Introduction
間葉系幹細胞（MSC）は、それらの多系列分化能及び増殖因子/サイトカインを分泌するだけでなく、免疫調節1において役割を果たすことが造血を支持する能力、に関連する臨床的価値があります。 MSCベースの治療用細胞の生産とアプリケーションの定義では医薬品（CBMP）治療3ベースのセルの安全性と有効性のための具体的な国際規制に特に注意して、大規模な臨床および前臨床研究2の対象となっています。ヒトMSCは、ウシ胎児血清（FBS）、およびウシトリプシンのような動物由来のサプリメントおよび試薬を含む培地中で広範囲に培養されます。したがって、細胞操作に関連した感染リスクと並んで、患者はまた、プリオンの暴露ならびに細胞収穫とtransplan後も持続可能性タンパク質、ペプチドまたは動物由来の他の生体分子に結合された免疫学的なリスクに直面してテーション4。
この問題を回避するために、我々は、プールされたヒトAB型血清（PhABS）でFBSを置き換え、ヒト骨髄（HBM）動物を含まない培地中で由来MSCを培養しました。これらの条件下では、成長のMSCと一緒に、我々は、新規な細胞集団を同定しました。これらの細胞は、形態学的およびMSCからの表現型に異なっていたと独特の遺伝子発現プロファイルと同様に特徴的な成長/接着特性を示しました。彼らはmesengenicと潜在的な血管新生の両方に保持され、したがって、 中胚葉前駆細胞 （MPCは）5と命名しました。その後、我々は純度6の高品位でのMPCを生成するために、選択的かつ再現可能な培養条件を定義することができました。
我々はさらにのMPCの形態学的および生物学的特性を調べました。 MPCが、正ネスチンサイクリングで遅い、のKi-67陰性、および長いテロメア5によって特徴付け染色体であることを示しました。彼らはplurを表明しましたipotency関連転写は、因子Oct-4およびNanogのではなく、MSCのマスターレギュレータのRunx2とのSox9 7。間葉系マーカーCD73、CD90、CD166を欠く表現型が、MPCのは、MSCよりも低いレベルでエンドグリン（CD105）を発現しました。 MPCはまた、具体的ポドソーム状構造8を維持する接着PECAM（CD31）の一貫性の発現を特徴とする分子、インテグリンαL（のCD11a）、αM（CD11bの）、αX（CD11cの）だけでなく、インテグリンβ2（CD18）の特徴的なパターンを示しました。標準的なMSC増殖培地では、MPCが速やか9シグナリング Wnt5 /カルモジュリン細胞の活性化を特徴と中間段階を介してのMSCに分化しました。ネズミの細胞外マトリックス（ECM）タンパク質の三次元培養におけるスフェロイドから発芽する能力によって実証されるようのMPCはまた、血管形成特性を保持していました。血管新生の可能性は急速にmesengenic系統に沿ってMPCの分化後に失われました。
ここでは、プロの提示しますトコールは、単離するとHBMの血液サンプルから高度に精製されたMPCを特徴付けるために最適化されました。 MPC mesengenicと血管新生の分化のための再現性のあるプロトコルも記載されています。
Protocol
注：書面による同意後、HBMサンプルは人工股関節置換のための整形外科手術中に得られました。直ちに大腿骨頚部骨切り術の後にヘパリンの500 UIを含む20 mlシリンジをリーマ大腿前に、新鮮なBMを吸引するために使用されました。プロトコルは、任意のBM源に広く適用可能と考えられるべきです。
ヒト骨髄単核細胞（HBM-多国籍企業）の1の単離
- ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水（D-PBS）を適用し、50ミリリットルに新鮮なBMの10ミリリットル、反転により混合する - 5を希釈します。同様に、二つの新しい50mlコニカルチューブに25ミリリットルを配布し、各チューブにD-PBSの25ミリリットルを追加し、反転により混合します。
- 管は、溶液からの鉱物骨片と脂肪の分離のために、室温で10分間放置します。
- 慎重に滅菌パスツールピペットで浮遊脂肪を除去し、ミネラル骨片ペレットを乱すことなく、70μmのフィルターを通して細胞懸濁液をフィルタリングします。 <リー>は不連続密度勾配遠心分離のための培地を15ml（1.077グラム/ ml）を用いて4 50mlチューブを設定します。この媒体は、室温であることを確認します。
- 密度勾配媒体の上に希釈されたBMの25ミリリットル - 静かに20を置きます。層の混合を防止するために、チューブ壁に細胞懸濁液のトリクルをさせる、慎重にこの操作を実行します。
- 無効ブレーキを室温で30分間、400×gでの密度勾配遠心分離を行います。
- 滅菌パスツールピペットを使用して、2つの相の間に位置する細胞の白っぽいリングを収集し、新しい50 mlチューブに移します。
- 新鮮な培養培地で細胞を洗浄する：フェノールレッドを含まない、低グルコース（1,000mgの/ l）のダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）、10％（v / v）のプールしたヒトAB型血清（PhABS）、2mMのL-グルタミンおよび抗生物質（DMEM / 10％PhABS）。 5分間400×gで遠心分離します。
- 新鮮なDMEM / 10％PhABSの10ミリリットル - 5で上清を吸引し、再サスペンドペレット。
- 細胞数に進んでください。トリパンで1希釈：1で白血球の数を決定します。血球計数器にこれを適用し、位相差顕微鏡下で観察します。細胞数から小さく、完全に丸みを帯びた赤血球およびブルー染色死細胞を除外します。
