Summary
电化学发光免疫测定(ECLIA)是一种定量检测内源和外源应用的MeCP2蛋白变异的新方法,在广泛的工作范围内产生高定量、准确和可重复的测量,检测内误差低。此处介绍了 MeCP2-ECLIA 的 96 井格式的协议。
Abstract
ECLIA 是一种多功能方法,能够以 96 孔格式量化内源和重组蛋白量。为了证明ECLIA的效率,该测定用于分析小鼠脑组织中MeCP2的内在水平和TAT-MeCP2在人类皮肤纤维细胞中的接受。MeCP2-ECLIA 可生成高精度和可重复的测量,具有较低的内部和内部测定误差。总之,我们开发了一种定量方法,用于评估MeCP2蛋白变异,可用于高通量屏幕。
Introduction
电化学发光免疫测定(ECLIA)基于一个过程,该工艺利用标签,设计在电化学刺激时发出发光。它是一种广泛适用的生物分析物定量检测技术,用于基础工业和学术研究、食品工业以及临床诊断1。通常,使用带有碳墨水电极的一次性 96 孔板。这些电极充当免疫测定的固相载体。二次抗体与电化学发光标签结合,当电应用于系统时,触发化学标签的光发射。超低噪声电荷耦合装置(CCD)记录光强度与与捕获抗体结合的抗原成正比,从而对样品2的目标解解物进行定量。与酶相关的免疫吸附剂测定(ELISA)相比,ECLIA被认为是有利的,因为它提供了更高的灵敏度和可重复性,以及更好的自动化和一致性3。
在这里,我们分析了人类和鼠源样品中的甲基-CpG结合蛋白2(MeCP2)水平,以及使用新开发的ECLIA系统对重组蛋白的不同变异。MecP2是一种与X相关的核酸结合蛋白,已知与甲基化DNA序列相互作用。这种蛋白质已经牵连到基因表达的调节44,5。5编码这种蛋白质的基因功能丧失突变是导致Rett综合征(RTT)的罪魁祸首,一种严重的神经发育障碍6。另一种MeCP2相关疾病,MECP2重复综合征,也导致神经症状,可以重叠的RTT7。值得注意的是,女性大多受RTT影响,而男性则大多受MECP2重复综合征66、77的影响。
这些疾病分别与中枢神经系统(CNS)中MeCP2水平不足或过量有关。因此,RTT的治疗方案,涉及增加MECP2水平在CNS将需要避免与过量的MeCP27相关的有害影响。由于这一事实,ECLIA系统对MeCP2蛋白水平进行高度敏感和准确的定量,对于推进RTT以及MECP2重复综合征研究至关重要。从人体细胞系和小鼠组织样本中精确测量内源性和外源性MeCP2水平,以及由人类MeCP2等型B(也称为异体e1)组成的重组蛋白,以及具有跨越血脑屏障88、99的最小N-终端HIV-TAT转导域(TAT-MeCP2)。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
澳大利亚韦斯特米德儿童医院人体研究伦理委员会批准了为研究目的进行皮肤活检采购。动物实验的同意得到了奥地利联邦科学、研究和经济部的同意,这些实验是根据当地动物福利条例(GZ:66.009/0218-II/3b/2015)进行的。
注:图1中描述了ECLIA系统的原理。
1. 抗体选择
- 评估各种 MeCP2 抗体的信号噪声比,并在主小鼠单克隆 MeCP2 抗体(克隆 Mec-168)和兔子多克隆 MeCP2 检测抗体(定制)的组合中确定最佳信号强度和最高特异性。对于二次抗体,使用系统特异性抗体(材料表),该抗体也经过实验验证。
注:表1概述了MeCP2-ECLIA开发期间所有经过验证的抗体及其经过测试的稀释范围。
功能 | 名字 | 克隆 | 稀释 |
主要 | 鼠标,防MeCP2 | 梅克-168 | 1:500~1:10,000 |
主要 | 鼠标,防MeCP2 | 4B6 | 1:250~1:4,000 |
主要 | 鼠标,防MeCP2 | 男士-8 | 1:500~1:4,000 |
主要 | 鼠标,防MeCP2 | 1B11 | 1:500~1:4,000 |
主要 | 兔子,抗MeCP2 | D4F3 | 1:500~1:4,000 |
二 次 | 兔子,抗MeCP2 | 多克隆 | 1:2,000~1:20,000 |
二 次 | 兔子,抗MeCP2 | 多克隆 | 1:2,000~1:20,000 |
检测 | SULFO-TAG 标签防兔 | 多克隆 | 1:500~1:1,000 |
表1:抗体和已用工作稀释物清单。
- 或者,使用每对与传统的 ELISA 配合良好的 MeCP2 抗体。
2. 使用 TAT-MeCP2 融合蛋白处理 HDF
注:TAT-MeCP2 在大肠杆菌中经过重组表达,并使用标准色谱技术进行纯化,如前所述的 8,并储存在-80°C。
- 板 1 x 106人皮纤维细胞 (HDF) 细胞在 100 mm 的菜肴中,在 37 °C 下以 5% CO2在 37°C 下一夜之间生长细胞,直到达到约 90% 的汇合。
- 拿出一小瓶TAT-MeCP2融合蛋白。在冰上解冻,轻轻混合。
- 在 50 mL HDF 培养介质中,将 TAT-MeCP2 稀释至最终浓度为 500 nM。
- 从 100 mm 的培养皿中取出介质,在 37 °C 下用 500 nM TAT-MeCP2 孵育细胞,使各种孵育期长达 24 小时。
- 从单元中删除 TAT-MeCP2 解决方案。用预加热的Dulbecco磷酸缓冲盐水(DPBS)对细胞进行2倍清洗。
- 在37°C10下,用2 mL0.05%的胰蛋白酶-EDTA溶液处理细胞5分钟。
- 加入6 mL的HDF培养介质来停用胰蛋白酶,并将细胞收集到15 mL管中。
- 在室温下,在500 x g处离心5分钟,将细胞中离心。
- 取出上清液,用冰冷的DPBS洗涤2倍的细胞。将颗粒储存在冰上,然后进行样品制备。
3. 样品制备
- HDF 裂度
- 根据铃木等人11号,使用REAP方法将亚细胞分馏到细胞质和核亚细胞隔间中,确定MeCP2的最高蛋白质水平。每次实验的分馏限制为不超过六个样本。
- 小鼠脑力灰分
- 准备100 mL的每个低毒液集液试剂和提取缓冲液。
- 对于低毒液赖塞试剂,混合10 mM HEPES、1.5m氯化镁和10 mM氯化钾。
- 对于萃取缓冲液,混合 20 mM HEPES、1.5 mM 氯化镁、0.42 M 氯化钠、0.2 mM EDTA 和 25% (v/v) 甘油。
- 将两个缓冲器的 pH 调整为 7.9。
- 新鲜加入1 mM二硫醇(DTT)和1x蛋白酶抑制剂鸡尾酒。使用前在冰上冷却。
- 悬浮100毫克的总小鼠脑(应变:C57BL/6J,野生型男性和女性和B6.129P2(C)-Mecp2tm1.1Bird/J,血西古雄性和异血酶雌性;年龄:4-8周大)在1 mL的冰冷低毒丝病试剂。tm1.1Bird
- 通过预冷却的 Dounce 全玻璃组织均质器,分别通过 15 冲程(松散、大间隙)和 B(紧密、小间隙)使大脑均质化。
- 将均质细胞转移到清洁管和离心机在10,000 x g在4°C下20分钟。丢弃上清液(或将其保留为细胞原分,供进一步使用)。
- 每100毫克起始材料重新悬浮140μL的萃取缓冲液。将管置于预冷却的热块中,在 4 °C 下轻轻混合 30 分钟。
- 在 4 °C 下将管在 16,000 g 下离心 10 分钟。将上清液(即核馏分)转移到新的预冷却管,并储存在-80°C,直到使用。
注:从小鼠大脑和HDF中提取的裂干的蛋白质浓度可以通过BCA蛋白测定来评估。
- 准备100 mL的每个低毒液集液试剂和提取缓冲液。
4. MeCP2-ECLIA协议
- 洗涤溶液、阻塞缓冲液和测定稀释液的准备(第1天)
- 加入 500 μL 的 Tween 20 至 1 L 的 PBS,在 PBS 溶液中制备 0.05% Tween 20,大力混合,并标为"洗涤液"。
注:确保只使用新鲜准备的洗涤缓冲液。 - 在磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 中制备 3% 阻滞剂 A (材料表) 的阻滞溶液。通过温和搅拌混合,过滤消毒,并将其保存在冰箱中,直到使用最多两周。
- 将 5 mL 的阻塞溶液添加到 10 mL 的 PBS 中,以准备测定稀释溶液(PBS 中的 1% 阻滞器 A)。
- 加入 500 μL 的 Tween 20 至 1 L 的 PBS,在 PBS 溶液中制备 0.05% Tween 20,大力混合,并标为"洗涤液"。
- 高结合板涂层
- 拿出96孔多阵列单点高粘结板。
注:高结合板具有更大的结合能力,因此比具有疏水表面的标准板具有更大的动态范围。 - 在冰上解冻单克隆小鼠抗MeCP2抗体,将抗体的0.67μL与4 mLPBS混合(PBS中1:6,000抗体稀释)。涡旋抗体溶液混合良好,并将管标为"涂层溶液"。
- 使用多通道移液器在每个井底角小心分配25μL的涂层溶液;这称为溶液涂层方法。轻轻敲击每侧 96 孔板,确保涂层溶液覆盖每个井的底部。
- 用粘合箔密封板,并在冰箱中孵育板,温度为 4°C 过夜(12~16 小时)。
- 拿出96孔多阵列单点高粘结板。
- 阻塞(第 2 天)
- 从冰箱中取出盘子,取出铝箔。
- 将其轻拂到废篮中,然后轻触纸巾上的板,从井中取出所有涂层溶液,从而去除抗体涂层溶液。
- 每口井加125μL的阻塞溶液。再次密封板并将其放在轨道微板摇床上。
- 在室温下孵育板 90 分钟,在 800 rpm 时不断晃动。
- 标准和样品的准备
- 在孵育期间,准备MeCP2和/或TAT-MeCP2蛋白质标准及各种样品。
注:用于标准稀释的Lysis缓冲液必须与分析样品中使用的液位缓冲液相同。 - 从-80°C拿出一小瓶MePC2和/或TAT-MeCP2蛋白质库存溶液(250微克/米L),小鼠脑裂解液和HDF裂解剂。在冰上解冻。
- 根据表2,在清洁管中稀释标准库存溶液(MeCP2 和/或 TAT-MeCP2)。
- 稀释裂灰缓冲液中的样品,如下所示:每25μL裂灰缓冲液1~20μg,每25μL裂灰液液液0.25±1μg。准备足够的体积的每个样品进行三联分析。
- 在孵育期间,准备MeCP2和/或TAT-MeCP2蛋白质标准及各种样品。
标准 | 浓度 | 稀释 |
标准 1 | 1,800 纳克/mL | 1.08 μL 标准库存溶液 = 148.92 μL Lysis 缓冲液 |
标准 2 | 600 纳克/mL | 50 μL 标准 1 + 100 μL Lysis 缓冲液 |
标准 3 | 200 纳克/mL | 50 μL 标准 2 + 100 μL Lysis 缓冲液 |
标准 4 | 66.67 纳克/mL | 50 μL 标准 3 + 100 μL Lysis 缓冲液 |
标准 5 | 22.22 纳克/mL | 50 μL 标准 4 + 100 μL Lysis 缓冲液 |
标准 6 | 7.41 纳克/mL | 50 μL 标准 5 + 100 μL Lysis 缓冲液 |
标准 7 | 2.47 纳克/mL | 50 μL 标准 6 + 100 μL Lysis 缓冲液 |
标准 8 | 0.82纳克/米拉 | 50 μL 标准 7 + 100 μL Lysis 缓冲液 |
标准 9 | 0.27纳克/米拉 | 50 μL 标准 8 + 100 μL Lysis 缓冲液 |
标准 10 | 0 纳克/mL | 150 μL Lysis 缓冲液 |
表 2:标准系列从 0 到 1,800 纳克/mL。
- 添加示例和标准解决方案
- 将其轻拂到废篮中,然后轻触纸巾上的板,从井中取出所有阻塞溶液,从而拆下挡块溶液。
- 通过添加洗涤液并立即将其去除,使用 150 μL 洗涤液清洗板 3x。
- 使用单个通道移液器将 25 ul 标准和样品添加到井底角。
- 密封板,在室温下孵育板 4 小时,并在 800 rpm 时持续摇动。
- 未标记检测抗体
- 解冻冰上多克隆兔抗MeCP2抗体。在测定稀释液中稀释抗体1:6,000。
- 将其轻拂到废篮中,然后轻触纸巾上的盘子,从而拆下标准和样品。
- 通过添加洗涤液并立即将其去除,使用 150 μL 洗涤液清洗板 3x。
- 使用多通道移液器将 25 μL 未标记的检测抗体添加到每个井中。密封板,在室温下以 800 rpm 的恒定摇动,将其孵育 1 小时。
- 特定的偶联抗体
- 从冰箱中拿出特定的二次抗体(材料表),放在冰上。稀释抗体1:666.67测定稀释液,轻轻混合。
- 将无标签的二次抗体轻拂到废篮中,然后用纸巾敲击板,取出无标签的二次抗体。
- 通过添加洗涤液并立即将其去除,使用 150 μL 洗涤液清洗板 3x。
