Name: Mesure Life Span réplicative dans la levure bourgeonnante (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-06-25T00:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 41 s
Description: Apprenez à mesurer la durée de vie réplicative des cellules mères de levure Saccharomyces cerevisiae. Cette méthode permet d'étudier les gènes influençant le vieillissement cellulaire et les mécanismes biologiques du vieillissement.

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Ce travail a été soutenu par une subvention pour MK et BKK de la Fondation Médicale Ellison. MK est une Ellison Medical Foundation New Scholar liés au vieillissement. Nous tenons à remercier pour l&#39;aide Soumya Kotireddy pendant le tournage.

Partie 1: Préparer des souches et des plaques pour l&#39;analyse de durée de vie réplicative Cette section décrit la préparation des plaques solides YEPD pour une utilisation dans l&#39;expérience durée de vie réplicative et la préparation des cellules de levure pour l&#39;analyse de la durée de vie. <ol><li> En utilisant une technique stérile échéant, de préparer des boîtes de gélose YEPD (extrait de levure 1%, 2% de bacto-peptone, 2% d&#39;agar, 2% de glucose) qui sera utilisé pour les cellules de levure de culture et de l&#39;analyse couvrent réplicative vie. Vous devez préparer au moins 2 plaques pour toutes les 4-5 souches à analyser dans l&#39;expérience la durée de vie. Les plaques doivent être préparés au moins 2 jours avant l&#39;expérience la durée de vie et laisser sécher avant de commencer le dosage durée de vie. Si l&#39;expérience ne sera entrepris dans les 4-5 jours de verser les assiettes, ils devraient être placés dans un incubateur réfrigéré et enveloppé dans du parafilm ou de plastique pour empêcher la dessication. </li><li> Enlever les souches de levure de stocks congelés et à balayage pour les colonies isolées sur gélose YEPD. Jusqu&#39;à 6 souches peuvent être facilement rayé sur la même plaque YEPD en partitionnant la plaque dans de taille égale en forme de tarte coins. </li><li> Incuber les cellules à 30 ° C pendant 2 jours. </li><li> Retirer les cellules de l&#39;incubateur et les cellules patch depuis une seule colonie sur une plaque fraîche YEPD. Deux patchs à partir de deux colonies différentes devraient être générés pour chaque souche. A cette époque, les souches à analyser doit être codé pour assurer l&#39;expérimentation durée de vie réplicative est réalisée «en aveugle», où le dissecteurs ne sais pas l&#39;identité des souches individuelles. </li><li> Incuber les patché, les cellules codées à 30 ° C jusqu&#39;au lendemain soir. </li><li> Retirer les cellules et les cellules des plaques légèrement de chaque souche codé pour frais plaques YEPD, qui servira les plaques expérimentales utilisées pour l&#39;analyse couvrent réplicative vie. Les cellules doivent être patché le long d&#39;une ligne verticale sur le côté gauche de la plaque YEPD (figure 1). Environ 3-5 taches par plaque est optimale, en supposant que l&#39;analyse durée de vie réplicative le 20 cellules de chaque patch. Il n&#39;est pas nécessaire (ni souhaitable) de transférer un grand nombre de cellules de la plaque fraîche YEPD, car cela entraînerait des cellules à croître abondamment pendant la nuit d&#39;incubation, qui peut limiter leur durée de vie réplicative ultérieures. </li><li> Incuber les plaques fraîchement patché nuit sur la paillasse. </li></ol> Partie 2: Position des cellules pour l&#39;analyse de durée de vie réplicative. Dans cette section, nous décrivons comment positionner les cellules de levure sur la plaque et la manière d&#39;obtenir des cellules filles vierges pour l&#39;analyse de durée de vie réplicative. De ce point, toutes les plaques doivent être parafilmed, sauf lorsque l&#39;objet de dissection, afin d&#39;éviter la dessiccation. <ol><li> En utilisant un microscope équipé d&#39;un appareil de microdissection adapté à la levure, le transfert d&#39;environ 50 cellules de la première souche patché à une position sur la plaque distale sur les cellules corrigées. Si votre platine de microscope est classé, ces gradations peuvent être utilisés pour assurer les cellules vont être facile à trouver pendant les itérations ultérieures. Sur le Axioscope Zeiss 40, les cellules de la première souche patché peut être placé aux coordonnées 90 x 10 et disposés verticalement à partir de là. </li><li> Nettoyez l&#39;aiguille des cellules par des reprises de toucher la surface d&#39;agar, puis créer un trou dans la gélose en forçant l&#39;aiguille à travers la surface de la gélose. Ce trou servira de repère pour vous orienter sur la plaque au cours des itérations suivantes