注：非常MPC回復でのパフォーマンスのためPhABSバッチをスクリーニングすることをお勧めします。異なる起源のほとんどの血清がMSC様細胞の割合が高いとMPCの文化をもたらした米国源からPhABSは、最良の結果を与えています。
HBM-多国籍企業からのMPCの2の単離
- 新鮮なDMEM / 10％PhABS 15mlで疎水性のT-75フラスコを設定し、pH及び温度を30分間、5％CO 2中37℃でプレインキュベートすることにより平衡化させ。
- シード4 -フラスコあたり6×10 7 HBM-多国籍企業とは48時間、5％CO 2中で37℃でインキュベートします。
- フラスコから培地および非接着細胞を吸引し、廃棄します。新鮮なDMEM / 10％PhABSの15ミリリットルを加え、37℃でインキュベート5％のCO 2。培地を48時間ごとに変える、8日 - 6のための文化を維持しています。
オプション：MPC収量を増加させるために、2.3から非接着細胞を新しい培養フラスコに再播種し、一次培養物について記載されるように維持することができます。 - 吸引し、は、フラスコから培地を捨て、新鮮なDMEMで洗浄し、溶液を取り外す動物自由プロテアーゼの2ミリリットルを追加します。 （長時間のインキュベーションを避けるため）15分 - 5 37℃でインキュベートします。
- 5分間400×gで細胞懸濁液と遠心分離機を吸引、新鮮なDMEM / 10％PhABSの10ミリリットルを追加します。
- 吸引し、上清を廃棄し、1にペレットを再懸濁 - 新鮮なDMEMの2ミリリットル/ 10％PhABS。ステップ1.10で説明したように細胞数に進んでください。
注：試薬を取り外すように、トリプシン/ EDTAを使用しないでください。 MPCが耐性トリプシンされています。文化の形態学的スクリーニングは、細胞収穫前に、非常に紡錘状MSC様細胞の存在を評価するために推奨されます。 MSC様細胞の場合、かなりの量でdはetected、選択的に汚染された細胞を除去することにより、細胞生成物の純度を高めます。そうするために、トリプシン消化は、2分間のトリプシン/ EDTA 2mlの0.05％を添加することにより、前のMPCの収穫に行うことができます。 DMEM / 10％PhABSの5ミリリットルで二回洗浄培養は、その後、上記のように治療をプロテアーゼに進みます。
3.セル特性評価
- フローサイトメトリー
- 洗浄液中に10 5の新たに分離した細胞の二連のサンプルを設定する：D-PBS、0.5％（v / v）のウシ血清アルブミン（BSA）および0.02％（w / v）のアジ化ナトリウムを補充しました。 5分間400×gで遠心分離します。
注意：アジ化ナトリウムは有毒です。 - 洗浄溶液の200μl中のペレットを再懸濁し、蛍光色素（ "TEST"）と結合した抗CD90、抗CD45、抗CD73および抗CD31抗体を追加します。並列にアイソタイプコントロール（「CTRL」）を設定します。
注：染色する抗体の量は、滴定またはアコーによって決定されるべきです製造元の指示に鼎。 - 4℃で30分間サンプルをインキュベートします。
- 5分間400×gで遠心分離します。洗浄液500μlの中で細胞を再懸濁し、7 9 10サイトメータ多色の流れに少なくとも5×10 4のイベントを取得します。
- ドットプロットで結果を分析し、象限を設定するには、「CTRL」記録されたイベントを使用します。
注：MPC文化としての文化を定義するためにCD73 陰性 CD90の陰性の CD45 + CD31 +細胞の割合が95％の上にあるべきです。 98％ -いくつかの特定のアプリケーション、 すなわち 、遺伝子発現解析のために、回復カットオフは97に増加されなければなりません。
- 洗浄液中に10 5の新たに分離した細胞の二連のサンプルを設定する：D-PBS、0.5％（v / v）のウシ血清アルブミン（BSA）および0.02％（w / v）のアジ化ナトリウムを補充しました。 5分間400×gで遠心分離します。
- ネスチン検出およびF-アクチンの組織分析
- 培養チャンバースライド上のプレート新たに単離したMPC（2万/ cm 2）でした。細胞は5％CO 2中で37℃で一晩インキュベートすることによって接着することを可能にします。
- 洗浄液とFiの中で細胞を洗浄4％×15分間、室温で（w / v）のパラホルムアルデヒド。固定液を除去するために、洗浄液を追加し2分間インキュベートし、注ぎます。
- 二回の洗浄を繰り返します。
- D-PBSで透過化細胞を室温で15分間、0.05％（v / v）のトリトンX-100を補いました。
- タンパク質を含まないシグナルエンハンサー（室温で30分）または標準ブロッキング溶液によって反応を停止する（D-PBSで3％を補った（w / vで）BSA）。
- ブロッキング溶液/シグナルエンハンサーを削除します。
- 7 / mlの追加抗ヒトネスチン一次抗体の（w / vの）と加湿チャンバー内で4℃で一晩インキュベートします。並行して、特定のない蛍光信号を評価するために、アイソタイプコントロール抗体を使用しています。
- D-PBSを加えることによって、スライドを洗浄し、2分間のままにして注ぎます。二回繰り返します。
- 蛍光色素結合二次抗体を2μg/ mlの（w / vの）を追加し、暗所で1時間4℃でインキュベートします。
- ウォッシュは、上記のようにスライドします。
- 蛍光ファロイジン（5 UI / ml）を追加し、30メートルをRTで残します暗闇の中でとD-PBSで3回洗浄します。
- チャンバ壁を除去し、核を検出するための退色防止試薬および4 '、6-ジアミジノ-2-フェニルインドール（DAPI）を補充した水性マウンティング培地中でスライドをマウントします。イメージング7 9 10に進んでください。
MPCの4 Mesengenic分化
- プレート2×10 4 / cm 2のTC処置T75培養フラスコ中で新たに単離したMPC、細胞を5％CO 2中、37℃でDMEM / 10％PhABSに一晩接着させ。
- 間葉系幹細胞の増殖（MSC-RS媒体）用に設計された標準的な減少血清培地、約200マイクロリットル/ cm 2と、を含むDMEM / 10％PhABSを交換してください。通常、誘導から7〜10日から、（P1-MSCを）コンフルエンスまで細胞を増殖させます。 2日ごとに培地リフレッシュ。
- 吸引し、は、フラスコから培地を捨て、新鮮なMSC-RS培地で洗浄し、溶液を取り外す動物自由プロテアーゼの2ミリリットルを追加します。 37インキュベート76; 5のためのC - 15分（長時間のインキュベーションを避けるため）。
- 、新鮮なMSC-RS培地10mlを加え、5分間400×gで細胞懸濁液と遠心分離機を吸引
- 新鮮なMSC-RS培地2ml - 1で上清を吸引し、再サスペンドペレット。ステップ1.10で説明したように細胞数に進んでください
- 5×10 3細胞/ cm 2から3を播種することによって、それらのサブカルチャーに進んでください。 （P2-MSCを）コンフルエンスまで細胞を増殖させます。
- ステップ4.3から説明したように、プロテアーゼ消化によって細胞を回収し、4.5に進み、第3章で説明したように特性評価に進みます。
注：CD73 + CD90 + CD45 陰性 CD31の陰性細胞の割合よりも低い95％が部分的にしか分化を示し、さらに培養継代を必要とするであろう。 - 6ウェルTC処理プレート中の2×10 4個 / cm 2でプレートP2-MSCおよびMSC-RS培地でコンフルエントになるまで成長します。
- 「いいえサ "としてマーク2つのウェルとMSC-RS媒体をリフレッシュ。
- マーク2も「骨」などの、具体的にMSCの分化のために設計され、標準的な骨形成培地200μl/ cm 2の培地を交換してください。
- マーク「脂肪」として、2つのウェル、具体的にMSCの分化のために設計され、200μlの標準/脂肪生成培地のcm 2の培地を交換してください。
- メディア全体をそれぞれ48時間を変更することにより、5％CO 2中で37℃で培養を維持します。
注：非常にテスト再現するための標準的な市販の差別メディアを使用することをお勧めします。細胞内の脂肪滴の蓄積は、脂肪生成誘導された細胞において明らかである間に差別条件の下2/3週間後、カルシウム沈着は、骨形成誘導培養に表示されます。 - D-PBSで洗浄後、培養培地を吸引し、廃棄します。
- 室温で15分間、パラホルムアルデヒド（w / v）の4％の1ミリリットルを追加することにより、文化を修正しました。
- 固定液を除去するためにD-PBSを追加し、2分間インキュベートし、注ぎます。繰り返し洗濯二回。
- 2つの「骨」と1「いいえ差分を「染色ヒドロキシアパタイト特定の蛍光溶液中に井戸をマークされ、2つの「脂肪」と1「いいえ差分は「200 nMのナイルレッド溶液中に井戸をマークしました。室温11,12で30分間インキュベートします。
- 染色ソリューションを削除し、二回D-PBSで洗浄します。
- D-PBSを削除し、D-PBSを追加50％（v / v）のグリセリンを補充し、イメージング7 9 10に進みます。
5. MPCスフェロイド萌芽アッセイ
- 3Dスフェロイドを生成するには、シャーレのふたの内側に新たに単離したMPC懸濁液（1.5×10 4細胞/ドロップ）の20μlの滴を置きます。
注：取扱滴が自分の破裂につながる可能性としては、それが過剰でそれらを置くことは非常にお勧めです。 - 慎重に吊り蒸発を低下防止するために、D-PBSを含むペトリ皿を要約するために蓋を使用します。 5％CO 2で37℃でインキュベート一晩の細胞が3Dスフェロイドに集約することを可能にします。
- プレ冷蔵24ウェル培養プレート中で標準的なECMタンパク質の300μlのアリコートを加えることにより、ネズミの細胞外マトリックス（ECM）タンパク質の厚いゲルをセットし、37℃で30分間インキュベートします。
- 慎重にペトリ皿のふたを転倒し、静かに滅菌パスツールピペットを用いて、スフェロイドを拾います。
- 、ECMタンパク質ゲルにスフェロイドを置く標準VEGF豊富な内皮細胞増殖培地の700μlのアリコートを添加し、5％CO 2中、37℃でインキュベートします。
- 24時間後と7日間の培養で、4倍の倍率での3D培養物の写真を撮ります。最後の侵入細胞と回転楕円体のエッジとの間の半径方向の距離を測定することにより、画像解析ソフトウェアを適用するスフェロイドから発芽評価します。少なくとも20の異なる方向に沿って対策を繰り返します。平均距離は、ときに50ミクロン以上陽性とみなされます。
Representative Results
