Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Biology
Click here for the English version

Biology

Indsamling af Marine Gnathiid Isopod Fish Parasitter med lysfælder

Published: September 25, 2023 doi: 10.3791/65059
Automatic Translation
1, 1, 1,2, 3,4
1Institute of Environmental and Marine Sciences, Silliman University, 2Neurolinx Research Institute, 3Department of Marine Biology and Ecology, Rosenstiel School of Marine Atmospheric and Earth Sciences, University of Miami, 4Water Research Group, Unit for Environmental Sciences and Management, North-West University

Summary

Vi præsenterer en metode til at indsamle marine gnathiid isopod fisk parasitter ved hjælp af lysfælder placeret på feltsteder via åndedrætsdykning eller dykning.

Abstract

En metode til indsamling af marine gnathiid isopod fisk parasitter med brug af lysfælder præsenteres. Gnathiid isopoder er en stor gruppe af marine fiskeparasitter, der lever af blod og væske fra værtsfisk, for det meste om natten. Ligesom flåter og myg på land forbinder de kun midlertidigt med deres vært og tilbringer det meste af deres liv fritlevende i benthos. På grund af deres høje mobilitet og forbigående og overvejende natlige tilknytning til værter kan de ikke let indsamles ved at fange fritlevende værter. De tiltrækkes dog let af undervandslyskilder, hvilket skaber mulighed for at samle dem i lysfælder. Her skitseres design og individuelle trin involveret i implementering og behandling af specielt tilpassede lysfælder til indsamling af fritlevende stadier af gnathiid isopoder. Prøveresultater og mulige ændringer af basisprotokollen for en række forskellige prøveudtagningsbehov præsenteres og diskuteres.

Introduction

Parasitiske krebsdyr er vigtige i revfiskens økologi og livshistorie. Den biomasse og energi, de fjerner fra deres værter, er betydelig og påvirker adfærd, fysiologi og overlevelse1. Gnathiid isopod krebsdyr repræsenterer den mest fremtrædende gruppe af fiskeparasitter i tropiske og subtropiske revsystemer, hvor de er både rigelige og forskelligartede 2,3 og er den primære fødekilde i renere fisk 4,5. Gnathiider er generelt 1-3 mm i størrelse. De har usædvanlige livshistorier, hvor kun de tre ungdomsstadier lever af blod og kropsvæsker fra fisk 6,7. De er mest aktive om natten8,9, og mens synet ser ud til at spille en vis rolle, er værtsfund 10 stærkt afhængig af olfaktoriske signaler for at finde værter11,12. Hvert af de tre ynglestadier lever af en enkelt værtsfisk, hvor hvert foder adskilles af en smeltefase. Efter det endelige foder forvandles larver i tredje fase til ikke-fodrende voksne, som reproducerer og derefter dør. I betragtning af at fodring kun kræver kort tilknytning til værten, mens hvert interfodringsinterval varer dage, tilbringer gnathiider det meste af deres liv fritlevende i benthos.

Gnathiider påvirker værter på flere måder1. Bortset fra deres rolle som drivkræfter for interaktioner mellem renere fisk og klienter 13,14,15, kan gnathiider øge kortisolniveauerne og mindske hæmatokrit hos voksne fiskeværter 16 og i stort antal kan endda forårsage død 17. For unge fisk kan selv en enkelt gnathiid være dødelig18,19,20, og selvom fisken overlever, er dens evne til at konkurrere om plads og undslippe rovdyr kompromitteret20,21,22. Undgåelse af gnathiider kan endda udgøre en af fordelene ved natlig vandring hos nogle revfisk23.

Ud over renere fisk kan gnathiidpopulationer påvirkes af andre mikrokødædende fisk24 samt koraller25,26. Havopvarmning og det dermed forbundne tab af levende koraller ser ud til at have modsatrettede virkninger på gnathiider27,28,29.

I betragtning af deres klare økologiske betydning og den sandsynlige indflydelse af menneskeskabte miljøændringer på deres befolkninger er der tvingende grunde til at inkludere dem i økologiske undersøgelser af koralrev. Men deres unikke livshistorie og det lille antal forskere, der studerer dem, skaber en barriere for udvikling, implementering og formidling af pålidelige, reproducerbare prøveudtagningsmetoder til at indsamle dem til forskning.

Lysfælder har længe været brugt til at indsamle små marine organismer om natten30,31. De udnytter og er baseret på det faktum, at mange natligt aktive organismer, herunder leddyr, tiltrækkes af lys. Traditionelt er de blevet brugt til at samle planktoniske organismer i vandsøjlen30. De grundlæggende principper kan dog anvendes til indsamling af fritsvømmende organismer, der er aktive nær benthos. Her præsenterer vi en lysfangstmetode tilpasset til indsamling af fritlevende stadier af gnathiid isopoder nær havbunden i fjerntliggende koralrevmiljøer som Filippinerne. Til indsamling i fjerntliggende områder giver disse lysfælder (figur 1) nogle fordele i forhold til andre metoder, der er udviklet til indsamling af disse organismer32. De er meget bærbare og holdbare og kræver kun tre dele, som er let tilgængelige og billige. De er også negativt flydende, da de, når de indsættes, er helt fyldt med havvand. Fordi de er afhængige af lys for tiltrækning, er de kun effektive om natten til indsamling af nataktive arter. De tiltrækker også mere end målarterne, hvilket kræver sortering af prøverne under et dissekeringsomfang for at opnå målorganismerne. Tre metoder er indtil videre blevet brugt af vores team og samarbejdspartnere til at indsamle gnathiider i koralrevsystemer over hele verden32. Disse omfatter fremkomstfælder, levende fiskelokkede fælder og lette fælder, hver med fordele og begrænsninger.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Indsamling af prøver blev tilladt af Department of Agriculture-Bureau of Fisheries and Aquatic Resources (0154-18 DA-BFAR) i overensstemmelse med filippinske love og regler (RA 9147; FAO 233) og godkendt af Silliman University (SU) dyreetiske komité.

1. Lysfælder

  1. Byggeri
    1. Konstruer lysfælder fra kommercielle polyvinylchloridrør (PVC), der oprindeligt er designet til VVS. Brug PVC med en diameter på 10-15 cm, skåret til 30-40 cm længde (figur 1).
    2. Til begge ender af rørene tilsættes PVC "hætter" med en gennemsigtig akryltragt indsat i midten af åbningen og lim på plads med gennemsigtig epoxylim (figur 1). Lad det tørre.
    3. Sørg for, at den ene ende af røret har et skruelåg eller på anden måde aftageligt låg, og at begge ender er vandtætte, når fælden er "lukket" (f.eks. med tilføjelse af en O-ring).
  2. Lyskilde
    1. Før indsættelse skal du tænde et undervandslys/brænder (se materialetabellen) og placere det i røret med front mod en af de gennemsigtige tragte, således at lyset fra undervandsbrænderen oplyser området foran den ene side af røret. Om nødvendigt kan kemiske glødepinde bruges i stedet for undervandsfakler, selvom deres lysintensitet er lavere.
      BEMÆRK: Lyset tiltrækker en række små natlige organismer31, herunder gnathiider, og driver dem til at svømme ind i røret gennem den klare tragt. Når de først er kommet ind i røret, kan de ikke undslippe på grund af lysfældens geometri (lille tragtåbning) og den fortsatte tilstedeværelse af en lyskilde.
  3. Placering
    1. Når du er i vandet på implementeringsstedet, skal du fylde lysfælder med lyset tændt med havvand og sikre begge ender. For at sikre, at brænderen ikke er under eller blokerer tragtspidsen, skal du vippe rørets "front" opad for at lade brænderen glide tilbage væk fra tragten.
    2. Placer fælder på havbunden, i sandet eller murbrokkerne, ved siden af koralhoveder eller andre komplekse strukturer, der vides at tiltrække fisk. Fokuser lyskeglen "indad" mod områder, hvor fisk samles.
      BEMÆRK: På lavt vand kan fælder placeres ved åndedrætdykning. Dybere implementering kræver scuba.
  4. Hentning
    1. Umiddelbart før fælden hentes, forsegles åbningerne i begge tragte (i hver ende af røret) med et stykke modellervoks eller gummipropforsegling, og alt havvand og de indeholdte organismer holdes inde.
      BEMÆRK: Organismerne forbliver i fælden, når lysets batterier er udløbet, og lyset ikke længere lyser. Dette giver fleksibilitet, når fælderne hentes ("blødgøringstid"). Faktorer, der skal overvejes, når der træffes beslutning om blødgøringstid, præsenteres nedenfor (se diskussion).
  5. Transport
    1. Når fælderne er hentet fra bunden, skal du bære dem til en båd eller svømme i land.
    2. Oprethold fælder tæt på den omgivende havvandstemperatur, når de er fjernet fra havet.
    3. Transporter dem til laboratoriet til behandling så hurtigt som muligt, da der ikke vil finde gas- eller vandudveksling sted, når de er fjernet fra havet.

2 Laboratoriebehandling

  1. Opbevaring og filtrering af prøverne
    1. Når lysfælderne er fjernet fra havet og bragt tilbage til laboratoriet, skal du tømme deres indhold i spande med frisk havvand.
    2. Tilsæt beluftning for at holde organismer i live indtil filtrering.
    3. Filtrer indholdet af spanden ved at hælde gennem en tragt foret med 50-100 μm planktonnet, og tøm derefter indholdet i en 100 ml beholder med frisk havvand.
    4. Brug en pipette til at trække fra denne mindre beholder for at placere alikvoter af prøven i en petriskål til mikroskopi. Gentag det, indtil hele prøven er behandlet.
  2. Identifikation og opdræt af gnathiid isopoder
    1. Fordi lysfældeprøver tiltrækker flere arter af små hvirvelløse dyr, skal du omhyggeligt screene prøverne for at identificere og fjerne gnathiidisopoder. 10-20x forstørrelse er bedst til denne opgave (figur 2).
      BEMÆRK: Identifikation af gnathiider på familieniveau kræver ikke levende prøver. Voksne gnathiider, som sjældent fanges i lette fælder, er imidlertid nødvendige til morfologisk artsidentifikation og avl (se reference 1,3,9 for en metode til avl og opdræt af gnathiider i fangenskab).
    2. I tilfælde, hvor gnathiider skal holdes i live til opdræt, skal du forsigtigt fjerne dem med en pipette og placere dem i små plastbeholdere med frisk havvand.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Til prøveudtagning i det centrale Filippinerne blev det skitserede fældedesign (figur 1) anvendt. Når 36 fælder blev sat natten over (på et sted), blev der indsamlet 1 til 1343 gnathiider pr. fælde (275 ± 54). Disse omfattede både fodrede og ikke-fodrede unge stadier (figur 2; Tabel 1, 2). Disse resultater viser effektiviteten af lysfælder til indsamling af gnathiid isopoder under undersøgelsesbetingelserne. Figur 3 viser placeringen af fælden under vandet.

Denne metode til gnathiidindsamling er effektiv og tilstrækkelig fleksibel til forskellige feltsteder og videnskabelige spørgsmål. For eksempel brugte reference29 lysfælder til at kvantificere virkningerne af koraldække og fiskebiomasse på gnathiidoverflod (figur 4), og reference33 brugte lignende fælder til at kvantificere orkanernes virkninger på genetiske haplotyper (figur 5). Mens andre teknikker er blevet udviklet og anvendt til indsamling af gnathiider32, er denne teknik særlig effektiv (tabel 3). Fremkomstfælder, "telte" lavet af planktonnet32 kræver store platforme at transportere, er vanskelige at implementere og rives let og kræver løbende reparation. Desuden samler de sjældent fodrede ungdomsstadier. Fælder agnet med levende fisk32 (nødvendigt fordi gnathiider ikke vil fodre på døde fisk), kræver fangst og opstaldning af levende fisk. Dette gør deres brug vanskeligere på fjerntliggende steder. Desuden afhænger deres effektivitet af olfaktoriske signaler11,12, som påvirkes af fiskens størrelse, størrelsen af fældens åbninger og vandstrømme. De har tendens til at samle færre gnathiider, er vanskeligere at hente end lette fælder og samler kun fodrede stadier.

Figure 1
Figur 1: PVC-rør med lysfælder. