Summary

Forberedelse og<em> In vivo</em> Anvendelse af en aktivitetsbaseret Probe til<em> N</em> -acylethanolamine Acid-amidase

Published: November 23, 2016
doi:

Summary

Her beskriver vi fremstilling og anvendelse af et aktivitetsbaseret sonde (ARN14686, undec-10-ynyl- N – [(3 S) -2-oxoazetidin-3-yl] carbamat), der giver mulighed for påvisning og kvantificering af aktive form af det proinflammatoriske enzym N -acylethanolamine syre amidase (NAAA), både in vitro og ex vivo.

Abstract

Aktivitetsbaseret proteinprofilering (ABPP) er en metode til identifikation af et enzym af interesse i en kompleks proteom ved anvendelse af en kemisk probe, som er målrettet mod enzymets aktive steder. En reporter tag indført i proben muliggør påvisning af det mærkede enzym ved in-gel fluorescens scanning, protein-blot, fluorescensmikroskopi eller væskekromatografi-massespektrometri. Her beskriver vi fremstilling og anvendelse af forbindelsen ARN14686, et klik kemi aktivitetsbaseret sonde (CC-ABP), som selektivt genkender enzymet N -acylethanolamine syre amidase (NAAA). NAAA er en cystein hydrolase, der fremmer inflammation ved at deaktivere endogene peroxisomproliferatoraktiveret receptor (PPAR) -alpha agonister, såsom palmitoylethanolamid (PEA) og oleoylethanolamide (OAS). NAAA syntetiseres som en inaktiv fuld længde proenzym, som aktiveres af autoproteolysis i det sure pH i lysosomer. Lokalisering undersøgelser have vist, at NAAA overvejende udtrykkes i makrofager og andre monocyt-afledte celler, såvel som i B-lymfocytter. Vi giver eksempler på, hvordan ARN14686 kan anvendes til at påvise og kvantificere aktiv NAAA ex vivo i gnavere væv ved protein-blot og fluorescensmikroskopi.

Introduction

Almindeligt anvendte metoder til at undersøge ekspressionsmønstre, interaktioner og funktioner af proteiner, herunder væskekromatografi-massespektrometri platforme til shotgun analyse 1,2, gær to-hybrid metoder 3,4, og in vitro-assays, er begrænset ved, at de er ude af stand til at vurdere aktiviteten af ​​proteiner i deres native tilstand. Aktivitetsbaseret protein profilering (ABPP) kan bruges til at udfylde dette hul. I denne fremgangsmåde, små-molekyle prober i stand til kovalent binding til det aktive sted af et enzym af interesse er konjugeret til en reportergruppe, der giver mulighed for måldetektion. Brug af klik-kemi (CC), kan reporter integreres i proben eller kan indføres efter mål indgreb har fundet sted 5,6. Sidstnævnte procedure kræver brug af sonder, der indeholder relevante kemiske grupper, såsom en terminal alkyn eller azid, hvilket kan modificeres med en række reporter reagenser via bio-ortogonale reaktioner such som Cu (I) -catalyzed Huisgen [3 + 2] cycloaddition 7-9 eller Staudinger ligering 10,11.

For nylig beskrev vi forbindelsen ARN14686 som den første ABP til in vitro og in vivo detektion af cystein hydrolase, NAAA 12. NAAA katalyserer den hydrolytiske deaktivering af mættede og enkeltumættede Faes, herunder oleoylethanolamide (OAS) og palmitoylethanolamid (PEA), som er endogene agonister af den antiinflammatoriske nuklear receptor PPAR-alpha 13-15. NAAA udtrykkes overvejende i makrofager og andre monocyt-afledte celler, såvel som i B-lymfocytter 14,16, hvilket antyder en rolle i reguleringen af den medfødte immunreaktion. Enzymet syntetiseres i ru endoplasmatisk reticulum i en inaktiv form og aktiveres i sure rum i cellen med en autoproteolytisk mekanisme 17. Den autoproteolytisk spaltning genererer en ny N-terminal cystein (C131 i mus og rotter, C126 i mennesker), der er nukleofilen ansvarlig for FAE hydrolyse 18,19. Farmakologisk hæmning af NAAA aktivitet ændrer FAE syntese / nedbrydning balance til fordel for øget cellulære niveauer af FAES 16,20,21. Adskillige β-lacton og β-lactam-derivater har vist sig at inhibere NAAA aktivitet med høj styrke og selektivitet 16,22-26. Disse inhibitorer virker gennem S-acylering af den katalytiske cystein 16,27,28.

Forbindelsen ARN14686 designet baseret på den kemiske struktur af den systemisk aktive, serin-afledt β-lactam NAAA inhibitor, ARN726 (4-cyclohexylbutyl- N[(S) -2-oxoazetidin-3-yl] carbamat) 16. Det 4-butyl-cyclohexylgruppe af ARN726 blev erstattet med en C9 mættet alifatisk kæde, der bærer en terminal alkyn tag for efterfølgende CC konjugering med et azid-bærende reporter tag. Vi valgte at designe en to-trins ABP at minimally ændre strukturen af ​​det oprindelige stillads opretholder således affiniteten af ​​probe for NAAA. Desuden undgår indførelsen af voluminøse tags, kan en sådan probe være mere egnet til in vivo-behandling end en direkte ABP. ARN14686 inhiberer NAAA med stor styrke (hNAAA IC50 = 6 nM, rNAAA IC50 = 13 nM) ved at danne en kovalent addukt med den katalytiske cystein af enzymet 12. Forsøg i levende rotter viste, at sonden er selektiv i at fange NAAA udtrykt i lungerne. Acid ceramidase, andet cystein amidase der deler 33-34% identitet med NAAA, blev også identificeret som en lav-affinitet mål, når ved hjælp af høj probe koncentrationer (10 uM in vitro, 10 mg / ml intravenøs, iv) 12. Vi har også benyttet ARN14686 at undersøge tilstedeværelsen af aktive NAAA i betændte rottevæv efter indgivelse af komplet Freunds adjuvans (CFA) 29.

Her vil vi skitsere en protokol for preparatipå af ARN14686 (figur 1) og dens anvendelse på undersøgelsen af NAAA aktivering ex vivo. Som et eksempel beskriver vi en eksperimentel procedure at visualisere NAAA i rotte poter efter CFA administration. I dette forsøg er proteiner ekstraheret fra paw væv efter intravenøs injektion af sonden, og ABP-mærkede proteom underkastes CC med biotin-azid. Biotinylerede prøver er beriget ved hjælp streptavidinkugler, og protein blots udføres. I en anden anvendelse, beskriver vi lokalisering af aktiv NAAA ved fluorescensmikroskopi i muselunger fra probe-behandlede mus. I dette tilfælde er vævet i snit og sektioner underkastes CC for rhodamin tilsætning. En arbejdsgang skema er illustreret i figur 2.

Protocol

Forsigtig: Alle kemi reaktioner bør udføres i et ventileret stinkskab og med anvendelse af en lab coat, handsker og beskyttelsesbriller. Reaktionerne bør også udføres i et nitrogenmiljø. Etisk erklæring: Vores procedurer, som involverer dyr udføres i overensstemmelse med de italienske bestemmelser om beskyttelse af dyr, der anvendes til forsøg og andre videnskabelige formål (116.192 DM) og Det Europæiske Økonomiske Fællesskab forskrifter (EFT af EF L 358/1 1986/12/18 ). BEMÆRK: Syntese af [(3S) -2-oxoa…

Representative Results

ARN14686 designet baseret på stilladset af NAAA inhibitor ARN726. Det 4-butyl-cyclohexylgruppe af ARN726 blev erstattet med en C9 mættet alifatisk kæde, der bærer en terminal alkyn tag (figur 1). Den alkyn tag blev indført for at tillade anvendelse af en procedure i to trin mærkning for at tilføje en fluorofor eller en biotin molekyle via CC. Denne funktion gør ARN14686 et meget alsidigt værktøj til at probe NAAA in vitro og in vivo. <p cl…

Discussion

Enzymaktiviteten fint reguleret på forskellige niveauer, herunder RNA-transkription, proteinsyntese, protein translokation, post-translationel modifikation, og protein-protein-interaktion. Ofte enzym udtryk alene tager ikke højde for dets aktivitet. ABPP blev udviklet til at studere aktiviteten af ​​proteiner i deres native tilstand. To funktioner er nødvendige: en kemisk probe, som kovalent binder til det aktive sted af et enzym af interesse og et reporter-tag til påvisning af proben-mærket enzym.

<p class…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank the Nikon Imaging Center at Istituto Italiano di Tecnologia, Genova, Italy (NIC@IIT).

Materials

1,1’-sulfonyldiimidazole  Sigma Aldrich 367818 Harmful
2-dipyridylcarbonate Fluorochem 11331 Harmful
2-Methylbutan Sigma Aldrich M32631 Flamable, toxic,hazardous to the aquatic environment
4-(Dimethylamino)pyridine Sigma Aldrich 107700 Toxic
Acetic acid Sigma Aldrich 695092 Flammable, Corrosive
Acetonitrile  Sigma Aldrich 34998 Flammable, Toxic
Activated charcoal Sigma Aldrich 161551
Ammonium chloride Sigma Aldrich A9434 Harmful
Azide-PEG3-Biotin Jena Biosciences CLK-AZ104P4
Azide-PEG3-Fluor 545 Jena Biosciences CLK-AZ109
BCA protein assay kit Thermo Fisher Scientific 23227
Bio-spin columns Biorad 732-6204
Biotin Sigma Aldrich B4501
Blocking buffer Li-Cor Biosciences 927-40000
b-mercaptoethanol Sigma Aldrich M6250 Higly toxic
Bovin serum albumine (BSA) Sigma Aldrich A7030
Bromophenol blue Sigma Aldrich B0126
Bruker Avance III 400 Bruker
Celite Sigma Aldrich 419931 Health hazard
Ceric ammonium nitrate  Sigma Aldrich 22249 Oxidizing, Harmful
Chloral hydrate Sigma Aldrich C8383 Higly toxic
CuSO4.5H2O  Sigma Aldrich 209198 Toxic
Cyclohexadiene Sigma Aldrich 125415 Flammable, Health hazard
Cyclohexane Sigma Aldrich 34855 Flammable, Harmful, Health hazard, Environmental hazard
Dichloromethane Sigma Aldrich 34856 Harmful, Health hazard
Diethyl ether Sigma Aldrich 296082 Flammable, Harmful
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Acros Organics 348441000
Dimethyl sulfoxide d6 (DMSO-d6) Sigma Aldrich 175943
Ethanol Sigma Aldrich 2860 Flammable, Harmful
Ethyl acetate Sigma Aldrich 34858 Flammable, Harmful
Glycerol Sigma Aldrich G5516
Irdye 680-LT Streptavidin Li-Cor Biosciences 925-68031
IRDye680-LT Streptavidin  Licor 925-68031 Briefly centrifuge before use to precipitate protein complexes
Methanol Sigma Aldrich 34966 Highly toxic
Methanol Sigma Aldrich 34860 Flammable, Toxic, Health hazard
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride Sigma Aldrich E7750 Harmful, Corrosive
N,N-diisopropylethylamine Sigma Aldrich D125806 Flammable, Corrosive, Toxic
N,N-dimethylformamide Sigma Aldrich 227056 Flammable, Harmful, Health hazard
N-Cbz-L-Serine Fluorochem  M03053 Harmful
Nikon A1 confocal microscopy Nikon Read  the user manual
NuPAGE 4-12% Bis-Tris gel Thermo Fisher Scientific NP0335BOX
Palladium on carbon Sigma Aldrich 330108
p-anisidine Sigma Aldrich A88255 Toxic, Health hazard, Environmental hazard
Paraformaldehyde sigma Aldrich 441244 Toxic, respiratory harmful, corrosive, falmable
Poly(ethylene glycol)  Sigma Aldrich P3265
ProLong Gold antifade mountant with DAPI  Thermo Fisher Scientific P36931 Avoid bubbles formation
Protease inhibitor cocktail Sigma Aldrich P8340
Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S6014
Sodium dodecyl sulfate (SDS)  Sigma Aldrich L3771 Toxic, corrosive, falmmable
Sodium hydride  Sigma Aldrich 452912 Flammable
Sodium sulfate Sigma Aldrich 239313
Starion FLA-9000 immage scanner FUJIFILM Read  the user manual
Streptavidin agarose Thermo Fisher Scientific 20349
Sucrose Sigma Aldrich S7903
Tert-butanol Sigma Aldrich 360538 Toxic, flammable
Tetrahydrofuran Sigma Aldrich 186562 Flammable, Harmful, Health hazard
Thiourea Acros Organics 424542500 Toxic, warm at 50 °C to dissolve
Tris Sigma Aldrich RDD008
Tris(2-carboxyethyl)phosphine (TCEP) Sigma Aldrich C4706
Tris[(1-benzyl-1H-1,2,3-triazol-4-yl)methyl]amine (TBTA) Sigma Aldrich 678937
Triton-x100 Sigma Aldrich X100 Toxic
Tween-20 Sigma Aldrich P9416
Tween-80 Sigma Aldrich P1754
Ultra turrax IKA T18 basic tissue homogenizer IKA
Undec-10-yn-1-ol Fluorochem 13739 Harmful
Urea Sigma Aldrich U5378 Toxic, warm at 50 °C to dissolve