ここで説明する選択的培養条件はHBM-多国籍企業の1.0％として、新規な接着性と、ほぼ単型細胞集団の単離を可能にしている（0.5から2.0×10 5から6 HBM-多国籍企業-新鮮BMサンプルの10ミリリットル）5,6 。 MPCは5のように、静止状態、のKi-67陰性細胞を丸め、 -私たちは、これらの大（直径60μmで40）を同定しました。形態学的には、それらはより高い倍率（ 図1 A.1中の白矢印）での糸状仮足の多くを示すフラットな薄い周囲に囲まれた厚いコア領域と独特の目玉焼き-形状によって特徴づけられます。外側のセル境界の極性の伸長は、多くの場合（ 図1 A.1の黒矢印）が観察されます。このような形態は、標準的なMSC培養で報告された典型的な紡錘状間葉系間質細胞の外観とは明らかに異なります。フローサイトメトリーメートルしばらくCD31およびCD45を発現するために新たに単離したMPCの95％以上を示しました。esenchymal関連マーカーCD90とCD73 13は検出不能であった（ 図1 A.2）。私たちは、MPCのための4つの抗原のこの制限されたセットが示すものとして考えています。 MPCのさらなる顕著な特徴は、細胞内で検出されないポドソームのような構造（ 図1 A.3における赤）とネスチンの強烈な表現（ 図1 A.3で緑）、の数を明らかに点線のF-アクチン分布していますアイソタイプ対照抗体で染色した（データは示さず）。
メディア指数関数的に成長しているMSC様細胞（ 図1 B.1）への迅速な分化MSC拡張の結果を得るために設計された標準のRSでのMPCを培養します。 2継代細胞は、最終的には、CD73 + CD90 + CD45 陰性 CD31の陰性 （ 図1 B.2）にCD73 陰性 CD90 陰性 CD45 + CD31 +からその表現型を切り替えた後。プロセスにおいて、MPCは再orgaがストレスファイバーにnize F-アクチンネスチン発現は、いくつかのまれな細胞（ 図1 B.3）に閉じ込めなるが。明確なMSC様表現型へのMPC mesengenic分化は異なる細胞形態によって明らかにされた二つの別個のステップを介して行われます。 MSC RS培地で1週間MPC様細胞の残留集団後も（ 図2（a）におけるP1-MSCの）平坦な多角形の多分岐細胞のコンフルエントな層内で検出可能です。さらに、通路は、（ 図2のAにP2-MSCの）紡錘状MSC様細胞のほぼ単相培養物を得るために必要とされます。従って、それらのMSCの性質を確認し、少なくとも2週間選択培地に移したとき、これらの指数関数的に増殖する細胞は容易に骨芽細胞や脂肪細胞に分化することができます。骨形成誘導培養物において、カルシウム沈着は、測色アリザリンS染色または特異的な蛍光色素（ 図2 Bで緑）のいずれかによって検出することができます。脂肪生成誘導細胞の後（ 図2 Bに赤）のいずれかの比色オイルレッドや蛍光ナイルレッド染色によって明らかにされたように脂肪滴の蓄積を示しています。
MPCタイプは、血管新生アッセイを発芽によって確認しました。 MPCが24時間のVEGF-刺激（ 図2 C）後の3Dスフェロイドから（マイクロメートル50以上）は、マウスのECMタンパク質ゲルに侵入する能力を示しました。 600μmの距離 - 細胞に侵入し、一週間後に300で検出されました。逆に、侵入能力はmesengenic分化（ 図2 D）後にP2-MSCの中で失われました。
図1. 新たに単離したMPCが特徴的な機能を持っている。DMEM / 10％PhABSで培養HBM-多国籍企業の7日間は、MSCから容易に区別できる静止状態のMPC（A）の人口（B）を生じさせますこの図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
図2 のMPCは 、in vitroでの 標準MSCおよび表示萌芽血管新生に分化する 。MSCの拡張のために設計された市販のRS媒体を含むDMEM / PhABSの交換はMPCはのmesengenic誘導をトリガします。文化の中で1週間後、いくつかの残留のMPCはまだMSC-RS媒体のさらなる通路がコンフルエントMSC様細胞の集団（P2-MSCは、スケールバー= 100μm）とにつながりながら、検出可能な（P1-のMSC）です。 Pカルシウム沈着（Bにおける緑）、脂肪滴の蓄積（Bで赤、スケールバー= 200μm）とによって明らかにされたように2-MSCは末端それぞれ、適切な刺激下での骨細胞や脂肪細胞に分化します。 MPCがP2-のMSC（D、スケールバー= 1.0ミリメートル）との違いで、マウスのECMタンパク質ゲル（C）におけるスフェロイドから発芽一貫性を示している。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
Acknowledgments
著者は、特に骨髄サンプルと人間の骨前駆細胞の彼の専門知識を提供するための、ピサの大学、博士パオロ・パーチ、外科、医療・分子病理学とクリティカルケア医学の部門に感謝したいと思います
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Matrigel Basement Membrane Matrix | BD Bioscience (San Jose, CA-USA) | 354230 | Murine ECM proteins Stock Concentration: 100% (9 - 12 mg/ml) Final Concentration: 100% |
| Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (D-PBS) | Sigma (St. Louis, MO, USA) | D8537 | |
| 70 μm Filters | Miltenyi Biotec (BergischGladbach, Germany) | 130-095-823 | |
