Summary
Suspensão coloração imunocitoquímica de células-tronco pluripotentes humanas (hPSCs) para marcadores da superfície celular (SSEA-3/SSEA-4) foi alcançada com base na utilização de um aparelho cytospin self-made para criar uma monocamada de células para observação e quantificação.
Abstract
Células pluripotentes estaminais humanas (hPSCs) que incluem células estaminais embrionárias humanas (hESCs) e células-tronco pluripotentes induzidas (hiPSCs) são fontes de células emocionante devido à sua ilimitada capacidade de auto-renovação e seu potencial de se diferenciar em vários tipos de células. O estado de pluripotentes hPSCs é tipicamente avaliada por técnicas tais como qPCR, imunocitoquímica, e por outros
Protocol
Parte 1: Coloração Suspensão imunocitoquímico
- As células são colhidas em uma suspensão de células individuais.
- As células são então transferidos para um tubo de microcentrífuga de 1,5 2mL e centrifugado a 200g por 4 minutos.
- As células são lavadas por aspiração fora sobrenadante, re-suspensas em 1mL de PBS - (sem Mg 2 + e Ca 2 +) e depois centrifugada novamente a 200g por 4 minutos. Isto deve ser feito duas vezes.
- Após a lavagem, as células são então fixado pelo re-suspendendo-as em 1mL de 4% paraformaldeído (PFA) em temperatura ambiente por 10 minutos.
- As células são lavadas novamente duas vezes com 1mL de PBS -.
- Depois de células de lavar roupa, bloco por re-suspendendo-as em 1 ml de solução de bloco (6% serum/94% PBS -). Incubar esses em temperatura ambiente por 45 minutos.
- Após, centrifugar tubos de 200g por 4 minutos e aspirar a Solução Block. Re-suspender as células em 1mL da solução de anticorpo primário (feito com solução de Bloco na diluição recomendada). As células podem ser incubadas em temperatura ambiente por 1 hora ou a 4 ° C durante a noite antes de prosseguir para a próxima etapa.
- Células são então lavadas duas vezes com 1 ml de solução Block.
- Depois, volte a suspender as células em 1mL de solução de anticorpo secundário (feito com solução de Bloco na diluição recomendada) e incubar à temperatura ambiente por 1 hora.
- Depois de uma hora, as células devem ser lavadas novamente duas vezes com 1 ml de solução Block.
- Após a lavagem com solução de Bloco, lave as células novamente com 1mL de PBS -.
- Após as lavagens diversas, re-suspender as células em 1mL de DAPI nuclear mancha (diluição de 1:10.000 em PBS DAPI -) e incubar à temperatura ambiente por 5 minutos.
- Após 5 minutos, centrifugar tubos de 200g por 4 minutos. Aspirar a solução nuclear DAPI mancha e re-suspender as células em 1mL de PBS -.
Parte 2: Incorporação de hPSCs em slides gerados por aparelhos cytospin
- Slides de plástico são preparados por fazer a quantidade desejada de furos com uma broca imprensa. O diâmetro deve ser no máximo um milímetro maior que o maior diâmetro da ponta da micropipeta (s) a ser utilizado.
- Filtro de papel é cortado com os parâmetros da lâmina de plástico com uma tesoura.
- Furos são feitos então no papel de filtro. O tamanho do buraco (s) deve ser grande o suficiente para que a ponta micropipeta (s) se encaixa confortavelmente através dele.
- Depois, um dos slides de plástico preparado é colocado na parte superior e uma lâmina de vidro na colocados na parte inferior do papel filtro de corte (Figura 1). As camadas são fixados com fita adesiva.
- Um máximo de 100μL (dependendo da densidade desejada monocamada) da suspensão de células coradas da Parte 1 é então colocado no topo da ponta da micropipeta (s).
- Se necessário, o aparelho com a solução de célula pode ser pesado e um contrapeso de peso semelhante criado.
- O aparelho cytospin e contrapeso pode são então colocados em uma centrífuga de mesa e centrifugado a 200g por 4 minutos.
- Após a centrifugação, o aparelho é cuidadosamente desmontado cytospin de uma forma que doesnt desalojar as células da lâmina de vidro.
- Se necessário, o excesso de PBS redor - do lado de vidro em aspirados para fora.
- As células podem ser visualizados usando um microscópio de fluorescência para verificar se a monocamada de células desejado foi alcançado.
Parte 3: slides de montagem
- A queda dos meios de comunicação de montagem desejada é colocado diretamente no centro de cada área contendo células.
- Depois, a lamínula é suavemente baixou para os slides tentando evitar as bolhas de ar, se possível.
- Excesso de meios de montagem é então removido do slides.
- Depois, os lados do lamínulas são selados com verniz.
- Os slides podem ser mantidos em uma área de armazenamento escuro até que os resultados são observados e documentados.
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Discussion
Para efeitos do nosso laboratório, um prato de 35 milímetros de culturas de células-tronco cultivadas em fibroblastos de rato embrionárias (MEFs) é alocado para o procedimento de coloração imunocitoquímica para uso com o aparelho cytospin. As células são então coletados por meio de passaging enzimática, removendo o máximo da camada de MEF quanto possível, em uma suspensão de uma única célula. Se mais de isolamento de células-tronco eficaz a partir da camada MEF é desejada, as colônias podem ser manualmente escolheu então digerida em suspensão. Se as condições de alimentação livres são usados no cultivo de células-tronco as culturas, as colônias podem simplesmente ser raspada e digerida em suspensão. Enquanto uma suspensão de uma única célula inicial é ideal, qualquer aglomerados celulares deve efetivamente ser quebrados por toda a lavagem de numerosos e re-suspensão passos no chamado o procedimento de coloração imuno-histoquímico.