References

  1. Gygi, S. P., Han, D. K., Gingras, A. C., Sonenberg, N., Aebersold, R. Protein analysis by mass spectrometry and sequence database searching: tools for cancer research in the post-genomic era. Electrophoresis. 20, 310-319 (1999).
  2. Washburn, M. P., Wolters, D., Yates, J. R. Large-scale analysis of the yeast proteome by multidimensional protein identification technology. Nat Biotechnol. 19, 242-247 (2001).
  3. Zhu, H., Bilgin, M., Snyder, M. Proteomics. Annu Rev Biochem. 72, 783-812 (2003).
  4. Ito, T., et al. Roles for the two-hybrid system in exploration of the yeast protein interactome. Mol Cell Proteomics. 1, 561-566 (2002).
  5. Evans, M. J., Cravatt, B. F. Mechanism-based profiling of enzyme families. Chem Rev. 106, 3279-3301 (2006).
  6. Cravatt, B. F., Wright, A. T., Kozarich, J. W. Activity-based protein profiling: from enzyme chemistry to proteomic chemistry. Annu Rev Biochem. 77, 383-414 (2008).
  7. Rostovtsev, V. V., Green, L. G., Fokin, V. V., Sharpless, K. B. A stepwise huisgen cycloaddition process: copper(I)-catalyzed regioselective “ligation” of azides and terminal alkynes. Angew Chem Int Ed Engl. 41, 2596-2599 (2002).
  8. Meldal, M., Tornoe, C. W. Cu-catalyzed azide-alkyne cycloaddition. Chem Rev. 108, 2952-3015 (2008).
  9. Speers, A. E., Adam, G. C., Cravatt, B. F. Activity-based protein profiling in vivo using a copper(i)-catalyzed azide-alkyne [3 + 2] cycloaddition. J Am Chem Soc. 125, 4686-4687 (2003).
  10. Saxon, E., Bertozzi, C. R. Cell surface engineering by a modified Staudinger reaction. Science. 287, 2007-2010 (2000).
  11. Kohn, M., Breinbauer, R. The Staudinger ligation-a gift to chemical biology. Angew Chem Int Ed Engl. 43, 3106-3116 (2004).
  12. Romeo, E., et al. Activity-Based Probe for N-Acylethanolamine Acid Amidase. ACS Chem Biol. 10, 2057-2064 (2015).
  13. Ueda, N., Yamanaka, K., Yamamoto, S. Purification and characterization of an acid amidase selective for N-palmitoylethanolamine, a putative endogenous anti-inflammatory substance. J Biol Chem. 276, 35552-35557 (2001).
  14. Tsuboi, K., et al. Molecular characterization of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase, a novel member of the choloylglycine hydrolase family with structural and functional similarity to acid ceramidase. J Biol Chem. 280, 11082-11092 (2005).
  15. Tsuboi, K., Takezaki, N., Ueda, N. The N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase (NAAA). Chem Biodivers. 4, 1914-1925 (2007).
  16. Ribeiro, A., et al. A Potent Systemically Active N-Acylethanolamine Acid Amidase Inhibitor that Suppresses Inflammation and Human Macrophage Activation. ACS Chem Biol. 10, 1838-1846 (2015).
  17. Zhao, L. Y., Tsuboi, K., Okamoto, Y., Nagahata, S., Ueda, N. Proteolytic activation and glycosylation of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase, a lysosomal enzyme involved in the endocannabinoid metabolism. Biochim Biophys Acta. 1771, 1397-1405 (2007).
  18. Wang, J., et al. Amino acid residues crucial in pH regulation and proteolytic activation of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase. Biochim Biophys Acta. 1781, 710-717 (2008).
  19. West, J. M., Zvonok, N., Whitten, K. M., Wood, J. T., Makriyannis, A. Mass spectrometric characterization of human N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase. J Proteome Res. 11, 972-981 (2012).
  20. Bandiera, T., Ponzano, S., Piomelli, D. Advances in the discovery of N-acylethanolamine acid amidase inhibitors. Pharmacol Res. 86, 11-17 (2014).
  21. Sasso, O., et al. Antinociceptive effects of the N-acylethanolamine acid amidase inhibitor ARN077 in rodent pain models. Pain. 154, 350-360 (2013).
  22. Duranti, A., et al. N-(2-oxo-3-oxetanyl)carbamic acid esters as N-acylethanolamine acid amidase inhibitors: synthesis and structure-activity and structure-property relationships. J Med Chem. 55, 4824-4836 (2012).
  23. Ponzano, S., et al. Synthesis and structure-activity relationship (SAR) of 2-methyl-4-oxo-3-oxetanylcarbamic acid esters, a class of potent N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors. J Med Chem. 56, 6917-6934 (2013).
  24. Solorzano, C., et al. Synthesis and structure-activity relationships of N-(2-oxo-3-oxetanyl)amides as N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase inhibitors. J Med Chem. 53, 5770-5781 (2010).
  25. Vitale, R., et al. Synthesis, structure-activity, and structure-stability relationships of 2-substituted-N-(4-oxo-3-oxetanyl) N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors. ChemMedChem 9. 9, 323-336 (2014).
  26. Fiasella, A., et al. 3-Aminoazetidin-2-one derivatives as N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors suitable for systemic administration. ChemMedChem 9. 9, 1602-1614 (2014).
  27. Armirotti, A., et al. beta-Lactones Inhibit N-acylethanolamine Acid Amidase by S-Acylation of the Catalytic N-Terminal Cysteine. ACS Med Chem Lett. 3, 422-426 (2012).
  28. Nuzzi, A., et al. Potent alpha-amino-beta-lactam carbamic acid ester as NAAA inhibitors. Synthesis and structure-activity relationship (SAR) studies. Eur J Med Chem. 111, 138-159 (2016).
  29. Bonezzi, F. T., et al. An Important Role for N-Acylethanolamine Acid Amidase in the Complete Freund’s Adjuvant Rat Model of Arthritis. J Pharmacol Exp Ther. 356, 656-663 (2016).
  30. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem. 150, 76-85 (1985).
  31. Speers, A. E., Cravatt, B. F. Activity-Based Protein Profiling (ABPP) and Click Chemistry (CC)-ABPP by MudPIT Mass Spectrometry. Curr Protoc Chem Biol. 1, 29-41 (2009).
  32. Rybak, J. N., Scheurer, S. B., Neri, D., Elia, G. Purification of biotinylated proteins on streptavidin resin: a protocol for quantitative elution. Proteomics. 4, 2296-2299 (2004).
  33. Penna, A., Cahalan, M. Western Blotting using the Invitrogen NuPage Novex Bis Tris minigels. J Vis Exp. (264), (2007).
  34. Giuffrida, A., Piomelli, D. Isotope dilution GC/MS determination of anandamide and other fatty acylethanolamides in rat blood plasma. FEBS Lett. 422, 373-376 (1998).
  35. Buczynski, M. W., Parsons, L. H. Quantification of brain endocannabinoid levels: methods, interpretations and pitfalls. Br J Pharmacol. 160, 423-442 (2010).

Play Video

Cite This Article
Romeo, E., Pontis, S., Ponzano, S., Bonezzi, F., Migliore, M., Di Martino, S., Summa, M., Piomelli, D. Preparation and In Vivo Use of an Activity-based Probe for N-acylethanolamine Acid Amidase. J. Vis. Exp. (117), e54652, doi:10.3791/54652 (2016).

View Video