de la dissection et l&#39;enlèvement cellule fille. Soyez prudent de ne pas obtenir des cellules de levure dans le trou, ou ils vont grandir et de former une colonie. </li><li> Directement au-dessus du trou, aligner verticalement des cellules de levure individuelles en 20 positions espacées uniformément, avec des diamètres d&#39;aiguilles 1-3 (~ 100 pM) entre chaque position de la cellule (figure 1). Chaque petit nombre de cellules, placer deux cellules adjacentes les unes aux autres dans la même position dans la ligne plutôt qu&#39;un seul. Cela permet de redondance lors de la sélection cellule fille vierge, si l&#39;une des cellules transférées ne parvient pas à se diviser. </li><li> Entre le 10 ème et 11 ème positions dans la ligne, créer une série horizontale de 7-8 trous dans la gélose. Cela servira comme un marqueur de vous orienter sur la plaque au cours des itérations suivantes de la dissection et l&#39;enlèvement cellule fille. Soyez prudent de ne pas obtenir des cellules de levure dans les trous, ou ils vont grandir et de former une colonie. </li><li> Répétez les étapes 2.1 à 2.4 pour chaque patch sur la plaque, en continuant à cellules gamme verticalement le long du même axe. Pour l&#39;étape 2.2, le nombre de trous créés doivent correspondre au numéro de patch (un trou pour le premier patch, deux trous pour le second, etc.) </li><li> Une fois que les cellules ont été déployées pour chaque patch, la plaque de parafilm et incuber à 30 ° C pendant environ 2 heures. </li><li> Répétez les étapes 2.1 à 2.6 pour chaque plaque à l&#39;expérience. </li></ol> Partie 3: Obtenir des cellules filles vierges pour l&#39;analyse de la durée de vie Dans cette section, nous initions à l&#39;analyse la durée de vie en assurant que chaque cellule commence comme une fille viergecellulaire. <ol><li> Retirez les plaques de l&#39;incubateur et vérifier que la plupart des cellules disposées ont subi une division cellulaire. Si un délai supplémentaire est nécessaire pour permettre la division cellulaire d&#39;être terminée, retourner la plaque à l&#39;incubateur. </li><li> En commençant par la première cellule vêtu, utiliser l&#39;aiguille pour détacher les cellules filles de la cellule mère en plaçant délicatement l&#39;aiguille sur le dessus des cellules ci-joint. Il est parfois utile d&#39;exploiter le côté de la base de microscope pendant que l&#39;aiguille est au repos sur les cellules. </li><li> Placez la cellule fille détachée dans la ligne verticale, en remplacement de la cellule mère et de toute les cellules filles supplémentaires et en les déplaçant temporairement de côté. </li><li> Répétez l&#39;étape 3.2 et 3.3 pour chacune des cellules disposées. Si une cellule ne parvient pas à se diviser, de prendre une cellule fille de l&#39;une des cellules redondantes positionné à l&#39;étape 2.3. Lorsque vous avez terminé, vous devriez avoir 20 cellules filles pour chaque patch alignés verticalement sur la plaque de la durée de vie. </li><li> Collecter toutes les cellules de la mère et cellules filles supplémentaires dans un tas et de les transférer à une zone proche de la correctifs («le cimetière»). Il est important de garder les cellules indésirables loin de l&#39;analyse des cellules subissant une durée de vie pour prévenir la formation de microcolonies et l&#39;épuisement des nutriments locaux. </li><li> Parafilm la plaque et incuber à 30 ° C pendant environ 2 heures. </li><li> Répétez les étapes 03.02 à 03.06 pour chaque plaque à l&#39;expérience. </li></ol> Partie 4: Mesure de la capacité réplicative des cellules individuelles <ol><li> Préparer la vie des données couvrent les feuilles. Une durée de vie des données feuille peut être une simple grille où chaque ligne correspond à une cellule mère individu et de chaque colonne correspond à un âge-point (figure 2). Étiquetez chaque fiche en fonction du nombre de souches à analyser. </li><li> Retirez les plaques de l&#39;incubateur et vérifier que la plupart des cellules disposées ont subi au moins une division cellulaire. Si un délai supplémentaire est nécessaire pour permettre la division cellulaire d&#39;être terminée, retourner la plaque à l&#39;incubateur. </li><li> En commençant par la première cellule disposés sur la première plaque, observer visuellement la cellule mère et la fille (s) et déterminer le nombre de divisions cellulaires qui se sont produites. Il est généralement facile de déterminer combien de cellules filles d&#39;une mère a produit, basée sur des motifs caractéristiques des arrangements de cellules. Notez le nombre de cellules filles produit par la cellule mère dans la case appropriée sur la feuille de pointage la durée de vie. </li><li> Utiliser l&#39;aiguille pour détacher les cellules filles de la cellule mère comme décrit dans l&#39;étape 3.2. </li><li> Conserver la cellule mère dans sa position dans la ligne verticale et déplacez la cellule fille (s) temporairement de côté. </li><li> Répétez les étapes 4.3 à 4.5 pour chacune des cellules disposées. </li><li> Collecter toutes les cellules filles au rebut et les déplacer vers le «cimetière», situé près de l&#39;origine des correctifs. </li><li> Parafilm la plaque et incuber à 30 ° C pendant 2-3 heures. </li><li> Répétez les étapes 04.03 à 04.08 pour chaque plaque à l&#39;expérience. </li><li> Répétez les étapes jusqu&#39;à ce que toutes les cellules 04/02 au 04/09 mère ont arrêté de se diviser. En tant que mère cellules de l&#39;âge, la progression du cycle cellulaire devient plus lent et il sera souhaitable d&#39;incuber la plaque pendant de longues périodes de temps entre l&#39;âge de points. Les plaques peuvent être placés à 4 ° C pendant la nuit. </li></ol> Partie 5: des résultats représentatifs. Les données brutes produites par une expérience de durée de vie est un réplicative des numéros de liste correspondant à des cellules filles produites par chaque cellule mère à chaque âge points (figure 2). En additionnant chaque ligne de la feuille de pointage, la durée de vie réplicative pour chaque cellule mère est obtenue. Les données pour les cellules de la mère d&#39;un même groupe expérimental peuvent être regroupées pour générer une courbe de survie (figure 3A) et d&#39;effectuer des calculs statistiques, tels que la durée de vie moyenne, la durée de vie médiane et écart-type. Un test non paramétrique, tels que le Wilcoxon test, peut être effectuée pour déterminer si des différences significatives dans la durée de vie n&#39;a été décelée entre les groupes expérimentaux. Lorsque l&#39;expérience fonctionne correctement, la courbe de survie devrait être à peu près conforme à Gompertz-Makeham cinétiques montrant une shap sigmoïde à une mortalité précoce à faible suite à une baisse relativement rapide du taux de survie et un aplatissement de la courbe des âges une plus tard. La plupart des souches de type sauvage ont des valeurs réplicative la durée de vie dans la gamme 20-30 génération, mais en dehors de la variation de cette gamme a été signalé. <img src="/files/ftp_upload/1209/1209fig1.jpg" alt="Figure 1" /> <img src="/files/ftp_upload/1209/fig1.2.jpg" alt="Figure 1.5" /> Figure 1. Schéma d&#39;une plaque de durée de vie typique réplicative. La soirée avant le début de microdissection de cellules de levure, 3-5 souches sont légèrement patché sur la surface d&#39;une plaque YEPD (cases rouges) dans une ligne verticale sur un côté de la plaque. Après une croissance durant la nuit, environ 30 cellules individuelles de chaque souche sont disposées verticalement dans une ligne contenant 20 postes. Durée de vie analysis sera effectuée sur les cellules v vierge, fille obtenus à partir de ces cellules initiales. Cellules supplémentaires obtenus à partir de microdissection cours de l&#39;expérience (par exemple, les cellules filles non désirées) sont placés dans «le cimetière» (ovale gris), qui est situé loin de la cellules expérimentales afin d&#39;éviter l&#39;épuisement local de nutriments que les colonies sont formées. <img src="/files/ftp_upload/1209/1209fig3.jpg" alt="Figure 2" /> Figure 2. Une vie réplicative décompte durée de feuille. Les données brutes d&#39;une expérience de durée de vie réplicative est montré. Chaque ligne correspond à une cellule mère de levure unique et chaque colonne correspond à un âge-point. Le numéro inscrit dans chaque case est le nombre de cellules filles produites par cette cellule mère à cet âge-point. Chaque souche est étiqueté avec un numéro codé de telle sorte que l&#39;individu disséquer les cellules de levure n&#39;a pas connaissance de l&#39;identité des souches analysées. Vingt cellules sont dosés pour chaque souche. <img src="/files/ftp_upload/1209/1209fig2.jpg" alt="Figure 3" /> Figure 3. Représentant de survie et de courbes de croissance d&#39;une expérience de durée de vie réplicative. (A) Les courbes de survie sont obtenus en traçant la fraction de cellules mères encore en vie en fonction de l&#39;âge réplicative (nombre de divisions cellulaires. (B) Les courbes de croissance sont obtenus en traçant la nombre moyen de cellules filles produites par une souche donnée en fonction de l&#39;âge points. Dans cet exemple, la souche n ° 2 est plus longue durée mais est plus lente croissance, comme en témoigne la pente réduite initiale de l&#39;intrigue de la croissance.

