Summary
本研究は、60分間の腎動脈の一時的な経皮的両側性両側気球カテーテル閉塞および24時間の再灌流を用いた豚における腎虚血再灌流傷害の非常に再現性の高い大型動物モデルを提示する。
Abstract
急性腎障害(AKI)は、罹患率および死亡率のリスクが高いことに関連しています。虚血再灌流傷害(IRI)は、AKIの最も一般的な原因である。この臨床シナリオを模倣するために、本研究は、腎動脈の一時的な経皮的両側気球カテーテル閉塞を用いて豚中の腎IRIの非常に再現性の高い大型動物モデルを提示する。腎動脈は、大腿動脈および頸動脈を通してバルーンカテーテルを導入し、動脈の近位部分に進めることによって60分間閉塞される。大動脈にヨウ素化されたコントラストを注入して、腎臓血管の全振動を評価し、動脈閉塞の成功を確認する。これは、バルーンカテーテルの先端におけるパルス波形の平坦化によってさらに確認される。バルーンは、両側腎動脈閉塞の60分後に収縮して除去され、動物は24時間回復することが許可される。研究の最後に、血漿クレアチニンと血液尿素窒素が有意に増加し、eGFRおよび尿の出力が大幅に減少する。ヨードコントラストの必要性は最小限であり、腎機能に影響を与えません。両側性腎動脈閉塞は、周術期腎低灌流の臨床シナリオをよりよく模倣し、経皮的アプローチは、炎症性反応の影響および開いたアプローチ(腹腔内術)のような開放的なアプローチで見られる感染のリスクを最小限に抑える。この臨床的に関連する豚モデルを作成し、再現する能力は、人間への臨床翻訳を容易にします。
Introduction
急性腎障害(AKI)は、重大な罹患率および死亡率1,2に関連する外科患者の間で一般的に診断された状態である。利用可能なデータによると、AKIは世界中の入院患者の半数にも影響を及ぼし、集中治療室1,3の患者の死亡率は50%にまで及ぶ。その高い普及にもかかわらず、現在のAKI療法は、流体管理や透析などの予防戦略に限定されたままです。したがって、AKI4、5、6の代替療法の探索に継続的な関心があります。
AKIは、典型的には、その病因4、5、6に基づいて、腎前、組み込み、および腎後に分類される。AKIを有する外科患者の大半は、低心血症による腎前原因と関連しており、腎臓2の虚血再灌流傷害(IRI)をもたらす。臨床的には、尿の出力が減少し、腎機能の低下によりクレアチニンレベルが増加する。腎臓は代謝率が高い臓器で、虚血の影響を受けやすい。腎IRIの非常に再現性の大きな動物モデルは、AKIの病態生理学とその潜在的な治療アプローチに関するより良い洞察を得るために必要である5。
腎低灌流の周回手術の臨床シナリオを模倣するために、両側腎動脈閉塞のモデルが適していると考えられる。前述のモデルは、対側腎臓の切除の有無にかかわらず一方的な腎動脈閉塞を伴うモデルは、十分な臨床適用性を提供していない7,8。これらのモデルはAKIを引き起こすには十分ですが、タイプや傷害の持続時間の面でも実際の臨床シナリオに似ていない。
本論文の目的は、血管造影の下で気球カテーテル閉塞による経皮的両側性腎動脈の一時的閉塞のブタモデルを提示することである。両側性腎動脈閉塞は、腎低灌流の臨床シナリオを模倣し、続いて再灌流用バルーンを除去した9,10.技術的なステップは、カテーテル法、カテーテルガイダンス、血管造影、血行力学的モニタリングを含む。この方法は、腎動脈の高度に制御され、複製可能な閉塞を可能にするだけでなく、経皮的アプローチは、開放的なアプローチと比較して身体に対する侮辱の量を制限することによって炎症反応の影響を最小限に抑える。
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Protocol
すべてのin vivo研究は、国立衛生研究所の動物ケアと使用に関するガイドラインに従って行われ、ボストン小児病院の動物ケアおよび使用委員会によって承認されました(プロトコル18-06-3715)。すべての動物は、実験動物のケアと使用のためのガイドに従って人道的ケアを受けました。 図1 は、この研究の主要な結果測定のための麻酔、手術準備、およびタイムポイントを含むタイムラインを示しています。
1. 誘導、麻酔、挿管
- 不必要なストレスや不快感を防ぐために、フェイスマスクを使用して、タイルタミン/ゾラゼパム4-6 mg/kgおよびキシラジン1.1-2.2mg/kgの混合物の筋肉内注射によって豚を鎮静させる。
- 耳静脈をカニューレートし、95%エタノールで領域を消毒した後、20G IVカニューレで静脈アクセスを得る。メンテナンス注入を開始します(5 mL/kg/hで0.9%NaCl)。
- 麻酔の妥当性が確認されると、気管内チューブ(体重40〜50kgの豚の場合はサイズ7)で豚を挿管します。12呼吸/分の頻度で気球換気を行い、手術室に豚を輸送します。
- 動物を手術台の上に置きます。FiO2 0.50、10 mL/kgの潮量、および連続的なカポノグラフィーの下で12の呼吸/分の頻度ですぐに機械正圧換気を開始します。
- 連続的な監視のために耳または下唇にパルスオキシメーターを置きます。
- 空気加熱パッドを使用してノルメロザミア(37°C)を維持します。
- 全身麻酔を維持するために、気管内管管を通してイソフルラン投与を0.5〜4%に保つ。処置を通して、継続的に心電図、動脈血圧、温度、およびカポノグラフィーを監視し、麻酔の深さを測定する。
- フォーリーカテーテルを挿入して動物の体液状態を確認し、尿を排水袋に入れ、尿の出力を監視します。
注:女性の豚は、より簡単にカテーテル化を可能にする尿道の解剖学的特徴のために男性よりも好ましい。
2. 手術準備と血管アクセス
- 無菌の方法で動物をドレープ。
- ベタジンを塗布し、その後95%エタノールを3回塗布することにより、首の右側領域を消毒します。
- 右頸動脈と右頸静脈のカテーテル化のためのカットダウンを行う。胸骨腫筋を横に引き込み、右頸動脈と右頸静脈まで解剖する。
- 動脈と静脈の両方に5F血管造影鞘を挿入する。シルク2-0縫合糸で固定します。
- セルディンガー技術を使用して5F血管造影シースを左大腿動脈に挿入します。
- セルディンガー技術を行うために、中空の針を用いて大腿動脈を穿刺する。細管を通して柔らかい先端のガイドワイヤーを挿入し、大腿動脈にそれを進める。
- 針を外しながらガイドワイヤーを手でしっかり持ちます。ガイドワイヤーの上に血管造影シースを大腿動脈に渡し、ガイドワイヤーを引き出します。必要に応じて、超音波ガイダンスを使用してください。
3. 腎虚血再灌流傷害の誘導
- 全身性抗凝固を達成するために200 IU /kgのヘパリンナトリウムを静脈内投与(標的活性化凝固時間(ACT)>300s)
- 腎動脈を同定するために、蛍光法下でヨード造影剤を注入して血管造影を行う。
注: コントラストによる腎毒性のリスクを低減するには、ヨウ化造液を通常の生理食塩水で1:1溶液で希釈します。同等の投薬を確実にするために、すべての動物のための投与量を集計します。 - 腎動脈を特定し、ガイド線を導くカテーテルで手動で進める。
- 5F JL4誘導カテーテルを左腎動脈に右頸動脈を通る位置を決めた(図1A)。
- 左大腿動脈を通って右腎動脈に第2の5F JL4誘導カテーテルを配置する(図1A)。
- ガイドワイヤーを使用して、各腎動脈に5F経皮性経芽形成術(PTA)拡張カテーテルを指示します。
注意: バルーンの膨張後に腎動脈の枝や副木が特許を残さないように、バルーンを近位腎動脈に配置することが望ましい。 - 各バルーンカテーテルを所定の位置に配置し、各カテーテルに圧力線を接続します。
- 圧力モニタに動脈脈波が存在することを確認し、カテーテルの正しい位置を確認します。
- 各バルーンを膨らませ、バルーン内の約2.5気圧の圧力を目指します(図1B)。
- 腎臓への血流の停止を確認するために、バルーンカテーテルの先端における脈波波形の平坦化を観察する。
- ヨード化された造影剤(1:1希釈)を注入し、腎血管の任意の振動を確認します。
注: 膨張したバルーンを視覚化するために、バルーンをヨウ化造影剤で満たすことも可能です。しかし、この方法は、腎動脈の閉塞を確認するために平坦化する脈波波形ほど敏感ではない。 - 60分後に閉塞を慎重に収縮させ、腎動脈からバルーンカテーテルを取り除きます。
- 腎動脈の開血と腎再灌流の確立を確認するために(1:1希釈された造影培地を使用して)血管造影を行う(図1C)。
- 5F血管造影鞘を左大腿動脈から取り除く。
- カテーテル法の現場で30分間しっかりと圧力を加えます。
- ACTが正常化するまでプロタミンの投与によるヘパリンの効果を逆にする(3mg/kg)。
- 術後の期間中に尿をサンプリングするには、皮膚の中断されたステッチを使用してシルク2-0縫合糸でフォーリーカテーテルにチューブを固定します。
- 右頸動脈と右頸静脈の血管を血管造影シースを所定の位置に残し、研究全体で血液サンプリングを可能にするために中断されたステッチを使用してシルク2-0縫合糸でそれらを確保する。
- 2層の連続ステッチを使用してシルク2-0縫合糸で首切開を閉じます。
- ブピバカイン(3mg/kg)を切開部位で投与して痛みを最小限に抑える。
- 虚血の終わりに続いて合計2時間の5 mL /kg /hで0.9%NaClで動物を水和し続けます。
- フェンタニルパッチ(25-50 μg/h)を動物の背面に置き、術後の痛みを最小限に抑えます。
- 術後の痛みを最小限に抑えるために、ブプレノルフィン(0.005-0.1 mg/kg)の筋肉内注射を投与する。
- 動物を監視し、目を覚ますまで機械的換気でそれを維持します。
4. 動物の回復
- 目覚めの後、温度管理された部屋で動物を収容する。
- 完全な意識とアンブレートする能力を取り戻すまで、動物を片側から他方に向け続けます。
- 水と食品アドリビタムを提供します。
5. 機能評価
- 目的のプロトコルに従って血液および尿サンプルを収集する。
注:この研究では、ベースライン(水和プロトコルの開始後1時間、腎動脈の閉塞前)、虚血の終結、再灌流(2時間、6時間、24時間)の時点が指定されました。 - 動脈と静脈血液サンプルを収集します。リチウムヘパリンまたはEDTAコーティングされたバクテイナーに保管し、その後の分析を行ってください。
注意: 頸動脈と頸静脈のカテーテルから直接血液を引き出します。 - フォーリーカテーテルから尿サンプルを収集し、分析のために15 mLチューブに保存します。
メモ:フォーリーカテーテルに接続された排水袋から尿を収集します。 - 尿の出力を決定するには、排水袋を空にし、1時間尿を収集します。
注:排水袋がフォーリーカテーテルに接続されていない6時間のタイムポイントについては、フォーリーカテーテルに接続されたチューブを30分間閉じ、60 mLの注射器で尿を採取して尿の出力を決定します。
6. 安楽死
- 再灌流期間の終了後、上記のように麻酔およびモニタを行う。
- 5 mL/kg/hで0.9%NaClで水分補給を継続します。
- 血液採取には動脈カテーテルと静脈カテーテルを使用し、フォーリーカテーテルを使用して尿の出力を決定します。最終的な血液と尿のサンプルを収集し、尿の出力を計算します。
- シフォイドから中骨盤までのサイズ10ブレードを使用して、15cmの中腹腔切開を行います。
- 腹部の皮膚を引っ込めるためにまっすぐな横のレトラクターを使用しなさい。
- 腹壁の腹膜の横部の付着を解剖し、右および左の後腹膜を露出する。
- 腎動脈と静脈の両方を識別し、ぶっきらぼうに解剖する。
- 2-0シルク縫合糸で腎動脈と静脈の両方をリゲートし、組織学的および代謝分析のために組織全体の標本を収集するために両側腎切除を行う。
- 安楽死の好ましい方法で動物を安楽死させる(例えば、排泄、ペントバルビタール)
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Representative Results
関数解析