- 使用多通道移液器将25μL的特定偶联抗体(材料表)添加到每个孔中。密封板,在室温下以 800 rpm 的恒定摇动,孵育 1 小时。
- 读取板
- 将其轻拂到废篮中,然后用纸巾敲击盘子,取出自由共聚的抗体(材料表)。
- 用 150 μL 的洗涤液清洗板 3 倍。
- 加入150 μL的1x三聚三酯金读缓冲液(材料表),表面活性剂中含有三丙胺作为光生成的共同反应剂到板。使用反向移液技术避免任何气泡。
- 将板材放在微板检测平台(材料表)上,然后立即开始测量。使用 96 孔板采集的设置。
- 在电化学发光检测系统(材料表)中,内置CCD相机捕获电化学发光信号,并记录与相对光单位(RLU)相对相对的光单位(RLU)相对比例的信号计数。
注:电化学刺激后,与碳电极结合的铀标签在620nm处发出发光光。使用仪器随附的软件(材料表)分析数据。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
图1描述了ECLIA系统的原理。图 2显示了两个 MeCP2 变体的标准曲线。在广泛的浓度(1~1,800纳克/mL)上可以精确定量。在图3中,分析了从小鼠大脑和HDF中提取的MeCP2水平裂灰。图3A对来自异质细胞、野生型和敲空小鼠的脑核结扎液中的MeCP2表达进行了对比,而图3B中,使用ECLIA的MECP2缺乏人类成纤维细胞(c.806delG)中未检测到MeCP2蛋白。随着时间的推移,还调查了MECP2缺陷细胞系(c.806delG)对TAT-MeCP2的采用情况(图4)。最后,如表3所示,证明了在测定中和内部的精度。
图1:MeCP2电化学发光测定图。这个数字是从www.meso-scale.com改编的。请点击此处查看此图形的较大版本。
图 2:在多次测量中从人类 MeCP2 生成的 MeCP2 标准曲线。检测的下限 (LLOD)定义为空白上方的 2.5 个标准差 (SD),为 1.00 ng/mL。重组人类 MeCP2 (Abnova) 可在从 1.00 纳克/mL (LLOD) 到 1,800 ng/mL(检测上限 [ULOD]) 的范围内准确量化,R2 = 0.996。误差条表示 n = 3 的标准误差。这个数字是从施泰因克尔纳等人8.请点击此处查看此图形的较大版本。
图 3:小鼠大脑和 HDF 中的 MeCP2 级别。(A) MeCP2-蛋白质水平在脑核液液中测量,来自异质鼠(灰色、HET)和雌性野生型小鼠(黑色、野生型)(n = 4)和一只Mecp2-挖空小鼠(RTT);(B) 从MeCP2缺乏成纤维细胞系(c.806delG)中提取的细胞水合物,从新生儿脑病的男婴身上衍生为RTT综合征的模型,用于评估人类的MeCP2蛋白质水平和健康控制(黑色)。提供的数据为三联井的平均值 = SD(n = 3)。通过免疫荧光或使用ECLIA在突变细胞系中未检测到MeCP2蛋白(低于检测范围),进一步表明它是一个高度敏感的系统,用于进一步利用TAT融合蛋白进行研究。这个数字是从施泰因克尔纳等人8.请点击此处查看此图形的较大版本。
图 4:TAT-MeCP2 的时间相关采用。C.806delG HDF 中的 MeCP2 水平的核馏分用 500 nM 重组 TAT-MeCP2 融合蛋白进行处理。使用 MeCP2-ECLIA 进行了分析。在规定的时间点,细胞用DPBS清洗,用0.05%胰蛋白酶-EDTA孵育5分钟,以消除细胞外结合的TAT-MeCP2。通过添加血清中的培养物来停止胰蛋白酶化。电池悬浮液在500 x g下离心5分钟。使用冰冷的DPBS清洗细胞颗粒2倍后,样品被制备为提取核馏分,如协议部分所述。这个数字是从施泰因克尔纳等人8.请点击此处查看此图形的较大版本。
内部测定 | 国际赛 | ||||||||||
ng MeCP2 每 mL 蛋白质 | ng MeCP2 每 mL 蛋白质 | ||||||||||
井 1 | 井 2 | 井 3 | 意味 着 | SDa | SEMb | %CVc | 意味 着 | SDa | SEMb | %CVc | |
人类成纤维细胞 | 6.42 | 6.30 | 6.45 | 6.39 | 0.08 | 0.05 | 1.24 | 6.61 | 0.64 | 0.37 | 9.71 |
小鼠脑乳酶 | 9.92 | 10.16 | 10.36 | 10.14 | 0.22 | 0.13 | 2.17 | 11.22 | 0.94 | 0.54 | 8.33 |
a标准偏差,b标准误差平均值,c变化系数 |
表3:测定连续三天的HDF和野生型小鼠脑裂化测定精度。应用了每井1~10μg的细胞水酸酶蛋白。aSD,标准偏差;bSEM,标准误差表示;cCV,变异系数。这张表是从施泰因克尔纳等人8.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
为了测量内源性MeCP2、重组MeCP2和TAT-MeCP2水平,开发了96孔板ECLIA。已经表明,MeCP2蛋白功能的丧失导致RTT综合征6,目前治疗仅限于症状管理和物理治疗。一个有前途的治疗途径是所谓的蛋白质替代疗法,其中MeCP2水平可以打分到他们所需的浓度12,13,14,15。12,13,14,15过去二十年来,TAT融合蛋白跨越血脑屏障的潜力已被证明是成功的。12、13、14、15。12,13,14,15因此,这种方法的MeCP2交付可能有蛋白质替代治疗管理的背景下。为了评估TAT融合蛋白和其他治疗恢复MeCP2蛋白质水平的潜力,开发一种高效且经济实惠的测定方法,量化它们至关重要。本工作中描述的测定 ECLIA 能够准确、一致地确定 MeCP2 的水平,并具有良好的内部和内部测定值(表 3)。
对于以下MeCP2-ECLIA协议,小鼠脑裂液和HDF被用作感兴趣的细胞。但是,此协议可与至少人类和鼠源的所有其他细胞类型一起使用。此外,使用TAT-MePC2融合蛋白对HDF进行治疗,以表明该测定能够测量各种MeCP2蛋白变异。在样品制备过程中,避免或尽量减少在淋液缓冲液(如DTT或β-甲氧醇)中的还原剂,对于保持该技术的效率至关重要。该方法的其他关键步骤包括带有小鼠抗MeCP2抗体的板涂层、板块和样品添加,然后是4小时孵育兔抗MeCP2抗体。随后用特定的二次抗体(材料表)孵育和添加发生发光反应所需的试剂,是本程序的最后重要步骤。
为了优化 ECLIA 性能,可以执行以下步骤。此测定信号的最大输出不应超过一百万计数。为了防止液体扩散到电极之外,可以使用一种称为点涂层的技术将涂层溶液引入井中。此技术需要高精度移液或使用移液器机器人。此外,测试各种抗体浓度对提高测定特异性和减少背景信号都是有益的。为了解决后者,各种阻滞剂(如MSD、阻滞剂D-M)也可用于最终浓度0.1%。为了优化信号质量,建议测试各种孵化时间(在 300 rpm 或超过 300 rpm 处摇动)。最后,为了提高血清、血浆、尿液或脑脊液等特定介质的恢复和稀释线性度,可以测试几种稀释剂。
半定量的西式斑点和商业上可用的MeCP2-ELISA通常用于研究MeCP2蛋白质水平。ELISA 背后的工作原理与我们的 ECLIA 类似,检测模式有显著区别。与这些方法相比,MeCP2-ECLIA更快、更方便。ECLIA用于检测野生类型、异血杆菌和Mecp2挖空小鼠脑样本(图3A),与西方印迹所得的相同样本的MeCP2量(未显示数据)相比,发现结果。在ECLIA测量的雌性野生型和异血鼠脑样本的MeCP2水平观察到显著差异,西方印布未检测到其统计显著性。这种更高的ECLIA测定精度对于寻找能提高MeCP2蛋白质水平的新型化合物非常重要。
此外,MeCP2-ECLIA 的成本低于其 MeCP2-ELISA 对应物,由于其高动态范围从 1 纳/mL 到 1,800 ng/mL (R2 = 0.996),可用于含有低 MeCP2 量的样品。与所有市售的 ELISA 套件相比,ECLIA 的表现大大超过它们。与 ELISA 对应产品相比,ECLIA 具有更有利的动态范围,从 1+1,800 纳克/mL(鼠标、云克隆公司)和 0.156×10 ng/mL(人类、云克隆公司)(由于没有明确定义的下限检测,因此无法对这两种检测进行直接比较。
总之,已经表明MeCP2-ECLIA可以准确确定体内和体外的MeCP2量。虽然补充MECP2蛋白质水平在RTT影响患者的神经元确实是一个有希望的治疗途径,存在过量的MeCP2也可能导致严重的神经症状,与MECP2重复综合征16,17,18。16,17,18因此,该方法对于优化蛋白质替代治疗中外原引入的MeCP2量具有不可或缺的意义。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
我们非常感谢布里吉特·斯特姆博士对ECLIA文书的支持。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1,4-Dithiothreitol (DTT) | Sigma-Aldrich | D9779 | Hypotonic lysis reagent, Extraction Buffer |
Bio-Rad Protein Assay Dye Reagent Concentrate | Bio-Rad Laboratories Inc. | 500-0006 | Sample preperation |
Detection AB SULFO-TAG labeled anti-rabbit | Meso Scale Diagnostics | R32AB-1 | Antibody |
Discovery workbench 4.0 | Meso Scale Discovery | Software | |
DMEM (1X) | gibco by Life Technologies | 41966-029 | Sample preperation |
Dulbecco’s PBS (sterile) | Sigma-Aldrich | D8537-500ML | Sample preperation, Washing solution, Coating solution |
EDTA | Sigma-Aldrich | EDS | Extraction Buffer |
Fetal Bovine Serum | Sigma-Aldrich | F9665 | Sample preperation |
Glycerol | Sigma-Aldrich | G2025 | Extraction Buffer |
Gold Read Buffer T (1x) with surfactant | Meso Scale Diagnostics | R92TG | MeCP2 ECLIA protocol |
HEPES | Sigma-Aldrich | H3375 | Hypotonic lysis reagent, Extraction Buffer |
KIMBLE Dounce tissue grinder set | Sigma-Aldrich | D8938 | Sample preperation |
Laboratory Shaker, rocking motion (low speed) | GFL | 3014 | MeCP2 ECLIA protocol |
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl*6H20) | Sigma-Aldrich | M2670 | Hypotonic lysis reagent, Extraction Buffer |
MeCP2 (Human) Recombinant Protein (P01) | Abnova Corporation | H00004204-P01 | Cell treatment |
Microseal B seal | Bio-Rad Laboratories Inc. | MSB1001 | for plate sealing |
Monoclonal Anti-MeCP2, produced in mouse, clone Mec-168, purified immunoglobulin | Sigma-Aldrich | M6818-100UL; RRID:AB_262075 | Antibody, Coating solution |