| Ficoll-Paque PREMIUM | GE Healthcare (Uppsala, Sweden) | 17-5442-03 | medium for discontinuos density gradient centrifugation |
| Pooled human AB type serum (PhABS) | LONZA (Walkersville MD-USA) | 14-490E | Final Concentration: 10% |
| Glutamax-I | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | 35050-038 | Stabilized L-Glutamine Stock Concentration: 100x Final Concentration: 2 mM |
| Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma (St. Louis, MO, USA) | A8412 | Stock Concentration: 7.5% Final Concentration: 0.5% |
| Sodium Azide | Sigma (St. Louis, MO, USA) | S8032 | Final Concentration: 0.02% |
| Penicillin/Streptomycin (Pen Strep) | Gibco (Grand Island, NY, USA) | 15070-063 | Antibiotics Stock Concentration: 5,000 UI/ml penicillin, 5,000 μg/ml Streptomycin Final Concentration: 50 UI/ml penicillin, 50 μg/ml Streptomycin |
| T-75 culture flask for suspension cultures | Greiner Bio-one (Frickenhausen, Germany) | 658 190 | |
| T-75 culture flask TC treated | Greiner Bio-one (Frickenhausen, Germany) | 658170 | |
| TrypLE Select | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | 12563-011 | Animal-free proteases detaching solution Stock Concentration: 1x Final Concentration: 1x |
| Trypsin/EDTA | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | 15400-054 | Phenol red free Stock Concentration: 0.5% Final Concentration: 0.25% |
| anti-CD90 APC antibody (CD90) | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-095-402 | Final Concentration: 1:40 |
| anti-CD45 APC-Vio770 antibody (CD45) | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-096-609 | Final Concentration: 1:40 |
| anti-CD73 PE antibody (CD73) | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-095-182 | Final Concentration: 1:40 |
| anti-CD31 PE Vio-770 antibody (CD31) | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-105-260 | Final Concentration: 1:40 |
| Mouse IgG1 APC antibody | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-098-846 | Final Concentration: 1:40 |
| Mouse IgG2a APC Vio770 antibody | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-096-637 | Final Concentration: 1:40 |
| Mouse IgG1 PE antibody | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-098-845 | Final Concentration: 1:40 |
| Mouse IgG1 PE Vio-770 antibody | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-098-563 | Final Concentration: 1:40 |
| Low Glucose Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | 13-1331-82 | Phenol red-free minimal essential medium Stock Concentration: 1,000 mg/L glucose |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | 10500 | Stock Concentration:0.2 mg/ml Final Concentration: 2 μg/ml |
| Prolong Gold antifade reagent with 4’,6-diamidino-2-phenylindole | Invitrogen (Waltham, MA, USA) | P-36931 | Aqueous mounting medium + DAPI Final Concentration: 1x |
| Paraformaldehyde | Sigma (St. Louis, MO, USA) | P6148 | Fixative Final Concentration: 4% |
| LAB-TEK two-well chamber slides | Sigma (St. Louis, MO, USA) | C6682 | |
| Anti-Nestin antibody [clone 10C2] | Abcam (Cambridge, UK) | ab2035 | Stock Concentration: 1 mg/ml Final Concentration: 7 μg/ml |
| Alexa Fluor 555 Phalloidin | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | A34055 | Stock Concentration: 200 UI/ml Final Concentration: 5 UI/ml |
| Triton X-100 | Euroclone (Milan, Italy) | EMR237500 | Final Concentration: 0.05% |
| MesenPRO RS Medium (MSC-RS medium) | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | 12746-012 | |
| Alexa Fluor 488 anti-mouse SFX kit | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | A31619 | Goat anti-mouse secondary antibody + Signal enhancer Stock Concentration: 2 mg/ml Final Concentration: 2 μg/ml |
| Pasteur Pipette | Kartell Labware (Noviglio (MI), ITALY ) | 329 | |
| StemMACS AdipoDiff Media | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-091-679 | |
| StemMACS OsteoDiff Media | MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Germany) | 130-091-678 | |
| Osteoimage Bone mineralization Assay | LONZA (Walkersville MD-USA) | PA-1503 | Hydroxyapatite specific fluorescent staining solution |
| 50 ml Polystyrene conical tube | Greiner bio-one (Kremsmünster Austria) |
227261 | |
| Nile Red | ThermoFisher (Waltham, MA USA) | N1142 | Fluorescent staining solution for lipids Stock Concentration: 100 mM Final Concentration: 200 Nm |
| Glycerin | Sigma (St. Louis, MO, USA) | G2289 | Final Concentration: 50% |
| Polistirene Petri dishes | Sigma (St. Louis, MO, USA) | P5606 | |
| 24-well plates TC-treated | Greiner Bio-one GmbH (Frickenhausen, Germany) | 662160 | |
| Endothelial Growth Medium, EGM-2 BulletKit (EGM-2) | LONZA (Walkersville MD-USA) | CC-3162 | VEGF-rich endothelial cell growth medium |
| Leica Qwin Image Analisys Software | Leica (Wetzlar, Germany) | Image analysis software |
References
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