O vídeo focado no uso de marcadores extracelulares para hPSCs coloração. Se a coloração intracelular do hPSCs é desejado, um passo adicional antes da adição da solução de Bloco (Passo 1.6) precisa ser feito no qual as células são lavadas com 1 ml de solução permeabilização (50mLs de tampão Sal alta com 25μL de Tween 20), três vezes antes de voltar a suspendê-las em solução de Bloco. Outro ponto crítico que deve ser mencionado é que a partir da Etapa 1,9 no procedimento, deve ser tomado cuidado para minimizar a exposição à luz para as amostras para prevenir o branqueamento de fluorescência do anticorpo secundário e DAPI nuclear mancha.
Por causa da lavagem de numerosos e re-suspensão etapas do procedimento, um prato inteiro de 35mm com uma boa quantidade de passagem pronto para colônias de células-tronco, estima-se que em torno de 400k 600k-células, é recomendado para ser digerido e usado na suspensão inicial . Isto é feito em antecipação de alguma perda de células devido à natureza do procedimento. Teoricamente, uma quantidade muito menor de células pode ser utilizado na suspensão inicial, mas uma quantidade extra de cuidados devem ser tomados a fim de minimizar ainda mais a perda de células. Quando o colocar no aparelho cytospin após o procedimento de coloração imunocitoquímica, a densidade das células de 10k-50k é o ideal. Deve-se mencionar que, embora 100μL é a quantidade máxima que pode ser carregado em um aparelho que usa uma cytopsin 0.1μL 10μL ponta micropipeta, uma quantidade menor (cerca de 20μL - 30μL) contendo a densidade de células ideal é recomendado. Isso minimiza estouro desnecessária de líquido sobre a lâmina de vidro. Finalmente, ao usar o aparelho cytospin com a centrífuga, desde que o aparelho é seguro do movimento lateral, a força criada pela centrífuga durante a execução tem, a nosso conhecimento, foi suficiente para manter o aparelho a partir lançando ou cair.
Ingredientes para soluções utilizadas no procedimento de imunocitoquímica:
- Paraformaldeído 2% (PFA) / 2% de sacarose
- Adicionar 75 ml de água destilada e coloque no prato de agitar aquecida a 56 ° C.
- Pesar 2 g PFA, e adicione ao copo de vidro.
- Pesar 2 g de sacarose, e adicione a PFA em copo de vidro.
- Adicione 2 gotas de hidróxido de sódio 1M.
- Uma vez que todos os reagentes ter ido para solução, adicione 10 ml de PBS 10X + +.
- Ajustar o pH da solução para 7,2-7,4.
- Trazer um volume de 100 ml com água destilada.
Armazenar a 4 ° C, e usar dentro de 1 semana. Alíquotas podem ser armazenados @ -20 ° C por 1 mês. Centrifugar brevemente após o descongelamento para remover qualquer precipitado.
- Solução de bloco (10 ml)
- Adicionar 9,4 ml de PBS -.
- Adicionar 0,6 ml de soro para a PBS -. (Isto pode precisar de ser otimizado para cada anticorpo.)
Armazenar a 4 ° C, e usar dentro de 48 horas.
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Disclosures
Não há conflitos de interesse declarados.
Acknowledgments
Financiamento parcial para este trabalho foi fornecida pela NSF CARREIRA-0744556 (Rao) e uma bolsa de estudos através do VCU-HHMI Ciências da Educação e Programa de Pesquisa (Pascual).
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Lab Tek Permanox Chamber Slide | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 117437 | Material for re-used plastic slides |
Superfrost/Plus Microscope Slides Precleaned | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
0.1-10μL Filter Tips | USA Scientific, Inc. | 1121-3810 | |
Microscope Cover Glass | Fisher Scientific | 120542-B | |
Cytoseal 280 | Richard-Allan Scientific | 8311-4 | Mounting Medium |
DPBS | GIBCO, by Life Technologies | 14190 | |
Normal Goat Serum | Invitrogen | 10000C | |
Mouse Anti-SSEA-4 Monoclonal Antibody | EMD Millipore | MAB4304 | Primary Antibody for SSEA-4 staining |
Rat Anti-SSEA-3 Monoclonal Antibody | EMD Millipore | MAB4303 | Primary Antibody for SSEA-3 staining |
Alexa Fluor 488 Goat Anti-Mouse IgG | Invitrogen | A11029 | Secondary Antibody for SSEA-4 staining |
Alexa Fluor 488 Labeled Goat Anti-Rat IgG | Invitrogen | A11006 | Secondary Antibody for SSEA-3 staining |
DAPI, Dihydrochloride | Calbiochem | 268298 |
References
- Rao, R. R., Johnson, A. V., Stice, S. L. Cell surface markers in human embryonic stem cells. Methods in Mol. Bio. - Stem Cell Assays. 407, 51-61 (2007).
- Sisino, G., Bellavia, D., Corallo, M., Geraci, F., Barbieri, R.
A homemade cytospin apparatus. Anal. Biochem. 359, 283-284 (2006).