<ol><li>Kaeberlein, M., Burtner, C. R., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+developments+in+yeast+aging%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Recent developments in yeast aging.</a> PLoS Genet. 3, (2007).</li>
<li>Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKaeberlein%2C+M+%22Handbook+of+models+for+human+aging%22">Handbook of models for human aging</a>. Conn, P. M. , Elsevier Press. Boston. 109-120 (2006).</li>
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<li>Murakami, C. J., Burtner, C. R., Kennedy, B. K., Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+high-throughput+quantitative+analysis+of+yeast+chronological+life+span%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gerontol+A+Biol+Sci+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">A method for high-throughput quantitative analysis of yeast chronological life span.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 63, 113-121 (2008).</li>
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<li>Lin, S. J., Defossez, P. A., Guarente, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Requirement+of+NAD+and+SIR2+for+life-span+extension+by+calorie+restriction+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Requirement of NAD and SIR2 for life-span extension by calorie restriction in Saccharomyces cerevisiae.</a> Science. 289, 2126-2128 (2000).</li>
<li>Kaeberlein, M., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+identification+in+yeast+of+conserved+ageing+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Ageing+Dev%22%5BJournal%5D)">Large-scale identification in yeast of conserved ageing genes.</a> Mech Ageing Dev. 126, 17-21 (2005).</li>
<li>Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+yeast+replicative+life+span+by+TOR+and+Sch9+in+response+to+nutrients%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Regulation of yeast replicative life span by TOR and Sch9 in response to nutrients.</a> Science. 310, 1193-1196 (2005).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Agar</td><td>Réactif</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF0145-17-0 (214530)</td><td></td></tr><tr><td>Peptone Bacto</td><td>Réactif</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF0118-17-0 (211677)</td><td></td></tr><tr><td>Extrait de levure</td><td>Réactif</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF0886-17-0 (288620)</td><td></td></tr><tr><td>Glucose</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

mesure life span réplicative dans la levure bourgeonnante

Measuring Replicative Life Span in the Budding Yeast

Le vieillissement est un processus dégénératif caractérisé par une détérioration progressive des composants cellulaires et des organites résultant de la mortalité. La levure bourgeonnante<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em&gt; A été largement utilisée pour étudier la biologie du vieillissement, et plusieurs déterminants de la longévité de la levure a été démontré pour être conservée chez les eucaryotes multicellulaires, y compris les vers, des mouches et des souris<sup&gt; 1</sup&gt;. En raison de l&#39;absence de facilement quantifiables liés à l&#39;âge phénotypes, le vieillissement chez la levure a été testé presque exclusivement par la mesure de la durée de vie des cellules dans des contextes différents, avec deux différents paradigmes durée de vie dans l&#39;usage commun<sup&gt; 2</sup&gt;. Durée de vie chronologique se réfère à la durée pendant laquelle une cellule mère peut survivre dans un non-séparation, la quiescence-état, et est proposé pour servir de modèle pour le vieillissement des cellules post-mitotiques chez les eucaryotes multicellulaires. Durée de vie réplicative, en revanche, renvoie le nombre de cellules filles produites par une cellule mère avant la sénescence, et est pensé pour offrir un modèle de vieillissement des cellules mitotiquement actives. Nous présentons ici un protocole généralisé pour mesurer la durée de vie réplicative des cellules mères en herbe de la levure. L&#39;objectif de l&#39;essai durée de vie réplicative est de déterminer combien de fois chaque bourgeons cellule mère. Les cellules mère et fille peuvent être facilement différenciés par un chercheur expérimenté à l&#39;aide d&#39;un microscope optique standard (grossissement total 160x), tels que le Axioscope Zeiss 40 ou un autre modèle comparable. La séparation physique des cellules filles à partir de cellules mères est réalisé en utilisant un micromanipulateur manuelle équipée d&#39;une aiguille de fibre optique. Typiques des souches de levures en laboratoire de produire des cellules filles de 20 à 30 par la mère et une expérience durée de vie nécessite 2-3 semaines.

Dans cet article nous présentons un protocole général pour la mesure de la durée de vie réplicative des cellules mères de la levure.

Mesure Life Span réplicative dans la levure bourgeonnante

Le vieillissement est un processus dégénératif caractérisé par une détérioration progressive des composants cellulaires et des organites, entraînant la mortalité. La levure bourgeonnante...

La levure bourgeonnante Croce Visi a été largement utilisée pour étudier la biologie du vieillissement. Dans cet article, nous présentons un protocole général pour mesurer la durée de vie réplicative des cellules mères de levure. Bonjour, je suis Kristen Steffen du laboratoire de Brian Kennedy du Département de biochimie de l'Université de Washington.Aujourd'hui, nous allons vous présenter une procédure permettant de mesurer la durée de vie réplicative des cellules mères de levure. Nous utilisons cette procédure dans notre laboratoire pour étudier les gènes qui influencent la durée de vie des cellules de levure. Commençons donc.Pour l'expérience d'analyse de la durée de vie réplicative et la préparation des cellules de levure en vue de l'analyse de leur durée de vie, il est nécessaire de préparer des plaques YEPD solides. Utilisez une technique stérile appropriée pour préparer ces plaques d'agar YEPD. Préparez au moins deux plaques pour chaque groupe de quatre à cinq souches à analyser dans l'expérience de durée de vie.Ces boîtes doivent être préparées au moins deux jours avant l'expérience d'espérance de vie et laissées sécher avant de commencer le test de durée de vie. Si l'expérience n'a pas lieu dans un délai de quatre à cinq jours après la coulée des boîtes, celles-ci doivent être enveloppées dans du film parafilm ou du plastique et placées dans un incubateur réfrigéré afin d'éviter la dessiccation. Retirer les souches de levure des stocks congelés et les strier pour obtenir des colonies isolées.Sur les boîtes de gélose YEPD. Jusqu'à six souches peuvent être aisément étalées sur la même boîte de YEPD en divisant la boîte en secteurs égaux en forme de parts de tarte. Incuber les cellules à 30 degrés Celsius pendant deux jours.Après l'incubation, retirez les cellules de l'incubateur et prélève une cellule d'une colonie unique pour la transférer sur une nouvelle boîte YEPD. À ce stade, les souches à analyser doivent être enrobées afin de garantir que l'expérience de durée de vie réplicative soit réalisée en aveugle, c'est-à-dire que les personnes effectuant les dissections ne connaissent pas l'identité des souches individuelles.Ensuite, incuber les cellules ensemencées et recouvertes à 30 degrés Celsius jusqu'au lendemain soir. Retirer les cellules et ensemencer légèrement les cellules de chaque souche recouverte sur des plaques YEPD fraîches. Ces plaques serviront de plaques expérimentales pour la détermination de la durée de vie réplicative.Les cellules d'analyse doivent être déposées en une ligne verticale sur le côté gauche de la boîte de YEPD. Ne pas transférer trop de cellules sur une seule boîte de YEPD fraîche. En effet, cela provoquerait une croissance dense des cellules durant l'incubation nocturne et affecterait leur durée de vie réplicative ; environ trois à cinq prélèvements par boîte sont optimaux.En supposant que l'analyse de la durée de vie réplicative sera effectuée sur 20 cellules provenant de chaque patch, l'expérience de durée de vie est désormais entièrement préparée et il suffit de l'incuber toute la nuit à température ambiante. Ensuite, demain, nous pourrons commencer la microdissection afin de positionner les cellules de levure sur la plaque et obtenir des cellules filles vierges pour l'analyse de la durée de vie réplicative.Utilisez un microscope équipé d'un appareil de microdissection adapté aux levures. Transférez environ 50 cellules à partir de la première souche en patch vers une position sur la plaque éloignée des cellules en patch. Si le plateau de votre microscope est gradué, ces graduations peuvent être utilisées pour s'assurer que les cellules seront faciles à retrouver lors des itérations ultérieures.Parfois, des cellules peuvent rester coincées dans l'aiguille, ce qui peut poser problème si elles sortent au mauvais moment. Pour s'assurer que l'aiguille est propre et débarrassée de toute cellule, touchez-la à plusieurs reprises à la surface de l'agar. Ensuite, créez un trou dans l'agar en enfonçant l'aiguille à travers sa surface.Cet orifice servira de marqueur pour vous orienter sur la plaque lors des itérations ultérieures de dissection et de retrait des cellules dotter. Veillez à ne pas introduire de cellules de levure dans l'orifice, car elles pourraient croître et former une colonie juste au-dessus de celui-ci. Alignez verticalement des cellules de levure individuelles en 20 positions régulièrement espacées, avec un à trois diamètres d’aiguille entre chaque position cellulaire.Pour chaque groupe de quelques cellules, placer deux cellules côte à côte à la même position dans la ligne, plutôt qu'une seule. Cela permet une redondance lors de la sélection des cellules filles vierges. Si l'une des cellules transférées ne se divise pas entre les positions 10e et 11e de la ligne, créer une série horizontale de sept à huit trous dans l'agar.Cela servira de marqueur pour vous orienter sur la plaque lors des dissections ultérieures et du retrait des cellules filles. Veillez encore une fois à ne pas introduire de cellules de levure dans les trous, car elles pourraient croître et former une colonie. Répétez cette procédure pour chaque tache sur la plaque, en continuant d'aligner les cellules verticalement le long du même axe.Il est important de se rappeler que lors de la création du trou dans l'AER, le nombre de trous réalisés doit correspondre au numéro du patch, de sorte qu'il y ait un trou pour le premier patch et deux trous pour le second. Une fois les cellules disposées pour chaque patch, parafilm le plat et incube à 30 degrés Celsius pendant environ deux heures. N'oubliez pas que, dorénavant, tous les plats doivent être parafilmés, sauf lorsqu'ils sont en cours de dissection.Afin d'éviter le dessèchement, répétez cette procédure pour chaque plaque. Dans l'expérience. Pour l'analyse de la durée de vie, il est important de s'assurer que chaque cellule démarre comme une cellule fille vierge.Pour ce faire, retirez d'abord les plaques de l'incubateur et vérifiez que la majorité des cellules de la matrice ont subi une division cellulaire. Ce que nous avons ici, ce sont des cellules qui ont été alignées précédemment, et vous pouvez constater qu'après deux heures dans l'incubateur, elles ont commencé à se diviser. Nous avons maintenant une cellule mère, la plus grande, attachée à sa cellule fille vierge, et cette cellule fille vierge est celle qui sera utilisée pour commencer la durée de vie.Si un temps supplémentaire est nécessaire pour permettre aux divisions cellulaires de s'achever, remettez la plaque dans l'incubateur. Commencez par la première cellule de la matrice. Utilisez l'aiguille pour détacher les cellules filles de la cellule mère en plaçant délicatement l'aiguille sur les cellules attachées.Il peut parfois être utile de tapoter le côté de la base du microscope pendant que l'aiguille est en appui sur les cellules. Ensuite, placer la cellule fille détachée dans l'alignement vertical des cellules, en remplaçant la cellule mère et toute autre cellule fille, et déplacer temporairement celles-ci sur le côté. Répéter ces étapes pour chacune des cellules de la série.Si une cellule ne parvient pas à se diviser, prélevez une cellule fille parmi les cellules redondantes situées à côté de la cellule test. Une fois terminé, vous devez disposer de 20 cellules filles pour chaque carie, alignées verticalement sur la plaque de durée de vie. Rassemblez toutes les cellules mères et les cellules filles supplémentaires en un tas, puis transférez-les vers une zone proche des caries appelée le cimetière.Il est important de maintenir les cellules indésirables à distance des cellules faisant l'objet d'une analyse de durée de vie afin d'éviter la formation de micro-colonies et l'épuisement des nutriments locaux. Une fois les cellules séparées, retirez-les de la plaque et incubez-les à 30 degrés Celsius pendant environ deux heures. Répétez ces étapes pour chaque plaque de l'expérience.Pour mesurer la capacité réplicative de cellules individuelles, vous devrez préparer des fiches de durée de vie. Une fiche de durée de vie peut être une grille simple où chaque ligne correspond à une cellule mère individuelle et chaque colonne correspond à un point d'âge. Veillez à étiqueter chaque fiche de données en fonction du nombre de souches à analyser.Pour commencer, retirez d'abord les plaques de l'incubateur et vérifiez que la majorité des cellules de la matrice ont subi au moins une division cellulaire. Si un temps supplémentaire est nécessaire pour permettre l'achèvement de la division cellulaire, remettez la plaque dans l'incubateur. Commencez par la première cellule de la matrice sur la première plaque, puis observez visuellement la cellule mère et la cellule ou les cellules filles afin de déterminer le nombre de divisions cellulaires survenues.Il est généralement facile de déterminer combien de cellules filles une cellule mère a produites en se basant sur des motifs caractéristiques d'arrangements cellulaires. Celui-ci est particulièrement simple à observer, car il y a deux cellules de taille identique et toutes deux plus petites que la cellule mère. Notez le nombre de cellules filles produites par la cellule mère dans la case appropriée de la feuille de notation de durée de vie.Ensuite, utilisez l'aiguille pour détacher les cellules filles de la cellule mère comme décrit précédemment, en plaçant délicatement l'aiguille sur les cellules attachées et en tapotant le côté de la base du microscope pendant que l'aiguille repose sur les cellules. Maintenez la cellule mère en place sur la ligne verticale et déplacez temporairement la ou les cellules filles sur le côté. Répétez ces étapes pour chacune des cellules du réseau.Enfin, récupérez toutes les cellules filles éliminées et transférez-les dans le cimetière situé près des patchs d'origine. Scellez la plaque avec du film parafilm et incubez à 30 degrés Celsius pendant deux à trois heures. Répétez l'élimination des cellules filles et l'incubation.Étape pour chaque plaque de l'expérience. Répétez cette procédure complète jusqu'à ce que toutes les cellules mères aient cessé de se diviser. Gardez à l'esprit que, lorsque les cellules mères vieillissent, la progression du cycle cellulaire ralentit et il sera souhaitable d'incuber la plaque pendant des périodes plus longues entre les points d'âge ; par la suite, les plaques peuvent être placées à quatre degrés Celsius pendant la nuit.Les données brutes produites par une expérience de durée de vie réplicative correspondent à une liste de nombres représentant les cellules filles produites par chaque cellule mère à chaque point d'âge. Comme indiqué ici. En additionnant chaque ligne de la feuille de notation, on obtient la durée de vie réplicative de chaque cellule mère.Les données provenant d'autres cellules du même groupe expérimental peuvent être regroupées afin de générer une courbe de survie et d'effectuer des calculs statistiques. La courbe devrait être approximativement conforme à la cinétique de Gompertz-Makeham, présentant une forme sigmoïde avec une faible mortalité précoce, suivie d'un déclin relativement rapide de la survie et d'un aplatissement de la courbe à des âges plus avancés. Nous venons de vous montrer comment réaliser une expérience de durée de vie réplicative chez la levure.Lorsque vous effectuez cette procédure, il est important de garder à l'esprit que les cellules continueront à se diviser chaque fois qu'elles ne sont pas au froid. Veillez donc à placer les boîtes à quatre degrés pendant la nuit afin de ne pas vous retrouver avec trop de cellules filles à compter le matin. Voilà, c'est tout.Merci d'avoir regardé et bonne chance avec vos expériences.

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