Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Biology
Click here for the English version

Biology

Сбор паразитов морских гнатиидных изоподовых рыб с помощью световых ловушек

Published: September 25, 2023 doi: 10.3791/65059
Automatic Translation
1, 1, 1,2, 3,4
1Institute of Environmental and Marine Sciences, Silliman University, 2Neurolinx Research Institute, 3Department of Marine Biology and Ecology, Rosenstiel School of Marine Atmospheric and Earth Sciences, University of Miami, 4Water Research Group, Unit for Environmental Sciences and Management, North-West University

Summary

Мы представляем метод сбора паразитов морских гнатиидных изоподовых рыб с использованием световых ловушек, размещенных на полевых участках, с помощью дайвинга с задержкой дыхания или подводного плавания.

Abstract

Представлен способ сбора паразитов морских гнатиидных изоподовых рыб с использованием световых ловушек. Изоподы Gnathiid представляют собой основную группу паразитов морских рыб, которые питаются кровью и жидкостью рыб-хозяев, в основном ночью. Подобно клещам и комарам на суше, они лишь временно общаются со своим хозяином и проводят большую часть своей жизни в бентосе. Учитывая их высокую мобильность и преходящую и преимущественно ночную связь с хозяевами, их нелегко собрать, захватив свободноживущих хозяев. Однако они охотно притягиваются к подводным источникам света, создавая возможность собирать их в световые ловушки. Здесь описана конструкция и отдельные этапы, связанные с развертыванием и обработкой специально адаптированных световых ловушек для сбора свободноживущих стадий изопод гнатиид. Представлены и обсуждены результаты отбора проб и возможные модификации базового протокола для различных потребностей в отборе проб.

Introduction

Паразитические ракообразные играют важную роль в экологии и истории жизни рифовых рыб. Биомасса и энергия, которые они отбирают у своих хозяев, значительны и влияют на поведение, физиологию и выживаемость1. Ракообразные изоподы Gnathiid представляют собой наиболее заметную группу паразитов рыб в тропических и субтропических рифовых системах, где они многочисленны и разнообразны2,3 и являются основным продуктом питания более чистящих рыб 4,5. Гнатииды обычно имеют размер 1-3 мм. У них необычные истории жизни, в которых только три ювенильные стадии питаются кровью и биологическими жидкостями рыб 6,7. Они наиболее активны ночью 8,9, и, хотя зрение, по-видимому, играет некоторую роль, поиск хозяина 10 в значительной степени зависит от обонятельных сигналов, чтобы найти хозяев11,12. Каждая из трех стадий кормления молоди питается одной рыбой-хозяином, при этом каждый корм отделен фазой линьки. После окончательного кормления личинки третьей стадии превращаются в некормящихся взрослых особей, которые размножаются, а затем погибают. Учитывая, что кормление требует лишь кратковременной связи с хозяином, в то время как каждый интервал между кормлениями длится несколько дней, гнатииды проводят большую часть своей жизни свободноживущими в бентосе.

Гнатииды влияют на хозяев несколькими способами1. Помимо своей роли в качестве движущей силы взаимодействия между более чистыми рыбами и клиентами 13,14,15, гнатииды могут повышать уровень кортизола и снижать гематокрит у взрослых рыб-хозяев16 и в больших количествах могут даже вызывать смерть 17. Для молоди рыб даже один гнатиид может быть фатальным18,19,20, и даже если рыба выживет, ее способность конкурировать за пространство и убегать от хищников будет поставлена под угрозу 20,21,22. Избегание гнатиид может даже представлять собой одно из преимуществ ночной миграции у некоторых рифовых рыб23.

В дополнение к более чистым рыбам, популяции гнатиид могут подвергаться воздействию других микроплотоядных рыб24, а также кораллов25,26. Потепление океана и связанная с этим потеря живых кораллов, по-видимому, оказывают противоположное воздействие на гнатииды27,28,29.

Учитывая их очевидную экологическую значимость и вероятное влияние антропогенных изменений окружающей среды на их популяции, существуют веские причины для включения их в экологические исследования коралловых рифов. Однако их уникальная история жизни и небольшое количество исследователей, которые их изучают, создают барьер для разработки, внедрения и распространения надежных, воспроизводимых методов отбора проб для их сбора для исследований.

