Summary
본 프로토콜은 저용량 디졸루란을 사용하여 낮은 용량의 이소플루란을 사용하여 쥐로부터 안정적인 휴식 상태 기능성 자기 공명 영상(rs-fMRI) 데이터를 낮은 용량 덱스메데토미딘과 결합하여 얻는 방법을 설명합니다.
Abstract
휴식 상태 기능성 자기 공명 영상 (rs-fMRI)은 휴식, 비 작업 상태에서 뇌 기능을 연구하는 점점 더 인기있는 방법이되고있다. 이 프로토콜은 rs-fMRI 데이터를 얻기 위한 전임상 생존 방법을 설명합니다. 저용량 이소플루란과 α2 아드레너기용량 수용체 작용제 덱스메데토미딘의 지속적인 주입을 결합하면 뇌 네트워크 기능을 유지하면서 안정적이고 고품질의 데이터 수집을 위한 강력한 옵션을 제공한다. 또한,이 절차는 쥐에서 자발적인 호흡과 거의 정상 생리학을 허용합니다. 추가 이미징 서열은 휴식 상태 획득과 결합하여 이 방법을 사용하여 최대 5h의 마취 안정성을 가진 실험 프로토콜을 생성할 수 있습니다. 이 프로토콜은 장비 의 설정, 마취의 네 가지 단계 동안 쥐 생리학의 모니터링, 휴식 상태 스캔의 수집, 데이터의 품질 평가, 동물의 복구, 및 후 처리 데이터 분석에 대한 간단한 논의를 설명합니다. 이 프로토콜은 다양한 전임상 설치류 모델에서 사용할 수 있어, 이로 인해 발생하는 뇌 네트워크 변화가 미뤄질 수 있다.
Introduction
휴식 상태 기능성 자기 공명 영상 (rs-fMRI)은 뇌가 쉬고 특정 작업에 관여하지 않을 때 혈액 산소 수준 의존성 (BOLD) 신호의 척도입니다. 이러한 신호는 신경망 내의 기능적 연결을 결정하기 위해 뇌 영역 간의 상관 관계를 측정하는 데 사용할 수 있습니다. rs-fMRI는 비침습성 및 환자(작업 기반 fMRI와 비교하여)에 요구되는 저량의 노력으로 인해 임상 연구에서 널리 사용되어 다양한 환자 집단에 최적입니다1.
기술 발전은 rs-fMRI가 설치류 모델에서 사용하기 위해 적응하여 질병 상태의 기전을 발견할 수 있게 했습니다(검토를 위한 참조2 참조). 질병 또는 녹아웃 모델을 포함한 전임상 동물 모델은 인간에게 적용되지 않는 광범위한 실험 조작을 허용하며, 스터디를 사용하여 실험2를더욱 강화할 수 있다. 그럼에도 불구하고 운동 제한과 스트레스 완화의 어려움으로 인해 설치류의 MRI 인수는 전통적으로 마취 하에 수행됩니다. 마취제는 약동학, 약역학 및 분자 표적에 따라 뇌 혈류, 뇌 대사 에 영향을 미치고 잠재적으로 신경 혈관 커플링 경로에 영향을 미칩니다.
신경혈관 커플링 및 뇌 네트워크 기능3,4,5,6,7,8을보존하는 마취프로토콜을개발하기 위한 수많은 노력이 있었습니다. 우리는 이전에 α2 부력 수용체 고뇌의 낮은 복용량과 함께 이소플루란의 낮은 복용량을 적용 마취 정권을보고9. 마취의 이 방법의 밑에 쥐는 확립된 투영 통로와 일치하는 지구에 있는 수염 자극에 강력한 BOLD 반응을 전시했습니다 (ventrolateral 및 ventromedial 탈라믹 핵, 1 차 및 이차 색소 감각 피질); 기본 모드네트워크(10,11) 및 현저네트워크(12)를 포함한 대규모 휴게상태 뇌네트워크도 일관되게 검출되었다. 더욱이, 이 마취 프로토콜은 질병 진행 및 실험 조작의 효력을 세로로 감시하기 위한 중요한 동일 동물에 반복적인 화상 진찰을 허용합니다.
본 연구에서는 실험적 설정, 동물 제제 및 생리적 모니터링 절차를 자세히 설명합니다. 특히, 각 단계에서 특정 마취 단계 및 스캔 획득에 대해 설명합니다. 데이터 품질은 각 휴식 상태 검사 에 따라 평가됩니다. 사후 검사 분석에 대한 간략한 요약도 토론에 포함되어 있습니다. 쥐에서 rs-fMRI를 사용 하 여의 잠재력을 발견에 관심이 실험실이 프로토콜 유용 찾을 수 있습니다.
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Protocol
모든 실험은 9.4 T MRI 스캐너에서 수행되었으며 다트머스 대학의 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 승인을 받았습니다. 추가 승인은 아래의 비디오 및 그림에 사용되는 동물을 기록하고 보여주기 위해 얻어졌습니다.
1. 스캔 하기 전에 준비
- 피하 주입 라인
- 바늘 점이 멸균 상태로 유지되도록 패키지에서 23 G 바늘을 부분적으로 제거합니다.
- 바늘의 허브를 단단히 잡고 면도날을 사용하여 허브와 만나는 바늘 샤프트를 득점합니다.
- 바늘 홀더를 채점 바로 아래 샤프트 주위에 고정시키고 허브에서 샤프트를 부드럽게 부러뜨린다.
- 바늘 샤프트 (무딘 끝)의 1/3을 이전에 멸균 된 PE50 라인에 삽입하여 약물 펌프에서 자석 보어 내부의 동물로 확장하십시오.
- 덱스메디토미딘과 아티파메졸의 희석
- 투명한 멸균 유리 병에 멸균 식염수의 9.5mL와 혼합된 0.5 mg/mL 재고0.5mL의 0.5mL를 사용하여 희석 덱스메디틴 염산염의 용액을 준비한다(희석 농도 = 0.025 mg/mL).
- 투명한 멸균 유리 병에 멸균 식염수 의 9.9 mL와 혼합 5 mg / mL 재고의 0.1 mL을 사용하여 희석 atipamezole의 용액을 준비 (희석 농도 = 0.05 mg /mL).
- 매개 변수 스캔
- 표 1에 제시된 매개 변수를 사용하여 스캔 시퀀스를 준비합니다.
2. 1 단계 마취 : 동물 유도 및 준비
- 설치
- 산소 및 공기 믹서, 가열 패드 및 활성 청소 시스템을 포함하여 모든 장비가 제대로 작동하는지 확인하십시오 (그림 1참조).
- 가열 시스템의 온도 세트 점을 37.5 °C로 설정합니다.
- 동물 유도
- 유도 챔버에 동물 (90 일 된 남성 스프라그 Dawley 쥐)을 배치하고 30 % 산소가 풍부한 공기에 2.5 %의 이소플루란으로 마취를 유도합니다.
참고: 다양한 동물 연령과 남녀 를 모두 사용할 수 있습니다. - 동물이 마취되면 챔버에서 제거하고 동물의 무게를 측정하고 준비 공간에서 가열 패드에 코 콘 (2.5 %의 이소플루란)에 놓습니다.
- 유도 챔버에 동물 (90 일 된 남성 스프라그 Dawley 쥐)을 배치하고 30 % 산소가 풍부한 공기에 2.5 %의 이소플루란으로 마취를 유도합니다.
- 동물 제제
- 건조를 방지하기 위해 각 눈에 안과 윤활 연고를 적용합니다.
- 발가락 핀치 응답의 부족에 의해 마취의 깊이를 확인합니다.
- 클리퍼를 사용하여 동물의 뒤쪽 의 아래 요추 부위에 2"by 2" 평방 영역(즉, 꼬리 바로 위에)을 면도합니다.
- 관전(i.p.) 주사(즉, 300g 쥐는 0.18mL)를 25G 바늘을 사용하여 복부의 오른쪽 하단사분면으로 0.015 mg/kg의 덱스메디토마이딘 용액을 투여한다.
- 스위치 이소플루란은 준비 공간에서 동물 요람으로 흐르고 있습니다.
- 동물을 동물 요람으로 옮킨다. 쥐의 앞니를 물린 바에 단단히 넣습니다. 코 콘을 코 위로 밀어 단단히 맞습니다.
참고: 코 콘이 아래턱을 덮지 않으면 파라핀 필름을 사용하여 턱을 부드럽게 닫고 코 콘 주위에 밀봉합니다. - 호흡 패드를 흉골 아래 쥐의 복부 아래에 배치하고 호흡 파형이 각 호흡을 중심으로 깊은 트로프를 보일 때까지 재배치합니다(도 2의호흡 파형 참조).
- 생리 모니터링 소프트웨어를 사용하여 동물의 호흡을 모니터링합니다. 호흡이 40 호흡 / 분 미만일 때 마취의 다음 단계로 이동 (bpm; 약 5 덱스메디토미딘 주입 후 분).
3. 단계 2 마취 : 동물 설정
- 외이도에 이어바를 삽입하여 동물 요람에서 쥐의 머리를 안정시습니다. 일단 배치, 물린 바에 앞으로 당겨 머리가 움직이지 않는 지 확인합니다. 필요에 따라 코 콘과 파라핀 필름을 다시 조정합니다(그림 3a참조).
- 온도 프로브를 윤활, 일회용 프로브 커버에 삽입합니다. 약 1/2"의 온도 프로브를 직장에 부드럽게 삽입하고 의료 용 테이프로 꼬리 의 바닥에 테이프를 넣습니다.
- 펄스 산소계 클립을 뒷발의 중족골 부위에 놓고 광원이 발 바닥(손바닥)에 있는지 확인합니다.
참고: 클립의 회전은 신호에 영향을 줄 수 있습니다. 따라서 발과 클립을 똑바로 세워야 하는 홀더를 만들면 안정성이 향상됩니다. 또한 쥐가 정상 체온에 있을 때까지 산소 포화도가 낮을 수 있습니다(<95%). - 쥐의 무게를 사용하여 덱스메데토미딘의 0.015 mg/kg/h를 배출하기 위해 주입 속도를 계산합니다(300 g 쥐는 0.18 mL/h를 받습니다).
- 계산된 주입 속도를 배출하기 위해 약물 펌프를 설정합니다.
- 멸균, 희석 덱스메디틴 용액으로 3mL 주사기를 채우고, 바늘 끝을 멸균 주입 라인의 열린 끝에 삽입합니다(약물 펌프에서 동물 요람으로 확장하여 이전에 부착된 피하 바늘이 부착된 동물 요람으로 확장). 라인을 채우고 약물 펌프의 주사기 홀더에 주사기를 고정하십시오.
- 푸셔 블록을 플런저에 닿을 때까지 앞으로 이동하고, 약물은 바늘에서 추방되어 주입 라인이 완전히 채워지도록 합니다.
- 알코올 닦아를 사용하여 면도 부위를 청소하여 길 잃은 머리카락을 제거하십시오.
- 꼬리 의 베이스 위에 약 두 손가락 너비의 피부를 꼬집습니다. 주입 라인 바늘의 1/3을 텐트 피부에 삽입합니다.
- 3인치 의 넓은 의료 테이프로 피부에 바늘을 고정하십시오. 첫 번째 에 넓은 의료 테이프의 두 번째 조각을 배치, 쥐를 가로 질러, 동물 요람의 양쪽에 부착 (그림 4참조).
참고: 강자성 바늘이 스캔 중에 움직임을 방지하기 위해 잘 고정되어 있는 것이 매우 중요합니다. - 피하 덱스메디틴의 주입을 시작합니다.
- 쥐의 코 다리에 거즈 조각을 놓고 코일에 대한 수평 표면을 만듭니다. MRI 신호를 방해하지 않는 종이 테이프를 사용하여 쥐의 머리에 코일을 고정하여 뇌를 중심으로 합니다(그림 3b,c참조).
- 실험실 테이프로 동물 요람 내의 모든 라인과 케이블을 보호하고 모든 생리 신호가 안정되어 있는지 확인합니다(그림 2참조).
- 동물 위에 종이 타월을 놓고 실험실 테이프로 동물 요람에 고정하십시오. 공기 가열 시스템을 사용하는 경우, 따뜻한 공기를 포함하도록 전체 요람 주위에 플라스틱 시트를 감쌉니다.
- 동물을 보어로 옮기고 자석을 조정합니다.
4. 단계 3 마취 : 해부학 검사 취득
- 이소플루란을 1.5%로 줄이면 호흡이 약 45-50 bpm으로 꾸준히 증가합니다. 해부학 적 스캐닝 기간 동안이 수준에 남아.
- FLASH 국소 스캔을 사용하여 뇌가 자석 등각센터(도5a)와정렬되도록 합니다. 동물을 재배치하고 필요한 경우 반복합니다.
- 더 높은 해상도의 RARE localizer 검사를 실행하고 이 스캔 출력을 사용하여 뇌를 가로질러 15개의 시상 슬라이스를 정렬합니다(왼쪽에서 오른쪽으로, 그림 5b).
- 중간 처탈 슬라이스를 사용하여, 어두운 반점(도 5c)으로나타나는 전방 쉼표의 감도에 중앙 축축 슬라이스를 정렬합니다. 나머지 상태 검사의 나중에 사용할 슬라이스 오프셋을 기록합니다.
- 플래시 및 희귀 축 프로토콜을 사용하여 23개의 슬라이스를 획득하여 스캔 후 분석 중에 공통 공간에 등록할 수 있습니다.
- 심은 프레스 시퀀스를 사용하여 뇌 전체를 가로질러.
5. 4 단계: 휴식 상태 스캔 획득
- 해부학 검사를 완료한 후 이소플루란을 0.5%에서 0.75%로 줄여 동물의 호흡이 분당 60-65호흡이 되도록 조정합니다. 안정성을 보장하기 위해 휴식 상태 스캐닝을 시작하기 전에 최소 10 분 동안이 수준에 머물러보십시오.
- 생리학이 안정되면(호흡 범위는 60-75 bpm이며, 심체 온도는 37.5 ± 1.0°C이고 산소 포화도는 95% 이상), 해부학축 축계와 동일한 슬라이스 오프셋을 사용하여 15슬라이스 EPI 스캔을 획득한다.
- 각 휴식 상태 검사가 완료되면 ICA(독립적인 구성 요소 분석)를 사용하여 품질을 확인하여 데이터를 공간 및 측두구성요소로 분해합니다.
- 적어도 세 개의 고품질 휴식 상태 스캔을 가져옵니다.
6. 스캔 후 복구
- 스캐닝이 완료되면 이소플루란을 2%로 늘리고 피하 덱스메디토미딘 주입을 중단합니다.
- 자석 구멍에서 동물 요람을 제거하고, 동물을 풀고, 이어 바, 온도 프로브, 펄스 산소계 클립 및 덱스메디틴 바늘을 제거합니다.
- 25G 바늘로 1mL 주사기를 사용하여 희석 된 아티파메졸 용액의 0.015 mg /kg을 쥐의 뒷다리 근육에 주입하십시오 (즉, 300 g 쥐는 0.09 mL을 받게됩니다).
- 쥐를 가열 패드 위에 다시 집 케이지에 넣고 동물이 외래가 될 때까지 모니터링하십시오.
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Representative Results
각 휴게 상태 검사에 따라 독립적인 구성 요소 분석(ICA; 보충 파일에 포함된 예제 스크립트)을 사용하여 안정성을 평가합니다. 그림 6은 휴게 상태 검사에서 구성 요소 출력의 예를 보여줍니다. 도 6a는 안정성이 높은 스캔으로부터 신호 성분을 나타낸다. 공간적으로 구성 요소는 높은 지역성을 가지고 있습니다. 공간 구성 요소 아래 시간 과정 내에서 신호는 안정적이고 예측할 수 없으며 진정한 뇌 활동을 나타냅니다. 하단의 전원 스펙트럼은 주로 낮은 주파수를 보여줍니다. 그림 6b는 노이즈를 나타내는 그림 6a와 동일한 스캔의 구성 요소를 표시합니다. 공간 구성 요소의 비지역성, 고주파 시간 과정 및 전력 스펙트럼의 고주파 피크에 유의하십시오. 마지막으로, 도 6c는 불안정한 마취를 가진 검사에서 구성 요소를 보여줍니다. 시간 과정은 가변적이고 불규칙합니다. 이 경우, 마취 프로토콜에 개선이 필요합니다, 일반적으로 코 콘의 밀봉과 폐기물 가스의 청소에.
그림 1: 준비 공간 및 MRI 동물 요람. a) 준비 공간. 진공청소기는 인덕션 챔버와 동물 요람의 코 콘 모두에서 폐가스를 청소합니다. 가열 패드는 1단계와 복구 중 동물의 온도를 유지하는 데 도움이 됩니다. b) MRI 동물 요람. 상단은 2단계에서 동물 설정의 구성 요소를 나타냅니다. 맨 아래에는 쥐가 완전히 설정되고 스캔할 준비가 되어 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 생리학적 스캔 출력. 산소 포화도(PulseOx, 96%), 심박수(분당 비트 325), 호흡속도(61μc/분), 코어 체온(T1, 37.5°C)은 스캐닝 세션 내내 지속적으로 모니터링된다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 코 콘 및 코일 배치. (a)동물의 코와 턱 을 감싸는 코 콘의 보기를 닫습니다. (b)뇌에 표면 코일의 정렬의 오버 헤드 보기. (c)코일의 측면 뷰와 동물의 눈의 중간점. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
도 4: 피하 덱스메디틴 주입 라인 및 바늘 배치. (a)바늘은 동물의 뒤쪽의 하부 요추 부위에 삽입한다. (b)동물의 피부에 바늘을 고정 테이프. (c)강자성 바늘의 움직임을 방지하기 위해 동물 요람을 가로 질러 테이프. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 5: 해부학 적 스캔 정렬. (a)국소화 검사는 동물의 뇌를 십자선으로 지적 된 자석 동소 센터에 정렬합니다. (b)좌측에서 오른쪽으로 뇌를 가로질러 정렬된 궁극 슬라이스. (c)백색 화살표로 표시된 전방 쉼표의 감도에 정렬. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 6: 독립적인 성분 분석을 이용한 품질 평가. (a)안정적 마취 시 신호 성분. (b)꾸준한 마취 시 노이즈 성분. (c)불안정한 마취. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
| 스캔하다 | 순서 | 방향 | FOV(mm x mm) | 행렬 | 조각 | 슬라이스 두께(mm) | TE (ms) | TR (ms) | 평균 | 에코 간격 (ms) | 희귀 인자 | 반복 | 스캔 시간 |
| 지역화 담당자 | 플래시 | 모든 비행기 | 50 | 256 | 1/디르 | 1 | 2.5 | 100 | 1 | 1 | 12.8 s | ||
| 지역화 담당자 | 드문 | 모든 비행기 | 35 | 192 | 1/디르 | 0.75 | 28 | 2500 | 1 | 7 | 8 | 1 | 1분 |
| 아나트 (주) | 드문 | 화살 | 35 | 192 | 15 | 1 | 28 | 2500 | 1 | 7 | 8 | 1 | 1분 |
| 아나트 (주) | 플래시 | 축 | 35 | 192 | 23 | 1 | 5 | 250 | 2 | 1 | 1분 36초 | ||
| 아나트 (주) | 드문 | 축 | 35 | 192 | 23 | 1 | 28 | 2500 | 4 | 7 | 8 | 1 | 4분 |
| 심시 | 누르다 | 모든 비행기 | 16.223 | 2500 | 1 | 1 | 2.5 s | ||||||
| 휴게 상태 | EPI | 축 | 35 | 64 | 15 | 1 | 15 | 1200 | 1 | 300 | 각 6분 |
표 1: 스캔 매개 변수의 참조 테이블입니다. 프로토콜에 설명된 시퀀스에 대한 매개 변수입니다. FLASH = 빠른 낮은 각도 샷, 희귀 = 이완 향상을 통한 빠른 획득, 프레스 = 포인트 RESolved 분광법, EPI = 에코 평면 이미징.
보충 파일: ICA 품질 평가를 위한 예제 스크립트입니다. 이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
동물의 안정성은 신체적, 생리적으로 고품질의 휴식 상태 데이터를 얻는 데 핵심적입니다. 이 프로토콜은 마취의 네 가지 단계를 통해 이동하여 안정성을 달성한다. 동물이 마취의 다음 단계로 이동하기 전에 설정 된 생리적 임계 값을 충족하는 것이 필수적이다; 이 방법은 생리적 자동 조절 메커니즘에 의존하기 때문에 개별 동물은 각 마취 단계에서 약간 다른 양의 시간을 필요로 할 수 있습니다. 쥐의 생리학을 정착시킬 충분한 시간을 주지 않고 초기 단계를 서두르는 것보다 각 단계에서 더 많은 시간을 보내는 것이 더 효율적입니다. 안정성을 허용하는 핵심 구성 요소는 코 콘과 적절한 폐기물 가스 청소의 적합성입니다.
제대로 밀봉 된 코 콘과 청소는 동물이 정기적으로 간격호흡과 꾸준한 산소 포화 수준으로 안정적으로 유지 할 수 있습니다. 헐떡거리거나 불규칙한 간격, 호흡 유지 또는 산소 포화 도급 수준이 감소하면 코 콘 밀봉 및 청소를 개선하기 위해 노력해야합니다. 코 콘은 밀접하게 맞아야하지만 코의 다리로 밀어안됩니다. 사용자 지정 코 콘을 조작해야 할 수 있습니다. 우리 제조업체의 원래 코 콘에는 공기 아웃테이크 밸브가 너무 작아서 매 튜브에 동물에 가까운 더 큰 밀봉 된 진공 선이 장착되었습니다. 이로 인해 만료된 CO2및 안정적인 산소 포화도의 더 나은 정리가 발생했습니다. 프로토콜에 언급했듯이 파라핀 필름은 코 콘의 아래턱과 가장자리를 감싸고 있을 수 있지만 너무 단단히 감싸면 호흡을 제한하고 불안정해질 수 있습니다. 또한, 이어 바와 바이트 바의 부적절한 배치는 이미징을 위해 헤드의 필요한 안정성에 영향을 미칠뿐만 아니라 호흡에도 영향을 미칠 수 있습니다. 동물에게서 계속 깜박이거나 들리는 소음은 부적절한 이어 바 배치의 가능성이 높습니다. 앞니는 물린 바에 단단히 앉아 서서 단단한 착용감을 보장하기 위해 이어 바 배치 후 앞으로 당겨야합니다. 쥐의 혀는 입에 너무 멀리 앉아서 적절한 호흡을 제한하는 경우 앞으로 당겨야 할 수도 있습니다.
각 시스템이 고유하기 때문에 최적의 청소를 위해서는 진공 레벨을 미세 조정해야 합니다. 실용적인 가이드로서, 코 콘 내부의 진공 선 에 손가락을 배치하거나 손바닥으로 전체 코 콘 개구부를 밀봉하여 소량의 흡입을 느낄 수 있어야합니다. 마취 입력에 대한 매칭 유량 (0.8 L /min이 여기에 사용되었다) 좋은 출발점이다. 동물의 산소 포화도는 스캔 을 통해 95 % 이상 남아 있어야합니다. 산소 포화도가 감소추세를 보이는 경우, 이는 CO2가 코 콘에 쌓여 있고 청소가 증가해야 한다는 표시일 수 있다. 또 다른 가능성은 발에 펄스 산소계 클립의 압력을 조정 할 필요가 있다는 것입니다, 혈류를 개선하기 위해 느슨하게하거나 강하고 안정적인 신호를 보장하기 위해 조여. 동물의 호흡이 설명된 임계값보다 높으면 청소가 너무 높게 설정되어 너무 많이 이소플루란을 제거한다는 것을 나타낼 수 있습니다. 드문 상황에서는 피하 덱스메디토미딘의 용량을 0.02 mg/kg/hr로 늘릴 필요가 있을 수 있지만, 0.015 mg/kg이 광범위한 쥐 연령과 남녀 모두에서 잘 작동하고 약리학 연구4에서지원된다는 것을 발견했습니다.
fMRI 활성화에 필요한 스캔 기간은 머피 외13에의해 이전에 도시된 바와 같이 효과 크기, 공간 신호 대 잡음 비(SNR) 및 측두형 SNR의 기능이다. 작은 표면 코일 (2cm) 및 높은 자기장 (9.4 T)의 사용은 SNR 및 BOLD 감도를 실질적으로 향상시킵니다. 이미징 설정을 통해 이전 보고서10과일치하는 강력한 휴식 상태 기능 연결 네트워크를 감지하기에 6분 검사만으로도 충분하다는 것을 발견했습니다. 그럼에도 불구 하 고, 우리는 일반적으로 검사를 반복 3 받는 사람 4 시간, 개별 동물에 대 한 기능적인 두뇌 네트워크를 파생 하는 결과 평균. 또는, 하나는 기능 연결 네트워크를 파생하기 위해 더 긴 기간 (10 분 이상)으로 한 시간을 스캔 할 수있습니다(14).
이 프로토콜을 사용하여 고품질 rs-fMRI를 수집한 후 이전에 게시된 데이터를15,16으로미리 처리합니다. 이어 바와 바이트 바를 모두 사용하면 fMRI 시간 코스의 모션 아티팩트가 최소화되며 모션 보정의 사용은 데이터에 눈에 띄는 영향을 미치지 않았습니다. 개별 휴식 상태 EPI 검사는 두개골 을 벗겨 공통 공간에 등록해야합니다 (우리는 단일 대표 쥐 뇌를 사용)16,17. 각 EPI에서 시작 볼륨을 제거하여 자석이 정상 상태일 때 포함된 볼륨을 모두 획득합니다(5시간 지점을 제거합니다). 개별 검색 해제(신호 및 노이즈 구성 요소의 예에 대한 대표 결과 참조). 슬라이스 타이밍 보정뿐만 아니라 선형 및 이차 추세 제거, 대역 패스 필터링(0.005-0.1Hz) 및 공간 스무딩(0.6mm FWHM[전체 폭은 최대 절반으로])을 적용합니다. 또한 선형 회귀를 통해 백색 물질및 심실에서 평균 신호 시간 과정을 제거합니다. 이러한 표준 전처리 단계 후, 종자 기반기능연결(11,15,18, 19,20,21, 22,독립 성분 분석10,20,22, 및 모듈형 분석12,19) 및 모듈식분석(12,19)을포함하는 추가 그룹 레벨 분석을 수행할 수 있다.
현재 프로토콜의 두 가지 주요 장점이 있습니다: 1) 그것은 자발적인 두뇌 활동을 허용; 및 2) 동물을 거의 정상적인 생리학으로 유지합니다. 대안 마취 방법(예: 프로포폴21,α-클로랄로오스15,판쿠로늄 브로마이드와 다른마취제(21,23)도휴게상태 데이터를 획득하는 데 사용되어 왔다. 그러나, 저용량 이소플루란과 저용량 덱스메데토미딘의 조합을 이용하여, 본 프로토콜에 기재된 바와 같이 뇌 네트워크 기능을 최소한으로 방해하는 동시에 양질의 휴식 상태기능적 연결 데이터9,10, 18,24를얻는 데 필요한 생리적 안정성을 제공하는 것으로 나타났다. 더욱이, somatosensory 자극9 및 기계 수염편향(11)으로부터의 굵은 반응은 이 프로토콜을 사용할 때 90분의 기간 이후에 볼 수 있으며, 일관된 각성 수준을 시사한다. 흥미롭게도, 덱스메디토미딘을 단독으로 사용하면 간질 활성을 유도할 수 있습니다. 그러나, 이 활동은 보충 이소플루란8로폐지되었다. 현재 프로토콜의 또 다른 장점은 인공 환기의 필요성을 제거한다는 것입니다. 기계적 환기는 동물에 걸쳐 부분 이산화탄소와 산소 포화의 좁은 범위로 이어질 수 있지만, 세로 연구에서, 삽관에 대한 필요없이 생리 적 매개 변수를 유지하면 적은 합병증과 원치 않는 부작용을 초래할 수 있습니다.
휴식 상태 fMRI에 대한 관심은 지난 10 년 동안 상당히 성장했으며 설치류에서 고품질의 전임상 휴식 상태 스캔을 받아야합니다. 이 생존 프로토콜은 휴식 상태 획득 하는 동안 거의 정상 생리학으로 최대 5 h에 대 한 안정적인 마취를 달성. 프로토콜이 매우 안정적이기 때문에 추가 서열(구조, 자극, 약리학 MRI 등)을 쉽게 첨가하여 원하는 실험 설계를 달성할 수 있습니다. 이 프로토콜에 활용 덱스메디토미딘과 저용량 isoflurane의 조합은 휴식 상태에서 설치류 뇌를 공부에 관심이 있는 조사자들을 위한 광범위한 전임상 연구를 가능하게 합니다.
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Disclosures
저자는 공개 할 것이 없습니다.
Acknowledgments
이 작품은 국립 보건 원 (NIH)의 약물 남용에 대한 국립 연구소 (NIDA)의 자금 지원 [DJW, EDKS, 그리고 EMB는 그랜트 R21DA044501 앨런 I. 그린에 수여하고 DJW는 앨런 J. 버드니에 그랜트 T32DA037202와 알코올 남용 및 알코올 중독에 국립 연구소 (NIAAA) [그랜트 F31AA028413 에밀리 D.에 의해 지원되었다. 다트머스의 레이몬드 소벨 정신과 교수로서 앨런 I. 그린의 기부 기금을 통해 추가 지원이 제공되었다.
한빙 루는 국립 마약 남용 교내 연구 프로그램, NIH에 의해 지원됩니다.
저자는 인정하고 늦은 앨런 I. 그린 감사하고자합니다. 공동 발생 장애 분야에 대한 그의 변함없는 헌신은 저자들 간의 협력을 확립하는 데 도움이되었습니다. 우리는 그의 멘토링과 지도에 대해 그에게 감사드리며, 이는 크게 놓칠 것입니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 9.4T MRI | Varian/Bruker | Varian upgraded with Bruker console running Paravision 6.0.1 software | |
| Air-Oxygen Mixer | Sechrist | Model 3500CP-G | |
| Analysis of Functional NeuroImages (AFNI) | NIMH/NIH | Version AFNI_18.3.03 | Freely available at: https://afni.nimh.nih.gov/ |
| Animal Cradle | RAPID Biomedical | LHRXGS-00563 | rat holder with bite bar, nose cone and ear bars |
| Animal Physiology Monitoring & Gating System | SAII | Model 1025 | MR-compatible system including oxygen saturation, temperature, respiration and fiber optic pulse oximetry add-on |
| Antisedan (atipamezole hydrochloride) | Patterson Veterinary | 07-867-7097 | Zoetis, Manufacturer Item #10000449 |
| Ceramic MRI-Safe Scissors | MRIequip.com | MT-6003 | |
| Clippers | Patterson Veterinary | 07-882-1032 | Wahl touch-up trimmer combo kit, Manufacturer Item #09990-1201 |
| Dexmedesed (dexmedetomidine hydrochloride) | Patterson Veterinary | 07-893-1801 | Dechra Veterinary Products, Manufacturer Item#17033-005-10 |
| Digital Rectal Thermometer Covers | Medline | MDS9608 | |
| FMRIB Software Library | FMRIB | MELODIC Version 3.15 | Freely available at: https://fsl.fmrib.ox.ac.uk/fsl/fslwiki |
| Heating Pad | Cara Inc. | Model 50 | |
| Hemostat forceps, straight | Kent Scientific | INS750451-2 | |
| Isoflurane | Patterson Veterinary | 07-893-1389 | Patterson Private Label, Manufacturer Item #14043-0704-06 |
| Isoflurane Vaporizer | VetEquip Inc. | 911103 | |
| Lab Tape, 3/4" | VWR International | 89097-990 | |
| Needles, 23 gauge | BD | 305145 | plastic hub removed |
| Parafilm Laboratory Film | Patterson Veterinary | 07-893-0260 | Medline Industries Inc., Manufacturer Item #HSFHS234526A |
| Planar Surface Coil | Bruker | T12609 | 2cm |
| Polyethylene Tubing | Braintree Scientific | PE50 50FT | 0.023" (inner diameter), 0.038" (outer diameter) |
| Puralube Ophthalmic Ointment | Patterson Veterinary | 07-888-2572 | Dechra Veterinary Products, Manufacturer Item #211-38 |
| Sprague Dawley Rats | Charles River | 400 SAS SD | |
| Sterile 0.9% Saline Solution | Patterson Veterinary | 07-892-4348 | Aspen Vet, Manufacturer Item #14208186 |
| Sterile Alcohol Prep Pads | Medline | MDS090735 | |
| Surgical Tape, 1" (3M Durapore) | Medline | MMM15381Z | 3M Healthcare, "wide medical tape" |
| Surgical White Paper Tape, 1/2" (3M Micropore) | Medline | MMM15300 | 3M Healthcare |
| Syringes, 1 mL w/ 25 gauge needle | BD | 309626 | |
| Syringes, 3 mL | BD | 309657 | |
| Vented induction and scavenging system | VetEquip Inc. | 942102 | 2 liter induction chamber with active scavenging |
| 411724 | omega flowmeter | ||
| 931600 | scavenging cube, "vacuum" | ||
| 921616 | nose cone, non-rebreathing |
References
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