この研究の代表的な結果は6匹の動物から生じ、示されたデータは平均±平均の標準誤差である。腎機能は、尿の出力、推定糸球体濾過率(eGFR)、血漿クレアチン、および血液尿素窒素(BUN)を決定することによって評価される。腎機能のバイオマーカーは、ポータブル化学分析装置を用いて評価される。eGFR は次の式に従って計算されます: eGFR =1.879 × BW1.092/PCr0.6 (BW: 体重は kg;PCr: mg/dL)10,11のプラズマクレアチニン
2国間腎動脈閉塞の60分後、尿の出力は3.6 mL/kg/hから0.5 mL/kg/h±0.1 mL/kg/h±0.1 mL/kg/h(p<0.01)に有意に減少した。この減少は、再灌流後の6時間(0.1 mL/kg/h±0.1mL/kg/h、p = 0.02対ベースライン)および24時間(1.3 mL/kg/h±0.4 mL/kg/h;p = 0.02対ベースライン)で有意なままでした。同様に、eGFRでも有意な減少が認められ、 これは、ベースラインの0.1mL/kg/± h±0.1mL/kg/hから、虚血の終わりに0.1 mL/kg/h(p<0.001)、0.1m±1.5 mL/kg/hに低下しました。 L/kg/h (p < 0.001),1.2 mL/kg/h ±0.1 mL/kg/h(p < 0.001)、0.9 mL/kg/h±0.1 mL/kg/h(p < 0.001)、2時間で、 6時間および24時間の再灌流をそれぞれ(図2A−B)。
血漿クレアチニンは2時間で有意に増加した (2.7 mg/dL ± 0.2 mg/dL; p < 0.01)、6 h(3.7 mg/dL ± 0.3 mg/dL;p < 0.001)および24時間(5.6 mg/dL ±0.7 mg/dL;p < 0.001)のベースラインと比較してベースライン(1.1 mg/dL ±0.1 mg/dL)。BUNはベースラインで0.8mg/dL±6.5mg/d ±Lで、3.3mg/dL(p<0.001)と36.2mg/dL±2.9mg/dL(p<0.001)にそれぞれ6.8mg/dLに増加しました(
総解剖学と神秘学
両側性腎虚血60分と再灌流の24時間の終わりに両腎臓に不均一に分布していた明らかな壊死および出血性領域があった(図3A)。マッソンのトリクローム染色は、腎皮質の近位細管に位置していたコンフルエント凝固壊死を明らかにした。(図3B)プラスチック製の埋め込みセクション(1 μm)も、その重要な構成の詳細を提供するため評価された(図3C)。マッソンのトリクロームスライドはすべて、細胞壊死、ブラシ境界の喪失、キャスト形成、および尿細管拡張について評価された。次に、急性尿細管壊死(ATN)の半定量スコアリングシステムを以下のように実装した。10% 未満の場合は 1。11%から25%の間の場合は2。26%から45%の間の場合は3;46%-75%の間の場合は4;76%を超える場合は5。ATNスコアリングは、腎皮質(4.5±0.3のスコア)と髄質のかなりの傷害(0.4±2.7のスコア)に重大な傷害を示した。
図 1.実験モデルの説明。(A) 雌のヨークシャー豚(40〜60kg)は鎮静され、挿管された。左大腿動脈および右頸動脈を5F血管造影鞘でカテーテル化した。右頸静脈線およびフォーリー尿カテーテルも配置された。腎動脈の選択的カテーテル化は、5F多目的ガイドカテーテルを用いて行った。 (B) 腎動脈の閉塞を5F経皮的経年血管形成術(PTA)拡張カテーテルを腎動脈の近位部分に膨らませ、腎臓への血流を60分間完全に遮断して行った。オクルージョンの確認は、大細胞中のヨード化された造影剤の注入と腎臓の血管の任意のオパシエーションのチェックによって獲得された。 (C)60 分の閉塞の後、風船を収縮させ、慎重に取り除いた。腎動脈の開血と腎再灌流の確立を確認するために血管造影を行った。その後、動物は次の24時間の生理学的条件下で腎臓を再浸透させ、その後安楽死させた。血液および尿サンプルは、閉塞後2、6、および24時間(三角形で示されるタイムポイント)で、両側性腎虚血の直前と直後に採取した。この図は、Doulamisら11から変更されています。 この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図 2.腎虚血再灌流損傷の前後の腎機能。(A) 尿出力; (B) 予測糸球体濾過率 (eGFR); (C) 血漿クレアチニン及び (D) 血尿素窒素(BUN)。すべての結果は、各時点の平均と標準偏差として表示されます。虚血再灌流傷害後の尿出力およびeGFRにおいて有意な減少が見られる。したがって、血漿クレアチニンおよびBUNにおいて有意な増加が注目される。データは、ベンジャニとホッホバーグの誤検出率(n=6)を用いて、双方向の反復測定ANOVAによって分析された。*p < 0.05 対ベースライン;**p < 0.01 対ベースライン;p < 0.001 対 ベースラインです。 この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図 3.腎虚血再灌流傷害後の24時間の再灌流における総腎解剖および腎組織損傷。(A) 左腎臓の総解剖学は、二国間腎動脈閉塞の60分および再灌流の24時間後の梗塞および赤い出血性領域を示す淡い領域を示す。 (B) 車両の腎皮質は、主に近位細管の広範な凝固壊死を示し、60分の虚血と24時間の再灌流(マッソンのトリクローム、元の倍率20倍)に続く。 (C) これらの1μmプラスチック(araldite-epon)埋め込みセクションは、主にオルガネラの腫れおよび変性変化を伴うマトリックスからなるコンフルエント管状壊死症をより詳細に示す(Toluidineブルー、元の倍率40倍)。スケールバー= 200 μm。この図は、Doulamisら11から変更されています。 この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
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Discussion
AKIは、世界中の入院成人患者の最大50%に影響を及ぼす一般的な臨床障害である6,12.臨床的に関連する動物モデルは、疾患の病態生理学および潜在的な治療標的をさらに調査するために必要である。AKIを複製するいくつかのマウスモデルがありますが、これらはそれぞれの臨床シナリオと人間の腎臓の解剖学を完全に模倣していません。本研究は、ヒト13への翻訳を可能にする臨床的に関連する豚モデルを提案する。
ここでは、このプロトコルは、臨床的に関連するだけでなく、炎症反応およびオープンなアプローチに伴う感染のリスクを最小限に抑える経皮的アプローチを記述する。また、最適な血行制御を達成し、腎低灌流11を回避するために、すべての動物に一貫した水和プロトコルを使用する必要があることを強調すべきである。これは、動物が麻酔を受けた場合に簡単に行うことができますが、水がアドリビタムを提供される回復期間中に常に正確に行うことはできません。
ヨウ化造型の造影剤は、対照誘発性腎毒性を避けるために慎重に使用されるべきである。これは、通常の生理液で1:1または1:2希釈することによって達成することができる。本研究では、ヒトの推定安全閾値(3.33 mL/kg)9,14よりも10倍低い用量を用いた。
とりわけ、この研究は、体重および血漿クレアチニンレベル10、11を考慮した式に基づく腎機能の評価にeGFRを使用する。なお、GFRの判定のためのイヌリンの使用は、以前に文書化されていたが、その使用は、インリン注入後の重度の低血圧血管スパスパス反応のために現在のプロトコルにおいて延期された。これは、イヌリン投与前にステロイドまたはエピネフリンを使用して回避することができます。.しかし、これらの薬剤の使用は、各研究の設計に応じて適切ではない場合があります。このため、血漿クレアチニンと体重に基づいてeGFRを推定する検証式を使用した11.GFRを決定するための別の方法は、式を使用することです: (尿クレアチニンx尿流量) / (血漿クレアチニンx腎臓重量).
