Name: Bir melanom hasta-türetilen xenograft model (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-20T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 7 s
Description: Öğrenin, melanom araştırmalarında hasta-türetilmiş ksenogreft modellerinin nasıl kurulduğunu ve karakterize edildiğini. Bu yöntem, tedavi direncini aşmak ve hasta sağkalımını artırmak için değerli bilgiler sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Wistar Enstitüsü hayvan tesisi, mikroskopi tesisi, Histoteknoloji tesisi ve araştırma tedarik merkezi teşekkür ederiz. Bu çalışmada U54 (CA224070-01), SPORE (CA174523), P01 (CA114046-07), Dr. Miriam ve Sheldon G. Adelson Tıp Araştırma Vakfı ve Melanoma Araştırma Vakfı 'nın hibe tarafından kısmen finanse edilmiştir.

Aşağıdaki hayvan protokolleri, Wistar Enstitüsü 'nün insancıl Etik Komitesi ve hayvan bakım yönergelerine ilişkin yönergelere uyur.
1. Melanoma tümörü doku koleksiyonu
<ol><li>Aşağıdaki cerrahi veya biyopsi yöntemlerinden biri ile Melanom hastalarından tümör dokusunu (0 olarak adlandırılan geçiş) toplayın.<ol>
<li>Cerrahi eksizyon dokusu için, taşıma depolama medyasında (RPMı 1640 + 0,1% fungizone + 0,2% gentaminisin) 4 °C veya buzda en az 1 g doku (reect metasürler ve primer lezyonlar) koruyun.</li>
		<li>Cerrahi biyopsi dokusu için, 4 °C ' de veya buzda taşıma depolama medyasında 1 g 'den az doku (genellikle deri altı [s.c.] metastazı ve lenf nodu [LN] metasürlerin Punch biyopsisi) sürdürün.</li>
		<li>Çekirdek biyopsi dokusu için, yaklaşık 10 mm x 1 mm (genellikle karaciğer biyopsileri) dokusunun bir silindiri (çekirdek) 4 °C ' de veya buzda 5 mL 'lik taşıma depolama ortamı içeren 15 mL 'Lik bir tüpe yıkayın.</li>
		<li>İnce iğne aspirat (FNAs) dokusu için, 4 °C ' de veya buzda bir iğne ve şırıngadaki hastaya doğrudan alınan çok az miktarda doku (1 mm 'den az) tutun.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Doku taşıma depolama medyasında 4 °C veya buz üzerinde aynı gün veya cerrahi eksizyon veya biyopsi sonrası gecede nakliye ile teslim. Teslim 1-2 h içinde doku süreci.</li>
</ol>2. fare implantasyonu için tümör dokusu işleme
<ol><li>Cerrahi eksizyon veya cerrahi biyopsi dokusu işleme<ol>
<li>Dokusunu steril bir petri tabağına aktarın ve tümör dokusunu çevreleyen normal dokudan mümkün olduğunca ayırın.</li>
		<li>Kalan tümörden mümkün olduğunca nekrotik dokusu (genellikle tümör içinde yer alan soluk beyazlı doku olarak tanımlanır) çıkarın.</li>
		<li>İlk tümör yığınlarını cerrahi fare implantasyonu için yaklaşık eşit parçalara (~ 3 mm x 3 mm) alt bölümlere ayırmak için bir neşter kullanın (Şekil 2).</li>
		<li>İsteğe bağlı olarak, yeterli tümör dokusu mevcut ise, aşağı akım deneyleri için doku Snap-dondurma (RNA sıralama [rnaseq], tüm ekzom sıralama [Wes], vb.).</li>
		<li>İki neşter bıçakları ile çapraz bıçak tekniği kullanarak tümör dokusunu kıyma bir tümör Bulamaç olun. Şimdi cerrahi fare implantasyonu için hazır bir bulamaç oluşturmak için mümkün olduğunca ince tümör parçaları Mince.</li>
		<li>Alternatif olarak, tümör dokusu mekanik ayrışma için çok zor ise, jel benzeri bulamaç ve implantasyon ve/veya enjeksiyon için tek hücreli süspansiyon oluşturmak için bir sindirim ayrışma prosedürü kullanın.<ol>
<li>Bulamaç oluşturmak için mümkün olduğunca ince tümör parçaları Mince.</li>
			<li>Soğuk Hank dengeli tuz çözeltisi ile bir 50 mL tüp Bulamaç koyun (HBSS)-/- (CA+ + ve mg+ +olmadan); sonra, 4 °C ' de 4 dak için 220 x g 'de santrifüjün ve Pelet.</li>
			<li>1 g tümör dokusu başına 10 ml ısıtılmış taze Özet medya (200 u/ml kolajenaz IV + 5 mm CAcl2 + 50 u/ml DNase içinde HBSS-/-) içinde Bulamaç resuspend.</li>
			<li>Tüpü 20 dakika boyunca 37 °C su banyosuna yerleştirin ve tek kullanımlık pipet ile her 5 dakikada bir karıştırın.</li>
			<li>50 mL HBSS 'ye kadar yıkayın-/-; sonra 4 °C ' de 4 dakika için 220 x g 'de Santrifüjü.</li>
			<li>5 mL prewarmed TEG ekleyin (0,025% tripsin + 40 μg/mL etilen glikol-bis (β-aminoetil eter)-N, 1 g tümör dokusu başına N, N ', n'-tetraasetic asit [EGTA] + 10 μg/mL Polivinil alkol [PVA]), hafifçe resuspend/Shake, ve karıştırma olmadan 2 dakika için 37 °C ' de tüp yerleştirin.</li>
			<li>En az 1 eşit hacimli soğuk boyama ortamı ekleyin (1% sığır serum albümin [BSA] + 10 mM 4-(2-hidroksiil) -1-piperazineethanesulfonik asit [HEPES] + 1x penisilin-Streptomycin L15 medyada) tripsin ve Santrifüjü 220 x g 'de 4 dk. 4 ° ' de gidermek için C.</li>
			<li>Numuneyi 1 gr tümör dokusu başına 10 mL boyama medyası içinde resuspend ve fare enjeksiyonu için tek hücreli bir süspansiyon almak için 40 μm hücre süzgeci ile filtreleyin (Şekil 2).</li>
			<li>Hücre süzgeci üstünde kalan Bulamaç da cerrahi fare implantasyonu için toplanabilir.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>C cevher biyopsisi doku işleme
	<ol>
<li>5 cm Petri tabak içine doku taşıma tüpü çekirdek silindir dokusu dökün.</li>
		<li>Aşırı sıvı çıkarın, Petri tabak kenarına artığını doku, ince tümör dokusu kıyma, eklemek ~ 100 – 150 μL HBSS-/- tümör dokusunun üstüne, ve hızlı bir şekilde HBSS/tümör doku süspansiyonu 1 ml şırınga içine çizin.</li>
		<li>1 mL şırıngaya 23 G iğne takın, HBSS/tümör dokusu süspansiyonunu iğne üzerinden 1,5 mL spin tüpüne geçirin.</li>
		<li>Tümör süspansiyonu şırınga içine iğne ile sorunsuz geçebilir kadar hala üzerinde enjektör içine yeniden çizin.</li>
		<li>Sonunda tümör süspansiyonunu şırıngaya geri çekin ve 23 G iğnesini ayırın.</li>
		<li>Bir 27 G iğne takın ve suni hücre içi matriks (~ 100 – 150 μL) eşit hacim çizin (bkz. malzeme tablosu) şırınga içine.</li>
		<li>1,5 mL spin tüpüne, tümör/HBSS-/- süspansiyon ile hafifçe, kabarcık oluşumundan kaçınılması ile yapay ekstrellüler matris eşit hacim ekleyin.</li>
		<li>Şırıngaya son bir kez geri çizin ve çekirdek biyopsisi tümör dokusu şimdi fare enjeksiyonu için hazırdır.</li>
	</ol></li>
	<li>FNA dokusu işleme
	<ol>
<li>Buz üzerinde FNA örnekleri (iğne sıkışmış) içeren şırıngayı yerleştirin.</li>
		<li>İğne (FNA dokusu içeren) şırıngadan ayırın ve şırıngadan pistonu çıkarın, şırıngayı ~ 150 – 200 μL HBSS-/- üzerine ekleyin.</li>
		<li>Pistonu şırıngaya ve iğneye (FNA dokusu içeren) yeniden takın ve HBSS-/- iğne üzerinden 1,5 ml 'lik bir döndürme tüpüne itin. Bu adım, iğnesinden FNA tümörü kaldırır.</li>
		<li>Adım 2.3.3 ile HBSS-/-/Fna süspansiyonu iki kez aynı Şırıngayı kullanarak, enjektörün tümör dokusunun alınmasını maksimize etmek için yineleyin.</li>
		<li>HBSS/FNA süspansiyonu içeren 1,5 mL dönme tüpüne eşit hacim (~ 100 – 150 μL) yapay ekstrasellüler matris ekleyin.</li>
		<li>Kadar yavaşça yapay ekstrürüler Matrix/HBSS-/-/Fna süspansiyonu 23 G iğne içine yeniden ve iki kez tekrarlayan çizmek karıştırın.</li>
		<li>Tüm suni hücre içi matris/HBSS-/-/Fna hacmini geri şırıngaya çizin, 23 g iğnesini 27 g iğne ile değiştirin ve Fna örneği artık fare enjeksiyonu için hazırdır.</li>
	</ol></li>
</ol>3. farelerde tümör implantasyonu ve enjeksiyon
<ol><li>Cerrahi eksizyon veya cerrahi biyopsi dokusunun implantasyonu Not: tüm cerrahi araçların otoklavlama veya önceden sterilize edilmiş tek kullanımlık enstrümanlar kullanımı ile steril olduğundan emin olun.<ol>
<li>NSG 6-8 hafta erkek veya kadın fareler alt arka gelen saç tıraş yaklaşık 1,5 cm x 3 cm alanı saç ile bırakarak. Isoflurane kullanarak fareler anestezize ve hassas bir tepki testi olarak ayak hafifçe sıkarak onaylayın. Kuruluğu önlemek için gözlerinde veteriner merhem kullanın.</li>
		<li>Anestezi makinesinin burun koni bir ısı pad üzerinde bireysel fareler yerleştirin, chlorhexidine ile tıraş alanı fırçalayın. Sonra% 70 etanol ile ikiye katla ve buharmaya izin ver.</li>
		<li>Cerrahi implantasyon için bireysel höyükleri içine bir petri tabak içine parçaları hazırlamak veya bölme tümör Bulamaç (3 fare içine implante edilmesi halinde üç eşit höyükleri içine yani).</li>
		<li>Neşter Blade kullanarak, fare arkasındaki ortasında yaklaşık 5 mm uzunluğunda bir kesi yapmak, bir çift forseps almak ve operatörün ters kesi tarafında Cilt yukarı kaldırın.</li>
		<li>Diğer taraftan makası alın ve hafifçe küçük makas kesikleri ile fasiyal membranı keserek kas tabakasından cilt ayırmak, böylece tümör dokusu için bir "cep" oluşturma.</li>
		<li>Bir tümör yığını ya da bir tek bireysel Höyük bir tümör Bulamaç dokusu ile neşter bıçak ve yavaşça oluşturulan cebine doku yerleştirin.</li>
		<li>Cep içinde tümör dokusu Höyüğü üzerinde 100 μL yapay ekstrasellüler matris yönetin.</li>
		<li>İki çift forseps kullanarak, yara kenarlarının birbirine yaklaşması ve bir veya iki yara klibi uygulayarak yarayı kapatmak için her iki ucunda kesi çekin.</li>
		<li>Subkutan enjekte 1-5 cerrahi sonrası fareler içinde bir analjezik olarak mg/kg Meloksikam.</li>
		<li>Burun koni dışarı fare almak ve geri orijinal kafesi içine yerleştirin, uyanırken fareyi gözlemlemek. Tamamen kurtarılana kadar bir kafese dönmeyin.</li>
		<li>Yaklaşık 7 gün sonra yara kliplerini çıkarın. 7 gün sonra iyileşme tamamlanırsa, ek bir veya iki gün boyunca yara klibini içeri bırakın. Not: cerrahi eksizyon veya cerrahi biyopsi dokusu işlemeden tek bir hücre süspansiyonu kullanıyorsanız, fare enjeksiyonu için yapay hücre içi matris (1:1 oranında) ile karıştırılır.</li>
	</ol>
</li>
	<li>FNA veya çekirdek biyopsi dokusu enjeksiyonu<ol>
<li>Bir NSG fareyi çelik ızgara rafa yerleştirin, fareyi sıkıca kuyruğuna tutun ve yavaşça fareyi geri çekin. Ön bacakları sıkıca ızgarayı kavrayacaktır. Alternatif olarak, bir fareyi baskın olmayan elle dizginlemek ve kanat alanının görünür olmasını sağlar.</li>
		<li>Alkol hazırlık SWABS ile kanatta cilt dezenfekte, yavaşça ve sürekli fare cilt altında şırınga içeriğini enjekte.</li>
		<li>İğneyi çekin ve fareyi geri kafesine yerleştirin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. tümör büyümesini izleyin
<ol><li>Palpe tümör kontrol etmek için haftalık bir kez monitör fareler.</li>
	<li>Tümörler ölçülebilir boyutta olduğunda (yaklaşık 50 mm3), tümör boyutlarını kaydetmek için bir Kaliper kullanın. Tümör hacimlerini hesaplamak için aşağıdaki formülü kullanın: (genişlik x Genişlik x uzunluk)/2.</li>
	<li>Tümör hacmi yaklaşık 1,5 cm3 (yaklaşık 4 – 10 hafta) ulaştığında hasat tümörü. Tümör şimdi fare geçişi 1 (MP1) denir.</li>
</ol>5. bankacılık dokusu, reimplantasyon ve deney/karakterizasyon için hasat tümörü
<ol><li>Bir CO2 odasında ötenize fare, ölüm onaylamak için hayati işaretler kontrol ve daha sonra Bio-kabine 30 s için cilt sterilize etmek Için bir virkon çözüm fare alt.</li>
	<li>Tümör bitişik cilt kaldırmak ve yatay bir kesim yapmak için eğri makas ve cerrahi forseps kullanın.</li>
	<li>Tümörün her iki tarafında ve tümörü ortaya çıkarmak için deriyi seferber etmek için künt bir ayırma tekniği kullanın.</li>
	<li>Tümör fasya ayırmak için makas veya bir neşter Blade kullanın.</li>
	<li>Tümörü yeniden seçin ve tümörü steril bir petri tabağına aktarın, tümörü küçük parçalara ayırın ve tümörden nekrotik dokusu çıkarın.</li>
	<li>Gelecekteki implantasyon için banka tümörü dokusu.<ol>
<li>2-3 küçük tümör parçalarını ~ 10 mm x 10 mm 'den küçük alın ve onları ~ 1 mm x 1 mm 'den küçük parçalara ayırın.</li>
		<li>Tüm kıyılmış dokusu 2 mL kriyojenik şişeye aktarın, 1 mL donma ortamı ekleyin (% 10 DMSO + 90% FBS).</li>
		<li>İyi karıştırın ve kuru buz üzerinde ön soğutmalı isopropanol tabanlı hücre donma kabı içine kriyojenik şişeleri yerleştirin.</li>
		<li>Depo kabı-80 °C ' de dondurucu ve sonra kriyojenik şişeleri sıvı nitrojen (LN2) depolamaya aktarın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Aşağı akım (RNASeq, WES, vb) için Snap-Freeze doku.<ol>
<li>Tümör doku parçalarını (~ 3 mm x 3 mm) kriyojenik şişeye yerleştirin ve kriyojenik şişesini LN2 ' ye hemen yerleştirin. Depo şişeleri-80 ° c dondurucu.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. PDX terapi denemeleri
Not: Bu terapi deneme için PDX taşıyan fareler gerekli sayıda oluşturmak için yeterli tümör dokusu büyümek için iki genişleme aşamaları alacaktır.
<ol><li>LN2' den BANKED PDX dokusu içeren bir kriyoşişe alın ve tümör dokusunu içeren donma ortamı erimeye başlayana kadar kriyoşişesini 37 °c ' lik bir su banyosuna yerleştirin.</li>
	<li>Ön ısıtılmış HBSS içine kriyoşişin içeriğini boşaltın-/- bir 50 ml tüp içinde, ve yıkama dokusu.</li>
	<li>1.200 rpm 'de 5 dakika santrifüjleme ile Pellet dokusu.</li>
	<li>Bir Pasteur pipet ile vakum aspirasyonu ile tümör örneğinden HBSS-/- çıkarın.</li>
	<li>50 mL tüpünden PDX dokusunu 5 cm veya 10 cm Petri tabağı içine kaydırın ve ıslak buzun üzerine yerleştirin.</li>
	<li>PDX tümör genişleme ilk turu için 5 NSG fareler içine kriyojenik şişeden banked doku implant için yukarıdaki implantasyon protokolünü izleyin.</li>
	<li>Tümör doku işleme için yukarıdaki protokol ile tek bir hücre süspansiyon almak için tümörler ~ 600 – 800 mm3, Harvest 1-2 tümör ulaştığında: mekanik ayrışma, kolajenaz sindirim ayrışma prosedürü.</li>
	<li>Pellet hücreleri ve pelletini 6 ml HBSS-/-/yapay ekstrellüler matris (1:1 oranı), subkutan enjekte ~ 50 NSG fareler, ile 100 μL hücre karışımı fare başına PDX tümör genişleme ikinci tur için.</li>
	<li>Ölçme tümör boyutu kaliperler ile biweekly.</li>
	<li>Bir tümör boyutu için bekleyin ~ 100 mm3 içinde 3-5 hafta, gruplar halinde fareler rastgele ve tedaviye başlayın.</li>
	<li>Tümör büyüklüğü maksimum ııam-onaylı hacmine ulaştığında, tedaviyi durdurun.</li>
	<li>Ek dondurulmuş tümör parçaları, parafin blokları için tümör parçaları toplamak için yukarıdaki hasat tümörü protokolünü izleyin.</li>
</ol>

<ol><li>Garman, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+and+Genomic+Characterization+of+462+Melanoma+Patient-Derived+Xenografts%2C+Tumor+Biopsies%2C+and+Cell+Lines%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Genetic and Genomic Characterization of 462 Melanoma Patient-Derived Xenografts, Tumor Biopsies, and Cell Lines.</a> Cell Reports. 21 (7), 1936-1952 (2017).</li>
<li>Krepler, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Comprehensive+Patient-Derived+Xenograft+Collection+Representing+the+Heterogeneity+of+Melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">A Comprehensive Patient-Derived Xenograft Collection Representing the Heterogeneity of Melanoma.</a> Cell Reports. 21 (7), 1953-1967 (2017).</li>
<li>Davies, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+of+the+BRAF+gene+in+human+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mutations of the BRAF gene in human cancer.</a> Nature. 417 (6892), 949-954 (2002).</li>
<li>Paraiso, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+of+phospho-ERK+activity+allows+melanoma+cells+to+escape+from+BRAF+inhibitor+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+Of+Cancer%22%5BJournal%5D)">Recovery of phospho-ERK activity allows melanoma cells to escape from BRAF inhibitor therapy.</a> British Journal Of Cancer. 102 (12), 1724-1730 (2010).</li>
<li>Long, G. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-Term+Outcomes+in+Patients+With+BRAF+V600-Mutant+Metastatic+Melanoma+Who+Received+Dabrafenib+Combined+With+Trametinib%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Long-Term Outcomes in Patients With BRAF V600-Mutant Metastatic Melanoma Who Received Dabrafenib Combined With Trametinib.</a> Journal of Clinical Oncology. 36 (7), 667-673 (2018).</li>
<li>Hidalgo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patient-derived+xenograft+models%3A+an+emerging+platform+for+translational+cancer+research%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Discovery%22%5BJournal%5D)">Patient-derived xenograft models: an emerging platform for translational cancer research.</a> Cancer Discovery. 4 (9), 998-1013 (2014).</li>
<li>Hausser, H. J., Brenner, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+instability+of+Saos-2+cells+in+long-term+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+and+Biophysical+Research+Communications%22%5BJournal%5D)">Phenotypic instability of Saos-2 cells in long-term culture.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 333 (1), 216-222 (2005).</li>
<li>Fiebig, H. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+three+human+small+cell+lung+cancer+models+in+nude+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Recent+Results+In+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Development of three human small cell lung cancer models in nude mice.</a> Recent Results In Cancer Research. 97, 77-86 (1985).</li>
<li>Izumchenko, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patient-derived+xenografts+effectively+capture+responses+to+oncology+therapy+in+a+heterogeneous+cohort+of+patients+with+solid+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Oncology%22%5BJournal%5D)">Patient-derived xenografts effectively capture responses to oncology therapy in a heterogeneous cohort of patients with solid tumors.</a> Annals of Oncology. 28 (10), 2595-2605 (2017).</li>
<li>Shi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acquired+resistance+and+clonal+evolution+in+melanoma+during+BRAF+inhibitor+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Discovery%22%5BJournal%5D)">Acquired resistance and clonal evolution in melanoma during BRAF inhibitor therapy.</a> Cancer Discovery. 4 (1), 80-93 (2014).</li>
<li>Monsma, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Melanoma+patient+derived+xenografts+acquire+distinct+Vemurafenib+resistance+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Melanoma patient derived xenografts acquire distinct Vemurafenib resistance mechanisms.</a> American Journal of Cancer Research. 5 (4), 1507-1518 (2015).</li>
<li>Das Thakur, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modelling+vemurafenib+resistance+in+melanoma+reveals+a+strategy+to+forestall+drug+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Modelling vemurafenib resistance in melanoma reveals a strategy to forestall drug resistance.</a> Nature. 494 (7436), 251-255 (2013).</li>
<li>Meehan, T. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PDX-MI%3A+Minimal+Information+for+Patient-Derived+Tumor+Xenograft+Models%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">PDX-MI: Minimal Information for Patient-Derived Tumor Xenograft Models.</a> Cancer Research. 77 (21), 62-66 (2017).</li>
<li>Gao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+screening+using+patient-derived+tumor+xenografts+to+predict+clinical+trial+drug+response%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">High-throughput screening using patient-derived tumor xenografts to predict clinical trial drug response.</a> Nature Medicine. 21 (11), 1318-1325 (2015).</li>
<li>De La Rochere, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Humanized+Mice+for+the+Study+of+Immuno-Oncology%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">Humanized Mice for the Study of Immuno-Oncology.</a> Trends in Immunology. 39 (9), 748-763 (2018).</li>
</ol>

Yazarların ifşa etmesi gereken hiçbir şey yok.

Burada primer ve metastatik tümörlerden, çekirdek biyopsilerin ve FNAs 'larından elde edilen hasta dokusuyla PDX Melanom modelleri üretilirken tanımlanmıştır. NSG fareler içine doğrudan engreted zaman, tümörlerin benzer morfolojik mevcut, genomik, ve biyolojik özellikleri hastada gözlenen. Sadece küçük bir miktar doku müfettişlere kullanılabilir olduğunda, genellikle FNAs ile ortaya çıktığında, PDX tekniği DNA, RNA ve protein karakterizasyonu için tümör dokusunun genişlemesine ve klinik öncesi ilaçlara izin vermek için t...

Preklinik modeller, hastalık karakterizasyonu, normal hücrelere karşı kansere özgü eyleme dönüştürülebilir güvenlik açıkları keşfi ve istismar eden etkili tedavilerin geliştirilmesi gibi translasyonel kanser araştırmalarının tüm yönleri için önemlidir. Bu güvenlik açıkları hastaların genel sağkalım artırmak için. Melanom alanında, on binlerce hücre hattı modeli, uyuşturucu taraması için ağır bir şekilde kullanılmıştır, > 4000 ile grup tek başına (WMXXX serisi) katkıda bulunmuştur. Bu hücre hattı modelleri, çeşitli çeşit kutanöz Melanom (örneğin, acral, uveal ve yüzeysel yayılma) ve çeşitli genotiplerle (yani, BRAFV600-mutant ve Nöroblastom RAS viral onkojen homolog olan Melanom hastalarından türetilmiştir [ NRAS Q61R-mutant]), klinikte bulunan hastalığın spektrumunu kapsayan1,2.
Melanom alanında en başarılı, hedeflenen terapi stratejisi 1 ' den ortaya çıkmıştır) hastaların% 50 ' inde BRAF mutasyonları tanımlayan genomik karakterizasyonu melanomlar3 ve 2) preklinik soruşturma melanom hücre hattı modelleri yararlanarak4. BRAF/mek inhibitörü kombinasyonu gıda ve İlaç İdaresi (FDA)-2014 yılında melanomlar liman BRAFV600E/K mutasyonlar aktive ve >% 75 yanıt oranı5sahiptir hastaların tedavisi için onaylanmıştır. Bu ilk etkinliğine rağmen, çok yönlü içsel ve elde edilen direnç mekanizmaları ve intratümöral heterojenite nedeniyle neredeyse her durumda direnç hızla ortaya çıkar. Ne yazık ki, hücre hattı modelleri, araştırmacılar deneysel olarak belirlemek için girişimi zaman plastik gemiler, hangi maskeler onların klinik tahmin potansiyeli iki boyutlu kültürde yetiştirilen temsili biyolojik heterojenliği özetlemek yok belirli bir form veya Melanom genotürü olan hastalarda etkili olabilecek tedaviler6. Nasıl en iyi model hasta intratümöral heterojenliği anlamak müfettişlerin daha iyi terapi-dayanıklı altnüfus öldürebilir tedavi yöntemleri geliştirmek için izin verecektir mevcut standart bakım terapileri başarısızlık sürücü.
Hücre hattı modellerinin sınırlı tahmin değeri için Paramount nasıl başlangıçta kurulmuştur. İki boyutlu, plastik doku kültürü gemileri, proliferatif ve invaziv potansiyel değişiklikler de dahil olmak üzere, bir hastanın tümörün tek hücreli süspansiyonu yetiştirilen tümör klonal manzara içinde geri dönüşümsüz değişiklikler ortaya, spesifik eliminasyon alt nüfus ve genetik bilginin değiştirilmesi7. Bu melanom hücre hattı modellerinin fareler içine xenografts preklinik çalışmalar için en sık kullanılan in vivo platform temsil; Ancak, bu strateji de klinik olarak gözlenen karmaşık tümör heterojenitesi yoksul Recapitulation muzdarip. Bu eksikliği aşmak için, PDX modeli de dahil olmak üzere, melanom daha sofistike preklinik modelleri birleştiren büyüyen bir ilgi olmuştur. PDX modelleri, hastaların sitotoksisik ajanlara tepkisi ve aynı hastada8' den elde edilen PDX modelinin tepkisi arasında uyum gösteren akciğer kanseri hastalarında seminal çalışmalar ile > 30 yıldır kullanılmıştır. Son zamanlarda, hem sektörde hem de Akademik merkezlerde preklinik araştırmalar için seçim aracı olarak PDX modellerini kullanmak için bir sürücü olmuştur. PDX modelleri, insan hastalarında tümör heterojenitesi onların üstün Recapitulation nedeniyle, daha klinik hücre hattı ksenogreft daha terapi optimizasyonu çabaları kullanmak için ilgilidir9. Melanoma, gelişmiş hastalığın terapötik yönetimi künt büyük engelleri vardır10. Klinik olarak ilgili PDX modelleri klinikte direnç modeli için kullanılan ve tedaviye dayanıklı tümörlerin tedavisinde klinik olarak mevcut ajanlar ile terapötik stratejileri tanımlamak11,12. Kısaca, PDX modelleri oluşturmak için burada sunulan protokol birincil veya metastatik melanomalar (biyopsi veya cerrahi tarafından toplanan) NOD/SCID/ıL2-reseptör null (NSG) fareler içine taze doku subkutan implantasyon gerektirir. Metodolojik yaklaşımlarda farklı varyasyonlar farklı gruplar tarafından kullanılır; Ancak, temel bir çekirdek13var.

<table><tbody><tr><td>1 M Hepes</td><td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td><td>Kedi # H0887-100ML</td><td></td></tr><tr><td>100x PenStrep ve nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>Cat # 15140163</td><td></td></tr><tr><td>1x HBSS-/- (Ca++ veya Mg++ olmadan)</td><td>MED</td><td>Cat # MT21-023-CV</td><td></td></tr><tr><td>%2,5 Tripsin&nbsp;</td><td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td><td>Cat # T4549-100ML</td><td>&ndash'ta saklanan 10 mL alikotlar; 20oC</td></tr><tr><td>BSA</td><td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td><td>Cat # A9418-500G</td><td></td></tr><tr><td>Klorheksidin</td><td>Fisher Scientific</td><td>Cat # 50-118-0313</td><td></td></tr><tr><td>Kollajenaz IV (2.000 u / mL)</td> <td>Worthington ve nbsp;</td><td>Cat # 4189</td><td>HBSS'de makyaj yapar - / - Kollajenaz IV toz stoğundan (Worthington # 4189, u / mg şişede belirtilmiştir ve her lota göre değişir); 1</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>SIGMA-ALDRICH ŞİRKETİ</td> dondur <td>Kedi # C6295-50ML</td><td></td></tr><tr><td>DNase</td><td>SIGMA-ALDRICH ŞİRKETİ</td><td>Kedi # D4527</td><td></td></tr><tr><td>EGTA (etilen glikol bis (2-aminoetil eter) -N, N, N' N'-tetraasetik asit)</td><td>Merck</td><td>Cat # 324626.25</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>INVITROGEN YAŞAM TEKNOLOJILERI</td><td>Cat # 16000-044</td><td></td></tr><tr><td>Fungizone</td><td>INVITROGEN YAŞAM TEKNOLOJİLERİ</td><td>Kedi # 15290-018</td><td></td></tr><tr><td>Gentamisin</td><td>FISHER BİLİMSEL</td><td>Kedi # BW17518Z</td><td></td></tr><tr><td>İzofluran</td><td>HENRY SCHEIN HAYVAN SAĞLIĞI</td><td>Kedi # 050031</td><td></td></tr><tr><td>Leibovitz'in L15 medyası&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>Cat # 21083027</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>Corning Cat</td><td># 354230</td><td>Yapay hücre dışı matris</td></tr><tr><td>Meloksikam</td><td>HENRY SCHEIN HAYVAN SAĞLIĞIEquisition # ::Henry Schein</td><td>Cat # 025115</td><td>1-5mg/kg, ağrı kesici</td></tr><tr><td>NOD/SCID/IL2-reseptör null (NSG) olarak Fareler</td><td>Wistar Enstitüsü, hayvan tesisi</td><td></td><td>yetiştiriciliği</td></tr><tr><td>PVA (polivinil alkol)</td><td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td><td>Cat # P8136-250G</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 Orta (Mod.) 1X L-Glutamin ile</td><td>Fisher Scientific</td><td>Cat # MT10041CM</td><td></td></tr><tr><td>Neşter</td><td>Tüyü Kedi</td><td># 2976-22</td><td></td></tr><tr><td>Virkon</td><td>GALLARD-SCHLESINGER IND</td><td>Cat # 222-01-06</td><td></td></tr><tr><td>Yara klipsleri</td><td>MikRon</td><td>Cat #427631</td><td></td></tr></tbody></table>

bir melanom hasta-türetilen xenograft model

A Melanoma Patient-Derived Xenograft Model

Kanıtlar birikir, moleküler ve biyolojik özelliklerin, insan hastalarında geleneksel iki boyutlu doku kültürü damarlarında yetiştirilen Melanom hücrelerinde farklılık gösterdiğini göstermektedir. Bunun nedeni, fizyolojik koşulların yokluğunda, ince olarak büyümek olabilir melanom hücrelerinin klonal nüfus darboğaz seçimi kaynaklanmaktadır. Ayrıca, iki boyutlu doku kültürlerinde tedaviye yanıtlar genel olarak Melanom hastalarında tedaviye yanıtlar yansıtmak değil, klinik çalışmaların çoğunluğu ile etkili olduğu gösterilen terapötik kombinasyonları etkinliğini göstermek için başarısız Vitro. Farelerin içine melanom hücrelerinin ksenograftlanması iki boyutlu doku kültüründen yok fizyolojik in vivo bağlam sağlar rağmen, Engraftman için kullanılan Melanom hücreleri zaten altında büyüyebilir hücreler için darboğaz seçimi geçirmiş hücre hattı kurulduğunda iki boyutlu koşullar. Darboğazın bir sonucu olarak ortaya çıkan geri dönüşümsüz değişiklikler, büyüme ve istila özelliklerinde yapılan değişiklikleri ve belirli alt nüfus kaybını içerir. Bu nedenle, daha iyi insan durumu özetlemek modelleri daha iyi etkili metastatik melanoma hastalarının genel hayatta kalma artırmak terapötik stratejileri tahmin edebilir. Hasta tarafından türetilen xenograft (PDX) tekniği, tümör hücrelerinin insan hastasından bir fare alıcısına doğrudan implantasyonunu içerir. Bu şekilde, tümör hücreleri sürekli olarak fizyolojik stresler altında büyümüştür ve tümör insan hastasındayken mevcut olan moleküler ve biyolojik özellikleri koruyan iki boyutlu darboğaz asla geçmemişti. Metastaz organ sitelerden elde edilen önemli, PDX modelleri (yani, beyin) benzer metastatik kapasite göstermek, PDX modelleri terapi naif hastalar ve terapi elde direnci olan hastalarda elde ederken (yani, BRAF/MEK inhibitörü tedavisi) ekran tedaviye benzer duyarlılık.

Melanom PDX modelleri için tümör dokusu farklı kaynaklardan çeşitli gelebilir ve aynı zamanda bireysel modellerin büyüme dinamikleri ve PDX doku istenilen kullanımı başına işlenebilir. PDX modeli oluştururken öncelik, gelecekteki kullanım ve DNA karakterizasyonu için banka için yeterli malzemeye sahip olmaktır (Şekil 1).
Yeterli malzeme banked sonra, tümör dokusu resmi bir tedavi çalışması gerçekleştirmek için yeterli tümör büyümek için üç ana yöntemlerden birinde...

Hasta-türevi xenograft (PDX) modelleri daha sağlam özetlemek Melanom moleküler ve biyolojik özellikleri ve geleneksel plastik doku kültürü tabanlı asder karşılaştırıldığında tedavi tepkisi daha öngörü vardır. Burada, yeni PDX modellerinin kurulması ve mevcut PDX modellerinin karakterizasyonu/denemeleri için standart çalışma protokollerimizi tarif ediyoruz.

Bir melanom hasta-türetilen xenograft model

Accumulating evidence suggests that molecular and biological properties differ in melanoma cells grown in traditional two-dimensional tissue culture ...

PDX kanser deneysel ön klinik çalışmalar devrim vardır. Artık laboratuvarda hastalarda neler olup bittiğini taklit edebiliriz. Ve şimdi direnci niçin yenebileceğimiz ve uzun vadede hastaların sağkalımlarını nasıl artırabileceğimiz üzerinde çalışabiliriz.Prosedürü gösteren Min Xiao olacaktır. Başlamak için, daha önce toplanan melanom dokusunu steril petri kabına aktarın. Cerrahi makas, neşter bıçak ve forceps ile çalışma, ilk mümkün olduğunca normal doku normal doku kaldırmak.Ve sonra tümörün içinde merkezi olarak bulunan soluk beyaz-ish doku ile tanımlanan nekrotik doku kaldırın. Daha sonra cerrahi fare implantasyonu için yaklaşık eşit parçalara bir ilk tümör yığını bölmek için bir neşter kullanın. Tümör dokusu mekanik ayrışma için çok zor ise, bir bulamaç oluşturmak için mümkün olduğunca ince tümör parçaları kıyma için bir neşter kullanın.Kalsiyum ve magnezyum iyonları olmadan soğuk Hank's Balanced Salt Solution ile 50 mililitrelik bir tüp içine bulamaç aktarın. Santrifüj 220 kez g dört dakika dört derece santigrat. Supernatant çıkardıktan sonra, tümör dokusunun bir gram başına ısıtılmış, taze sindirim medya 10 mililitre bulamaç yeniden askıya.Tüpü 37 derece lik su banyosuna 20 dakika yerleştirin ve her beş dakikada bir tek kullanımlık pipetle şiddetle karıştırın. 50 mililitreye kadar HBSS kullanarak bulamacı yıkayın, 220 kez g'de dört dakika dört dakika boyunca santrifüj edin ve süpernatantı çıkarın. Tümör dokusunun bir gram ısınırken beş mililitre önceden ısıtılmış TEG tampon ekleyin, yavaşça yeniden askıya almak için sallayın ve tüpü karıştırmadan 37 derecede iki dakika yerleştirin.Tripsini söndürmek için, en az bir eşit hacimde soğuk boyama ortamı ekleyin ve 220 kez g'de dört dakika dört derece santigrat dereceye kadar santrifüj ekleyin. Supernatant çıkardıktan sonra, tümör dokusunun bir gram başına 10 mililitre boyama medya ekleyin ve yukarı ve aşağı boru lama tarafından pelet yeniden askıya. Fare enjeksiyonu için tek bir hücre süspansiyonu almak için 40 mikrometrelik bir süzgeçten süzün.Cerrahi eksizyon veya cerrahi biyopsi dokusu implant, ilk NSG altı ila sekiz haftalık anestezili farelerin alt arka saç tıraş, saç olmadan yaklaşık 1,5 santimetre üç santimetre alan bırakarak. Tümör parçaları hazırlamak ve cerrahi implantasyon için bireysel höyükler halinde bir Petri tümör bulamaç bölmek. Neşter bir bıçak kullanarak, farenin arka merkezinde yaklaşık beş milimetre uzunluğunda bir kesi yapmak.Bir çift forceps ile, operatörün karşısındaki kesinin kenarındaki deride yaşam. Diğer taraftan makas ile, hafifçe küçük makas kesim ile fasyal membran keserek kas tabakasından cilt ayırmak, böylece tümör dokusu için bir cep oluşturma. Bir tümör chuck almak için bir neşter bıçak kullanın, yanı sıra tümör bulamaç doku bireysel bir höyük, ve yavaşça oluşturulan cebine doku yerleştirin.Sonra cepte tümör doku höyük üzerinde yapay ekstrasellüler matris 100 mikrolitre ekleyin. İki çift forsep kullanarak, yara kenarları birbirine yaklaşacak şekilde her iki uçtaki kesiği yukarı çekin. Sonra yara kapatmak için bir veya iki yara klipleri uygulayın.Subkutan analjezik kilogram başına bir ila beş miligram enjekte. Iyileşme tamamen olduğunda, yaklaşık yedi gün sonra, yara klipleri çıkarın. Elle tutulur tümörleri kontrol etmek için fareleri haftada bir kez izleyin.Tümörler istenilen hacca ulaştıktan sonra, ötanazi yapılan farenin tümörüne bitişik olan deriyi kaldırmak için cerrahi forsepsler kullanın ve kavisli makas kullanarak yatay bir kesim yapın. Tümörün her iki tarafında ve tümörün üzerinde cildi harekete geçirmek için künt bir ayırma tekniği kullanın, tümör açığa. Fasya tümörü ayırmak için makas ve neşter bıçak kullanın.Tümörü kesip steril petri kabına aktarın. Küçük parçalar halinde tümör kesin ve tümör nekrotik doku kaldırın. Gelecekteki implantasyon için tümör dokusu banka için, iki ila üç küçük tümör parçaları almak ve parçalar halinde bir milimetre den daha küçük onları kıyma.Tüm kıymalı dokuyu iki mililitrelik kriyojenik bir aşağılık haline aktarın. Bir mililitre dondurucu ortam ekleyin ve iyice karıştırın. Şişeleri önceden soğutulmuş izopropanol bazlı hücre dondurma kabına kuru buz üzerine yerleştirin, kabı bir gecede eksi 80 derecelik bir dondurucuda saklayın ve şişeleri sıvı nitrojen depolamaya aktarın.Downstream tahlilleri için dondurucu dokuyu tutturmak için tümör doku parçalarını kriyojenik bir şişeye yerleştirin, kriyojenik aşağılıkları hemen sıvı nitrojene yerleştirin ve şişeleri eksi 80 santigrat derecelik dondurucuda saklayın. Tümör dokusunun üç farklı yöntemi karşılaştırıldığında, enzimatik sindirim kullanımı ile tümör hücrelerinin tek hücreli süspansiyon u başarılı oldu. Daha hızlı tümör büyümesine izin vermenin yanı sıra, bir ilk tümörün 10 ila 20 fareye genişletilmesi de yeterliydi, oysa tümör kıkırdak ve bulamaç yöntemi sadece 5-10 fareye genişletilebilir.Melanom hasta kaynaklı ksenogreft modelleri genellikle tedavi edilirken hastanın gösterdiği ilaç hassasiyetini yansıtır. Başlangıçta bir BRAF inhibitörüne yanıt veren melanom hastasından elde edilen bir ksenogreft, ama sonuçta nüksetti, ayrıca BRAF protein inhibisyonuna ilk duyarlılık gösterdi, artı MEK kinaz inhibitörü, ama tümörler sonuçta nüksetti. Bu gelecekteki PDX genişlemeleri, terapi denemeleri yanı sıra karakterizasyonu başarı sağlayacak gibi, bankacılık için PDX doku hazırlarken dikkat etmek önemlidir.PDX malzeme ile, tek hücreli RNA sıralama, tüm ekzom sıralama, ve proteomik karakterizasyonu, bizim laboratuvar kaldıraçları tedavi direnci ni incelemek için birçok yöntem arasında yer alıyor. PDX tekniği araştırmacılar daha iyi plastik üzerinde yetiştirilen geleneksel kanser modellerine göre bir insan hastada tümör biyolojisi recapitulate tümör hücreleri kullanarak tedavi direnci araştırmak için izin verir. Bu avantaj daha öngörücü öngörüler sağlar.Araştırmacılar her zaman dikkat etmeli ve bir insan hastadan elde edilen tümör dokusu nu işlerken biyogüvenlik düzeyi iki önlem kullanmalıdır.

a-melanoma-patient-derived-xenograft-model

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Kanser Araştırmaları

Bu videoda, insan kaynaklı melanom hücreleri, bağışıklığı baskılanmış bir farenin yan bölgesine deri altından implante ediliyor. PDX modeli, in vivo koşullarda gözlenen tümör heterojenliğini ve melanom agresifliğini daha iyi özetleyen melanom hücrelerinin klinik öncesi araştırmasına izin verir.

Hasta Kaynaklı Ksenogreft Modellemesi: Melanom Fare Modelleri Oluşturmak İçin Bir Teknik

Bu videoda, tümör hücrelerinin melanom taşıyan donör zebra balığı modelinden bağışıklığı baskılanmış bir alıcı Casper zebra balığına nakli yöntemi açıklanmaktadır. Alıcı balıklarda tümör aşılamasını ve proliferasyonunu görselleştirmeye yardımcı olur.

Subkutan Transplantasyon Testi: Melanom Hücrelerini Bir Donörden Bir Alıcıya Nakletmek İçin Bir Yöntem Zebra Balığı Modeli

Metastazı, kanserin virülansında derin bir rol oynar ve ölümlerin tahminen %90'ını oluşturur.  Farelerde metastatik melanom modeli için terapötik ajanların bu klinik fenomene karşı etkinliğini belirlemek için yararlı olan bir protokol sunuyoruz.

Singenik Fare Melanom Hücreleri Enjeksiyon Akciğerler Onların Metastatik Potansiyeli belirleme

Burada, biz mevcut her iki mimari beyannamedir bir 3D organotypic Melanom küresel Cilt modeli oluşturmak için bir protokol ve bir organ/tümör vivo içinde ama aynı zamanda çok hücreli karmaşıklık barındırır sistematik deneysel müdahale.

3D Organotypic Melanom küresel Cilt modeli

Ortotopik insan karaciğeri metastatik uveal melanom ksenogreft fare modelleri, hasta kaynaklı tümör öbek ve kültürlü insan uveal melanom hücre hatları ile iğne enjeksiyon teknikleri ile cerrahi ortotopik implantasyon teknikleri kullanılarak oluşturulmuştur.

İmmünficient Farelerde Karaciğer Ortotopik İnsan Uveal Melanom Xenograft Platformu Üretimi

Burada bir tümörün genomik yapısına dayalı olarak seçilen hedefe yönelik tedavilerin etkinliğini test etmek için bir protokol sayılacağız. Protokol, yapısal DNA düzenlemelerinin tanımlanması ve doğrulanması, hastaların tümörlerinin farelere engraftasyonu ve ilgili ilaçlara verilen yanıtların test edilmesi olarak tanımlanmaktadır.

Yapısal DNA Alterasyon Analizi ve Hasta Kaynaklı Ksenogreftler Kullanılarak Kanserde Hedefli Tedavilerin Test Edilmesi

Venöz malformasyonun murine ksenogreft modelini oluşturmak için ayrıntılı bir protokol sayılmiyoruz. Bu model, hiper aktive edici TIE2 ve/veya PIK3CA gen mutasyonları içeren hasta kaynaklı endotel hücrelerinin deri altı enjeksiyonuna dayanmaktadır. Ksenogreft lezyonları VM hasta dokusunun histopatolojik özelliklerini yakından özetler.

Venöz Malformasyon için Hasta Kaynaklı Ksenogreft Modeli

Santral sinir sistemi metastazı PDX modelleri, insan metastazının fenotipik ve moleküler özelliklerini temsil eder ve bu da onları klinik öncesi çalışmalar için mükemmel modeller haline getirir. Burada PDX modellerinin nasıl oluşturulacağı ve klinik öncesi çalışmalar için en iyi kullanılan aşılama yolları açıklanmaktadır.

Santral Sinir Sistemi Metastazının Hasta Kaynaklı Ksenogreft Modellerinin Kurulması ve Kullanılması

Mevcut protokol, insan derisinin obez olmayan diyabetik (NOD)-scid interlökin-2 gama zinciri reseptörü (NSG) farelere nasıl aşılanacağını açıklamaktadır. Nakil için insan derisinin hazırlanması, nakil için farelerin hazırlanması, bölünmüş kalınlıkta insan derisinin nakli ve nakil sonrası iyileşme prosedürünün ayrıntılı bir açıklaması raporda yer almaktadır.

İnsan Bağışıklık Tepkilerini In Vivo'da Manipüle Etmek için Ksenograft Cilt Modeli

Mevcut protokol, insan osteosarkom dokusu kullanılarak hasta kaynaklı bir ksenogreft (PDX) fare modeli oluşturma yöntemini açıklamaktadır.

İnsan Osteosarkom Dokuları ile Hasta Kaynaklı Ksenogreft Fare Modelinin Kurulması

Burada, taze melanom dokularından ayrışmış hücre süspansiyonlarını kültürleyerek melanom hastadan türetilmiş organoidler oluşturmak için bir protokol sunuyoruz. Bu organoidler, hastaya özgü tümörleri in vitro olarak aslına uygun olarak özetleyerek, tümör immünosupresif mekanizmalarını, ilaç taramasını, ilaç direnç mekanizmalarını ve kanser sürveyans yaklaşımlarını keşfetmek için yenilikçi bir yaklaşım sunar.

Melanom Hasta Kaynaklı Organoid Modellerle Terapötik Fırsatların Ortaya Çıkarılması

Öğrenin, melanom araştırmalarında hasta-türetilmiş ksenogreft modellerinin nasıl kurulduğunu ve karakterize edildiğini. Bu yöntem, tedavi direncini aşmak ve hasta sağkalımını artırmak için değerli bilgiler sunar.

Bir melanom hasta-türetilen xenograft model

Daha fazla video keşfet