Name: Hücre Şekli Alteration ve Hücre Hareketi Görüntüleme Drosophila Gastrulasyon kullanarak DE-kaderin Muhabir Transgenik Sinekler (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 42 s
Description: Öğrenin Drosophila gastrulasyonu sırasında hücre şekli değişimi ve hareketini canlı görüntüleme yöntemiyle. Bu teknik, apikal konstriksiyon ve morfogenetik hücre dinamiklerini incelemek için güçlü bir araç sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Astellas Metabolik Bozukluklar Araştırma Vakfı (HT), Takeda Bilim Vakfı (HT) ve Özel Üniversitelerde Stratejik Araştırmalar Vakfı için MEXT Destekli Program (HT) tarafından desteklenmiştir.

Not: DE-cad :: GFP 10: Bu çalışmada kullanılan transjenik sinekler şunlardır. Elma Plate 1. Hazırlık <ol><li> Mikrodalgada 12.5 g ağar, 125 mL% 100 ticari olarak temin elma suyu, 12.5 g glikoz ve 375 mL H2O ısı karışımının bir karışım hazırlayın ve 3 cm hücre kültürü çanağı içine dökün. ileride kullanım için 4 ° C&#39;de karışım saklayın. </li><li> elma plakasını hazırladıktan sonra, sinekler yumurta bırakmaya izin bunun üzerine yoğrulmuş maya hamur ince bir tabaka ekleyin. </li></ol> 2. Embriyo Hazırlama ve Canlı Görüntüleme Protokolü <ol><li> dostum ve daha sonra yoğrulur maya kaplı bir elma plaka üzerinde bir gecede yumurtlamak için bir şişe yaklaşık 50 sinekler (25 erkek ve 25 kadın) yerleştirin. Şişenin ağzında elma suyu plakasını ayarlayın. baş aşağı bir kuluçka şişesi bulundurun. Inci istemi için alüminyum folyo ile plastik Drosophila stok şişeleri Wrape daha fazla yumurta bırakmaya uçar. </li><li> Ertesi sabah, bir yenisi ile eski elma suyu plakasını değiştirin. </li><li> sinekler alüminyum folyo ile sararak şişeyi 3 ila 4 saat süreyle yumurtalarını edelim. </li><li> Üç dört saat sonra, bir fırça veya pamuk feci kullanarak elma suyu plaka embriyo süzgeç embriyolar toplamak ve PBS ile yıkayın. 12 oyuklu kültür tabaklarında embriyo PBS ile 2 veya 3 kez daha yıkanır. </li><li> 12-Kaynak kültür tabağı içindeki 5 dakika için% 50 çamaşır suyu ile embriyolar Dechorionate. </li><li> dechorionation işleminden sonra, PBS ile embriyolar, 2 ila 3 kez daha yıkanır. </li><li> PBS basıp evre kendi sınırları şeffaflık seviyesine göre mikroskop altında 5 embriyoları içeren bir 3 cm hücre kültürü çanak embriyolar aktarın. 200 uL pipet kullanarak aşamalı embriyolar pipetle. </li><li> Sonra, bir cam lamel seçilen iki embriyo yerleştirin ve ince bükülmüş kağıt mendil ile aşırı PBS kaldırmak. yukarı embriyolar dorsal yüzü yönlendirmekince bükülmüş kağıt mendil kullanarak lamel. Bundan sonra, ince bir iğne ve bükülmüş kağıt mendil kullanarak silikon gres ile cam lamel embriyolar takın. </li><li> slayt altındaki biraz boşluk bırakarak, embriyolar üzerinde halokarbon yağı 700 küçük bir damla ekleyin ve baş aşağı girintili slaytta embriyoları içeren lamel yerleştirin. </li><li> Konfokal görüntüleme sistemi, bir Argon / 488 lazer ve bir yağ daldırma objektif (63X) ile embriyolar inceleyin. NOT: Uygun gelişim aşamasında embriyo belirlenmesi gastrulasyon olayın görüntülerini yakalamak için önemlidir. Bu koşullar altında, neredeyse tüm embriyolar analiz embriyo bir yetişkin olarak geliştirmek için daha fazla kültür edilebilir en az bir aşama 14 kadar normal gelişim gözlemleyin. </li></ol>

<ol><li>Haruta, T., Warrior, R., Yonemura, S., Oda, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+proximal+half+of+the+Drosophila+E-cadherin+extracellular+region+is+dispensable+for+many+cadherin-dependent+events+but+required+for+ventral+furrow+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Cells%22%5BJournal%5D)">The proximal half of the Drosophila E-cadherin extracellular region is dispensable for many cadherin-dependent events but required for ventral furrow formation.</a> Genes Cells. 15 (3), 193-208 (2010).</li>
<li>Oda, H., Takeichi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution%3A+structural+and+functional+diversity+of+cadherin+at+the+adherens+junction%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Evolution: structural and functional diversity of cadherin at the adherens junction.</a> J. Cell Biol. 193 (7), 1137-1146 (2011).</li>
<li>Fernandez-Sanchez, M. E., Serman, F., Ahmadi, P., Farge, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+induction+in+embryonic+development+and+tumor+growth+integrative+cues+through+molecular+to+multicellular+interplay+and+evolutionary+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanical induction in embryonic development and tumor growth integrative cues through molecular to multicellular interplay and evolutionary perspectives.</a> Methods Cell Biol. 98, 295-321 (2010).</li>
<li>Alderton, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metastasis%3A+Epithelial+to+mesenchymal+and+back+again%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Metastasis: Epithelial to mesenchymal and back again.</a> Nat. Rev. Cancer. 13 (1), 3(2013).</li>
<li>Fabregat, I., Malfettone, A., Soukupova, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+Insights+into+the+Crossroads+between+EMT+and+Stemness+in+the+Context+of+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Med%22%5BJournal%5D)">New Insights into the Crossroads between EMT and Stemness in the Context of Cancer.</a> J. Clin. Med. 5 (3), (2016).</li>
<li>Serrano-Gomez, S. J., Maziveyi, M., Alahari, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+epithelial-mesenchymal+transition+through+epigenetic+and+post-translational+modifications%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Regulation of epithelial-mesenchymal transition through epigenetic and post-translational modifications.</a> Mol. Cancer. 15, (2016).</li>
<li>Yu, A. Q., Ding, Y., Li, C. L., Yang, Y., Yan, S. R., Li, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TALEN-induced+disruption+of+Nanog+expression+results+in+reduced+proliferation%2C+invasiveness+and+migration%2C+increased+chemosensitivity+and+reversal+of+EMT+in+HepG2+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Oncol.+Rep%22%5BJournal%5D)">TALEN-induced disruption of Nanog expression results in reduced proliferation, invasiveness and migration, increased chemosensitivity and reversal of EMT in HepG2 cells.</a> Oncol. Rep. 35 (3), 1657-1663 (2016).</li>
<li>Zheng, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epithelial-to-mesenchymal+transition+is+dispensable+for+metastasis+but+induces+chemoresistance+in+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Epithelial-to-mesenchymal transition is dispensable for metastasis but induces chemoresistance in pancreatic cancer.</a> Nature. 527 (7579), 525-530 (2015).</li>
<li>Kalluri, R., Weinberg, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+basics+of+epithelial-mesenchymal+transition%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">The basics of epithelial-mesenchymal transition.</a> J. Clin. Invest. 119 (6), 1420-1428 (2009).</li>
<li>Huang, J., Zhou, W., Dong, W., Watson, A. M., Hong, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directed%2C+efficient%2C+and+versatile+modifications+of+the+Drosophila+genome+by+genomic+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Directed, efficient, and versatile modifications of the Drosophila genome by genomic engineering.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106 (20), 8284-8289 (2009).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Drosophilla1'deki gastrulasyon sürecinin canlı görüntülerini yakalamak için daha önce benzer bir prosedür bildirmiş olsak da, burada tanımladığımız yöntem ayrıntılıdır ve endojen kaderin ekspresyonunu izlemek kolaydır ve bu nedenle gastrulasyonda yer alan anahtar faktörlerin genetik taraması için oldukça yararlıdır. Bu görüntüleme prosedüründe başarıyı en üst düzeye çıkarmak için girintili bir slayt kullanmak önemlidir. Mekanik basınç bazen embriyonik ölüme neden olur. Bu nedenle, herhangi bir mekanik...

Gastrulasyon Drosophila 1,2 olarak çok hücreli hayvanların embriyonik gelişimi sırasında meydana gelen morfolojik dinamik olayların ilk kümesidir. İlginçtir ki, delil ortaya çıkan bu süreç, mekanik ve moleküler mekanizmaları 3 arasındaki etkileşim yoluyla düzenlenir olduğunu göstermektedir. Ayrıca, gastrulasyon önemli bir işlemdir mezenkimal geçiş (EMT), epitelial ayrıca kanser metastazı 4-8 insan hastalık süreçlerine dahil edilir. Apikal daralma kontrol gibi birçok genler de bilindiği gibi kanser metastazı 9 gözlenen EMT önemli etkenler olarak. Böylece, gastrulasyon sırasında apikal daralma yukarıda belirtilen düzenleyici mekanizmaların araştırılması ve kanser metastazı anlayışımızı geliştirmek için mükemmel bir model. Bu tekniğin avantajı, bu nedenle, gerçek zamanlı ve gastrulasyon zamanda hücre hareketi dikkate ki, biz olacakkanser metastazı yanı sıra gastrulasyon rol oynayan genleri ekrana mümkün. Nispeten bilinmeyen, ancak, hücre-hücre yapışması apikal daralma 1 merkezi bir rol oynadığı düşünülmektedir. Drosophila genetiği iyi düzenleyici moleküler mekanizmaları keşfetmek tek bir hücre düzeyinde araştırmaları için uygundur. Bu model gastrulasyon sırasında apikal daralma önemini ortaya çıkarmak için bize sağlayacaktır. Ayrıca, bu yöntem, kanser metastazı rol oynayan genleri taranması için kullanılabilir. Drosophila gastrulasyon yakalayan canlı görüntüleri daha daha ayrıntılı doku yeniden düzenleme düzenleyen moleküler mekanizmaları anlamak sağladı. Bu yazıda bunu başarmak için basit bir yöntem kapsamlı bir açıklama sağlar.

<table><tbody><tr><td>Halokarbon yağı 700</td><td>Sigma</td><td>MKBH 5726</td><td></td></tr><tr><td>Vakum gresi Silikon</td><td>Beckman</td><td>335148</td><td></td></tr><tr><td>Cam lamel</td><td>Matsunami cam</td><td>Kalınlığı No1</td><td>24 - 36 mm</td></tr><tr><td>Embriyo stariner</td><td>Corning</td><td>Corning3477</td><td></td></tr><tr><td>Plastik Drosophilla Stok Şişeleri</td><td>Hitec</td><td>MKC-100</td><td></td></tr><tr><td>DE-Cadherin knock-in sinekler</td><td></td><td></td><td>REF (10)</td></tr></tbody></table>

hücre Şekli alteration ve hücre hareketi görüntüleme drosophila gastrulasyon kullanarak de-kaderin muhabir transgenik sinekler

Imaging of Cell Shape Alteration and Cell Movement in Drosophila Gastrulation Using DE-cadherin Reporter Transgenic Flies

Gastrulasyon gibi Drosophila olarak çok hücreli hayvanların embriyonik gelişimi sırasında meydana gelen morfolojik dinamik olayların ilk kümesidir. Bu morfolojik değişim de mezenkimal geçiş (EMT) için epitel olarak kabul edilmektedir. EMT düzeninin bozulması fibroz ve kanser metastaz ile ilişkilidir. EMT, moleküler bir dizi mekanizma tarafından kontrol edilir dair yeni kanıtlar vardır. apikal daralma kontrol gibi, pek çok önemli genler de bilindiği gibi kanser metastazı gözlenen EMT önemli faktörler olduğu. Drosophila gastrulasyon sırasında EMT gibi, epitel hücreler şeklini değiştirmek için indüklenebilir ve çeşitli hücre tipleri karşı hücre kaderine yönlendirmek için yeniden programlanması. Burada embriyonik gelişimin bu aşamasında morfogenetik hücresel hareketler ve hücre kaderi kimlik başlatılmasını tahlil Drosophila gastrulasyon sağlam bir görüntüleme yöntemi sağlamaktır. Bu yöntemi kullanarak, c tespitell gastrulasyon sırasında yeniden düzenlenmesi ve GFP kullanarak gastrulasyon sırasında apikal daralma önemini göstermek DE-kaderin etiketli.

Burada, Drosophila embriyo gastrulasyon olaylarını ve embriyo hazırlama prosedürünün genel bir bakış (Şekil 1) göstermektedir. Hücre zarları DE-kaderin :: GFP ve hücre hareketlerinin canlı görüntüleme Drosophila gastrulasyon sırasında yapılır (Şekil 2) kullanılarak etiketlenir. DE-kaderin GFP sinekler bize hücre yapışma kavşakları görselleştirmek için izin beri, biz apikal hücre şekli ve bu sistemi kullanarak hareketlerini takip edebiliyoruz. Da...

Burada, Drosophila gastrulasyonunun canlı görüntülerini yakalamak için bir prosedürü açıklıyoruz. Bu, erken gelişimde yer alan apikal daralmayı daha iyi anlamamızı ve doku yapısı modifikasyonu sırasında hücresel hareketleri yöneten mekanizmaları daha fazla analiz etmemizi sağladı.

Hücre Şekli Alteration ve Hücre Hareketi Görüntüleme Drosophila Gastrulasyon kullanarak DE-kaderin Muhabir Transgenik Sinekler

Gastrulation is the first set of morphologically dynamic events that occur during the embryonic development of multicellular animals such as Drosophila. ...

Bu prosedürün genel amacı, Drosophila gastrulasyonu sırasında hücresel şekli ve hareketi daha iyi anlamaktır. Burada, embriyonik gelişimin bu aşamasında morfogenetik hücresel hareketin başlatılmasını test etmek için Drosophila gastrulasyonunun sağlam bir ölçüm yöntemini sunuyoruz. Bu tekniğin temel avantajı, gastrulasyon sırasında hücrenin yeniden düzenlenmesinin, gastrulasyon sırasında apikal daralma ile birlikte tanımlanabilmesidir.Deneye başlamak için 375 mililitre su karışımı hazırlayın. 125 mililitre %100 piyasada bulunan elma suyu. 12.5 gram agar.12.5 gram glikoz. Daha sonra, agar eriyene kadar karışımı bir mikrodalgada ısıtın. Ve üç santimetrelik bir hücre kültürü kabına dökün.Karışımı ileride kullanmak üzere 4 santigrat derecede saklayın. Elma tabağını hazırladıktan sonra, sineklerin yumurtlamasını sağlamak için üzerine ince bir tabaka yoğrulmuş maya ezmesi ekleyin. 25 erkek ve 25 dişi sineği yoğurulmuş maya ile kaplı bir elma tabağına bir şişeye koyun.Sineklerin daha fazla yumurta bırakmasını sağlamak için plastik Drosophilas stok şişelerini alüminyum folyo ile sarın. Şişeyi gece boyunca bir kuluçka makinesinde baş aşağı tutun. Ertesi sabah elma suyu tabağını yenisiyle değiştirin.Daha sonra şişeyi alüminyum folyo ile sarın ve sineklerin üç ila dört saat boyunca yumurta bırakmasına izin verin. Sinekler yumurtladıktan sonra, yumurtaları bir pamuklu çubukla plakadan gevşetin. Embriyoları bir süzgeçte toplayın ve fosfat tamponlu salin veya PBS ile yıkayın.Embriyoları 12 oyuklu kültür kaplarında PBS ile üç kez daha yıkayın. Embriyoları 12 oyuklu kültür kaplarında% 50 çamaşır suyu ile dekoryonlayın. Dekoryonasyon işleminden sonra embriyoları PBS ile üç kez daha yıkayın.Embriyoları PBS içeren üç santimetrelik bir hücre kültürü kabına aktarın. Ve mikroskop altında beşinci aşama embriyoları, sınırlarındaki şeffaflık seviyesine göre seçin. 200 mikrolitrelik bir pipet ucu kullanarak, aşamalı embriyoları toplayın.Daha sonra, seçilen iki embriyoyu bir cam kapak fişine yerleştirin ve fazla PBS'yi kağıt mendil ile çıkarın. İnce bükülmüş bir kağıt mendil ile embriyoların sırt tarafını kapak kızağına kadar yönlendirin. Daha sonra embriyoları ince bir iğne kullanarak silikon gres ile cam kapak astarına tutturun.Embriyoların üzerine küçük bir damla içi boş karbon yağı 700 ekleyin ve embriyoları içeren lamel girintili lamın üzerine baş aşağı yerleştirin. Slaytın altında biraz boşluk bırakarak. Ardından kapak fişini slayta yapıştırın.Son olarak, embriyoları bir konfokal görüntüleme sistemi, bir argon 488 lazer ve bir yağa daldırma hedefi kullanarak inceleyin. Gastrulasyon sırasında Drosophila'nın tek tek hücrelerin apikal alanlarını analiz etmek için 500 saniye boyunca hücre hareketinin DE-cadherin GFP'si kullanılarak canlı görüntülemeden hızlandırılmış görüntüler elde edildi. 500 saniyede, apikal daralma ve istila açıkça görülebilir.Yöntemimizi kullanarak. Drosophila gastrulasyonunun moleküler mekanizmalarının yanı sıra kanser metastazında rol oynayan epitelden mezenkimal geçişe daha fazla anlayabiliriz.

imaging-cell-shape-alteration-cell-movement-drosophila-gastrulation

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Burada, glial hücreler göç GFP etiketli glial hücreler ile eşleştirilmiş canlı mikroskobik analizi ile gelişmekte olan Drosophila göz içine incelemek için bir protokol açıklar.

Drosophila Göz hayali Disk Glial Hücre Göç Canlı Görüntüleme

Drosophila hemocytes gelişmekte olan embriyonun bütünlüğü içinde dağılırlar . Bu protokol, floresan etiketli hemocytes embriyoları kullanılarak bu göçler montaj ve görüntü nasıl gösteriyor.

Uygulamalarda Canlı Görüntüleme Drosophila melanogaster Embriyonik Hemocyte Göçler

VE Dik Görüntüleme Drosophila Embriyolar

Meyve sineği Drosophila melanogaster, erken gelişimi iyi görüntüleme yaklaşımlar için uygundur hücre şekil değişiklikleri bir dizi ile karakterizedir. Bu makale, Drosophila embriyolar canlı konfokal görüntüleme için gerekli olan temel araçları ve yöntemleri tanımlamak ve cellularization denilen bir hücreye şeklini değiştirmek üzerinde durulacak.

Living Görüntüleme Hücre Şekli Değiştir Drosophila Embriyolar

Bu protokol, dokunulmamış larva beyin bağlamında canlı hücre görüntüleme yapmak için kullanılan akıcı bir yöntem göstermektedir. Canlı hücre görüntüleme yaklaşımları sürekli daha önce gözardı mekanizmaları ortaya çıkarılması, asimetrik nöral kök hücre bölünmeleri çalışmanın yanı sıra diğer nörolojik ve gelişimsel süreçleri için paha biçilmezdir.

Canlı Görüntüleme<em&gt; Drosophila</em&gt; Larva nöroblastomun

Drosophila'nın yetişkin yapıları, hayali diskler adı verilen kese benzeri yapılardan türetilmiştir. Bu disklerin analizi, doku tayini, kompartman sınırı oluşturma, hücre proliferasyonu, hücre kaderi spesifikasyonu ve düzlemsel hücre polaritesi dahil olmak üzere birçok gelişimsel süreç hakkında bilgi sağlar. Bu protokol, ışık/floresan mikroskobu için hayali diskleri hazırlamak için kullanılır.

Diseksiyon ve hayali Disklerin immün itibaren Drosophila melanogaster

Bu protokol, canlı Drosophila pupa göz nöroepitelini görüntülemek için etkili bir yöntem sunar. Bu yöntem, doku hareketini ve düzensiz topolojiyi telafi eder, birden fazla GFP etiketli bağlantı proteininin kullanılması yoluyla hücre sınırlarının görselleştirilmesini geliştirir ve kolayca monte edilebilen bir görüntüleme teçhizatı kullanır.

Canlı-görüntüleme Drosophila Pupa Göz

Bu protokol Drosophila göz / antennal hayali diskleri (EAD) floresan işaretli, genetik olarak tanımlanmış klonal tümörleri oluşturmak için nasıl gösterir. Üçüncü evre larvaları ve nasıl görselleştirmek ve gen ifadesi değişikliklerini ve tümör yayılmasını ölçmek için bunları işlemek için EAD ve beyin teşrih açıklamaktadır.

<em&gt; Drosophila</em&gt; Hayali Disk Tümör Modeli: Genetik Mozaikler kullanma Gen İfade ve Tümör invazivliğinin Görselleştirme ve

Bu protokol, meyve sineği metamorfoza uğrarken Drosophila abdominal epitelde hücre oryantasyonu ve doku büyüme dinamiklerinin görüntülenmesi ve analizi için tasarlanmıştır. Burada açıklanan metodoloji Drosophila veya diğer model organizmalarda farklı gelişimsel aşamaların, dokuların ve hücre altı yapıların incelenmesine uygulanabilir.

Pupal Evrelerinde Gelişen Drosophila Epitelinde Doku Oryantasyonu ve Büyüme Dinamiğinin Görüntülenmesi ve Analizi

Bu protokol, geleneksel GFP/mCherry etiketi yaklaşımları kullanılarak tespit edilmesi zor olan düşük bolluktaki proteinlerin veya translasyon sonrası modifikasyonların canlı görüntülenmesini sağlamak için özelleştirilmiş antikor bazlı floresan etiketlemeyi ve erken Drosophila embriyolarına enjeksiyonu açıklar.

Floresan Antikor Enjeksiyonu ile Canlı Drosophila Embriyolarında Düşük Bolluktaki Proteinlerin ve Translasyon Sonrası Modifikasyonların Görselleştirilmesi

Burada, pupa evresinde Drosophila bacağının uzun süreli canlı görüntülenmesi için pupariumun tamamen çıkarılmasını içeren bir protokol sunulmaktadır. Bu protokol diğer dokulara da uygulanabilir.

Puparium çıkarıldıktan sonra Drosophila pupa bacak gelişiminin uzun süreli canlı görüntülenmesi

Öğrenin Drosophila gastrulasyonu sırasında hücre şekli değişimi ve hareketini canlı görüntüleme yöntemiyle. Bu teknik, apikal konstriksiyon ve morfogenetik hücre dinamiklerini incelemek için güçlü bir araç sunar.

Hücre Şekli Alteration ve Hücre Hareketi Görüntüleme Drosophila Gastrulasyon kullanarak DE-kaderin Muhabir Transgenik Sinekler

Daha fazla video keşfet