MSD Blocker A | Meso Scale Diagnostics | R93BA-4 | Blocker |
MSD SECTOR Imager 2400 | Meso Scale Diagnostics | I30AA-0 | MeCP2 ECLIA protocol |
Multi-Array 96-well Plate | Meso Scale Diagnostics | L15XB-3/L11BX-3 | MeCP2 ECLIA protocol |
Penicillin-Streptomycin | gibco by Life Technologies | 15140122 | Sample preperation |
Polyclonal Anti-MeCP2, produced in rabbit | Eurogentec S.A. | custom-designed | Antibody |
Potassium chloride (KCl) | Merck KGaA | 1049361000 | Hypotonic lysis reagent |
Primary AB Mouse, anti-MeCP2 (1B11) | Sigma-Aldrich | SAB1404063; RRID:AB_10737296 | Antibody |
Primary AB Mouse, anti-MeCP2 (4B6) | Sigma-Aldrich | WH0004204M1; RRID:AB_1842411 | Antibody |
Primary AB Mouse, anti-MeCP2 (Mec-168) | Sigma-Aldrich | M6818; RRID:AB_262075 | Antibody |
Primary AB Mouse, anti-MeCP2 (Men-8) | Sigma-Aldrich | M7443; RRID:AB_477235 | Antibody |
Primary AB Rabbit, anti-MeCP2 (D4F3) | Cell Signaling Technology | 3456S; RRID:AB_2143849 | Antibody |
Protease Inhibitor Cocktail (100X) | Sigma-Aldrich | 8340 | Hypotonic lysis reagent, Extraction Buffer |
Secondary AB, Rabbit, anti-MeCP2 | Eurogentec S.A. | custom | Antibody |
Secondary AB, Rabbit, anti-MeCP2 | Merck | 07-013 | Antibody |
Sodium chloride (NaCl) | Sigma-Aldrich | S3014 | Extraction Buffer |
SULFO-TAG Labeled Anti-Rabbit Antibody (goat) | Meso Scale Diagnostics | W0015528S | Antibody |
TAT-MeCP2 fusion protein | in-house production | Cell treatment | |
Trypsin EDTA 0.25% (1X) | gibco by Life Technologies | 25200-056 | Cell treatment |
Tween 20 | Sigma-Aldrich | P9416 | Washing solution |
References
- Debad, J. D., Glezer, E. N., Wohlstadter, J., Sigal, G. B., Leland, J. K. Clinical and biological applications of ECL. Electrogenerated Chemiluminescence. Bard, A. J. , CRC Press. Baca Raton, FL. 359-383 (2004).
- Yuzaburo, N., Michinori, U., Osamu, S. Highly Sensitive Electrochemiluminescence Immunoassay Using the Ruthenium Chelate-Labeled Antibody Bound on the Magnetic Micro Beads. Analytical Sciences. 15 (11), 1087-1093 (1999).
- Liu, W., Hu, Y., Yang, Y., Hu, T., Wang, X. Comparison of two immunoassays for quantification of hepatitis B surface antigen in Chinese patients with concomitant hepatitis B surface antigen and hepatitis B surface antibodies. Archives of Virology. 160 (1), 191-198 (2015).
- Shah, R. R., Bird, A. P. MeCP2 mutations: progress towards understanding and treating Rett syndrome. Genome Medicine. 9 (1), 17 (2017).
- Chahrour, M., et al. MeCP2, a key contributor to neurological disease, activates and represses transcription. Science. 320 (5880), 1224-1229 (2008).
- Lyst, M. J., Bird, A. Rett syndrome: a complex disorder with simple roots. Nature Reviews Genetics. 16 (5), 261-275 (2015).
- Katz, D. M., et al. Rett Syndrome: Crossing the Threshold to Clinical Translation. Trends in Neurosciences. 39 (2), 100-113 (2016).
- Steinkellner, H., et al. An electrochemiluminescence based assay for quantitative detection of endogenous and exogenously applied MeCP2 protein variants. Scientific Reports. 9 (1), 7929 (2019).
- Laccone, F. A. Synthetic MeCP2 sequence for protein substitution therapy. , Canada. CA2647125C (2007).
- Koutsokeras, A., Kabouridis, P. S. Secretion and uptake of TAT-fusion proteins produced by engineered mammalian cells. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. 1790 (2), 147-153 (2009).
- Suzuki, K., Bose, P., Leong-Quong, R. Y., Fujita, D. J., Riabowol, K. R. E. A. P. REAP: A two minute cell fractionation method. BMC Research Notes. 3, 294 (2010).
- Xia, H., Mao, Q., Davidson, B. L. The HIV Tat protein transduction domain improves the biodistribution of beta-glucuronidase expressed from recombinant viral vectors. Nature Biotechnology. 19 (7), 640-644 (2001).
- Schwarze, S. R., Ho, A., Vocero-Akbani, A., Dowdy, S. F. In vivo protein transduction: delivery of a biologically active protein into the mouse. Science. 285 (5433), 1569-1572 (1999).
- Nagahara, H., et al. Transduction of full-length TAT fusion proteins into mammalian cells: TAT-p27Kip1 induces cell migration. Nature Medicine. 4 (12), 1449-1452 (1998).
- Trazzi, S., et al. CDKL5 protein substitution therapy rescues neurological phenotypes of a mouse model of CDKL5 disorder. Human Molecular Genetics. 27 (9), 1572-1592 (2018).
- Van Esch, H.
MECP2 Duplication Syndrome. Molecular Syndromology. 2 (3-5), 128-136 (2012). - Collins, A. L., et al. Mild overexpression of MeCP2 causes a progressive neurological disorder in mice. Human Molecular Genetics. 13 (21), 2679-2689 (2004).
- Luikenhuis, S., Giacometti, E., Beard, C. F., Jaenisch, R. Expression of MeCP2 in postmitotic neurons rescues Rett syndrome in mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (16), 6033-6038 (2004).