Световые ловушки издавна использовались для сбора мелких морских организмов в ночное время30,31. Они используют и основаны на том факте, что многие ночные активные организмы, в том числе членистоногие, привлекаются к свету. Традиционно они использовались для сбора планктонных организмов в толщеводы 30. Тем не менее, основные принципы могут быть применены к сбору свободно плавающих организмов, которые активны вблизи бентоса. Здесь мы представляем метод легкой ловли, адаптированный для сбора свободноживущих стадий изопод гнатиид вблизи дна океана в отдаленных условиях коралловых рифов, таких как Филиппины. Для сбора в отдаленных районах эти световые ловушки (рис. 1) обладают некоторыми преимуществами по сравнению с другими методами, разработанными для сбора этих организмов32. Они очень портативны и долговечны, требуют всего трех частей, которые легко доступны и недороги. Они также имеют отрицательную плавучесть, так как при развертывании они полностью заполнены морской водой. Поскольку они зависят от света для привлечения, они эффективны только ночью для сбора ночных активных видов. Они также привлекают больше, чем целевые виды, что требует сортировки образцов под препарирующим прицелом для получения целевых организмов. До сих пор наша команда и сотрудники использовали три метода для сбора гнатиид в системах коралловых рифов по всему миру32. К ним относятся ловушки для эмерджентности, ловушки с живой рыбой и легкие ловушки, каждая из которых имеет свои преимущества и ограничения.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Сбор проб был разрешен Бюро рыболовства и водных ресурсов Министерства сельского хозяйства (0154-18 DA-BFAR) в соответствии с филиппинскими законами и правилами (RA 9147; FAO 233) и одобрен комитетом по этике животных Университета Силлимана (SU).

1. Световые ловушки

  1. Строительство
    1. Сооружайте светоловушки из коммерческих труб из поливинилхлорида (ПВХ), изначально предназначенных для сантехники. Используйте ПВХ диаметром 10-15 см, нарезанный до 30-40 см в длину (рис. 1).
    2. К обоим концам трубочек добавьте ПВХ «колпачки» с прозрачной акриловой воронкой, вставленной в центр отверстия и приклейте на место прозрачным эпоксидным клеем (рисунок 1). Дайте ему высохнуть.
    3. Убедитесь, что один конец трубки имеет завинчивающуюся или иным образом съемную крышку и что оба конца водонепроницаемы, когда конденсатоотводчик «закрыт» (например, с добавлением уплотнительного кольца).
  2. Источник света
    1. Перед развертыванием включите подводный фонарь/фонарик (см. Таблицу материалов) и поместите его в трубку, лицом к одной из прозрачных воронок, таким образом, чтобы свет от подводного фонарика освещал область перед одной стороной трубы. При необходимости вместо подводных фонариков можно использовать химические светящиеся палочки, хотя интенсивность их света ниже.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Свет привлекает множество мелких ночных организмов31, включая гнатиид, и заставляет их плавать в трубе через прозрачную воронку. После того, как они вошли в трубку, они не могут выбраться из-за геометрии световой ловушки (небольшое отверстие воронки) и постоянного присутствия источника света.
  3. Размещение
    1. Находясь в воде в месте развертывания, заполните световые ловушки с включенным светом морской водой и закрепите оба конца. Чтобы убедиться, что горелка не находится ниже и не блокирует наконечник воронки, наклоните «переднюю часть» трубки вверх, чтобы горелка могла отоскользнуть от воронки.
    2. Разместите ловушки на морском дне, в песке или щебне, рядом с коралловыми головами или другими сложными структурами, которые, как известно, привлекают рыбу. Сфокусируйте светлый конус «внутрь», к местам, где собирается рыба.
      ПРИМЕЧАНИЕ: На мелководье ловушки можно расставить, ныряя с задержкой дыхания. Более глубокое развертывание требует подводного плавания.
  4. Возвращение
    1. Непосредственно перед извлечением ловушки запечатайте отверстия обеих воронок (на обоих концах трубки) куском пластилина или резиновой пробкой, удерживая всю морскую воду и содержащиеся в ней организмы.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Организмы останутся в ловушке после того, как разрядятся батареи фонарей и свет перестанет гореть. Это обеспечивает гибкость при извлечении ловушек («время замачивания»). Факторы, которые следует учитывать при принятии решения о времени замачивания, представлены ниже (см. Обсуждение).
  5. Транспорт
    1. Как только ловушки будут извлечены со дна, отнесите их на лодку или выплывите на берег.
    2. Поддерживайте ловушки, близкие к температуре окружающей морской воды после извлечения из океана.
    3. Транспортируйте их в лабораторию для обработки как можно скорее, так как после извлечения из океана не произойдет обмена газом или водой.

2 Лабораторная обработка

  1. Хранение и фильтрация образцов
    1. После того, как световые ловушки будут извлечены из океана и возвращены в лабораторию, высыпьте их содержимое в ведра с пресной морской водой.
    2. Добавьте аэрацию, чтобы сохранить организмы живыми до фильтрации.
    3. Отфильтруйте содержимое ведра, вылив через воронку, выстланную планктонной сеткой 50-100 мкм, затем вылейте содержимое в емкость объемом 100 мл с пресной морской водой.
    4. Используйте пипетку, чтобы взять из этого меньшего контейнера, чтобы поместить аликвоты образца в чашку Петри для микроскопии. Повторяйте до тех пор, пока не будет обработан весь образец.
  2. Идентификация и выращивание изопод гнатиид
    1. Поскольку образцы световых ловушек привлекают несколько видов мелких беспозвоночных, тщательно проверяйте образцы, чтобы идентифицировать и удалять изоподы гнатиид. 10-20-кратное увеличение лучше всего подходит для этой задачи (рис. 2).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Идентификация гнатиидов на семейном уровне не требует живых образцов. Тем не менее, взрослые гнатииды, которые редко попадают в световые ловушки, необходимы для морфологической идентификации видов и размножения (см. ссылку 1,3,9 для методологии разведения и выращивания гнатиид в неволе).
    2. В тех случаях, когда гнатииды необходимо сохранить живыми для выращивания, аккуратно извлеките их с помощью пипетки и поместите в небольшие пластиковые емкости со свежей морской водой.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Для отбора проб в центральной части Филиппин использовалась очерченная конструкция ловушки (рис. 1). Когда за ночь было установлено 36 ловушек (на одном участке), было собрано от 1 до 1343 гнатиид на ловушку (275 ± 54). К ним относятся как вскормленные, так и невскормленные ювенильные стадии (рис. 2; Таблицы 1, 2). Эти результаты демонстрируют эффективность световых ловушек для сбора изопод гнатиид в исследуемых условиях. На рисунке 3 показано размещение ловушки под водой.

Этот метод сбора гнатиид эффективен и достаточно гибок для различных полевых участков и научных вопросов. Например, в справке29 использовались световые ловушки для количественной оценки влияния кораллового покрова и биомассы рыб на численность гнатиид (рис. 4), а в справке33 использовались аналогичные ловушки для количественной оценки воздействия ураганов на генетические гаплотипы (рис. 5). В то время как другие методы были разработаны и использованы для сбора гнатиид32, этот метод особенно эффективен (таблица 3). Ловушки для эмерджентности, «палатки» из планктонной сетки32 требуют больших платформ для транспортировки, их трудно развернуть, и они легко рвутся, требуя постоянного ремонта. Более того, они редко собирают вскормленных ювенильных стадий. Ловушки с наживкойиз живой рыбы 32 (необходимы, потому что гнатииды не будут питаться мертвой рыбой), требуют отлова и размещения живой рыбы. Это затрудняет их использование в труднодоступных местах. Более того, их эффективность опирается на обонятельные сигналы11,12, на которые влияют размер рыбы, размер отверстий ловушки и водные течения. Они, как правило, собирают меньше гнатиидов, их труднее достать, чем световые ловушки, и они собирают только кормовые стадии.

Figure 1
Рисунок 1: Светоловушка из ПВХ-трубок. Справа: вид сверху, видна полупрозрачная воронка, вклеенная в тюбик акриловым клеем. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 2
Рисунок 2: Изопод гнатиида в чашке Петри после захвата. Обратите внимание на прозрачную жидкость тела рыбы и коричневато-красную рыбью кровь в кишечнике гнатиида. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 3
Рисунок 3: Модифицированная световая ловушка (передний план), в которой свет направлен вниз. Эта конструкция может быть использована в спокойных морских условиях для более прямого отбора проб субстрата под ловушкой. На заднем плане показаны ловушки эмерджентности. Этот рисунок перепечатан с разрешения ссылки32. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 4
Рисунок 4: Прямоугольные диаграммы, показывающие различия в распределении. Прямоугольные диаграммы, показывающие различия в распределении (А) численности гнатиид на первой стадии, (Б) гиперизобилия на первой стадии, (В) общей численности и (D) объема крови, извлеченной на биомассу рыбы. Размер выборки для каждой подгруппы указан в скобках под средним значением каждой подгруппы. Прямоугольники отображают края первого и третьего квартиля, в то время как усы показывают третий квартиль плюс в 1,5 раза больше межквартильного диапазона. Для (C) шарниры являются приближением 95% доверительного интервала. Различия, наблюдаемые в пунктах (А), (В) и (С), значительны; приложение S1: Таблица S7 в ссылке29. Этот рисунок перепечатывается с разрешения ссылки29. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 5
Рисунок 5: Сети гаплотипов, представляющие генетическое разнообразие Gnathia marleyi и его пространственное распределение до и после ураганов 2017 года. Наборы данных до и после урагана указаны соответственно на панелях I и II. Гаплотипы, обнаруженные как до, так и после урагана, обозначаются номером гаплотипа. Гаплогруппы А, В и С обозначены пунктирными рамками. Этот рисунок перепечатан с разрешения ссылки33. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Количество гнатиид Световые ловушки (n) Общее количество Значить Медиана Минимум (на ловушку) Максимум (на ловушку) Стандартная ошибка (+-)
Итог 34 9336 275 191 1 1343 54
Жить 34 6605 206 114 4 1226 46
Мёртвый 34 2667 86 42 1 659 24

Таблица 1: Сводная статистика подсчета гнатиид из 36 световых ловушек, развернутых во время ночного погружения с задержкой дыхания на коралловом рифе Бантаян, Филиппины, с июля по сентябрь 2017 года. Числовое значение в столбце «Живые» относится к гнатиидам из световой ловушки, которые были живы на момент подсчета, столбец «Мертвые» относится к мертвым гнатиидам, а столбец «Итого» — к сумме мертвых и живых гнатиидов.

Количество гнатиид N Общее количество Значить
Итог 10 434 43

Таблица 2: Сводные статистические данные о количестве гнатиид из световых ловушек, развернутых в течение 3 часов на коралловом рифе Бантаян, провинция Восточный Негрос, Филиппины, с июля по август 2022 года.

Тип ловушки Медианное количество 95% ДИ
Нижний Верхний
Появление без приманки 0.31 0.04 0.81
Появление рыбной наживки 0.42 0.19 0.69
Штатив с рыбной наживкой 0.92 0.46 1.46
Открытая сетка Рыбная наживка 1.5 0.35 3.54
Освещенная ловушка для планктона 5.69 2.69 9.58

Таблица 3: Проведено сопоставление характеристик ловушек различной конструкции, включая световые ловушки, в Карибском бассейне. Оценки медианного количества на образец и 95% доверительных интервалов для каждой конструкции ловушек были оценены при сравнении с несколькими ловушками. Оценки были получены на основе 10 000 итераций начальной загрузки с заменой из 26 выборок для каждого типа треппинга. Эта таблица адаптирована с разрешения ссылки32.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Традиционные световые ловушки, такие как те, которые используются для сбора личинок рыб, имеют большие размеры и подвешены в толщеводы 34. Напротив, описанные здесь световые ловушки невелики и развернуты на морском дне. Эти ловушки легко транспортируются и быстро развертываются. Они могут быть размещены путем погружения с задержкой дыхания (свободного) погружения на мелководье (как в этом исследовании) или на подводном плавании в более глубоких местах и привлекают как сытых, так и несытых
ювенильные стадии.

Вариации бентических световых ловушек, описанные здесь для изучения гнатиидов, использовались для различных целей нашей командой и сотрудниками, и в конструкцию или протокол могут быть внесены изменения в зависимости от конкретной цели (рис. 3). Они описаны ниже.

В некоторых исследованиях требуются живые гнатииды. К ним относятся исследования, определяющие источник (виды рыб) кровяной пищи35,36, или исследования, требующие выращивания. Световые ловушки в этом исследовании были длиной 30 см, диаметром 10,16 см и, следовательно, объемом ~ 1,3 л. Когда они становятся чрезмерно переполненными организмами, потребность в кислороде внутри трубки может превысить доставку кислорода через порты, что приводит к гибели организмов и усугубляет проблему. Чтобы этого избежать, ловушку можно развернуть на более короткие сроки или модифицировать, увеличив ее объем (ПВХ большего диаметра) или добавив дополнительные отверстия, покрытые планктонной сеткой 9,29,32. Обратите внимание, что, хотя ПВХ большего диаметра можно использовать для увеличения объема, это делается за счет более низкой портативности, что приводит к транспортировке меньшего количества ловушек на полевую площадку. Это вызывает особую озабоченность, когда транспортировка включает в себя длительные надводные плавания и/или использование небольших лодок с ограниченным пространством для хранения.

В качестве альтернативы или в дополнение к этому ловушка может быть развернута на более короткий срок. Основным преимуществом этой конструкции является то, что, хотя ловушка будет собирать организмы только ночью (когда свет эффективен), ее можно установить в любое время и извлечь в любое время. Чтобы собрать как можно больше гнатиидов, мы расставляли ловушки до захода солнца и извлекали их вскоре после восхода солнца на следующий день. Однако, чтобы максимизировать количество живых гнатиидов, мы ограничиваем развертывание 3-4 часами темноты. Короткое установленное время также уменьшает количество «прилова», который необходимо отсортировать для извлечения гнатиидов.

Ловушки, описанные здесь, лежат горизонтально, а луч света направлен в одном направлении. Таким образом, стимульный сигнал распространяется до тех пор, пока свет будет светить, обычно проходя через несколько типов подложек, и некоторое количество света также излучается из задней воронки. Чтобы сфокусировать отбор проб на конкретной подложке на небольшом расстоянии от ловушки, ловушку можно модифицировать так, чтобы она располагалась вертикально, а свет был направлен вниз (рис. 3). Это достигается добавлением «ножек» для формирования штатива29,32. Однако этот тип световой ловушки полезен только в слаботочных ситуациях.

Для фонарика, который мы использовали (см. таблицу материалов), требуется четыре (4) батарейки ААА. Мы используем аккумуляторные батареи для снижения затрат и отходов. Время горения этих фонарей составляет примерно 12 часов, что позволяет им функционировать в течение ночи. Однако подходящей заменой являются «светящиеся палочки». Они особенно полезны при установке в более глубоких водах, таких как мезофотические рифы.

В то время как описанные здесь световые ловушки привлекают широкий круг мелких подвижных беспозвоночных, состав этого прилова сильно варьируется. Однако при размещении в среде обитания, включающей щебень и рыбу, гнатииды вылавливаются постоянно. Хотя это демонстрационное исследование было сосредоточено на участках на Филиппинах, ловушки аналогичной конструкции также успешно использовались для исследований на участках в Карибском регионе и на Большом Барьерном рифе.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы заявляют о том, что не должны раскрывать информацию.

Acknowledgments

Финансирование было предоставлено Национальным научным фондом США (NSF OCE 2023420 и DEB 2231250, P. Sikkel PI). Мы благодарим муниципалитет города Думагете, Восточный Негрос, Филиппины, за разрешение провести это исследование. Мы также благодарим многих добровольцев за их помощь на местах, а также сотрудников и наших коллег из Института экологических и морских наук Университета Силлимана за их поддержку.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Buckets, small sample containers hardware store
Funnels Supplier No. 2209-03 Funnels: AMERICAN SCIENTIFIC LLC SE - 75 mm (3”)  https://us.vwr.com/store/product/8884369/plastic-funnels
Main body of light traps (made from commercially available PVC sanitarty pipes) (SKU 145640)  Alasco Sanitary uPVC Pipes Series 1000 107mm/4'  https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-pipe-series-1000/.  This brand can be found in the Philippines. Other simular brands can also be used
Modeling clay  Can be found in art suppliy and childreans toy stores To seal the funnel after retreival
Plankton mesh (50-100 µm) any reputable brand and source https://www.adkinstruments.in/products/plankton-nets-in-various-mesh-size-1633936883
Screw on lids for the light trap Alasco  Sanitary  Clean-Out  4" https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-clean-out/. This brand can be found in the Philippines. Other simular brands can also be used
Scuba/snorkel equipment any reputable brand and source
Stereo-microscopes Scientific suppliers
Underwater touches Princeton Tec Ecoflare or Fantasea Nanospotter 6023

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sikkel, P. C., Welicky, R. L. The ecological significance of parasitic crustaceans. Parasitic Crustacea. 17 (17), Springer. Cham. 421-477 (2019).
  2. Svavarsson, J., Bruce, N. L. New gnathiid isopod crustaceans (Cymothoida) from Heron Island and Wistari Reef, southern Great Barrier Reef. Zootaxa. 4609 (1), 4609 (2019).
  3. Shodipo, M. O., Sikkel, P. C., Smit, N. J., Hadfield, K. A. First record and molecular characterisation of two Gnathia species (Crustacea, Isopoda, Gnathiidae) from Philippine coral reefs, including a summary of all Central-Indo Pacific Gnathia species. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 14, 355-367 (2021).
  4. Losey, G. S. Jr Cleaning symbiosis in Puerto Rico with comparison to the tropical Pacific. 4 (4), 960-970 (1974).
  5. Grutter, A. S., et al. Parasite infestation increases on coral reefs without cleaner fish. Coral Reefs. 37, 15-24 (2018).
  6. Smit, N. J., Davies, A. J. The curious life-style of the parasitic stages of gnathiid isopods. Advances in Parasitology. 58. , 289-391 (2004).
  7. Tanaka, K. Life history of gnathiid isopods-current knowledge and future directions. Plankton and Benthos Research. 2 (1), 1-11 (2007).
  8. Sikkel, P. C., Schaumburg, C. S., Mathenia, J. K. Diel infestation dynamics of gnathiid isopod larvae parasitic on Caribbean reef fish. Coral Reefs. 25, 683-689 (2006).
  9. Santos, T. R. N., Sikkel, P. C. Habitat associations of fish-parasitic gnathiid isopods in a shallow reef system in the central Philippines. Marine Biodiversity. 4, 83-96 (2019).
  10. Nagel, L. The role of vision in host-finding behaviour of the ectoparasite Gnathia falcipenis (Crustacea). Isopoda). Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. 42 (1), 31-42 (2009).
  11. Sikkel, P. C., Sears, W. T., Weldon, B., Tuttle, B. C. An experimental field test of host-finding mechanisms in a Caribbean gnathiid isopod. Marine Biology. 158, 1075-1083 (2011).
  12. Vondriska, C., Dixson, D. L., Packard, A. J., Sikkel, P. C. Differentially susceptible host fishes exhibit similar chemo-attractiveness to a common coral reef ectoparasite. Symbiosis. 81 (3), 247-253 (2020).
  13. Grutter, A. S. Parasite infection rather than tactile stimulation is the proximate cause of cleaning behaviour in reef fish. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. 268 (1474), 1361-1365 (2001).
  14. Sikkel, P. C., Cheney, K. L., Côté, I. M. In situ evidence for ectoparasites as a proximate cause of cleaning interactions in reef fish. Animal Behaviour. 68 (2), 241-247 (2004).
  15. Sikkel, P. C., Herzlieb, S. E., Kramer, D. L. Compensatory cleaner-seeking behavior following spawning in female yellowtail damselfish. Marine Ecology Progress Series. , 1-11 (2005).
  16. Triki, Z., Grutter, A. S., Bshary, R., Ros, A. F. Effects of short-term exposure to ectoparasites on fish cortisol and hematocrit levels. Marine Biology. 163, 1-6 (2016).
  17. Hayes, P. M., Smit, N. J., Grutter, A. S., Davies, A. J. Unexpected response of a captive blackeye thicklip, Hemigymnus melapterus (Bloch), from Lizard Island, Australia, exposed to juvenile isopods Gnathia aureamaculosa Ferreira & Smit. Journal of Fish Diseases. 34 (7), 563-566 (2011).
  18. Grutter, A. S., Pickering, J. L., McCallum, H., McCormick, M. I. Impact of micropredatory gnathiid isopods on young coral reef fishes. Coral Reefs. 27 (3), 655-661 (2008).
  19. Artim, J. M., Sellers, J. C., Sikkel, P. C. Micropredation by gnathiid isopods on settlement-stage reef fish in the eastern Caribbean Sea. Bulletin of Marine Science. 91 (4), 479-487 (2015).
  20. Sellers, J. C., Holstein, D. M., Botha, T. L., Sikkel, P. C. Lethal and sublethal impacts of a micropredator on post-settlement Caribbean reef fishes. Oecologia. 189, 293-305 (2019).
  21. Allan, B. J., et al. Parasite infection directly impacts escape response and stress levels in fish. Journal of Experimental Biology. 223 (16), (2020).
  22. Spitzer, C. A., Anderson, T. W., Sikkel, P. C. Habitat associations and impacts on a juvenile fish host by a temperate gnathiid isopod. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 17, 65-73 (2022).
  23. Sikkel, P. C., et al. Nocturnal migration reduces exposure to micropredation in a coral reef fish. Bulletin of Marine Science. 93 (2), 475-489 (2017).
  24. Artim, J. M., Hook, A., Grippo, R. S., Sikkel, P. C. Predation on parasitic gnathiid isopods on coral reefs: a comparison of Caribbean cleaning gobies with non-cleaning microcarnivores. Coral Reefs. 36, 1213-1223 (2017).
  25. Artim, J. M., Sikkel, P. C. Live coral repels a common reef fish ectoparasite. Coral Reefs. 32, 487-494 (2013).
  26. Paula, J. R., et al. The role of corals on the abundance of a fish ectoparasite in the Great Barrier Reef. Coral Reefs. 40, 535-542 (2021).
  27. Sikkel, P. C., et al. Changes in abundance of fish-parasitic gnathiid isopods associated with warm-water bleaching events on the northern Great Barrier Reef. Coral Reefs. 38 (4), 721-730 (2019).
  28. Shodipo, M. O., Duong, B., Graba-Landry, A., Grutter, A. S., Sikkel, P. C. Effect of acute seawater temperature increase on the survival of a fish ectoparasite. In Oceans. 1 (4), (2020).
  29. Artim, J. M., Nicholson, M. D., Hendrick, G. C., Brandt, M., Smith, T. B., Sikkel, P. C. Abundance of a cryptic generalist parasite reflects degradation of an ecosystem. Ecosphere. 11 (10), (2020).
  30. Richardson, A. J., et al. Using continuous plankton recorder data. Progress in Oceanography. 68 (1), 27-74 (2006).
  31. McLeod, L. E., Costello, M. J. Light traps for sampling marine biodiversity. Helgoland Marine Research. 71 (1), 1-8 (2017).
  32. Artim, J. M., Sikkel, P. C. Comparison of sampling methodologies and estimation of population parameters for a temporary fish ectoparasite. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 5 (2), 145-157 (2016).
  33. Pagán, J. A., Veríssimo, A., Sikkel, P. C., Xavier, R. Hurricane-induced disturbance increases genetic diversity and population admixture of the direct-brooding isopod, Gnathia marleyi. Scientific reports. 10 (1), (2020).
  34. Doherty, P. J. Light-traps: selective but useful devices for quantifying the distributions and abundances of larval fishes. Bulletin of Marine Science. 41, 423-431 (1987).
  35. Jones, C. M., Nagel, L., Hughes, G. L., Cribb, T. H., Grutter, A. S. Host specificity of two species of Gnathia (Isopoda) determined by DNA sequencing blood meals. International Journal for Parasitology. 37 (8-9), 927-935 (2007).
  36. Hendrick, G. C., Dolan, M. C., McKay, T., Sikkel, P. C. Host DNA integrity within blood meals of hematophagous larval gnathiid isopods (Crustacea). Isopoda, Gnathiidae). Parasites & Vectors. 12 (1), 1-9 (2019).

Tags

В этом месяце в JoVE выпуск 199
Сбор паразитов морских гнатиидных изоподовых рыб с помощью световых ловушек
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Shodipo, M. O., Lauguico, R. Y.,… More

Shodipo, M. O., Lauguico, R. Y., Stiefel, K. M., Sikkel, P. C. Collecting Marine Gnathiid Isopod Fish Parasites with Light Traps. J. Vis. Exp. (199), e65059, doi:10.3791/65059 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter