Name: Aşı Geliştirme için Chlamydia muridarumdan Rekombinant Majör Dış Membran Proteinine Hücresiz Ölçekli Üretim ve Adjuvan İlavesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-03-16T12:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 53 s
Description: Keşfedin hücresiz protein sentezi ile Chlamydia muridarum MOMP antijeninin ölçeklenebilir üretimini ve adjuvan formülasyonunu. Bu yöntem, aşı geliştirme için yerel benzeri konformasyonda membran proteinleri sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Ulusal Alerji ve Bulaşıcı Hastalıklar Enstitüsü'nden Halk Sağlığı Hizmeti hibesi R21 AI20925 ve U19 AI144184 tarafından desteklenmiştir. Bu çalışma, ABD Enerji Bakanlığı'nın himayesinde, Lawrence Livermore Ulusal Laboratuvarı tarafından DE-AC52-07NA27344 [LLNL-JRNL-822525, LLNL-VIDEO-832788] Sözleşmesi kapsamında gerçekleştirilmiştir.

Tüm hayvan çalışmaları, Kaliforniya Üniversitesi, Irvine'de, Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından belirlenen yönergelere uygun olarak Halk Sağlığı Hizmeti (PHS) güvenceli tesislerde gerçekleştirildi.
1. Züccaciye hazırlama
NOT: Hayvanlar için aşı sınıfı formülasyonların üretiminde kullanılan tüm malzemeler endotoksin içermez.
<ol><li>Kirletici endotoksini yok etmek için, tamponları 180 ° C'de 4 saat boyunca bir fırında tutacak temizlenmiş cam eşyaları pişirin.</li>
</ol>2. Tampon hazırlama
<ol><li>Tablo 1'de listelenen 250 mL Ni afinite saflaştırma tamponu hazırlayın. 4 °C'de 6 aya kadar saklayın.</li>
</ol>3. Reaksiyon hazırlığı
<ol><li>20 mg 1,2-dimyristoyl-sn-glisero-3-fosfokolin (DMPC) endotoksin içermeyen, 1.5 mL'lik bir santrifüj tüpüne tartın. 1 mL endotoksin içermeyen suda çözün, 1 dakika boyunca 6 A'da en az dört kez sonik hale getirin, aralarında 1 dakika duraklama olsun, berraklaşana kadar. 22 ° C'de 2 dakika boyunca 13.000 × g'da santrifüjleme yoluyla probdaki kirletici metalleri çıkarın ve ardından çözünmüş lipidi yeni bir 1.5 mL endotoksin içermeyen tüpe aktarın.</li>
	<li>1 mg PEG5k-CA8 telodendrimer'i 1.5 mL endotoksin içermeyen bir tüpe tartın. Endotoksin içermeyen suda 20 mg/mL konsantrasyonda çözün. Tamamen eriyene kadar vorteks yapın ve 2 mg / mL'ye seyreltin.</li>
	<li>Yeni bir endotoksin içermeyen tüpte, 210 μL 20 mg / mL DMPC çözeltisini 210 μL 2 mg / mL telodendrimer çözeltisi ile birleştirin.</li>
</ol>4. Alt birim aşı formülasyonları için MOMP-tNLP'lerin hücresiz üretimi
<ol><li>Daha önce yayınlanmış bir protokolden değiştirilmiş hücresiz yöntemler kullanarak MOMP-tNLP'leri hazırlayın5.<ol><li>Hücresiz reaksiyonu kurmadan iki saat önce, prokaryotik hücresiz protein ekspresyon kitini açın ve sulandırma tamponlarından birini çözün. Çözüldükten sonra, bir tablet EDTA içermeyen proteaz inhibitör kokteyli ekleyin ve tamamen çözünmesine izin verin.</li>
	</ol></li>
	<li>5 x 1 mL reaksiyonları çalıştırmak için tasarlanmış bir kit kullanarak bu protokolü izleyin. NOT: Tipik bir ölçek büyütme üretimi 3 x 1 mL'dir.<ol><li>Her 1 mL reaksiyon için, E. coli lizat şişesine 525 μL sulandırma tamponu ekleyin ve çözünmesi için hafifçe yuvarlayın. Reaksiyon katkı maddeleri (örneğin, ATP, GTP) içeren şişeye 250 μL sulandırma tamponu ekleyin ve çözünmesi için hafifçe yuvarlayın.</li>
		<li>Reaksiyon besleme şişesine 8.1 mL sulandırma tamponu ekleyin, lastik bir tıpa ile kapatın (kauçuk tıpanın iç kısmına dokunmamaya dikkat edin) ve çözünmesi için hafifçe ters çevirin/yuvarlayın.</li>
		<li>Amino asit karışım şişesine 3 mL sulandırma tamponu ekleyin, lastik bir tıpa ile kapatın ve çözünmesi için hafifçe ters çevirin / yuvarlayın. NOT: Kirlenmeye neden olabileceğinden lastik tıpanın iç kısmına dokunmamaya dikkat edin.</li>
		<li>Metiyonin şişesine 1.8 mL sulandırma tamponu ekleyin, çözünmesi için hafifçe yuvarlayın ve ardından kullanıma kadar buz üzerinde saklayın.</li>
	</ol></li>
	<li>Reaksiyon çözeltisini hazırlayın.<ol><li>E. coli lizat şişesine 225 μL sulandırılmış Reaksiyon Karışımı, 270 μL metiyonin içermeyen sulandırılmış amino asit karışımı ve 30 μL sulandırılmış metiyonin ekleyin. Ek olarak, 400 μL DMPC / telodendrimer karışımı, 15 μg MOMP plazmidi ve 0.6 μg Δ49ApoA1 plazmidi ekleyin. Karıştırmak için yuvarlayın/hafifçe sallayın. NOT: Her iki plazmitin de aynı plazmit omurgasından oluşturulduğundan emin olun. Girdap yapmayın.</li>
		<li>Toplam çözeltinin 20 μL'sini alın ve GFP eksprese eden kontrol reaksiyonu için 1.5 mL'lik bir tüpte bir kenara koyun (aşağıya bakınız).</li>
	</ol></li>
	<li>Besleme çözeltisini hazırlayın. Yem karışımı şişesine, metiyonin içermeyen 2.65 mL sulandırılmış amino asit karışımı ve 300 μL sulandırılmış metiyonin ekleyin. Çözünmesi için yuvarlayın/hafifçe sallayın. NOT: Şu anda, kullanılmayan sulandırma tamponu ve Metiyonin, saklama için dondurucuya geri gönderilebilir.</li>
	<li>1 mL reaksiyon solüsyonunu hücresiz reaksiyon kitinde sağlanan iç reaksiyon odasına aktarın ve doldurulduğunda kapatın. Besleme çözeltisinin 10 mL'sini reaksiyon kabının dış haznesine aktarın ve kapatın. NOT: Hazneleri aşırı doldurmayın! Hem iç reaksiyon odasının hem de iç besleme odasının tepesinde hava kabarcıklarının varlığı reaksiyonu olumsuz yönde etkileyecektir. Kalan herhangi bir reaksiyon çözeltisi 1.5 mL'lik bir tüpe yerleştirilebilir ve ana kap ile birlikte karışmasına izin verilebilir.</li>
	<li>Daha önce alıntılanmış 20 μL reaksiyon karışımına 0.5 μL GFP kontrol plazmidi (0.5 mg/mL) ekleyin. NOT: Birçok kit, kalite kontrol amacıyla bir kontrol plazmidi ile birlikte verilir. Bir T7 promotörü ve E.coli ribozom bağlanma bölgesi (RBS) ile plazmidi eksprese eden çoğu GFP, kontrol plazmidi olarak da kullanılabilir.</li>
	<li>Reaksiyonu 300 rpm'de, 30 °C'de 18 saate kadar bir çalkalayıcıya yerleştirin. Reaksiyonun başarılı olduğunu doğrulamak için, 15 dakika kadar kısa bir inkübasyondan sonra kontrol GFP'sinin (Şekil 1A) sentezine bağlı floresan olup olmadığını kontrol etmek için bir UV ışık kaynağı kullanın. NOT: Bu koşulların, özellikle sıcaklığın, diğer zar proteinlerinin ekspresyonu için optimize edilmesi gerekebilir.</li>
</ol>5. MOMP-tNLP saflaştırma
<ol><li>Δ49ApoA1 proteini üzerindeki His-etiketini kullanarak MOMP-tNLP nanopartikül kompleksini hücresiz reaksiyon karışımından saflaştırmak için hareketsizleştirilmiş nikel afinite kromatografisi kullanın.<ol><li>1 mL %50 His-Tag Saflaştırma Reçinesi bulamacını tek kullanımlık 10 mL'lik bir kromatografi kolonuna aktarın ve 3 mL Bağlayıcı tampon ile dengeleyin.</li>
		<li>Tamponun boşalmasına izin verin, çıkışı kapatın ve reçineye 250 μL Bağlayıcı tampon ekleyin.</li>
		<li>Hücresiz reaksiyonu kolona eklemeden önce, SDS-PAGE tarafından daha sonra analiz edilmek üzere 20 μL kaydedin. Hücresiz reaksiyonu dengelenmiş reçine ile karıştırın ve 1 saat boyunca 4 ° C'de bir laboratuvar külbütörü üzerinde inkübe edin.</li>
	</ol></li>
	<li>Kolonun kapağını açın, kapağı 500 μL ek Bağlama tamponu ile yıkayın ve bu sıvıyı kolonun geri kalanına ekleyin.</li>
	<li>SDS-PAGE tarafından daha sonra analiz edilmek üzere sıvı akışını kolondan toplayın.</li>
	<li>Kolonu 20 mM imidazol içeren 1 mL yıkama tamponu ile altı kez yıkayın ve fraksiyonları toplayın. Reçinenin yıkamalar arasında kurumasına izin vermeyin. İkinci yıkamada, 1 mL'lik bir pipet kullanarak yukarı ve aşağı pipetleyerek reçineyi kuvvetlice çalkalayın.</li>
	<li>MOMP-tNLP'leri altı adet 300 μL'lik Elüsyon tamponu 1 fraksiyonunda (250 mM imidazol içeren) ve ardından 300 μL Elüsyon tamponu 2 (500 mM imidazol içeren) ile son bir elüsyon elde edin. İkinci elüsyonda, 1 mL'lik bir pipet kullanarak yukarı ve aşağı pipetleyerek reçineyi kuvvetlice çalkalayın.</li>
</ol>6. SDS-PAGE ile Analiz
NOT: Tüm elüsyon fraksiyonları, ilgilenilen proteinin miktarını ve saflığını taramak için SDS-PAGE ile analiz edilmelidir.
<ol><li>Toplam lizat ve akışın her biri için 1 μL ve ardından toplanan tüm yıkama ve elüsyon fraksiyonları için 5 μL yükleyin.<ol><li>Ayrıştırılmış MOMP-tNLP'lerin, yıkamaların, akışın ve toplam lizatın alikotlarını 4x SDS-PAGE numune yükleme tamponu ile karıştırın. Aksi belirtilmedikçe numuneleri 10x numune indirgeyici ajan ile karıştırın ve ısıyla denatüre edin.</li>
		<li>Fraksiyonları, uygun bir moleküler ağırlık standardı ile birlikte 1.0 mm, %4 ila 12, 1x MES-SDS çalışma tamponlu Bis-Tris SDS-PAGE jelleri kullanarak jel elektroforezi ile analiz edin. Jelleri 200 V'ta 35 dakika çalıştırın.</li>
	</ol></li>
	<li>Jelleri üreticinin talimatlarına göre boyayın.<ol><li>Jeli kasetten çıkarın ve 60 mL jel lekesine yerleştirin. Jel lekesindeki jeli 30 saniye mikrodalgada ısıtın ve ısıyı eşit olarak dağıtmak için kabı 30 saniye hafifçe sallayın. Lekedeki jeli 30 saniye daha 80-85 °C'ye mikrodalgada ısıtın ve jeli 5 dakika sallamak için bir orbital çalkalayıcı üzerine yerleştirin.</li>
		<li>Jeli 30 saniye boyunca üçüncü kez mikrodalgada ısıtın ve ardından 23 dakika daha sallamak için orbital çalkalayıcıya geri dönün.</li>
		<li>Jeli temiz bir kaba aktarın ve 100 mL yıkama solüsyonunda (%10 metanol, %7 asetik asit) 30 dakika yıkayın. NOT: Yıkama solüsyonunun ısıtılmasını önlemek gerekli olduğundan bu kritik bir adımdır. Bunun yapılmaması, son jel görüntüsünde arka plan lekelenmesine ve düzensizliklere neden olabilir.</li>
		<li>Yıkadıktan sonra, jeli ultra saf suda iki kez 5 dakika durulayın.</li>
		<li>Jelleri 600 nm'de bir jel görüntüleyici kullanarak görüntüleyin (Şekil 2). Karşılaştırma için bir protein standardı varsa, nanopartikül çözeltisindeki tek tek protein miktarını ölçmek için SDS-PAGE'i kullanın. NOT: Bu örnekte, rekombinant olarak eksprese edilen MOMP'nin seri dilüsyonları SDS-PAGE ile çözülür ve bantların yoğunlukları enstrüman yazılımı kullanılarak ölçülür.</li>
		<li>MOMP bantlarının yoğunluklarını kullanarak standart bir eğri oluşturun. MOMP-tNLP örneklerini aynı SDS-PAGE jeli üzerinde çözün ve MOMP standart eğrisini kullanarak partiküllerin MOMP bileşenini hesaplayın (Şekil 3).</li>
	</ol></li>
</ol>7. Batı ve nokta lekeleri ve depolama
<ol><li>Western blotlama için, numuneleri SDS-PAGE ile çözün ve jelleri, üreticinin protokolüne göre standart ayarlara sahip ticari bir kuru kurutma sistemi kullanarak aktarın.<ol><li>Transfer tamamlandıktan sonra lekeleri yığından çıkarın ve her bir lekeyi gece boyunca 4 ° C'de% 0.2 Tween 20 ve 0.5 mg / mL MAb40 veya 0.2 mg / mL içeren uygun bir bloke edici tamponda inkübe edin Δ49ApoA1 proteininden His-tag'e karşı yönlendirilmiş anti-His-tag antikoru. NOT: Blotlama için kullanılan antikor dilüsyonları MAb40 için 1:1.000 ve MAbHIS antikoru için 1:500-1.000'dir.</li>
		<li>Her lekeyi PBS-T (1x PBS,% 0.2 Tween 20, pH 7.4) ile 5 dakika boyunca 3 kez yıkayın.</li>
		<li>Lekeleri, 1: 10.000 seyreltmede bir florofora (örneğin, IRDye) konjuge edilmiş ikincil antikor içeren bloke edici tamponda 1 saat inkübe edin.</li>
		<li>Lekeleri PBS-T ile 5 dakika boyunca 3 kez tekrar yıkayın. Son yıkamadan sonra lekeleri görüntülemek için bir floresan görüntüleyici kullanın.</li>
	</ol></li>
	<li>Nokta lekeleri için, 3 μg saflaştırılmış MOMP-tNLP'yi kurulayın ve bir nokta leke aparatı kullanarak tNLP'yi boşaltın. Batı lekeleme için yukarıda açıklanan yöntemlerin aynısını kullanarak lekeleri bloke edin ve geliştirin.</li>
</ol>8. Endotoksin değerlendirmesi
<ol><li>Limulus Amebosit Lizat (LAL) testine dayalı bir endotoksin test sistemi kullanarak endotoksin seviyelerini ölçün. Endotoksin içermeyen 25 mM Tris, pH 7.4, 1 M Tris hidroklorür çözeltisi ve endotoksin içermeyen su kullanarak numune tamponu hazırlayın. NOT: Tipik olarak, numunelerin bu numune tamponu kullanılarak seyreltilmesi ve seyreltmelerin tek tek numuneler için uygun aralığı bulmak üzere ayarlanması gerekir. Burada, MOMP-tNLP numuneleri, numune tamponunda 500 kat seyreltilir ve 25 μL, 0.05 EU/mL hassasiyete sahip bir cihaz kartuşunun her bir kuyucuğuna yüklenir. Aşağıda tarif edilen fare çalışmalarında kullanılan MOMP-tNLP ve boş tNLP'nin endotoksin seviyeleri, örneğe bağlı olarak 0.4 ila 12 EU/μg protein arasındadır.</li>
</ol>9. Liyofilizasyon
<ol><li>MOMP-tNLP nanopartiküllerini -20 ° C'de uzun süreli (yıllara kadar) kullanım için liyofilize edin ve saklayın. Liyofilizasyon için tNLP ve MOMP-tNLP süspansiyonlarını hazırlamak için, dondurma ve liyofilizasyon işlemi sırasında koruyucu olarak trehaloz ekleyin. NOT: Bu işlem, çeşitli tNLP formülasyonları 7,8 için kapsamlı bir şekilde doğrulanmıştır.</li>
	<li>0.1 M trehalozun nihai konsantrasyonuna ulaşmak için gereken steril, endotoksin içermeyen, deiyonize suda 1 M trehaloz hacmini elde etmek için MOMP-tNLP çözeltisinin mevcut hacmini 9'a bölün. Son hacmi not edin ve istediğiniz gibi endotoksin içermeyen 15 mL veya 50 mL polipropilen tüplere alın.</li>
	<li>Karışık çözeltiyi kuru buz üzerinde dondurun ve bir liyofilizatör kullanarak gece boyunca liyofilize edin. Kurutulmuş formülasyonları ihtiyaç duyulana kadar -20 °C'de saklayın.</li>
	<li>Endotoksin içermeyen su kullanarak liyofilize tNLP'leri sulandırın. Liyofilize kek tamamen eriyene ve yeniden sulandırılana kadar yavaşça yuvarlayın. Trehalozu çıkarmak için, 3.5 kDa'lık bir kesme diyaliz membranı kullanarak çözeltiyi PBS'ye karşı diyalize edin.</li>
</ol>10. Adjuvan ilavesi
NOT: Bu ve diğer benzer NLP bazlı alt birim aşı formülasyonları, CpG-ODN1826 ve FSL-1 gibi lipofilik adjuvanları kolayca içerebilir. CpG-ODN1826, 5' kolesterol parçasına (5'-chol-C6) sahip tam bir fosforotiyoat omurgasına sahip, modifiye edilmiş bir B Sınıfı CpG oligonükleotididir (5'-tccatgacgttcctgacgtt-3'). CpG-ODN1826'in tNLP'lere konjugasyonuna, kolesterol kısmı ile tNLP'nin fosfolipid çift tabakası arasındaki hidrofobik etkileşimler aracılık eder ve daha önce bildirildiği gibi gösterilmiş ve iyi karakterize edilmiştir 9,10.
<ol><li>Bu formülasyonlara dahil edilmeden önce, kirletici endotoksini ve modifiye edilmemiş CpG moleküllerini uzaklaştırmak için kolesterolü değiştirilmiş CpG'yi ters faz kromatografisi ile saflaştırın.<ol><li>Satıcıdan alındıktan sonra, liyofilize CpG malzemesini endotoksin içermeyen suda rehidre edin ve 10 mM trietilamonyum asetat (TEAA) (mobil faz A) ve asetonitrilden (mobil faz B) oluşan bir ayırma gradyanı kullanarak hazırlayıcı bir C4 RP-HPLC kolonunda saflaştırın. NOT: Ek ayrıntılar Tablo 2'de mevcuttur.</li>
		<li>Kolesterolü modifiye edilmiş CpG içeren fraksiyonları bir araya getirin ve liyofilize edin. Kalıntı TEAA'nın tamamen uzaklaştırılmasını sağlamak için, CpG'yi 15 mL endotoksin içermeyen su ile sulandırın ve üç kez yeniden liyofilize edin.</li>
		<li>Son liyofilizasyondan sonra, CpG'yi endotoksin içermeyen suda (>20 mg / mL nihai CpG konsantrasyonu), alikotta yeniden sulandırın ve ihtiyaç duyulana kadar -80 ° C'de saklayın. Formülasyonlara ek olarak, CpG'yi 1-2.5 mg/mL'lik bir konsantrasyona seyreltin. NOT: FSL-1, aşı sınıfı, liyofilize toz olarak mevcuttur. Bu, 1 mg / mL konsantrasyonda steril ve endotoksin içermeyen su kullanılarak sulandırılır. Aşı, her doz toplam 50 μL hacimde 10 μg MOMP içerecek şekilde kas içine (i.m.) uygulanır.</li>
	</ol></li>
	<li>İstenen formülasyon dozunu elde etmek için, nanopartikülleri PBS'ye diyalize edin ve adjuvan ilavesinden önce santrifüjlü bir vakum yoğunlaştırıcı kullanarak konsantre edin. Numunenin tamamen kurumasını önlemek için bunu yaparken dikkatli olun - santrifüjleme sırasında numune hacmini her 20-30 dakikada bir kontrol edin.</li>
	<li>Adjuvanı steril koşullar altında bir biyogüvenlik kabinine ekleyin. Başarılı birleştirmeyi değerlendirmek için, nihai formülasyonları ve bileşenlerini analitik boyut dışlama kromatografisi (SEC) ile analiz edin. NOT: Bu preparatlar için, PBS tamponunda (akış hızında 0.5 mL/m) bir SEC kolonu kullanıldı ve bir UV-vis diyot dizi detektörü kullanılarak elüsyon tespit edildi. Birleşme, adjuvanlı parçacıkların absorpsiyonu 214 ve 280 nm'de adjuvansız parçacıklarınkiyle karşılaştırılarak değerlendirildi.</li>
	<li>Adjuvanlı MOMP-tNLP'yi ve boş tNLP'yi hayvan kullanımından önce 4 ° C'de 14 güne kadar saklayın. Yeni bir tNLP formülasyonunun stabilitesini tam olarak değerlendirmek için, depolanan tNLP'leri SEC tarafından periyodik olarak analiz edin. NOT: Stabilite formülasyondan formülasyona değişecektir.</li>
</ol>11. Serum testi
<ol><li>3 haftalık dişi fareler elde edin (BALB/c, n = 6).</li>
	<li>Fareleri her bir arka bacakta kas içi (i.m.) 5 μg CpG ve 1 μg FSL-1 (enjeksiyon başına toplam hacim = 50 mL) ile adjuvanlı MOMP-tNLP formunda 10 μg MOMP ile aşılayın.</li>
	<li>Aşılamadan sonra, fareleri sternal yaslamayı koruyana kadar gözlemleyin.</li>
	<li>İlk aşılamadan dört hafta sonra (prime), hayvanları 5 μg CpG ve 1 μg FSL-1 (enjeksiyon başına toplam hacim = 50 mL) ile adjuvanlı MOMP-tNLP formunda 10 μg MOMP ile ikinci kez (boost) aşılayın.</li>
	<li>İlk aşılamadan sonraki 56. günde, antikor titrelerini değerlendirmek için kan toplayın. Bir ksilazin (0.3 mg / 20 g vücut ağırlığı) ve ketamin (3.0 mg / 20 g vücut ağırlığı) çözeltisi enjekte ederek fareleri uyuşturarak başlayın. Sarsıntı olmadığından emin olmak için ön ve arka ayakları sıkıştırın. Anestezi sırasında göz kuruluğunu önlemek için göz çevresine vazelin uygulayın.</li>
	<li>Bir mikro-hematokrit kılcal tüp kullanarak, retro-orbital pleksusu delin. Bir mikrosantrifüj tüpünde 100 mL kan toplayın.</li>
	<li>Kan alındıktan sonra, fareleri anesteziden kurtulana ve sternal yaslığı koruyana kadar gözlemleyin.</li>
	<li>Kanın oda sıcaklığında 30 dakika pıhtılaşmasına izin verin ve ardından 10 dakika boyunca 2.000 × g'da dönün. Serumu toplayın ve -80 °C'de dondurun.</li>
	<li>Şu anda, hayvanlara Chlamydia muridarum ile meydan okuyun veya ötenazi yapın. Farelere önce bir ksilazin (0.3 mg / 20 g vücut ağırlığı) ve ketamin (3.0 mg / 20 g vücut ağırlığı) çözeltisi enjekte ederek ötenazi yapın, ardından servikal çıkık.</li>
	<li>Yukarıda tarif edildiği gibi batı blotlama tekniklerini kullanarak MOMP'ye özgü serum antikorlarını test edin. Tüm aşılanmış farelerden havuz faresi serumları ve havuzlanmış serumu 1: 5.000 seyreltmede birincil antikor yerine kullanın.</li>
</ol>

<ol><li>Carlson, E. D., Gan, R., Hodgman, C. E., Jewett, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+protein+synthesis%3A+applications+come+of+age%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+Advances%22%5BJournal%5D)">Cell-free protein synthesis: applications come of age.</a> Biotechnology Advances. 30 (5), 1185-1194 (2012).</li>
<li>Coleman, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+and+association+of+the+Yersinia+pestis+translocon+proteins%2C+YopB+and+YopD%2C+are+facilitated+by+nanolipoprotein+particles%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Expression and association of the Yersinia pestis translocon proteins, YopB and YopD, are facilitated by nanolipoprotein particles.</a> PLoS One. 11 (3), 0150166(2016).</li>
<li>Cappuccio, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+co-expression+of+functional+membrane+proteins+and+apolipoprotein%2C+forming+soluble+nanolipoprotein+particles%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+%26+Cellular+Proteomics%3A+MCP%22%5BJournal%5D)">Cell-free co-expression of functional membrane proteins and apolipoprotein, forming soluble nanolipoprotein particles.</a> Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 7 (11), 2246-2253 (2008).</li>
<li>He, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlling+the+diameter%2C+monodispersity%2C+and+solubility+of+ApoA1+nanolipoprotein+particles+using+telodendrimer+chemistry%5BTitle%5D)+AND+%22Protein+Science%22%5BJournal%5D)">Controlling the diameter, monodispersity, and solubility of ApoA1 nanolipoprotein particles using telodendrimer chemistry.</a> Protein Science. 22 (8), 1078-1086 (2013).</li>
<li>He, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+production+of+a+functional+oligomeric+form+of+a+Chlamydia+major+outer-membrane+protein+%28MOMP%29+for+vaccine+development%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Cell-free production of a functional oligomeric form of a Chlamydia major outer-membrane protein (MOMP) for vaccine development.</a> Journal of Biological Chemistry. 292 (36), 15121-15132 (2017).</li>
<li>Tifrea, D. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+protection+in+mice+against+a+Chlamydia+muridarum+respiratory+challenge+by+a+vaccine+formulated+with+the+major+outer+membrane+protein+in+nanolipoprotein+particles%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccines%22%5BJournal%5D)">Induction of protection in mice against a Chlamydia muridarum respiratory challenge by a vaccine formulated with the major outer membrane protein in nanolipoprotein particles.</a> Vaccines. 9 (7), 755(2021).</li>
<li>Cleveland, T. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small-angle+X-ray+and+neutron+scattering+demonstrates+that+cell-free+expression+produces+properly+formed+disc-shaped+nanolipoprotein+particles%5BTitle%5D)+AND+%22Protein+Science%22%5BJournal%5D)">Small-angle X-ray and neutron scattering demonstrates that cell-free expression produces properly formed disc-shaped nanolipoprotein particles.</a> Protein Science. 27 (3), 780-789 (2018).</li>
<li>Fischer, N. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conjugation+to+nickel-chelating+nanolipoprotein+particles+increases+the+potency+and+efficacy+of+subunit+vaccines+to+prevent+West+Nile+encephalitis%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Conjugation to nickel-chelating nanolipoprotein particles increases the potency and efficacy of subunit vaccines to prevent West Nile encephalitis.</a> Bioconjugate Chemistry. 21 (6), 1018-1022 (2010).</li>
<li>Fischer, N. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colocalized+delivery+of+adjuvant+and+antigen+using+nanolipoprotein+particles+enhances+the+immune+response+to+recombinant+antigens%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Colocalized delivery of adjuvant and antigen using nanolipoprotein particles enhances the immune response to recombinant antigens.</a> Journal of the American Chemical Society. 135 (6), 2044-2047 (2013).</li>
<li>Fischer, N. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+nanolipoprotein+particles+%28NLPs%29+as+an+in+vivo+delivery+platform%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Evaluation of nanolipoprotein particles (NLPs) as an in vivo delivery platform.</a> PLoS One. 9 (3), 93342(2014).</li>
<li>Pal, S., Peterson, E. M., de la Maza, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vaccination+with+the+Chlamydia+trachomatis+major+outer+membrane+protein+can+elicit+an+immune+response+as+protective+as+that+resulting+from+inoculation+with+live+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Vaccination with the Chlamydia trachomatis major outer membrane protein can elicit an immune response as protective as that resulting from inoculation with live bacteria.</a> Infection and Immunity. 73 (12), 8153-8160 (2005).</li>
<li>Sun, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+functional+analyses+of+the+major+outer+membrane+protein+of+Chlamydia+trachomatis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Bacteriology%22%5BJournal%5D)">Structural and functional analyses of the major outer membrane protein of Chlamydia trachomatis.</a> Journal of Bacteriology. 189 (17), 6222-6235 (2007).</li>
<li>Hafner, L. M., Wilson, D. P., Timms, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+status+and+future+prospects+for+a+vaccine+against+Chlamydia+trachomatis+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccine%22%5BJournal%5D)">Development status and future prospects for a vaccine against Chlamydia trachomatis infection.</a> Vaccine. 32 (14), 1563-1571 (2014).</li>
<li>Findlay, H. E., McClafferty, H., Ashley, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+expression%2C+single-channel+analysis+and+membrane+topology+of+recombinant+Chlamydia+trachomatis+Major+Outer+Membrane+Protein%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Surface expression, single-channel analysis and membrane topology of recombinant Chlamydia trachomatis Major Outer Membrane Protein.</a> BMC Microbiology. 5, 5(2005).</li>
<li>Sun, G., Pal, S., Weiland, J., Peterson, E. M., de la Maza, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protection+against+an+intranasal+challenge+by+vaccines+formulated+with+native+and+recombinant+preparations+of+the+Chlamydia+trachomatis+major+outer+membrane+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccine%22%5BJournal%5D)">Protection against an intranasal challenge by vaccines formulated with native and recombinant preparations of the Chlamydia trachomatis major outer membrane protein.</a> Vaccine. 27 (36), 5020-5025 (2009).</li>
<li>He, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+expression+of+functional+receptor+tyrosine+kinases%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Cell-free expression of functional receptor tyrosine kinases.</a> Scientific Reports. 5 (1), 12896(2015).</li>
</ol>

Yazarlar, bu yazıda bildirilen çalışmayı etkilemiş gibi görünebilecek bilinen hiçbir rakip mali çıkarları veya kişisel ilişkileri olmadığını beyan ederler.

Klamidya, hem erkekleri hem de kadınları etkileyen en yaygın cinsel yolla bulaşan enfeksiyondur. Klamidya ile ilgili aşı araştırmaları onlarca yıla yayılmış olsa da, seri üretime ölçeklendirilebilecek güvenli ve etkili bir aşı zor kalmıştır13. Klamidyal MOMP, koruyucu bir aşı antijeni olarak lider aday olarak kabul edilir; bununla birlikte, MOMP oldukça hidrofobiktir ve yanlış katlanmayaeğilimlidir 14,15. Daha ileri çalışmalar, MOMP'nin immünojenisitesi için gerekli olan oligomerik durumlarda var olduğunu ortaya koymuştur11. Burada ayrıntılı olarak açıklanan, 3 mL lizat başına yaklaşık 1.5 mg saflaştırılmış MOMP verimi ile bir aşı olarak tNLP nanopartikül içinde oluşturulan oligomerik MOMP üreten doğrulanmış, hücresiz bir birlikte ekspresyon yöntemidir. Bu tamamen harmanlanmış prosedür, endüstriyel üretim için daha da ölçeklendirilebilir ve aşı üretimi için yararlı bir yaklaşım olarak beklentilerini artırabilir.
Daha önce, NLP'ler 3,16 içine gömülü membran proteinleri üretmek için hücresiz ekspresyonun yanı sıra telodendrimerle stabilize edilmiş disklere ekspresyon hakkında yayın yapmıştık. Bununla birlikte, bu ikinci teknik, daha fazla heterojenliğe ve daha düşük çözünürlüğe sahip zar-protein parçacıkları üretti. 4 Ek olarak, MOMP-telodendrimer partiküllerinin immünojenisitesi, MOMP-tNLP partiküllerine kıyasla belirsizdir6.
Bu prosedür, alt birim aşılarda kullanım için antijen olarak umut verici adaylar olan bakteriyel membran proteinlerinin ekspresyonunu büyütmek için uyarlanabilir. Bu prosedür sadece çözündürülmüş bakteri zarı proteini üretmekle kalmaz, aynı zamanda genel nanopartikül yapısı, bir kolesterol parçasına veya FSL-1'e konjuge edilmiş CpG dahil ancak bunlarla sınırlı olmamak üzere çeşitli lipofilik aşı adjuvanları kullanılarak daha fazla modifikasyona uygundur. Bakterilerden diğer aday antijenlerin ekspresyonu mümkündür, ancak optimum verim elde etmek için ekspresyon sıcaklığı, lipid seçimi ve ekspresyon sisteminin türü gibi parametrelerin araştırılması gerekebilir.
Ek olarak, plazmit seçimi ve oranı bu süreçte kritik öneme sahiptir. Kullanılan her iki plazmit de aynı omurgadan yapılmalıdır. Ekler yaklaşık olarak aynı uzunluktaysa, oranlar burada açıklandığı gibi eklenen plazmitin kütlesine dayanabilir. Bununla birlikte, mollere dayalı rasyonlama, özellikle reaksiyonları ölçeklendirirken daha tekrarlanabilir sonuçlar verecektir. Ekran ölçeğindeki reaksiyonlarda (0.5 mL'<) iyi çalışan oranlar, daha büyük reaksiyonlar için geçerli olmayabilir ve ek optimizasyon gerektirebilir. Membran olmayan proteinler hala hücresiz kitler kullanılarak eksprese edilebilir, ancak çözünür bir ürün üretmek için lipid nanopartikülü (birlikte ekspresyon) gerektirmeyebilir. Ek olarak, bu protokol CpG ve FSL-1 ile adjuvanlamayı açıklarken, bu sistem diğer lipofilik adjuvanlarla formülasyona veya istenildiği gibi çözünür adjuvanlarla karıştırmaya uygundur.
Hücresiz ekspresyon reaksiyonunu kurarken kontaminasyondan kaçınmak önemlidir, çünkü bu verimi etkileyebilir. Plazmitlerin kendileri de dahil olmak üzere reaksiyona herhangi bir katkı maddesi oldukça saf olmalıdır. Ek olarak, eksprese edilen proteinler sadece endotoksin kontaminasyonu içermeyen malzemeler ve çözeltilerle temas halinde olmalıdır. Aday formülasyonlarda endotoksin kontaminasyonu, immünolojik testlerin tutarsız ve sahte sonuçlarına yol açabilir ve yeterli miktarlarda zararlı olabilir. Burada açıklanmamış olsa da, SDS-PAGE gibi sonraki analiz adımlarında birçok kirletici gözlemlenirse, nikel afinite kromatografisini takiben ek saflaştırma gerekli olabilir. Bu, SEC ile gerçekleştirilebilir, ancak koşullar formülasyon bazında bir formülasyonda optimizasyon gerektirebilir.

Proteinlerin hücresiz ekspresyonu için prokaryotik veya ökaryotik lizatlar, ilgilenilen proteinleri sentezlemek için ticari ürünler olarak kolayca temin edilebilir (tam bir inceleme için, bkz. 1). Bu ekspresyon sistemleri çeşitli ölçeklerde mevcuttur ve E. coli, tütün bitkileri ve memeli kültürleri dahil olmak üzere çeşitli organizmalardan lizatları kullanır. Hücresiz lizatlar, kullanım kolaylığı ve sağlam, hızlı protein üretimi dahil olmak üzere geleneksel rekombinant protein üretim yaklaşımlarına göre birçok fayda sunar. Bu yaklaşımlar öncelikle çözünür proteinler üretmek için kullanılırken, bu grup membran proteinlerini eksprese etmek için kullanımları için bir yaklaşıma öncülük etmiştir.
Bu yeni yaklaşım, ekspresyon için iki protein ürününü, bir apolipoproteini ve ilgilenilen zar proteinini kodlayan DNA'yı dahil ederek mevcut hücresiz ekspresyon sistemlerinde küçük değişiklikler yapar. Eksprese edilen apolipoprotein (ApoA1 veya ApoE4'ün türevleri), kendiliğinden (~ 20 nm) NLP'leri birleştirmek için hücresiz lizata eklenen lipitlerle etkileşime girer. İlgilenilen bir membran proteini ile birlikte çevrildiğinde, NLP ve membran proteini, membran proteininin NLP lipid çift tabakası içine gömüldüğü çözünür bir nanopartikül kompleksi oluşturur. Bu nedenle, membran proteini, çözünür, ayrık parçacıklar içinde bulunduğundan, sonraki uygulamalar için daha erişilebilirdir. Bu yaklaşım, NLP çift tabakası2 içinde fonksiyonel oligomerik protein kompleksleri üretebilir ve daha sonra in vivo değerlendirme için uygun ko-lokalize antijen ve adjuvan içeren bir nanopartikül aşısı oluşturmak için lipofilik adjuvanlarla karıştırılan bir alt birim aşının antijen bileşenini üretebilir.
Bu geçerli yöntem, daha önce yayınlanmış bir protokol3'ten değiştirilmiştir. Anahtar modifikasyonlar, hücresiz reaksiyonun ölçeklendirilmesine ve ardından protein-NLP kompleksinin saflaştırılmasına odaklanmıştır. Başka bir modifikasyon, hücresiz reaksiyona eklenmeden önce lipitlerle karıştırılan telodendrimer olarak bilinen amfifilik bir polimerin eklenmesini içerir. Telodendrimer ve lipitlerin varlığında plazmitlerin birlikte translasyonu, bir telodendrimer NLP (tNLP) üretir. Telodendrimerin eklenmesi, elde edilen tNLP nanopartiküllerinin boyutunu ve monodispersitesini modüle etmeye de yardımcı olur4. Bu protokol, membrana bağlı bir alt birim antijen proteini olan klamidyal MOMP 5,6'yı üretmek için büyük ölçekli aşı çalışmaları için özel olarak optimize edilmiştir. Yöntem, MOMP oligomerizasyonunu koruyan yüksek oranda çözünür bir MOMP-tNLP kompleksi oluşturmak için tNLP ile ilişkili rekombinant MOMP üretir. Tipik bir 3 mL ölçek büyütme üretimi, >1.5 mg saflaştırılmış MOMP verir. Hücresiz üretilen MOMP-tNLP, in vivo immünojenisite testi için hızlı adjuvan ilavesine uygundur.

<table><tbody><tr><td>Toz olarak 1,2-dimiristoil-sn-glisero-3-fosfokolin (DMPC)</td><td>Avanti Polar Lipidler</td><td>850345</td><td></td></tr><tr><td>1.5 mL endotoksin içermeyen santrifüj tüpleri</td><td>Eppendorf</td><td>2600028</td><td></td></tr><tr><td>1 M Trizma hidroklorür çözeltisi</td><td>Millipore Sigma</td><td>T2194</td><td></td></tr><tr><td>Asetik asit, buzul, ACS reaktifi, vb; %99,7</td> <td>Millipore Sigma</td><td>695092</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Dot aparatı</td><td>XCell</td><td>1706545 SureLock</td><td></td></tr><tr><td>Life Technologies</td><td>EI0012</td><td></td><td></td></tr><tr><td>C24 İnkübatör çalkalayıcı</td><td>New Brunswick Scientific Hücresiz</td><td></td><td></td></tr><tr><td>İfade Sistemi için ProteoMaster E. coli HY Kiti</td><td>BiotechRabbit</td><td>BR1400201</td><td></td></tr><tr><td>cOmplete His-Tag Saflaştırma Reçinesi</td><td>Roche Moleküler Tanı</td><td>5893682001</td><td></td></tr><tr><td>cOmplete, EDTA İçermeyen Proteaz İnhibitörü Kokteyli Roche</td><td>Moleküler Tanı</td><td>4693132001</td><td></td></tr><tr><td>CpG-ODN1826</td><td>Biyoaraştırma Teknolojileri</td><td>T9449</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-Trehaloz dihidrat</td><td>Millipore Sigma</td><td>71509</td><td></td></tr><tr><td>Diyaliz tüpleri D-Tüp Diyaliz Cihazı Maxi</td><td>Millipore Sigma</td><td>71508-3</td><td></td></tr><tr><td>Tek kullanımlık, polipropilen fritli kolonlar 10 mL kapasiteli</td><td>Bio-Rad</td><td>7311550EDU</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' s Fosfat Tamponlu Tuzlu Su (PBS)</td><td>Millipore Sigma</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>Elektroforez Güç Kaynağı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Endosafe PTS kartuşu</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>NC9594798</td><td></td></tr><tr><td>Endosafe-PTS Test Sistemi</td><td>Charles River</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Jel yıkama solüsyonu: %10 metanol, %7 asetik asit</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>HCl ve NaOH çözeltileri UV</td> vis diyot dizi dedektörü ile pH ayarı <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>HPLC</td><td>Shimadzu</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HyClone HyPure kültür sınıfı su</td><td>VWR</td><td>82007-328</td><td></td></tr><tr><td>iBlot 2 Kuru Kurutma Sistemi</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td></td><td></td></tr><tr><td>iBlot 2 Transfer Yığınları, PVDF</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>IB24001</td><td></td></tr><tr><td>Image Studio V2.0 yazılımı</td><td>Li-COR Biiosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>İmidazol</td><td>Millipore Sigma</td><td>I5513</td><td></td></tr><tr><td>Immun-Blot PVDF Membran</td><td>Bio-Rad</td><td>1620177</td><td></td></tr><tr><td>LI-COR Odyssey Fc görüntüleyici</td><td>Li-COR Biiosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Liyofilizatör</td><td>Labconco</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metanol (&ge; %99,9)</td><td>Millipore Sigma</td><td>34860</td><td></td></tr><tr><td>Mikrosantrifüj</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikrodalga fırın</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop One/OneC Mikrovolume UV-Vis Spektrofotometre</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>&nbsp; ND-ONE-W</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE %4 ila %12, Bis-Tris, 1.0 mm</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>NP0321</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE LDS Numune Tamponu (4x)</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>NP0007</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE MES SDS Çalıştırma Tamponu (20x)</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>NP000202</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE Numune Azaltıcı Ajan (10x)</td><td>Life Technologies</td><td>NP0009</td><td></td></tr><tr><td>TBS'de Odyssey Engelleme Tamponu % 0.2 Tween 20</td><td>Li-COR Biosciences</td><td>927-50000</td><td></td></tr><tr><td>Orbital Shaker</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>içeren PBS-T (1x PBS,% 0.2 Tween 20, pH 7.4)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>PEG5K-CA8 Telodendrimer (özel sentez ürünü)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>pIVEX2.4d vektör</td><td>Roche Moleküler Teşhis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plazmid Maxi Kiti</td><td>Qiagen</td><td>12162</td><td></td></tr><tr><td>Birincil antikor: MAb40 (C. muridarum MOMP, de la Maza laboratuvarının değişken alanı 1'e (VD1) karşı monoklonal antikor)4</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Birincil antikor: MAbHIS, Penta-His antikoru</td><td>Qiagen</td><td>34660</td><td></td></tr><tr><td>Prob sonikatörü</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Qubit 3.0 Florometre</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>Q33216</td><td></td></tr><tr><td>Kübit Protein Testi Kit</td><td>Life Technologies</td><td>Q33212</td><td></td></tr><tr><td>Rainin Pipet uçları: LTS 1000 ve mikro; L</td><td>Rainin</td><td>17002428</td><td></td></tr><tr><td>Rainin Pipet uçları: LTS 20 ve mikro; L</td><td>Rainin</td><td>17002429</td><td></td></tr><tr><td>Rainin Pipet uçları: LTS 200 ve mikro; L</td><td>Rainin</td><td>17002426</td><td></td></tr><tr><td>Rainin Pipetleri</td><td>Rainin</td><td></td><td></td></tr><tr><td>İkincil antikor: IRDye 800CW keçi (poliklonal) anti-fare IgG (ağır ve hafif)</td><td>Li-COR Biosciences</td><td>926-32210</td><td></td></tr><tr><td>SeeBlue Plus2 Önceden Boyanmış Protein Standart</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>LC5925</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum klorür NaCl</td><td>Millipore Sigma</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum fosfat monobazik NaH2PO4</td><td>Millipore Sigma</td><td>&nbsp; S0751</td><td></td></tr><tr><td>Superdex 200, 5/150 GL sütunu</td><td>Cytiva</td><td>GE28-9909-45</td><td></td></tr><tr><td>Sentetik diasillenmiş lipoprotein-TLR2/6 FSL-1</td><td>İnvivojen</td> <td>ve nbsp; tlrl-fsl</td><td></td></tr><tr><td>SYPRO Yakut Protein Jel Leke</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>S12001</td><td></td></tr><tr><td>TWEEN 20</td><td>Millipore Sigma</td><td>P1379</td><td></td></tr><tr><td>UV ışık kaynağı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vacufuge Tezgah Üstü Santrifüj</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vortexer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>VWR 15 mL konik (89039-666)</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>VWR 50 mL konikler (89039-656)</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>XCell SureLock Mini-Cell (Yaşam Teknolojileri)</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>EI0001</td><td></td></tr></tbody></table>

aşı geliştirme için chlamydia muridarum'dan rekombinant majör dış membran proteinine hücresiz Ölçekli Üretim ve adjuvan İlavesi

Cell-Free Scaled Production and Adjuvant Addition to a Recombinant Major Outer Membrane Protein from Chlamydia muridarum for Vaccine Development

Alt birim aşılar, güvenlik, stabilite ve standart üretim açısından daha geleneksel inaktive edilmiş veya zayıflatılmış tam hücre kaynaklı aşılara göre avantajlar sunar. Etkili bir protein bazlı alt birim aşısı elde etmek için, protein antijeninin genellikle doğal benzeri bir konformasyon benimsemesi gerekir. Bu, özellikle zara bağlı proteinler olan patojen yüzey antijenleri için önemlidir. Hücresiz yöntemler, yaygın olarak nanodiskler olarak bilinen nanolipoprotein parçacıklarının (NLP'ler) birlikte çevrilmesi yoluyla doğru katlanmış fonksiyonel zar proteini üretmek için başarıyla kullanılmıştır. 
Bu strateji, lipide bağlı bir ortamda zar proteinlerinden oluşan alt birim aşıları üretmek için kullanılabilir. Bununla birlikte, hücresiz protein üretimi genellikle küçük ölçekle (<1 mL) sınırlıdır. Küçük ölçekli üretim çalışmalarında üretilen protein miktarı genellikle biyokimyasal ve biyofiziksel çalışmalar için yeterlidir. Bununla birlikte, hayvan modellerinde aşı çalışmaları için yeterli protein elde etmek için hücresiz sürecin ölçeklendirilmesi, optimize edilmesi ve dikkatli bir şekilde test edilmesi gerekir. Saflaştırma, adjuvan ilavesi ve liyofilizasyon gibi aşı üretiminde yer alan diğer süreçlerin paralel olarak optimize edilmesi gerekir. Bu makale, zara bağlı bir protein alt birim aşısını eksprese etmek, saflaştırmak ve formüle etmek için ölçeklendirilmiş bir protokolün geliştirilmesini bildirmektedir. 
Ölçeklendirilmiş hücresiz reaksiyonlar, formüle edilmiş nanolipoprotein partiküllerinin yüksek seviyeli üretimi için çoklu plazmit ekspresyon vektörleri, lipid seçimi ve adjuvan ilavesi kullanılırken plazmit konsantrasyonlarının ve oranlarının optimizasyonunu gerektirir. Yöntem burada bir klamidyal majör dış membran proteininin (MOMP) ekspresyonu ile gösterilmiştir, ancak diğer membran protein antijenlerine yaygın olarak uygulanabilir. Antijen etkinliği, burada gösterildiği gibi, antikor üretimini ölçmek için bağışıklama çalışmaları yoluyla in vivo olarak değerlendirilebilir.

1 mL hücresiz reaksiyondan MOMP-tNLP'nin Ni afinite saflaştırmasının SDS-PAGE profili Şekil 1B'de gösterilmektedir. Reaksiyon, hem MOMP hem de Δ49ApoA1 proteini için yüksek düzeyde ekspresyon ile sonuçlandı. Önceki sonuçlar, DMPC ve telodendrimer varlığında Δ49ApoA1'in hücresiz ekspresyonunun telodendrimer nanolipoprotein parçacıklarının (tNLP'ler) oluşumuna yol açtığını göstermiştir4. MOMP'nin Δ49ApoA1 ile birlikte elüksiyonu, MOMP'nin tNLP'lerle ilişkili olduğunu gösterdi, çünkü His-tag MOMP'de değil, yalnızca tNLP iskelesi Δ49ApoA1'de bulunur. MOMP, yalnızca membran proteinlerinin çözünmesini kolaylaştırdığı gösterilen tNLP'lerle kompleks oluşturma yoluyla ayrıştırılabilen, yüksek oranda çözünmeyen bir proteindir.
MOMP-tNLP'leri içeren elüsyon fraksiyonları bir araya getirildi ve toplam protein konsantrasyonu, floresan bazlı bir kantitasyon cihazı veya üreticinin protein kantitasyonu için talimatlarını izleyerek 280 nm'de absorbans yoluyla konsantrasyonu ölçen bir cihaz kullanılarak belirlendi. MOMP aşısının hassas dozlanmasına izin vermek için, saflaştırılmış komplekslerdeki MOMP konsantrasyonunun belirlenmesi de önemlidir. Jel dansitometrisine dayalı olarak MOMP'yi ölçmek için bir yöntem geliştirdik (Şekil 2), burada standart olarak bilinen konsantrasyona sahip saflaştırılmış bir rekombinant MOMP kullanıldı. Standart eğriyi oluşturarak ve bunu MOMP-tNLP örneğiyle karşılaştırarak, MOMP konsantrasyonu doğru bir şekilde ölçülebilir. Saflaştırılmış numunede MOMP konsantrasyonunun belirlenmesi, çeşitli ölçeklerde hücresiz reaksiyonlarda MOMP veriminin tahmin edilmesini sağlamıştır, bu da sonraki çalışmalara uygun reaksiyon kurulumunun planlanması için önemlidir (Tablo 3).
MOMP'nin güçlü bir bağışıklık tepkisi ortaya çıkarmak için oligomerler oluşturması gerekir11. MOMP'nin oligomerik durumunu test etmek için, MOMP-tNLP hem ısı hem de indirgeyici ajan ditiyotreitolün varlığında ve yokluğunda analiz edildi (DTT, 50 mM, Şekil 3A). MOMP'nin daha yüksek dereceli oligomerleri, numuneler ısı ve DTT ile muamele edilmediğinde SDS-PAGE aracılığıyla tanımlandı. Buna karşılık, DTT varlığında ısı ile muamele edilen numuneler, jel üzerinde MOMP ve Δ49ApoA1'e (sırasıyla yaklaşık 40 kDa ve 22 kDa) karşılık gelen iki farklı bant gösterdi. Bu sonuçlar, etkinliği için kritik olan MOMP'nin oligomer oluşumuna atfedilen jel bantlama modeline çok benzemektedir.
MOMP proteininin değişken alanındaki doğrusal epitopa karşı bir antikor olan MAb40 kullanılarak yapılan daha ileri western blot analizi, denatüre olmayan durumda MOMP proteini tarafından oligomer oluşumunu doğrulayan benzer bir bantlama modeli gösterdi (Şekil 3B). MOMP oligomer oluşumunu etkileyen önemli bir faktör, hücresiz reaksiyon kurulumu sırasında MOMP plazmidi ile Δ49ApoA1 plazmidi arasındaki orandır. Tablo 4 , plazmitlerin oranını ve sonuçta ortaya çıkan MOMP'nin tNLP'lere eklenme oranını listeler. Önceki çalışmalar, klamidyal MOMP ve diğer dış zar proteinlerinin öncelikle trimer olarak var olabileceğini göstermiştir12. Hücresiz reaksiyonda trimer oluşumunu en üst düzeye çıkarmak için, ekleme hızının NLP başına üç MOMP proteinine yakın olması arzu edilir, bu da ~25:1 MOMP-Δ49ApoA1 plazmit oranına karşılık gelir.
MOMP ve tNLP'nin varlığını tespit etmek için daha akıcı bir yöntem olarak bir nokta leke testi kullanıldı. MAb40 antikoru total MOMP'yi saptamak için kullanıldı. tNLP'nin Δ49ApoA1 iskelesindeki His-tag'ı hedefleyen MAbHIS antikoru, tNLP'nin varlığını değerlendirmek için kullanıldı. MAb40 ve MAbHIS antikorlarının birlikte sinyal vermesi MOMP-tNLP oluşumunu gösterdi. Kontrol reaksiyonu, yalnızca MAbHIS'ten pozitif bir sinyal gösteren boş tNLP üretti (Şekil 3C). Hücresiz reaksiyonda üretilen MOMP-tNLP'lerin immünojenisitesini test etmek için, MOMP-tNLP'yi CpG + FSL-1 ile adjuvanlaştırdık ve yukarıda tarif edildiği gibi bir prime-boost rejiminde farelere intramüsküler olarak (im) enjekte ettik. Aşılanmış farelerden serumlar toplandı ve MOMP'ye özgü IgG antikoru western blot testi kullanılarak ölçüldü (Şekil 4). Adjuvanlı MOMP-tNLP enjekte edilen farelerden elde edilen serumlar, MOMP-tNLP'nin in vivo bir bağışıklık tepkisi ortaya çıkarabileceğini gösteren güçlü MOMP bağlanması gösterdi.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63028/63028fig01.jpg"> Şekil 1: MOMP-tNLP'nin ekspresyonu ve saflaştırılması . (A) GFP plazmidi olmayan lizatlara (solda) kıyasla UV ışık kaynağı altında (sağda) yanan GFP kontrollerini başarıyla ifade eden hücresiz bir reaksiyonun küçük alikotlarını içeren tüplerin görüntüsü. (B) SDS-PAGE'den sonra SYPRO Ruby ile boyanmış Protein Jeli, MOMP-tNLP'nin saflaştırma profilini gösterir. MOMP 40 kDa'da ve 49ApoA1 22 kDa'da göç eder. Kısaltmalar: MOMP = klamidyal majör dış zar proteini; tNLP = telodendrimer nanolipoprotein partikülü; MOMP-tNLP = MOMP-tNLP kompleksi; GFP = yeşil floresan protein kodlayan plazmit; MW = Moleküler ağırlık belirteci; T = toplam hücresiz lizat; FT = akış; R1-R3 = hücresiz reaksiyon alikotları; W1, W6 = 1 ve 6'yı yıkar; E1-E7 = 1'den 7'ye kadar olan Aşamalar; Δ49ApoA1 = Etiketli fare ApoA1 türevi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63028/63028fig01large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63028/63028fig02.jpg"> Şekil 2: MOMP-tNLP örneklerinde MOMP miktarının belirlenmesi . (A) MOMP'nin miktar tayini için SYPRO Ruby ile boyanmış SDS-PAGE jeli. Konsantrasyonu bilinen rekombinant MOMP, standart eğriyi elde etmek için jel üzerine yüklendi. Her şerit 0.1 μg, 0.5 μg, 1.0 μg, 2.0 μg ve 4.0 μg MOMP içeriyordu. Miktarı belirlenmekte olan MOMP-tNLP numuneleri aynı jel üzerine yüklendi. (B) MOMP konsantrasyon standart eğrisi dansitometri kullanılarak oluşturulmuştur. Normalleştirilmiş bant yoğunluğu ve MOMP miktarı ile ilgili bir denklem kuruldu. Denklem, bilinmeyen örneklerdeki MOMP içeriğini hesaplamak için kullanıldı. Kısaltmalar: MOMP = klamidyal majör dış zar proteini; tNLP = telodendrimer nanolipoprotein partikülü; MOMP-tNLP = MOMP-tNLP kompleksi; SDS-PAGE = sodyum dodesilsülfat poliakrilamid jel elektroforezi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63028/63028fig02large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63028/63028fig03.jpg"> Şekil 3: Hücresiz üretilen MOMP-tNLP, MOMP'nin daha yüksek dereceli yapılar oluşturmasına izin verir. (A) SYPRO Ruby ile boyanmış, ısı ve indirgeyici ajan DTT ile muamele edilmiş ve edilmemiş MOMP-tNLP'nin SDS-PAGE jeli. Isı ve DTT ile, MOMP öncelikle ~ 40 kDa'da bir monomer bandı olarak ortaya çıktı, çünkü ısı ve indirgeyici ajan yüksek dereceli MOMP yapısının çoğunu bozdu. Isı ve DTT'nin yokluğunda, MOMP oligomer konformasyonunu gösteren daha yüksek dereceli bantlar mevcuttu. (B) MOMP-tNLP ve MOMP'nin tek başına, işlenmemiş ve ısı ve DTT ile işlenmiş Batı lekesi. Transferden sonra, membran MAb40 (1:1.000 seyreltme) ile incelendi. SYPRO Yakut lekeli jele benzer bir bantlama modeli gözlemlendi ve daha yüksek moleküler ağırlıklı bantların gerçekten MOMP oligomerleri olduğunu doğruladı. (C) MAb40 ve MAbHIS ile incelenen MOMP-tNLP ve boş tNLP örneklerinin (iki kopya halinde) nokta lekesi. Kısaltmalar: MOMP = klamidyal majör dış zar proteini; tNLP = telodendrimer nanolipoprotein partikülü; MOMP-tNLP = MOMP-tNLP kompleksi; SDS-PAGE = sodyum dodesilsülfat poliakrilamid jel elektroforezi; DTT = ditiyotreitol. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63028/63028fig03large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63028/63028fig04.jpg"> Şekil 4: Hücresiz üretilen MOMP-tNLP oldukça immünojeniktir. Aşılanmış farelerden alınan serum, güçlü anti-MOMP IgG sinyali gösterdi. Fareleri immünlemek için CpG + FSL-1 ile adjuvanlı MOMP-tNLP kullanıldı. Altı aşılanmış fareden alınan serumlar toplandı, bir araya getirildi ve MOMP-tNLP'yi araştırmak için kullanıldı. Serum, batı lekeleme testinde MOMP'ye bağlanabildi ve güçlü IgG sinyali gösterdi (solda). Birincil antikor olarak MAb40 kullanan western blot (sağda) benzer bantlar gösterdi, bu da serumun MOMP'ye özgü IgG içerdiğini gösterdi. Kısaltmalar: MOMP = klamidyal majör dış zar proteini; tNLP = telodendrimer nanolipoprotein partikülü; MOMP-tNLP = MOMP-tNLP kompleksi; CpG = kolesterol modifiye CpG adjuvanı; FSL-1 = lipofilik adjuvan. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63028/63028fig04large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Arabellek adı</td>
			<td>NaH2PO4</td>
			<td>NaCl (Sıvı Değeri)</td>
			<td>İmidazol</td>
			<td>Ph</td>
		</tr><tr><td>Bağlayıcı Tampon</td>
			<td>50 milyon</td>
			<td>300 milyon</td>
			<td>10 milyon</td>
			<td>8.0</td>
		</tr><tr><td>Yıkama Tamponu</td>
			<td>50 milyon</td>
			<td>300 milyon</td>
			<td>20 milyon</td>
			<td>8.0</td>
		</tr><tr><td>Elüsyon Tamponu 1</td>
			<td>50 milyon</td>
			<td>300 milyon</td>
			<td>250 milyon</td>
			<td>8.0</td>
		</tr><tr><td>Elüsyon Tamponu 2</td>
			<td>50 milyon</td>
			<td>300 milyon</td>
			<td>500 milyon</td>
			<td>8.0</td>
		</tr></tbody></table>Tablo 1: Nikel afinite saflaştırması için gerekli tamponların listesi, her bir bileşenin konsantrasyonlarını ve pH'ı detaylandırır.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Çalışma zamanı</td>
			<td>50 dk</td>
		</tr><tr><td>Akış hızı</td>
			<td>6.0 mL/dk</td>
		</tr><tr><td>Degrade türü</td>
			<td>İkili</td>
		</tr><tr><td>Tampon A</td>
			<td>H20 içinde 10 mM TEAA</td>
		</tr><tr><td>Tampon B</td>
			<td>MeCN (İngilizce)</td>
		</tr><tr><td>Gradyan</td>
			<td>% Tampon B</td>
		</tr><tr><td>0 dk</td>
			<td>25%</td>
		</tr><tr><td>30 dk</td>
			<td>60%</td>
		</tr><tr><td>30.5 dk</td>
			<td>100%</td>
		</tr><tr><td>40 dk</td>
			<td>100%</td>
		</tr><tr><td>40.5 dk</td>
			<td>25%</td>
		</tr><tr><td>50 dk</td>
			<td>25%</td>
		</tr></tbody></table>Tablo 2: Kolesterolü modifiye edilmiş CpG'nin ters faz HPLC saflaştırması için koşullar. Kısaltmalar: TEAA = trietilamonyum asetat; MeCN = asetonitril.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Hücresiz lizat (mL)</td>
			<td>DMPC lipid (mg)</td>
			<td>Telodendrimer (mg)</td>
			<td>MOMP plazmidi (μg)</td>
			<td>Saflaştırılmış MOMP verimi (mg)</td>
		</tr><tr><td>1</td>
			<td>4</td>
			<td>0.4</td>
			<td>15</td>
			<td>0.5</td>
		</tr><tr><td>2</td>
			<td>8</td>
			<td>0.8</td>
			<td>30</td>
			<td>1.1</td>
		</tr><tr><td>3</td>
			<td>12</td>
			<td>1.2</td>
			<td>45</td>
			<td>1.6</td>
		</tr><tr><td>5</td>
			<td>20</td>
			<td>2</td>
			<td>75</td>
			<td>2.7</td>
		</tr></tbody></table>Tablo 3: Farklı ölçeklerde hücresiz reaksiyonlar için kullanılan lipitlerin, telodendrimerlerin ve plazmitlerin miktarı ve bunlara karşılık gelen verimler. Kısaltmalar: MOMP = klamidyal majör dış zar proteini; DMPC = 1,2-dimyristoyl-sn-glisero-3-fosfokolin.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td colspan="2">Plazmit giriş oranları, MOMP : Δ49ApoA1</td>
			<td>1:1</td>
			<td>5:1</td>
			<td>10:1</td>
			<td>25:1</td>
			<td>50:1</td>
			<td>100:1</td>
		</tr><tr><td colspan="2">Üretilen protein miktarının oranları, MOMP : Δ49ApoA1</td>
			<td>0.02</td>
			<td>0.32</td>
			<td>0.64</td>
			<td>3.46</td>
			<td>6.55</td>
			<td>20.04</td>
		</tr><tr><td colspan="2">tNLP başına tahmini MOMP ekleme sayısı</td>
			<td>0.03</td>
			<td>0.37</td>
			<td>0.75</td>
			<td>4.04</td>
			<td>7.65</td>
			<td>23.39</td>
		</tr></tbody></table>Tablo 4: Hücresiz bir reaksiyondaki plazmit oranları ve ortaya çıkan MOMP ekleme oranları. Kısaltmalar: MOMP = klamidyal majör dış zar proteini; tNLP = telodendrimer nanolipoprotein partikülü; Δ49ApoA1 = Etiketli fare ApoA1 türevi.

Bu protokol, alt birim aşılarda antijen olarak kullanılabilen nanodiskte desteklenen zar proteinleri üretmek için ticari, hücresiz protein ekspresyon kitlerinin kullanılmasını açıklar.

Aşı Geliştirme için Chlamydia muridarum'dan Rekombinant Majör Dış Membran Proteinine Hücresiz Ölçekli Üretim ve Adjuvan İlavesi

Subunit vaccines offer advantages over more traditional inactivated or attenuated whole-cell-derived vaccines in safety, stability, and standard ...

Birçok aday alt birim aşı antijeni membran proteinleridir. Tarihsel olarak, bunların yeterli miktarlarda üretilmesi ve saflaştırılması zor olmuştur. Bu teknikle, doğal benzeri bir doğrulama sağlamaya yardımcı olmak için bir lipit zarı içine gömülü ilgilenilen antijenleri oluşturabiliyoruz.Bu işlem aynı zamanda ilgilenilen adjuvanlarla formülasyonu da kolaylaştırır. Hücresiz ekspresyon, doğal etiketsiz yapılarında ilgilenilen proteinlerin hızlı bir şekilde üretilmesini sağlar. Bu teknik aynı zamanda ölçeklenebilir ve bu süreci kullanarak aşı formülasyonları geliştirmek için ticari şirketlerle zaten çalışıyoruz.Burada bir klamidya antijeni için süreci gösteriyoruz, ancak süreç, membran proteinleri olup olmadıklarına bakılmaksızın ilgilenilen antijenleri üretmek için kolayca uyarlanabilir. Bu süreç hem patojen hem de kanser aşısı geliştirme için geçerli olabilir. Başlamak için, hücresiz bir yöntem kullanarak MOMP-tNLP'leri hazırlayın.Reaksiyonu ayarlamadan iki saat önce sulandırma tamponunu hücresiz protein ekspresyon kitinden çözün ve tampona EDTA içermeyen proteaz inhibitörü ekleyin. Beş adet bir mililitrelik reaksiyon çalıştırmak için tasarlanmış bir kit kullanın. Her bir mililitrelik reaksiyon için, E.coli lizat şişesine 525 mikrolitre sulandırma tamponu ekleyin ve çözünmesi için yuvarlayın.Katkı maddesini içeren reaksiyon şişesine 250 mikrolitre sulandırma tamponu ekleyin ve yuvarlayarak çözün. Ardından, reaksiyon besleme şişesine 8.1 mililitre sulandırma tamponu ekleyin ve çözünmesi için yuvarlayın. Bir şişe amino asit karışımına, çözmek için üç mililitre sulandırma tamponu ekleyin.Başka bir metiyonin şişesine 1.8 mililitre sulandırma tamponu ekleyin, çözün ve buz üzerinde saklayın. E.coli lizat şişesine 225 mikrolitre sulandırılmış karışım, 270 mikrolitre metiyoninsiz sulandırılmış amino asit karışımı ve 30 mikrolitre sulandırılmış metiyonin ekleyin. Ayrıca, karışıma 400 mikrolitre DMPC/telodendrimer karışımı, 15 mikrogram MOMP plazmid ve 0.6 mikrogram delta-49ApoA1 ekleyin ve karıştırın.1.5 mililitrelik bir tüpte toplam çözeltinin 20 mikrolitresini GFP eksprese eden bir kontrol reaksiyonu için. Metiyonin içermeyen sulandırılmış amino asit karışımından 2.65 mililitre ve 300 mikrolitre sulandırılmış metiyonin ekleyerek bir besleme çözeltisi hazırlayın. Reaksiyon çözeltisinin bir mililitresini hücresiz reaksiyon kitindeki iç reaksiyon odasına aktarın ve kapatın.Reaksiyon kabının dış haznesini 10 mililitre besleme çözeltisi ile doldurun ve kapatın. Reaksiyon karışımının 20 mikrolitrelik alikotlarına 0.5 mikrolitre GFP kontrol plazmidi ekleyin. Reaksiyonu 30 santigrat derecede 18 saat boyunca dakikada 300 devirde bir çalkalayıcıya koyun.GFP sentezine bağlı floresan için 15 dakika sonra reaksiyonu bir UV ışığı altında izleyin. Delta-49ApoA1 proteini üzerindeki HIS-etiketini kullanarak hareketsizleştirilmiş nikel afinite kromatografisi ile MOMP-tNLP nanopartikül kompleksini hücresiz reaksiyon karışımından saflaştırın. HIS-tag saflaştırma reçinesinin% 50 bulamacının bir mililitresini 10 mililitrelik tek kullanımlık bir kromatografi kolonuna aktarın ve dengelemek için üç mililitre bağlayıcı tampon ekleyin.Daha sonra tamponu boşaltın ve reçineye 250 mikrolitre bağlayıcı tampon ekleyin. SDS-PAGE analizi için 20 mikrolitre hücresiz reaksiyon karışımını ekstrakte edin. Kalan hücresiz reaksiyon karışımını dengelenmiş reçine ile ekleyin ve dört santigrat derecede bir saat boyunca bir laboratuvar külbütörü üzerinde inkübe edin.Kolon kapağını çıkarın ve 500 mikrolitre bağlayıcı tamponla yıkayın. Yıkama sıvısını kolona ekleyin ve SDS-PAGE analizi için akışı toplayın. Kolonu bir mililitre yıkama tamponu ile 20 milimolar imidazol ile altı kez yıkayın ve fraksiyonları toplayın.İkinci kez yıkarken, reçineyi çalkalamak için bir mililitrelik bir pipet kullanın. MOMP-tNLP'leri, 250 milimolar imidazol içeren altı adet 300 mikrolitrelik elüsyon tamponu I fraksiyonunda ve 500 milimolar imidazol içeren 300 mikrolitre elüsyon tamponu II ile son bir elüsyonda elute edin. İkinci elüsyonda, bir mililitrelik bir pipet kullanarak yukarı ve aşağı pipetleyerek reçineyi kuvvetlice çalkalayın.Görüntüleri 600 nanometrede yakalamak için bir jel görüntüleyici kullanın. Daha sonra, bir protein standardı kullanarak SDS-PAGE analizi yoluyla nanopartiküllerdeki farklı proteinlerin miktarını ölçün. MOMP bantlarının yoğunluklarını kullanarak standart bir eğri çizin.Ardından, nanopartiküllerin MOMP bileşenini standart ile belirleyin. Numuneleri SDS-PAGE ile çözün ve Western blot analizi için ticari bir kuru kurutma sistemi kullanarak jel yığınlarını aktarın. Lekeleri yığından çıkarın ve gece boyunca dört santigrat derecede dört santigrat derecede% 0.2 TWEEN 20 ve mililitre başına 0.5 mikrogram MAb40 veya delta-49ApoA1 proteininden HIS-etiketine karşı yönlendirilmiş mililitre başına 0.2 mikrogram MAbHIS antiHIS-tag antikoru içeren bir bloke edici tamponda inkübe edin.Her lekeyi PBST ile yıkama başına beş dakika boyunca üç kez yıkayın. Lekeleri, 1:10.000'lik bir seyreltmede bir florofora konjuge edilmiş ikincil antikor içeren bir bloke edici tampon içinde bir saat inkübe edin. Yıkamaları PBST ile tekrarlayın ve son yıkamadan sonra bir floresan görüntüleyici kullanarak görüntüyü yakalayın.Bir nokta leke aparatı kullanarak, üç mikrogram MOMP-tNLP'yi ve boş tNLP'yi kurulayın. Batı lekeleme için aynı yöntemi kullanarak lekeleri geliştirin ve engelleyin. Karışık çözeltiyi kuru buz üzerinde dondurun ve bir liyofilizatör kullanarak gece boyunca liyofilize edin.Kurutulmuş formülasyonları eksi 20 santigrat derecede saklayın. Gerektiğinde, liyofilize tNLP'leri endotoksin içermeyen suyla sulandırın ve çözünmesi ve yeniden sulandırılması için yuvarlayın. Çözeltiyi PBS ile diyalize edin ve trehalozu 3.5 kilodaltonluk bir diyaliz membranı ile çıkarın.Adjuvanı eklemeden önce nanopartikül çözeltisini bir vakum yoğunlaştırıcıda santrifüjleyin. Tam kurumayı önlemek için numune hacmini 20 ila 30 dakika sonra izleyin. Bir biyogüvenlik kabininde, adjuvanı steril koşullar altında ekleyin.Analitik boyut dışlama kromatografisini kullanarak, başarılı bir birleştirme için formülasyonu analiz edin. Adjuvanlı MOMP-tNLP'leri ve boş tNLP'yi dört santigrat derecede 14 güne kadar saklayın. Boyut dışlama kromatografisi ile tNLP formülasyonunun stabilitesini analiz edin.MOMP-tNLP'nin SDS-PAGE analizi, hücresiz reaksiyon karışımının hem MOMP hem de delta-49ApoA1 proteinleri için yüksek ekspresyon seviyelerine sahip olduğunu gösteren nikel afinite kromatografisi ile gerçekleştirildi. Jel dansitometrisi kullanılarak, MOMP konsantrasyonu, standart olarak bilinen bir konsantrasyona sahip saflaştırılmış bir rekombinant MOMP kullanılarak ölçüldü. Oligomer oluşumunu belirlemek için, SDS-PAGE MOMP ve MOMP-tNLP, MOMP ve delta-49ApoA1 için farklı bantlar gösteren ısı ve DTT ile muamele edildi.MOMP proteinine karşı bir antikor MAb40 kullanılarak Western blot analizi kullanıldı ve bu, denatüre olmayan durumda MOMP proteini tarafından oligomer oluşumunu doğrulayan bir bantlama paterni ortaya çıkardı. MAb40 ve MAbHIS antikorlarının varlığında, MOMP-tNLP oluşumunu gösteren bir nokta leke testi yapıldı. Bununla birlikte, boş tNLP, MAbHIS için pozitif bir sinyal gösterdi.Adjuvanlı MOMP-tNLP enjekte edilen aşılanmış farelerden alınan serumlar, güçlü MOMP bağlanması gösterdi ve MOMP-tNLP'nin bir bağışıklık tepkisi ortaya çıkarabileceğini gösterdi. Bu protokol DNA'dan protein ürettiğinden, reaksiyonun DNaz, RNaz ve ayrıca yabancı DNA ve RNA ile kontamine olmasını önlemek önemlidir. Reaksiyonlarda kullanılan herhangi bir malzeme veya reaktif bu tür moleküllerden arındırılmış olmalıdır.Adjuvanların ekspresyonu, saflaştırılması ve eklenmesinden sonra, bu aşı adayları, immün aktivasyon belirteçlerini değerlendirmek veya bir meydan okuma sırasında korumayı değerlendirmek için ilgilenilen patojenler için uygun hayvan modellerinde değerlendirilebilir. Klamidya için, ana dış zar proteini veya MOMP, uzun yıllardır alt birim aşılar için önde gelen bir aday antijen olarak kabul edilmiştir, ancak aşı uygulaması için gerekli ölçeklerde üretilmesi zor olmuştur. Bu zar proteininin hücresiz birlikte ekspresyonu, bu proteini fareler gibi hayvan modellerinde değerlendirmeye doğru hareket ettirmeye başlamanın ve sonunda insan testine girmenin uygun bir yoludur.

cell-free-scaled-production-adjuvant-addition-to-recombinant-major

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Kaynak: Gilmore, S.F., ve diğerleri. Aşı Geliştirme için Chlamydia muridarum'dan Rekombinant Majör Dış Membran Proteinine Hücresiz Ölçekli Üretim ve Adjuvan İlavesi. J. Vis. Uzm. (2022)Bu video, çift bölmeli bir sistem kullanılarak nanodisk ile stabilize edilmiş membran protein antijenlerinin hücresiz sentezini göstermektedir. Cihaz, verimli protein sentezi, uygun katlama ve nanodisklere stabil entegrasyon için en uygun koşulları korur.

Hücresiz Bir Sistem Kullanılarak Nanodisk ile Stabilize Edilmiş Membran Protein Antijenlerinin Sentezi

Kaynak: Gilmore, S. F. ve diğerleri. Aşı Geliştirme için Chlamydia muridarum'dan Rekombinant Majör Dış Membran Proteinine Hücresiz Ölçekli Üretim ve Adjuvan İlavesi. J. Vis. Uzm. (2022)Bu video, nanopartikül bazlı aşı kompleksleri içindeki ana dış zar proteininin (MOMP) yapısal bütünlüğünü değerlendirmek için Western blotlamanın kullanımını göstermektedir. Protein transferi, antikor etiketleme ve floresan görüntüleme ile ilgili temel adımları özetlemektedir.

Bakteriyel Aşı Antijeninin Yapısal Bütünlüğünü Değerlendirmek için Western Blot

Bu video, bir murin modelinde deneysel otoimmün ensefalomiyeliti (EAE) indüklemek için bir antijen adjuvan emülsiyonu oluşturmak için etkili bir homojenizasyon tekniğini göstermektedir. Emülsiyon, inaktive edilmiş bir patojenik bakteri içeren sürekli bir yağ fazı ile çevrili su fazında bir otoantijen - miyelin oligodendrosit glikoproteini (MOG) içerir. Emülsiyon, uzun süreli bir bağışıklık tepkisi için sürekli bir antijen salınımı sağlar.

Otoimmün ensefalomiyeliti indüklemek için bir antijen adjuvan emülsiyonunun hazırlanması

Bu videoda, çok değerlikli dış zar vezikülü (OMV) aşıları oluşturmak için bir yöntem gösterilmektedir. Memeli hücreleri, bir SpyTag ve bir polihistidin etiketine kaynaşmış viral antijenleri eksprese etmek ve salgılamak için transfekte edilir. Bu antijenler daha sonra bir nikel-nitrilotriasetik asit (Ni-NTA) afinite sütunu kullanılarak saflaştırılır. Saflaştırılmış antijen, yüzeye bağlı SpyCatcher (SC) proteinini eksprese eden dış zar vezikülleri ile karıştırılır. Çoklu antijenler,...

Çok Değerlikli Gösteren Bir Dış Membran Vezikül Aşısı Oluşturulması

Burada, bir proof-of-prensibi iki değerlikli adenovirüs tip 5 (Ad5) vektörü oluşturmak için bir protokol mevcut Ad5 / H5-HVR1-Kwas-HVR5-His 6 Antijen Kapsid-Ortaklık stratejisi kullanılarak. Bu vektör nitel uygunluk arzettiği gösterilmiştir, yetenek dahil antijenlere Ad5-pozitif in vitro sera'yı ve antijenikliği yanı sıra immünojenitesini kaçmak için.

Adenovirüs Serotipinin 5-vektörlü Aşı Yaklaşımlar Geliştirme Antijen Kapsid-Ortaklık Stratejisi kullanmak

Aşıların nasıl çalıştığı hakkında genel bir bilgi eksikliği var. Burada, dendritik hücrelere ve T hücresi bağışıklığına özel olarak odaklanarak, aşılara karşı erken konak bağışıklık tepkileri hakkında fikir edinmek için ters genetik ve kemik iliği kimerik farelerin birlikte kullanılmasını öneriyoruz.

Kimerik fare modellerinde Rekombinant Grip aşıların burun içinde yoluyla mukozal bağışıklık Okumak

Burada, bakulovirüs ya da memeli sentezleme sistemleri ve ultrasantrifügasyon arıtma kullanarak virüs benzeri partiküller sentezlenmesi için bir protokol mevcut. Bu son derece özelleştirilebilir yaklaşım, güvenli ve esnek bir şekilde aşı hedefleri olarak viral antijenleri tanımlamak için kullanılır.

İfade ve Aşılama için Virüs benzeri Parçacıkların saflaştırılması

Aşı geliştirmede kullanılmak üzere kendi kendine biraraya gelen protein nano taneciklerinin (SAPN' ler) saflaştırılmasını, yeniden katlanması ve karakterizasyonu nun tanımlanmasını açıklayan ayrıntılı bir yöntem burada verilmiştir.

Trimerik Epitop Sunumu Gerektiren Aşılar için E. coli-expressed Self-Assembling Protein Nano tanecikleri Üretimi

Multipl sklerozun bir hayvan modeli olan deneysel otoimmün ensefalomiyeliti indüklemek için, fareler bir otoantijen ve Freund'un adjuvanını tamamlayan bir yağda su emülsiyonu ile bağışıklanır. Bu emülsiyonların hazırlanması için çeşitli protokoller mevcut olsa da, emülsiyon hazırlığı için hızlı, basit ve standartlaştırılmış bir homojenizasyon protokolü burada sunulmaktadır.

Deneysel Otoimmün Ensefalomiyeliti İndüklemek için Antijen/Adjuvan Emülsiyonlar Hazırlamak için Hızlı, Basit ve Standartlaştırılmış Bir Homojenizasyon Yöntemi

Bu protokol, Mycobacterium smegmatis'in (Msm) aksenik kültürlerinden doğal mikobakteriyel hücre dışı veziküllerin (mEV'ler) zenginleştirilmesini ve mCherry (kırmızı floresan raportör) içeren rekombinant MsmEV'lerin nasıl tasarlanabileceğini ve zenginleştirilebileceğini detaylandırır. Son olarak, Mycobacterium tuberculosis'in EsxA proteinini içeren MsmEV'lerin zenginleştirilmesiyle yeni yaklaşımı doğrulamaktadır.

Mikobakterilerin Doğal ve Rekombinant Hücre Dışı Veziküllerinin Zenginleştirilmesi

Bu protokol, yeni bir nanoemülsiyon adjuvan aşısının fiziksel özelliklerini, immün yanıtını ve in vivo koruyucu etkisini hazırlar ve değerlendirir.

Bir nanoemülsiyon adjuvan aşısının metisiline dirençli Staphylococcus aureus (MRSA) Enfeksiyonuna Karşı İmmün Yanıtının Değerlendirilmesi

Keşfedin hücresiz protein sentezi ile Chlamydia muridarum MOMP antijeninin ölçeklenebilir üretimini ve adjuvan formülasyonunu. Bu yöntem, aşı geliştirme için yerel benzeri konformasyonda membran proteinleri sunar.

Aşı Geliştirme için Chlamydia muridarum'dan Rekombinant Majör Dış Membran Proteinine Hücresiz Ölçekli Üretim ve Adjuvan İlavesi

Daha fazla video keşfet