikliğiiyodür, aynı koşullar altında lipid oksidasyonuna neden olur. Çözüm sonicating önce argon gazı ile tüp havayı yerinden lipid ve iyodür oksidasyonunu önlemeye yardımcı olur. Yoğun sonication kalitesiz veya numune kaybına neden çizik cam tüpler kırabilir. </li><li> 1 ml&#39;lik bir son hacim elde etmek için bir ses dalgalarına maruz bırakıldı, lipid numune için adım 2.1.3 hesaplanan arıtıldı CFTR hacim. 25 G iğne ile 1 ml şırınga ile tabanda 10 kez lipit ve deterjan çözeltisi ile protein karıştırın. </li><li> Tüp döndürme ile 30 dakika boyunca buz üzerinde bekletilir lipid ve protein numune 5 kez her 5 dakika karıştırın. </li></ol></li><li> Deterjan bağlayıcı sütun hazırlanması <ol><li> 1 ml hacim kapasiteli bir tek kullanımlık ticari deterjan bağlayıcı spin kolon (Malzeme ve Ekipmanları Tablo bakınız) elde edilir ve sütun akan başlamak için alt sekmesini kırmak. </li><li> Depolama b çıkarmak için 2000 x g&#39;de 2 dakika süre ile sütun santrifüjuffer ve bu tampon atın. </li><li> Tampon 7 5 ml kolonuna (75 mM KI, Tablo 1 &#39;e bakınız) ve daha sonra yıkama tamponu elüt edilmesi için 4 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüj. Depolama tamponu tüm izlerini çıkarmak için 3 yıkamadan toplam Bu adım 2 kere daha tekrar edin. Tüm flow-through atın. NOT: Bu sütun yıkamak için kullanılan tampon DDM ya da başka bir deterjan içermeyen önemlidir. Sütun deterjan için sınırlı bir bağlanma kapasitesine sahip olan bir deterjan ihtiva eden bir tampon maddesi kullanıldığında, kolon protein lipit deterjan örnek deterjan kaldırılması etkisiz olacaktır. </li><li> Dikkatle kolon reçinenin üst kısmına lipid deterjan protein, tüm numune 1 ml bir örnek ve oda sıcaklığında 2 dakika için sütunun üst kısmında örnek inkübe edilir. </li><li> 2000 x g&#39;de, 4 dakika boyunca oda sıcaklığında santrifüjleyin ve temiz bir 1.5 ya da 2 ml mikrofüj tüpüne bulutlu proteoliposome örnek ya da bir cam tüp toplamak ve Sam yerBuz üzerinde ple. </li><li> Kolonun üstüne 200 Tampon 7 ul (75 mM KI, Tablo 1) ya da (deterjan olmadan) için diğer tampon çözeltisi ilave edilerek kolon içerisinde geri kalan proteoliposomes toplayın ve 2 dakika boyunca santrifüj adımı tekrarlanır. </li><li> Bulutlu görünüyor eğer proteoliposome örnek ikinci eluatın ekleyin. </li><li> Gece boyunca 4 ° C &#39;de örnek saklayın, ya da iyodür akış ölçümleri için hemen kullanılır. </li></ol></li></ol> Saflaştırılmış yeniden oluşturulmuş CFTR 3. iyodür dışarı atım Ölçümler <ol><li> Proteoliposomal zarı boyunca bir iyodür gradyan üretilmesi <ol><li> Tampon 9 Ön kabarma Sephadex G50 boncuklar (yaklaşık 5 g kuru boncuk 50 mi tampon maddesi içinde) veya arzu edilen dış Tampon, oda sıcaklığında en az 2 saat süreyle ya da 4 ile (75 mM K-Glu potasyum glutamat, Tablo 1 e bakınız) gecede ° C. </li><li> Tampon 9 doymuş 4 Sephadex G50 sütun hazırlayın ya da (75 mM K-Glu, Tablo 1 e bakınız)¾ en azından sütununda tam reçine yükleyerek küçük tarama sütunlarda tampon. </li><li> Reçine aşırı tampon kaldırmak için 2.000 xg&#39;de 4 dakika santrifüj. Santrifüjleme aşamasının sonunda kolonuna paketlenmiş hidratlanmış reçinenin yaklaşık 2.25 mi olmalıdır. NOT: Reçine hafifçe sulu ancak sıvı dalmış ve bir sonraki kısa sıkma tampon önemli hacimlerde Zehir olmamalıdır değil edilmelidir. Bu sütun reçine ne çok ıslak ne de çok kuru ve kullanıcı en başarılı tampon değişimi koşullarına aşina olmak için sütunları ile denemeniz gerekebilir olan proteoliposome numunenin başarılı elüsyondan için çok önemlidir. </li><li> Dikkatlice 2,000 x g&#39;de, 4 dakika boyunca, her bir sütun ve santrifüj üstüne proteoliposome örnek 125-150 ul ekle. </li><li> Havuz proteoliposome iyodür efflux veya diğer deneylerde hemen kullanım için bir arada sıvı kısımlar. NOT: Her kolondan ses kabaca olmalı150 ul ve örnek biraz bulutlu, ancak orijinal numune daha az bulutlu olmalıdır. Büyük hacimler veya net eluatlar sütunları yeterince kurutulmuş değil, ya da çok fazla, sırasıyla kurutulmuş edilmiş ve başarılı bir iyodür akış deneyinde neden olmaz düşündürmektedir. </li></ol></li><li> Iyodür akış deneyi <ol><li> Yoğun bir de-iyonize su ile (Malzeme ve Ekipman Tablo) bir iyodür seçici mikro elektrot yıkayın ve daha sonra Tampon 10 deneyden önce 20 dakika süreyle kuluçkalayın (15 uM KI, bakınız Tablo 1). Deiyonize su ile tekrar kapsamlı elektrot yıkayın. </li><li> Tampon 9 tahlilde kullanılır (10 uM bir nihai konsantrasyon elde etmek için 20 uM, tipik konsantrasyon) ilacın 150 ul ekle 96 oyuklu bir plakanın bir oyuğuna Tamponu 9 ya da araç (75 mM K-Glu, Tablo 1 e bakınız) Küçük bir pire karıştırma çubuğu ile. <ol><li> Mevcut hava kabarcığı olmadığından emin olun. Sokak kaldırmak için bir pipet kullanınkabarcıklar. Bir ilaç çözeltisi kullanılıyorsa, göz içindeki son DMSO konsantrasyonu ((tipik olarak% 0.1-0.2 v / v)) en az% 1 (h / h) olduğundan emin olun. </li></ol></li><li> Tampon 9, Bölüm 3.1&#39;de üretilmiş yeniden CFTR proteininin 150 ul ekle plakasının her bir oyuğuna 300 ul toplam hacim elde etmek için, ilaç ya da tampon maddesi ile bir oyuğa (75 mM K-Glu, bakınız Tablo 1). </li><li> Bir karıştırıcı plaka üzerinde 96 oyuklu plaka yerleştirilir ve 130 rpm&#39;de (ya da yaklaşık olarak dörtte maksimum hızının bir orta hızda) karıştırılmıştır. </li><li> Dikkatle ucu kuyunun dibine dokunmadan değil veya karıştırma çubuğu ile vurulduktan şekilde numune ile kuyuya iyodür seçici elektrot ucu yerleştirin. Referans elektrot, ayrı ise, iyi çözelti ile temas halinde olduğundan emin olun. </li><li> Elektrot ile arayüzleri bir ev yapımı ya da ticari bilgisayar programı kullanarak Kayıt kopyalamaları (detaylar için Materyallerin Tablo ve Ekipmanları bakınız).Bir düşük geçiş filtresi içinden sinyal filtreleme ile 2 Hz&#39;lik bir numune alma oranı, kullanın. </li><li> Örnek kayıt sırasında düz ve sabit ya da yakınındaki yassı bir temel hat üretmek için 5 dakika boyunca dengelenmeye bırakın. </li><li> 3 ul MgATP (KOH ile dH 2 O hazırlandı ve pH 7&#39;ye ayarlandı, 100 mM stok, 1 mM nihai konsantrasyon) ilave örneğe proteini aktif hale getirmek için. ~ 5 dk yeni bir kararlı bir temel ulaşmak için bekleyin. Her zaman dış tampon pH değişiklikleri önlemek için kullanmadan önce nötr 100 mM MgATP stokunun pH ayarlamak. </li><li> CFTR ile iyodür seçici iletkenlik tarafından üretilen potansiyel farkı değişiklikleri şant örnek (20 nM nihai konsantrasyon 2 uM) stok Valinomycin 3 ul ekle. En az 5 dakika süre ile bağlı CFTR aracılı iyodür akış aktivitesi azalan eğimi (mV azalma) kaydedin. </li><li> , Proteoliposome lümeninde iyodür bindirme yeterli olduğundan emin olmak% 10 3 ul eklemek (h / h) Triton X-100 örnek. Significant ve ani iyodür salma yeterli iyodür tutucu 3.2.9 belirlenen eğim değişiklikleri daha çok CFTR aracılı etkinliği için sınırlayıcı bir faktör değildir, öyle ki veziküller sıkışıp olduğunu gösterir. </li><li> Bu reaktiflerin tüm izlerini sonraki numunenin kirlenmesini önlemek için çıkarılmış olmak üzere ilaç veya Triton X-100 ile örnekleri tedaviden sonra de-iyonize su ile iyice elektrot ve bir karıştırma çubuğu yıkayın. </li><li> Tamponu içinde nanomolar aralıkta 9 mikromolar seyreltilmiş KI bir seri yoğunluğunun hazırlanması (K-Glu tamponu, bakınız Tablo 1). Hazırlanan en yüksek konsantrasyonda 0 ilâ her bir konsantrasyonu için elektrot mV yanıtı kaydeder. Prob yanıtı (mV) molar iyodür konsantrasyonunun günlüğüne karşı çizilen bir standart eğri Construct. Serbest iyodür konsantrasyonuna akış deney sırasında prob mV tepkisini dönüştürmek için standart eğri kullanın. NOT: Bir kalibrasyon cur hazırlayınBir kullanıcı emin olana kadar haftalık olarak ziyaretinde ne kadar hızlı sistemi değişiklikleri tepkisi. Zamanla prob cevap ve hassasiyet bir sürüklenme olacaktır. Prob yaş olarak, yanıt düşer. Bu kısmen periyodik iç çözümler değişen ve kullanımdan sonra su prob ucunun geniş yıkama, prob yüzeyine moleküllerin muhtemel sınırları bağlılık tarafından iptal edilebilir. </li><li> MgATP ilave edilmeden önce son 30 saniye boyunca her proteoliposome numune için zaman grafiği konsantrasyona hattının ortalama eğimi belirlemek ve Valinomycin ilave edilmesinden sonra, ancak, Triton X-100 ilave edilmeden önce. Bu örnek CFTR-aracılı iyodür akış etkinliğini belirlemek için Valinomycin bazal eğim çıkarın. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Kim Chiaw, P., Eckford, P. D., Bear, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+into+the+mechanisms+underlying+CFTR+channel+activity%2C+the+molecular+basis+for+cystic+fibrosis+and+strategies+for+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Essays+Biochem%22%5BJournal%5D)">Insights into the mechanisms underlying CFTR channel activity, the molecular basis for cystic fibrosis and strategies for therapy.</a> Essays Biochem. 50 (1), 233-248 (2011).</li>
<li>Bear, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+and+functional+reconstitution+of+the+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator+%28CFTR%29%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Purification and functional reconstitution of the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR).</a> Cell. 68 (4), 809-818 (1992).</li>
<li>Cai, Z., Sohma, Y., Bompadre, S. G., Sheppard, D. N., Hwang, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+high-resolution+single-channel+recording+to+functional+studies+of+cystic+fibrosis+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Application of high-resolution single-channel recording to functional studies of cystic fibrosis mutants.</a> Methods Mol Biol. 741, 419-441 (2011).</li>
<li>Genetic Analysis Consortium. , 
 <a target="_blank" href="http://www.genet.sickkids.on.ca/cftr/Home.html">http://www.genet.sickkids.on.ca/cftr/Home.html</a> (1989).</li>
<li>Kerem, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+cystic+fibrosis+gene%3A+genetic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Identification of the cystic fibrosis gene: genetic analysis.</a> Science. 245 (4922), 1073-1080 (1989).</li>
<li>Yang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+basis+of+defective+anion+transport+in+L+cells+expressing+recombinant+forms+of+CFTR%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Mol+Genet%22%5BJournal%5D)">Molecular basis of defective anion transport in L cells expressing recombinant forms of CFTR.</a> Hum Mol Genet. 2 (8), 1253-1261 (1993).</li>
<li>Mendoza, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Requirements+for+efficient+correction+of+DeltaF508+CFTR+revealed+by+analyses+of+evolved+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Requirements for efficient correction of DeltaF508 CFTR revealed by analyses of evolved sequences.</a> Cell. 148 (1-2), 164-274 (2012).</li>
<li>Rabeh, W. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correction+of+both+NBD1+energetics+and+domain+interface+is+required+to+restore+DeltaF508+CFTR+folding+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Correction of both NBD1 energetics and domain interface is required to restore DeltaF508 CFTR folding and function.</a> Cell. 148 (1-2), 150-163 (2012).</li>
<li>Aleksandrov, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allosteric+modulation+balances+thermodynamic+stability+and+restores+function+of+DeltaF508%5BTitle%5D)+AND+%22CFTR.+J+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Allosteric modulation balances thermodynamic stability and restores function of DeltaF508.</a> CFTR. J Mol Biol. 419 (1-2), 41-60 (2012).</li>
<li>Ramsey, B. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+CFTR+potentiator+in+patients+with+cystic+fibrosis+and+the+G551D+mutation%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">A CFTR potentiator in patients with cystic fibrosis and the G551D mutation.</a> N Engl J Med. 365 (18), 1663-1672 (2011).</li>
<li>Riordan, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+and+characterization+of+recombinant+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator+from+Chinese+hamster+ovary+and+insect+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Purification and characterization of recombinant cystic fibrosis transmembrane conductance regulator from Chinese hamster ovary and insect cells.</a> J. Biol. Chem. 270 (28), 17033-17043 (1995).</li>
<li>Ryan, L., Rimington, T., Cant, N., Ford, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+and+purification+of+the+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator+protein+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Expression and purification of the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator protein in Saccharomyces cerevisiae.</a> JoVE. (61), (2012).</li>
<li>Ostedgaard, L. S., Welsh, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Partial+purification+of+the+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Partial purification of the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator.</a> J Biol Chem. 267 (36), 26142-26149 (1992).</li>
<li>Peng, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One-step+affinity+isolation+of+recombinant+protein+using+the+baculovirus%2Finsect+cell+expression+system%5BTitle%5D)+AND+%22Protein+Expr+Purif%22%5BJournal%5D)">One-step affinity isolation of recombinant protein using the baculovirus/insect cell expression system.</a> Protein Expr Purif. 4 (2), 95-100 (1993).</li>
<li>Ramjeesingh, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+procedure+for+the+efficient+purification+of+the+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator+%28CFTR%29%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">A novel procedure for the efficient purification of the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR).</a> Biochem J. 327 (1), 17-21 (1997).</li>
<li>Rosenberg, M. F., Kamis, A. B., Aleksandrov, L. A., Ford, R. C., Riordan, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+and+crystallization+of+the+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator+%28CFTR%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Purification and crystallization of the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR).</a> J Biol Chem. 279 (37), 39051-39057 (2004).</li>
<li>Ramjeesingh, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+and+reconstitution+of+epithelial+chloride+channel+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Purification and reconstitution of epithelial chloride channel cystic fibrosis transmembrane conductance regulator.</a> Methods Enzymol. 294, 227-246 (1999).</li>
<li>Sorscher, E. J., Sommerfelt, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+recombinant+protein+derived+from+the+baculovirus+expression+system+using+glutathione+affinity+agarose%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Purification of recombinant protein derived from the baculovirus expression system using glutathione affinity agarose.</a> Methods Mol Biol. 3, 337-348 (1995).</li>
<li>Eckford, P. D., Li, C., Ramjeesingh, M., Bear, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator+%28CFTR%29+potentiator+VX-770+%28ivacaftor%29+opens+the+defective+channel+gate+of+mutant+CFTR+in+a+phosphorylation-dependent+but+ATP-independent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR) potentiator VX-770 (ivacaftor) opens the defective channel gate of mutant CFTR in a phosphorylation-dependent but ATP-independent manner.</a> J Biol Chem. 287 (44), 36639-36649 (2012).</li>
<li>Alkhouri, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+and+properties+of+molecular+probes+for+the+rescue+site+on+mutant+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Chem%22%5BJournal%5D)">Synthesis and properties of molecular probes for the rescue site on mutant cystic fibrosis transmembrane conductance regulator.</a> J Med Chem. 54 (24), 8693-8701 (2011).</li>
<li>Eckford, P. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VX-809+and+Related+Corrector+Compounds+Exhibit+Secondary+Activity+Stabilizing+Active+F508del-CFTR+after+Its+Partial+Rescue+to+the+Cell+Surface%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">VX-809 and Related Corrector Compounds Exhibit Secondary Activity Stabilizing Active F508del-CFTR after Its Partial Rescue to the Cell Surface.</a> Chem Biol. 21 (5), 666-678 (2014).</li>
<li>Kim Chiaw, P., Wellhauser, L., Huan, L. J., Ramjeesingh, M., Bear, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+chemical+corrector+modifies+the+channel+function+of+F508del-CFTR%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.Pharmacol%22%5BJournal%5D)">A chemical corrector modifies the channel function of F508del-CFTR.</a> Mol.Pharmacol. 78 (3), 411-418 (2010).</li>
<li>Verkman, A. S., Galietta, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloride+channels+as+drug+targets%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">Chloride channels as drug targets.</a> Nat Rev Drug Discov. 8 (2), 153-171 (2009).</li>
<li>Pasyk, S., Li, C., Ramjeesingh, M., Bear, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+interaction+of+a+small-molecule+modulator+with+G551D-CFTR%2C+a+cystic+fibrosis-causing+mutation+associated+with+severe+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">Direct interaction of a small-molecule modulator with G551D-CFTR, a cystic fibrosis-causing mutation associated with severe disease.</a> Biochem J. 418 (1), 185-190 (2009).</li>
<li>Norez, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+CFTR+chloride+channel+activity+and+pharmacology+using+radiotracer+flux+methods%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cyst+Fibros%22%5BJournal%5D)">Determination of CFTR chloride channel activity and pharmacology using radiotracer flux methods.</a> J Cyst Fibros. 3 (2), 119-121 (2004).</li>
<li>Whitney, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+basis+for+alginate+secretion+across+the+bacterial+outer+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Structural basis for alginate secretion across the bacterial outer membrane.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (32), 13083-13088 (2011).</li>
<li>Islam, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proton-dependent+gating+and+proton+uptake+by+Wzx+support+O-antigen-subunit+antiport+across+the+bacterial+inner+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22mBio%22%5BJournal%5D)">Proton-dependent gating and proton uptake by Wzx support O-antigen-subunit antiport across the bacterial inner membrane.</a> mBio. 4 (5), e00678-e00613 (2013).</li>
<li>Ramjeesingh, M., et al. Ch. 16. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRamjeesingh%2C+M+%22Reliable+Lab+Solutions%3A+Essential+Ion+Channel+MethodsReliable+Lab+Solutions%22">Reliable Lab Solutions: Essential Ion Channel MethodsReliable Lab Solutions</a>. Conn, P. M. , Academic Press. 337-357 (2010).</li>
<li>Wellhauser, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+small-molecule+modulator+interacts+directly+with+deltaPhe508-CFTR+to+modify+its+ATPase+activity+and+conformational+stability%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">A small-molecule modulator interacts directly with deltaPhe508-CFTR to modify its ATPase activity and conformational stability.</a> Mol Pharmacol. 75 (6), 1430-1438 (2009).</li>
<li>Lee, S. Y., Letts, J. A., MacKinnon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+reconstitution+of+purified+human+Hv1+H%2B+channels%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Functional reconstitution of purified human Hv1 H+ channels.</a> J Mol Biol. 387 (5), 1055-1060 (2009).</li>
<li>Chang, X. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+kinase+A+%28PKA%29+still+activates+CFTR+chloride+channel+after+mutagenesis+of+all+10+PKA+consensus+phosphorylation+sites%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Protein kinase A (PKA) still activates CFTR chloride channel after mutagenesis of all 10 PKA consensus phosphorylation sites.</a> J. Biol. Chem. 268 (15), 11304-11311 (1993).</li>
<li>Gadsby, D. C., Nairn, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+CFTR+Cl-+ion+channels+by+phosphorylation+and+dephosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.Second+Messenger+Phosphoprotein+Res%22%5BJournal%5D)">Regulation of CFTR Cl- ion channels by phosphorylation and dephosphorylation.</a> Adv.Second Messenger Phosphoprotein Res. 33, 79-106 (1999).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ATPase+activity+of+the+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">ATPase activity of the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator.</a> J Biol Chem. 271 (45), 28463-28468 (1996).</li>
<li>Ma, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thiazolidinone+CFTR+inhibitor+identified+by+high-throughput+screening+blocks+cholera+toxin-induced+intestinal+fluid+secretion%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Thiazolidinone CFTR inhibitor identified by high-throughput screening blocks cholera toxin-induced intestinal fluid secretion.</a> J Clin Invest. 110 (11), 1651-1658 (2002).</li>
<li>Kopeikin, Z., Sohma, Y., Li, M., Hwang, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+mechanism+of+CFTR+inhibition+by+a+thiazolidinone+derivative%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gen+Physiol%22%5BJournal%5D)">On the mechanism of CFTR inhibition by a thiazolidinone derivative.</a> J Gen Physiol. 136 (6), 659-671 (2010).</li>
<li>Wang, X. F., Reddy, M. M., Quinton, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+a+new+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator+inhibitor+on+Cl-+conductance+in+human+sweat+ducts%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of a new cystic fibrosis transmembrane conductance regulator inhibitor on Cl- conductance in human sweat ducts.</a> Exp Physiol. 89 (4), 417-425 (2004).</li>
</ol>

Yazarlar burada anlatılan saflaştırma yöntemlerinin geliştirilmesi sırasında Dr. Mohabir Ramjeesingh tavsiye kabul. Bu çalışmalar Sağlık Araştırması (CIHR) ve Kistik Fibrozis Kanada (CFC) Kanada Enstitüleri CEB İşletim Hibe tarafından desteklendi. PDWE CIHR ve CFC üzerinden Kardeşlik ödülleri kısmen desteklenmiştir. Yazarlar Kistik Fibrozis Vakfı Therapeutics (CFFT) tarafından düzeltici, kuvvetlendirici ve Dr. R. Köprülerin (Tıp Rosalind Üniversitesi ve Bilim) den inhibitör bileşiklerin ve dağıtım sağlanmasını kabul. Yazarlar ayrıca bakülovirüs sistemini kullanarak WT ve mutant CFTR proteini ifade Baylor Hücre Kültürü Tesisi (NIH hibe P30 CA125123) tarafından üstün hizmet kabul. inaktif VX-770 analog, V-09-1188, Vertex İlaç bir hediye oldu.

Hücresel aşırı ekspresyonu sistemleri çeşitli, tam uzunluktaki fonksiyonel CFTR izolasyonu için saflaştırma protokolleri sınırlı sayıda olmuştur. Bu ATP ve düzlemsel iki tabakalı, tek kanallı ölçümleri de dahil olmak üzere kanal fonksiyonunun doğrudan ölçümleri, aşağıdakileri içeren deneylerde son derece işlevseldir, Wt-CFTR veya orta miktarlarda F508del- ve G551D-CFTR yüksek zenginlikte hızlı saflaştırılmasına olanak tanımaktadır burada tarif edilen yöntem avantajlıdır, Küçük moleküllerin 19-21 çalışmalarına...

Akciğer, bağırsak, pankreas ve ter bezleri gibi dokularda epitel hücrelerinin apikal membranlar arasında Klorür taşıma öncelikle ABC Kistik Fibrozis Transmembran İletkenlik Regülatörü (CFTR), bir ATP ve fosforilasyon-regüle üyesi (ATP aracılık 1 gözden membran proteinlerinin Kaset) C alt ailesini () Bağlayıcı. ABCC alt ailesinin diğer üyeleri gibi CFTR nükleotid-bağlayıcı etki tek mütevazı ATPaz aktivitesine sahip (NBDs), ara yüzünde oluşan iki nükleotid bağlama sahalarında ATP bağlanan bir geniş, çok geçişli bir integral membran proteinidir sitesi. Ancak, diğer ABCC alt familyası üyeleri aksine, CFTR eşsiz düzenlenmiş Cl kanalı olarak yerine aktif bir çözünen taşıyıcı olarak gelişmiştir. Morbi giden CFTR neden Kistik Fibrozis, akciğerler, gastrointestinal sistem, pankreas ve üreme yolu da dahil olmak üzere birçok organı etkileyen bir hastalık mutasyonlar,Genç erişkinlerde dity ve ölüm. Akciğer hastalığı, genellikle iletken solunum yollarının yüzey epiteli üzerine CFTR fonksiyon kaybı neden olur Kistik Fibrozis erken mortalite ve çoğu durumda hesapları. siliyalı solunum epiteli apikal yüzeyinde sıvı tabakası değiştirmek için yüzey epiteli boyunca ve su hareketi - CFTR klorür kanal aktivitesinin eksikliği hem Cl azalmaya neden olur. Bu kirpikli solunum epitel hücrelerinin yeteneğini bozar viskoz havayolu yüzey sıvı sonuçlanır hava yollarının dışında etkin bir açık patojenler için. Sonuç olarak, çoğu CF hasta akciğer enfeksiyonu ve iltihabı nedeniyle akciğer hasarı atakları muzdarip. Beklendiği gibi, normal bir CFTR proteininin etki mekanizmasının çalışmaları öncelikle kanal yolluk aktivitesinin detaylı elektrofizyolojik çalışmalar üzerinde duruldu. Tek kanallı çalışmalar bir pKa bağımlı Cl gibi doğrudan bu CFTR fonksiyonlarını göstermişlerdir- ATP düzenlenmiş kapısı 2 sahiptir kanalı. Çalışılmıştır herhangi bir tek bir kanal özellikleri dolayısıyla tüm CFTR kanallarının nüfus ve tek kanal yansıtıcı olup olmadığı detaylı elektrofizyolojik çalışmalar tek CFTR kanalları 1,3 bilgilerin büyük bir sağlamak, ancak endişe olabilir Sonuçlar her zaman makroskobik nüfusu çalışma yöntemleri ile birlikte düşünülmelidir. Saflaştınldı CFTR nüfus kanal aktivitesinin doğrudan tahlil hastalığa neden olan mutasyonlar ile bağlantılı moleküler bozukluğun ilişkin bilgi sağlar ve kimyasal modülatörleri tamir mutan CFTR proteini keşfini potansiyeline sahiptir. Bugüne kadar, Kistik Fibrozis 4 neden olduğu düşünülmektedir CFTR 1.900 farklı mutasyonlar aşan vardır. Kuzey Amerika ve Avrupa&#39;da hastaların yaklaşık% 90&#39;ında en az bir alleli bulunan büyük mutasyon, F508del-CFTR, protein hatalı katlanması yol açarendoplazmik retikulum 5 nci tutma. F508del-CFTR da arızalı kanal faaliyeti 6-9 dahil olmak üzere diğer sonuçları vardır. hücre yüzeyinden CFTR elde edilen olmaması şiddetli hastalık ile ilişkilidir. G551D-CFTR, daha az yaygın mutasyon, düzgün henüz katlanmış hücre yüzeyinde 6 bir klorür kanalı olarak işlevsiz olduğunu düşünülmektedir. küçük molekül düzelticisi ve güçlendiricileri gelişimi sırasıyla hücre yüzeyi üzerinde mevcut olan bir katlama ve / veya hücre yüzeyine F508del-CFTR gibi mutantların kaçakçılığı ve güçlendirici düzeltilmesi veya bu gibi G551D mutasyonların kanal aktivitesini arttırma amacı vardır . 150 mg KF hastalarında&gt; 6 yıl en az bir G551D ile her 12 saatte de kullanılan, VX-770); düzelticiler, VX-809 ve VX-661 (henüz hastalarda kullanımı, güçlendiricisi Kalydeco (ivacaftor onaylanmayan da -CFTR mutasyon ve daha yakın zamanda hastalar için G178R, S549N, S549R, G551S, G1244E, S1251N, S1255P biriyleve G1349D. Kalydeco CF hastalığının 10 klinik önlemler, bu küçük molekülün eylem Ancak mekanizması zayıf hastalarda kullanılmak üzere FDA onayı sırasında anlaşılmıştır iyileştirilmesi güvenli ve sonuçları hem de. CFTR saflaştırma yöntemleri bir avuç önce tamamlamak için önemli bir zaman uzunluğu gerekli çoğu 2,11-18 tarif edilmiştir. Son zamanlarda yayınlanan 19, özel bir hızlı saflaştırma ve yeniden çözme yöntemi Sf 9 hücre ifade sistemi içinde aşırı ifade CFTR için tarif edilmiştir ve tanımlanan lipid sistemleri bu saflaştırılmış protein CFTR oluşan bir popülasyon için bir CFTR halojenür kanal etkinliği test geliştirmek için kullanılmıştır moleküller. Tahlil CFTR fonksiyonu fosforilasyon, nükleotidler ve inhibitörlerinin bilinen etkilerini özetler. Sistem bir potansiyatör etkilerini sorgulamak için kullanılmıştır VX-770 / Kalydeco ağırlıkça (vahşi tip), F508del- ve G551D-CFTR ve ilk için gördüilaç için bir nüfus açısından CFTR ve nükleotidler ve küçük moleküller ile mutantların etkileşimi çalışmasında bu yöntemlerin kullanımını, uygulanabilir gösteren, bir ATP-bağımsız bir şekilde, kanal aktivitesini güçlendirmek için, CFTR proteini ile doğrudan etkileşime giren bir zaman protein hakkında klinik olarak ilgili sorulara cevap. yöntemler, başka potansiyatör molekülleri ve bunların türevleri 20, hem de protein 21 aktivitesine küçük bir molekül düzeltici etkilerini incelemek için kullanılmıştır. Efflux deneyleri daha önce elektrotlar, radyoaktif izleyiciler ve florofor 22,23 kullanılarak bütün hücre tahlilleri, iyon seçici elektrotlar 24 ile zar vezikülleri dahil olmak üzere CFTR mutantlarının aktivitesini ve etkinliği üzerindeki CFTR modülatör bileşiklerinin etkilerini araştırmak üzere pek çok çalışmada kullanılmıştır ve radyoaktif izleyiciler 25 ile yeniden CFTR saflaştırılmış. Ancak thsaflaştırılmış yeniden CFTR çalışma iyon seçici elektrotlar e kullanımı ilk geçenlerde 19 bildirilmiştir. Mevcut yöntemin bir adaptasyonu yeniden ve Pseudomonas aeruginosa, ortak bir KF patogen içinde iki membran proteinlerinin fonksiyonel karakterizasyonu için kullanılmıştır. Iyodür akış ölçümleri ile birlikte saf hale alge dış zar proteininin yeniden oluşturulması, bu taşıyıcı 26 boyunca anyonik alginat salgılama için bir model desteklemek için kullanılmıştır. Sulandırma ve iyodür akış ölçümleri, bir model bu protein 27 ile bakteri iç zarı boyunca lipit bağlantılı oligosakarit translokasyon için bir H + -bağlı antiport mekanizması ileri sürdüler izin saflaştırılmış Wzx protein uygulanmıştır. Bir yerel bir alt-tabaka için beklenebilir daha Her iki durumda da iyodür daha düşük kapasite ile de olsa, anyonik alt-tabaka için bir vekil olarak kullanılmaktadır. yöntem c başka proteinler adaptasyon için uygunanyonik yüzeyler için ationic taşıma veya iletim yolları. Burada bir hızlı saflaştırma prosedürü CFTR proteini ve tanımlanan lipid proteoliposomes içine yeniden tarif edilmiştir. hızlı yeniden oluşturma işlemi kolayca arıtılmadan kullanılan deterjan türü burada kullanılan yöntemler ile ayrıştığı ya da rekonstitüsyon işlem öncesinde uygun bir deterjan için değiştirilebilmesi şartıyla, diğer yöntemlerle arıtılır CFTR ile kullanım için uygun hale getirilebilir. Saflaştırılmış ve yeniden CFTR proteininin kanal aktivitesinin ölçülmesi için iyodür akış yöntemi ayrıntılı olarak tarif edilmiştir ve bu yöntem kullanılarak elde edilen bazı tipik sonuçlar sunulmaktadır.

<table><tbody><tr><td>fos-kolin 14 deterjan</td><td>Anatrace Affymetrix (www.anatrace.affymetrix.com)</td><td>F312</td><td>Affymetrix: Anatrace Ürünleri; CAS#&nbsp; :77733-28-9</td></tr><tr><td>cOmplete EDTA içermeyen proteaz inhibitörü kokteyl tabletleri</td><td>Roche (www.roche-applied-science.com)</td><td>04 693 132 001</td><td>EDTA içermeyen Proteaz inhibitörü kokteyl tabletleri (50 ml'de 1 veya mini: 10 ml'de 1) (Roche Diagnostics GmbH; Ref: 11873 580 001)</td></tr><tr><td>cOmplete ULTRA Tabletler, Mini, EDTA içermez, EASYpack&nbsp;</td><td>Roche (www.roche-applied-science.com)</td><td>05 892 791 001</td><td></td></tr><tr><td>Ni-NTA Agarose</td><td>Qaigen GmbH</td><td>1018240</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand Tarama sütunları</td><td>Fisher Healthcare</td><td>11-387-50</td><td></td></tr><tr><td>Amicon Ultra Santrifüj filtreler, Ultracel-100K</td><td>Millipore (www.millipore.com)</td><td>UFC910008</td><td></td></tr><tr><td>cAMP'ye Bağımlı Protein Kinaz A (PKA), Katalitik Alt Birim</td><td>New England Biolabs (www.neb.com/products/p6000-camp-dependent-protein-kinase-pka-catalytic-subunit)</td><td></td><td>Peirce PKA da uygundur</td></tr><tr><td>PC, Tavuk Yumurtası</td><td>Avanti Polar Lipidler (www.avantilipids.com)</td><td>840051C</td><td></td></tr><tr><td>POPC</td><td>Avanti Polar Lipidler (www.avantilipids.com)</td><td>850457C</td><td></td></tr><tr><td>PS, Domuz Beyni</td><td>Avanti Polar Lipidler (www.avantilipids.com)</td><td>840032C</td><td>CFTR, Yumurta PC, POPC, 2: 1 (w / w) Yumurta PC: POPC veya PE: PS: PC: ergosterol, 5: 2: 2: 1 (a / a)</td></tr> <tr><td>PE, Tavuk Yumurtası</td><td>Avanti Polar Lipidler (www.avantilipids.com)</td> <td>841118C</td><td></td></tr><tr><td>Ergosterol</td><td>Sigma (www.sigmaaldrich.com)</td> <td>45480</td><td></td></tr><tr><td>Pierce Deterjan giderme sıkma sütunu</td><td>Thermo Scientific</td><td>87779</td><td>1 ml kapasiteli sütunlar</td></tr><tr><td>valinomisin</td><td>Sigma (www.sigmaaldrich.com)</td><td>V-0627</td><td></td></tr><tr><td>VX-770 (ivacaftor)</td><td>Selleck Chemicals</td><td>S1144</td><td></td></tr><tr><td>iyodür seçici mikroelektrot</td><td>Lazar Araştırma Laboratuvarları (www.shelfscientific.com/cgi-bin/tame/newlaz/microionn.tam)</td><td>LIS-146ICM</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; </td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>Clampex 8.1 yazılımı</td><td>Axon Instruments (www.axon.com)</td><td></td><td>elektrotumuza verilen yanıtı izlemek ve kaydetmek için ClampX sisteminin bileşenlerini ev yapımı bir filtreyle kullanıyoruz</td></tr><tr><td>Alternatif Yazılım: ArrowLabb System&nbsp;</td><td>Lazar Araştırma Laboratuvarları (www.shelfscientific.com/cgi-bin/tame/newlaz/ionsystems.tam)</td><td>LIS-146LICM-XS</td><td>Lazar Research, prob yanıtını kaydetmek için bir bilgisayar ve yazılımla arayüz oluşturabilen bir ölçüm cihazı satıyor. Bu yazılım, kurulumumuza benzer bir işleve hizmet etmelidir.</td></tr><tr><td>küçük karıştırma çubukları</td><td>Big Science Inc (www.stirbars.com)</td><td>SBM-0502-CMB</td>, <td>96 oyuklu bir plakanın kuyusuna kolayca sığacak kadar küçük bir karıştırma çubuğu seçin</td></tr><tr><td>Sephadex G50, ince</td><td>GE Health Care (www.gelifesciences.com)</td><td>17-0042-01</td><td></td></tr><tr><td>Sonicator</td><td>Laboratuvar Malzemeleri Co, Inc.</td><td>G112SP1G</td><td>Diğer üreticilerin banyo sonikatörleri de uygun olmalıdır</td></tr></tbody></table>

saf yabanitip ve mutant cftr protein fonksiyonel sulandırma ve kanal aktivite Ölçümleri

Functional Reconstitution and Channel Activity Measurements of Purified Wildtype and Mutant CFTR Protein

Kistik fibroz membran geçirgenliğinin düzenleyicisi (CFTR), taşıyıcıların Kaset (ABC) süper ailesinin ATP bağlayıcı bir benzersiz bir kanal oluşturan bir üyesidir. CFTR fosforilasyon ve nükleotid bağlı klorür kanal etkinliği sık bütün hücre sistemleri ve kesilen membran yamalar tek kanal olarak incelenmiştir. Birçok Kistik Fibroz-neden olan mutasyonlar bu aktiviteyi değiştirmek için gösterilmiştir. Arıtma protokolleri az sayıda yayınlanmış olsa da, kanal aktivitesini muhafaza eden bir hızlı yeniden oluşturma yöntemi ve saflaştırılmış bir sistem içinde nüfus kanalı etkinliğini incelemek için uygun bir yöntem, eksik edilmiştir. Burada hızlı yöntemler düzenlenmiş bir halid kanalı olarak etkinliğini muhafaza eden, lipid tanımlanan bileşimin proteoliposomes haline getirilerek, ve tam uzunluktaki CFTR proteininin işlevsel olarak yeniden tarif edilmiştir. Birlikte kanal aktivitesi olan yeni bir akı bazlı deneyde Bu yeniden oluşturma yöntemi için uygun bir sistemdirvahşi tip CFTR nüfus kanal özelliklerini ve hastalık yapıcı mutantlar F508del- ve G551D-CFTR okuyan. Özel olarak, yöntem, fosforilasyon, nükleotidler ve bu tür CFTR kanal aktivitesi üzerindeki kuvvetlendirici ve inhibitörleri olarak küçük moleküllerin doğrudan etkilerinin araştırılması yararlıdır. yöntem aynı zamanda, anyonik maddeler için başka membran kanal / taşıyıcıların çalışma için uygun.

Bu yazılı yayında tarif, arındırmak sulandırmak ve CFTR proteininin düzenlenmiş kanal aktivitesini ölçmek için yöntemler bulunmaktadır. 1a saflaştırma, yeniden ve iyodür akış prosedürleri için iş akışını göstermektedir. Iyodür akı yeniden oluşturma ve kanal Aktivite ölçümleri için yöntemler de ilgili video daha ayrıntılı olarak gösterilmektedir. Proteoliposomes içine CFTR saflaştırma ve yeniden çözme CFTR işlevsel Sf&#39;ye</...

Burada anlatılan Kistik Fibrozis kusurlu olan bu klorür kanalı, etkinliğini korur saflaştırılmış yabani tip ve mutant CFTR proteininin fonksiyonel yeniden bir hızlı ve etkili bir yöntemdir. CFTR aracılık ettiği yeniden proteoliposomes gelen iyodür akış kanalı aktivitesinin çalışmaları ve küçük moleküllerin etkilerini sağlar.

Saf Yabanitip ve Mutant CFTR Protein Fonksiyonel Sulandırma ve Kanal Aktivite Ölçümleri

The Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator (CFTR) is a unique channel-forming member of the ATP Binding Cassette (ABC) superfamily of ...

Bu prosedürün genel amacı, yeniden oluşturulmuş bir sistemdeki CFTR kanalı popülasyonunun fonksiyonunu ölçmek ve kanalların modülatör moleküllerin varlığına verdiği yanıtı incelemektir. Bu işlem, öncelikle deterjan çözeltisi içinde fonksiyonel CFTR proteini sağlayan hızlı bir saflaştırma prosedürü kullanılarak, SF nine hücrelerinden yabani tip veya mutant CFTR proteininin saflaştırılmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adım, saflaştırılmış proteinin, deneyci tarafından seçilen tanımlı lipitlerden oluşan proteolipozomlar içine yeniden konstrüktü edilmesidir.Ardından, CFTR kanalı üzerinden iyon hareketini sağlayacak itici bir güç oluşturmak için fazla lipozomal iyodür uzaklaştırılarak membran boyunca bir iyodür kimyasal gradyanı oluşturulur. Son adım, kanalı aktive etmek ve ilgilenilen modülatör molekülün varlığında proteolipozomlardan iyodür salınımını başlatmaktır. Nihayetinde, bu yeniden oluşturulmuş sistemde CFTR kanal fonksiyonunu gerçek zamanlı olarak izlemek için bir iyodür seçici elektrot kullanılır.Bu yöntem, fosfolipid lipozomlara yeniden yapılandırılmış saflaştırılmış bir CFTR molekül popülasyonunun klorür kanalı aktivitesinin incelenmesine olanak tanır. Bu yöntem, CFTR kanalının fonksiyonu ve küçük moleküllü modülatörlerin etkisi hakkında bilgi sağlamak amacıyla belirlenmiş olsa da, diğer membran proteinlerinin fonksiyonel karakterizasyonu gibi diğer sistemlere de uygulanabilir. Başarılı olmak için, bu yöntemde yeni olan kişilerin, sistemleri için protein-lipid oranlarını optimize ettiklerinden, düşük fonksiyonlu veya fonksiyonel olmayan proteinlerle çalışmadıklarından ve iyi sızdırmazlığı sağlanmış veziküller boyunca yeterli bir iyodür gradyanı oluşturduklarından emin olmaları gerekir.Lipidi hazırlamak için öncelikle beş miligram yumurta fosfatidilkolin veya yumurta PC'yi, borosilikat olmayan bir cam tüp içerisinde argon gazı akımı altında oda sıcaklığında 20 dakika boyunca kurutun. Ardından, metin protokolünde belirtildiği şekilde gereken tampon altı hacmini hesaplayın ve ardından tampon altıyı doğrudan lipide ekleyin. Cam tüpü perfil ile mühürleyin ve lipidi tampon içerisinde süspand etmek için tüpü oda sıcaklığında iki dakika boyunca vorteksleyin.Ardından, tüpün kenarında görünür bir lipid filmi kalmayana kadar, bir mililitrelik şırıngaya takılı 25 gauge iğne ile lipidi oda sıcaklığında süspande edin. Süspande olan lipid nedeniyle tampon bulanık görünecektir. Tüpteki lipidi, buz içeren bir sonikatör banyosunda 22 saniyelik bir patlama şeklinde sonike edin ve ardından tüpü bir dakika boyunca dinlenmesi için buza yerleştirin.Bu döngüyü üç kez tekrarlayın. Ardından, toplam hacim bir mililitre olacak şekilde lipidlere CFTR proteinini ekleyin. Proteini, 25 gauge bir iğne kullanarak lipid süspansiyonu ile 10 kez karıştırın.Örneği 30 dakika boyunca buz üzerinde bekletin ve inkübasyon sırasında karıştırmak için tüpü her beş dakikada bir beş kez döndürün. Tek kullanımlık deterjan bağlayıcı spin kolonun alt sekmesini kırın ve kolonu 2000 ×g hızında iki dakika boyunca santrifüjleyin. Saklama tamponunu uzaklaştırmak için kolonu beş mL tampon yedi ile yıkayın ve yıkama tamponunu elüe etmek için kolonu 2000 ×g hızında dört dakika boyunca santrifüjleyin.Kolonu üç kez yıkayın, bir mililitrelik protein lipid örneğinin tamamını kolon reçinesinin üst kısmına aktarın ve ardından kolonu oda sıcaklığında iki dakika boyunca inkübe edin. Kolonu oda sıcaklığında, 2000 ×g hızda dört dakika boyunca santrifüjleyin. Daha sonra bulanık protea lipozom örneğini temiz bir mikro santrifüj tüpüne aktarın ve tüpü buz üzerine yerleştirin. Beş gram cidex G 50 boncuğunu, 50 mililitre tampon dokuz içerisinde oda sıcaklığında en az iki saat boyunca bekletin.Ardından, dört küçük tarama kolonunu doymuş boncuklarla en az dörtte üç oranında dolana kadar doldurun. Reçinedeki fazla tamponu uzaklaştırmak için kolonları 2000 ×g hızında dört dakika boyunca santrifüjleyin. Santrifüj işleminden sonra kolonda yaklaşık 2.25 mL paketlenmiş reçine bulunmalıdır.Protea lipozomları ile elüsyon için reçinenin uygun şekilde hidrate edilmesi kritiktir. Ardından, her kolonun üst kısmına 125 µL protea lipozom örneği aktarın ve 2000 ×g hızında dört dakika boyunca santrifüjleyin. İyodür FLX deneylerinde kullanmak üzere EIT'leri havuzlayın.96 kuyucuklu bir plakanın bir kuyucuğuna küçük bir F fleece karıştırma çubuğu yerleştirin ve ardından kuyucuğa, tampon dokuz içinde 20 micromolar konsantrasyonda 150 microliter VX seven 70 ekleyin. Varsa hava kabarcıklarını gidermek için bir pipet ucu kullanın. Daha sonra, toplam hacim 300 microliter olacak şekilde kuyucuğa 150 microliter protea lipozom örneği ekleyin.96 kuyucuklu plakayı dakikada 130 devir hızındaki bir manyetik karıştırıcı üzerine yerleştirin. İyodür duyarlı elektrodun ucunu, karıştırma çubuğuna veya kuyucuğun tabanına değdirmeden çözeltiye daldırın. Elektrot sinyalinin izlerini kaydetmek için, sinyali iki hertz örnekleme hızına sahip bir düşük geçiren filtreden geçirin ve numunenin dengelenmesini sağlamak için numuneden beş dakika boyunca izleri kaydedin.Stabil, neredeyse düz bir temel çizgi oluşturmalıdır. Ardından, pH 7 değerindeki 100 millimolar magnezyum ATP stok çözeltisinden üç µL ekleyin. CFTR kanallarını aktive etmek için, örneğin yeni bir temel çizgiye ulaşmak üzere beş dakika daha dengelenmesine izin verin.Ardından, CFTR aktivitesi tarafından oluşturulan elektrokimyasal gradyanı ortadan kaldırmak için iki mikromolar stok çözeltiden üç µL valinomisin ekleyin. CFTR aracılı iyodür FLX aktivitesine bağlı voltaj düşüşünü en az beş dakika boyunca kaydedin.Ardından, kontrol amacıyla protea lipozom lümeninden iyodür salınımını sağlamak için numuneye %10 Triton X 100 çözeltisinden üç µL ekleyin. Belirgin bir iyodür salınımı, veziküllerde hapsolmuş iyodürün CFTR aktivitesi için kısıtlayıcı olmadığını gösterir. Numuneyi ölçtükten sonra, tampon dokuz içerisinde potasyum iyodürün mikromolar ile nanomolar konsantrasyonlar arasında bir dilüsyon serisini hazırlayın.En seyreltik çözeltiden başlayarak, bir standart eğri oluşturmak için her iyodür konsantrasyonunda elektrodun milivolt cinsinden yanıtını kaydedin. Yaban tip CFTR iyodür için analiz edildi. F akısı aktivitesi, rekonstitüsyon sonrası saniye başına ano mol cinsinden ölçüldü.İyodür akışı, CFTR ve VX-770 varlığında, CFTR'den yoksun kontrole kıyasla ve VX-770 eklenmesiyle önemli ölçüde stimüle edilir. CFTR, siklik AMP bağımlı protein kinaz (PKA olarak bilinen katalitik alt birim) tarafından fosforile edildiğinde; aksine, güçlü inhibitör CFTR inhibitor-172 ile ön işlem yapılması iyodür akış hızını azaltır. VX-770'nin vahşi tip CFTR'nin iyodür akışını potansiyalize etme yeteneği, PKA ile fosforilasyon olmadan ve fosforilasyonla birlikte test edilmiştir; VX-770, bağıl iyodür akışını yalnızca fosforile CFTR varlığında artırmıştır. VX-770'nin etkinliği, Delta 508 CFTR olarak adlandırılan bir CFTR varyantı kullanılarak analiz edilmiştir ve inaktif analog V091188 fosforile delta 508 CFTR aktivitesini potansiyalize etmezken, VX-770 bağıl iyodür akışını artırmıştır. Uzmanlaşıldığında, bu teknik, saflaştırmadan CFTR aktivite ölçümlerine kadar tipik sekiz saatlik bir iş gününde tamamlanabilir; CFTR'nin saflaştırılması yaklaşık dört saat sürer ve eFlux analizi başlatılmadan önce rekonstitüsyon bir saat daha alır.Bu prosedürü takiben, küçük moleküllerle olan etkileşimi daha ayrıntılı karakterize etmek için aynı CFTR proteini preparasyonu kullanılarak T PS deneyi ve para lipid S içindeki tek kanal iletkenlik ölçümü dahil olmak üzere diğer yöntemler uygulanabilir. Bu yöntemleri kullanan bir kistik fibrozis araştırmacısı, CFTR modülatörü alanıyla ilgili temel soruları, yani modülatörün CFTR proteini ile doğrudan etkileşime girip girmediğini ve bu modülatörün etki mekanizmasının ne olduğunu yanıtlayabilecektir.

functional-reconstitution-channel-activity-measurements-purified

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Biz nasıl bir iyon kanalı fonksiyonu tek bir nokta mutasyonu etkisinin araştırılması gösterecektir.

İyon Kanalları ve Fonksiyonel Analiz Mutagenez Heterologously Memeli Hücreleri cinsinden ifade edilir

Kistik fibrozis transmembran iletkenlik regülatör (CFTR) ifade etmek için...

Yılında Kistik Fibrozis Transmembran İletkenlik Regülatörü Protein İfadesi ve Arıtma Saccharomyces cerevisiae

Kistik fibrozis transmembran kondüktans regülatörü (CFTR), epitelyal bir klor kanalı, çeşitli proteinler ile etkileşim ve önemli hücre süreçlerini düzenleyen bildirilmiştir; aralarında CFTR PDZ motifi aracılı etkileşimleri de belgelenmiştir. Bu protokol bizim karmaşık bir sinyal PDZ bağımlı CFTR makromoleküler birleştirmek için geliştirilen yöntemler...

PDZ bağımlı CFTR makromoleküler Sinyal Kompleksleri İn Vitro Analizi

Lipid membranlar bir prototip voltaj kapılı potasyum kanalı tam sulandırılması için prosedürler açıklanmıştır. Sulandırılmış kanallar biyokimyasal testler, elektrik kayıtları, ligand ve tarama elektron kristalografik çalışmalar için uygundur. Bu yöntemler, başka zar proteinlerinin yapısal ve fonksiyonel çalışmalar için genel uygulamalar olabilir.

Yapısal ve İşlevsel Araştırmalar için Lipid Membranlar bir Kv Kanal Sulandırma

Heterolog ifade ve kistik fibrozis transmembran iletkenlik regülatör (CFTR) saflaştırılması önemli sorunlar ve kistik fibrozis için ilaç tedavilerinin gelişiminde sınırlayıcı faktörler. Bu protokol, yapısal ve işlevsel çalışmalar için uygun CFTR miligram miktarları izolasyonu için iki yöntem açıklanır.

Olarak ifade edilmiştir kistik fibroz transmembran kondüktans regülatörü Protein Saflaştırılması<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Kalıtsal kardiyak aritmiler genellikle bir veya daha fazla iyon kanallarının yüzey teslim değiştiren mutasyonlar neden olur. Burada, TSA-201 hücrelerinde eksprese edilen rekombinant iyon kanallarının göreli ve toplam hücre yüzeyi protein ekspresyonunun bir ölçümünü sağlamak için tahliller flow sitometri uyum sağlar.

Akım Sitometri Kullanımı rekombinant İyon Kanallarının göreli Hücre Yüzey ve toplam İfade tayini

Bu makalede biyokimyasal miktarda deterjan çözündürüldükten TRPV1 spektroskopik analiz için elde için belirli yöntemleri açıklar. Kombine protokoller memeli iyon kanalları membran kontrollü bir ortamda yapısal ve fonksiyonel çalışmaları kolaylaştırmak için uyarlanmış Biyokimya ve biyofizik araçları sağlar.

Arıtma ve TRPV1 sulandırma spektroskopik analizi için

Bu protokol, hücresel bir ortamda reseptörlere gerçek zamanlı olarak adenin nükleotid bağlanmasını ölçmek için bir yöntem sunar. Bağlanma, trinitrofenil nükleotid türevleri ile kanonik olmayan, floresan amino asit ile etiketlenmiş protein arasındaki Förster rezonans enerji transferi (FRET) olarak ölçülür.

Sağlam, fonksiyonel membran proteinlerine bağlanan nükleotidin gerçek zamanlı olarak ölçülmesi

Bu protokol, membran potansiyelindeki değişiklikleri ölçerek elektrojenik membran proteinlerinin incelenmesi için bir yöntem açıklamaktadır. Bu tahlil, epitel hücre hatlarında endojen olarak eksprese edilen çoklu iyon kanallarının fonksiyonel olarak okunması için bir platform sağlar.

İki Epitel Hücre Hattında İki Endojen İyon Kanalının Yüksek Verimli Fonksiyonel Çalışması için Membran Potansiyelinin Floresan Bazlı Bir Analizi

İşlevsel bölgeye yönelik florometri, protein alanı hareketlerini gerçek zamanlı olarak incelemek için kullanılan bir yöntemdir. Bu tekniğin doğal hücrelerde uygulanması için modifikasyonu, artık murin izole iskelet kası liflerindeki voltaj kapılı Ca2 + kanallarından tek voltaj sensörü hareketlerinin tespit edilmesine ve izlenmesine izin vermektedir.

İskelet Kas Uyarılabilirliğini Incelemek için Doğal Hücrelerde Fonksiyonel Bölgeye Yönelik Florometri

Elektrofizyoloji, iyon kanalı aktivitesini araştırmak için altın standarttır. Bununla birlikte, optik yöntemler de dahil olmak üzere birçok alternatif yaklaşım vardır. Burada, alt birimler arası Förster rezonans enerji transferi (FRET) tabanlı bir yöntem kullanarak 8 kanal (LRRC8) ile oluşturulmuş anyon kanalı içeren lösin açısından zengin tekrarın aktivitesini izlemek için bir yöntem açıklıyoruz.

Hassaslaştırılmış Emisyonlu Förster Rezonans Enerji Transferi (SE-FRET) Kullanılarak 8 Kanal (LRRC8/VRAC) Aktivitesi İçeren Lösin Açısından Zengin Tekrarın İzlenmesi

Öğrenin, SF9 hücrelerinden saflaştırılan yabanitip ve mutant CFTR proteininin proteolipozomlara yeniden yapılandırılması ve iyot seçici elektrotla kanal aktivitesinin ölçülmesi yöntemini. Bu teknik, kistik fibroz tedavileri için modülatör moleküllerin etkisini değerlendirmeye yardımcı olur.

Saf Yabanitip ve Mutant CFTR Protein Fonksiyonel Sulandırma ve Kanal Aktivite Ölçümleri

Daha fazla video keşfet