ATNスコアの評価のために、マッソンのトリクローム染色の使用は、組織損傷をよりトレースすることができるので、従来のヘマトキシリンおよびエオシン染色よりも好ましい。別の代替方法としては、プラスチック製の埋め込みセクションを使用して、サンプル11の薄いスライスを可能にする詳細を提供する。この前臨床モデルのAKIは、腎移植、心原性ショック後の腎低灌流(例えば、心筋梗塞、動脈瘤破裂、大動脈解離)、経カテーテル処置、長期の心筋心停止時間を伴う心血管処置などの臨床シナリオを模倣するために使用することができる。
この研究には、いくつかの制限があります。この研究では雌の動物のみを使用した。これは、尿カテーテル法に関連する可能性のある影響を減らすために行われました, これは男性よりも女性の外傷性が低いです.この制限に加えて、研究は若い、そうでなければ健康な動物を使用し、したがって共存疾患に関連する可能性のある交絡変数を排除した。結論として、現在の研究では、AKIの負担を軽減するために使用できる腎IRIの非常に再現性の高い大型動物モデルについて説明しています。
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Disclosures
著者らは、競合する財政的利益を宣言しない。
Acknowledgments
アーサー・ネダー博士の助けと指導に感謝します。この作品は、リチャード・A・アンド・スーザン・F・スミス会長イノベーション賞、マイケル・B・クラインと家族、シドマン・ファミリー財団、マイケル・B・ルキン慈善財団、ケネス・C・グリフィン慈善研究基金、ボストン投資評議会によって支援されました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.9% sodium chloride injection, usp, 100 ml viaflex plastic container | Baxter | 2B1302 | For animal hydration |
| Agent contrast 100.0ml injection media btl ioversal 74% | CARDINAL HEALTH | 133311 | For visualizing the vasculature |
| Bard Bardia Closed System Urinary Drainage Bag | BARD Inc | 802001 | For urine collection |
| BD Vacutainer K2 EDTA | BD | 367841 | For blood sample storage |
| BD Vacutainer Lithium Heparin | BD | 366667 | For blood sample storage |
| Betadine | Henry Schein | 6906950 | For skin disinfection |
| Bookwalker retractor | Codman | For skin retraction | |
| Bupivacaine 0.25% | Hospira | Administer at incision site for analgesia | |
| Buprenorphine SR | Zoo Pharm | 10mg/ml bottle, Dose: 0.2mg/kg SC | |
| Cath angio 5.0 Fr x100.0 cm 0.038 in JR4 | MERIT MEDICAL SYSTEM INC | 7523-21 | For identification of the renal arteries |
| Cuffed endotracheal tube | Emdamed | To establish a secure airway for the duration of the operation | |
| EKG Medtronics- Physiocontrol LifePak 20 Oxygen saturation monitor | GE Healthcare Madison WI | For oxygen saturation monitoring | |
| Encore 26 inflator | BOSTON SCIENTIFIC | 710113 | For inflating the balloon catheters |
| Ethanol 95% (Ethyl alcohol) | Henry Schein | For skin disinfection | |
| Fentanyl patch | Mylan | Dose: 25-50mcg/hr, TD | |
| Gold silicone coated Foley | TELEFLEX MEDICAL INC | 180730160 | For urine collection |
| Heparin sodium | LEO Pharma A/S | Dose: 200 IU/kg IV | |
| i33 ultrasound machine | Phillips | Use ultrasonographic guidance for femoral catherization if necessary | |
| Inqwire diagnostic guide wire - 0.035" (0.89 mm) - 260 cm (102") - 1.5 mm j-tip | MERIT MEDICAL SYSTEM INC | 6609-33 | For guiding the balloon catheters to the renal arteries |
| Intravenous catheter, size 20 gauge | Santa Cruz Biotechnology | Inc SC-360097 | For fluid administration |
| Isoflurane | Patterson Veterinary Supply, Inc. | 21283620 | Dose: 3%, INH |
| Metzenbaum blunt curved 14.5 cm - 5(3/4)" | Rudolf Medical | RU-1311-14M | For tissue dissection and cutting |
| Neonatal disposable transducer kit with 30ml/hr flush device and double 4-way stopcocks for continuous monitoring | Argon Medical | 041588505A | For pressure measurement |
| Powerflex pro PTA dilatation catheter 6 x 20 mm - shaft length (135cm) | CARDINAL HEALTH | 4400602X | For occlusion of the renal arteries |
| Pressure monitoring lines mll/mll - 12" clear, mll/mll | Smiths Medical | B1571/MX571 | For pressure measurement |
| Procedure pack | Molnlycke Health Care | 97027809 | Surgical drape, gauze pads, syringes, beaker etc |
| Protamine | Henry Schein | 1044148 | For heparin reversal |
| Scalpel blade - size #10 | Cardinal Health (Allegiance) | 32295-010 | For the skin incisions |
| Stopcock iv 4 way lrg bore rotg male ll adptr strl | Peoplesoft | 1550 | For connecting tubings |
| Straight lateral retractor | Codman | For skin retraction | |
| Suture perma hnd 18in 2-0 braid silk blk | CARDINAL HEALTH 1 | A185H | For suturing incision site and securing catheters |
| Syringe contrast injection 10ml fixed male luer red | MERIT MEDICAL SYSTEM INC | MSS111-R | To administer the contrast agent |
| Syringe medical 60ml ll plst strl ltx free disp | CARDINAL HEALTH 1 | BF309653 | For urine collection and flushing of the angiocath |
| Tilzolan (tiletamine/zolazepam) | Patterson Veterinary Supply, Inc. | 07-893-1467 | Dose: 4-6 mg/kg, IM |
| Xylazine | Putney, INC | Dose: 1.1-2.2 mg/kg, IM |
References
- Ali Pour, P., Kenney, M. C., Kheradvar, A. Bioenergetics consequences of mitochondrial transplantation in cardiomyocytes. Journal of the American Heart Association. 9 (7), 014501 (2020).
- Giraud, S., Favreau, F., Chatauret, N., Thuillier, R., Maiga, S., Hauet, T. Contribution of large pig for renal ischemia-reperfusion and transplantation studies: The Preclinical Model. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 14 (2011).
- Amdisen, C., et al. Testing Danegaptide effects on kidney function after ischemia/reperfusion injury in a new porcine two week model. PLoS ONE. 11 (10), 1-13 (2016).
- Bhargava, P., Schnellmann, R. G.
- Bonventre, J. V., Weinberg, J. M. Recent advances in the pathophysiology of ischemic acute renal failure. Journal of the American Society of Nephrology. 14 (8), 2199-2210 (2003).
- Case, J., Khan, S., Khalid, R., Khan, A. Epidemiology of Acute Kidney Injury in the Intensive Care Unit. Critical Care Research and Practice. 2013, 9 (2013).
- Jabbari, H., et al. Mitochondrial transplantation ameliorates ischemia/reperfusion-induced kidney injury in rat. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Basis of Disease. 1866 (8), 165809 (2020).
- Malagrino, P. A., et al. Catheter-based induction of renal ischemia/reperfusion in swine: Description of an experimental model. Physiological Reports. 2 (9), 1-13 (2014).
- Freeman, R. V., et al. Nephropathy requiring dialysis after percutaneous coronary intervention and the critical role of an adjusted contrast dose. American Journal of Cardiology. 90 (10), 1068-1073 (2002).
- Gasthuys, E., et al. Postnatal maturation of the glomerular filtration rate in conventional growing piglets as potential juvenile animal model for preclinical pharmaceutical research. Frontiers in Pharmacology. 8 (431), 1-7 (2017).
- Doulamis, I. P., et al. Mitochondrial transplantation by intra-arterial injection for acute kidney injury. American Journal of Physiology - Renal Physiology. 319 (3), 403-413 (2020).
- Rewa, O., Bagshaw, S. M. Acute kidney injury-epidemiology, outcomes and economics. Nature Reviews Nephrology. 10 (4), 193-207 (2014).
- Grossini, E., et al. Levosimendan Protection against Kidney Ischemia/Reperfusion Injuries in Anesthetized Pigs. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 342 (2), 376-388 (2012).
- Laskey, W. K., et al. Volume-to-creatinine clearance ratio. A pharmacokinetically based risk factor for prediction of early creatinine increase after percutaneous coronary intervention. Journal of the American College of Cardiology. 50 (7), 584-590 (2007).
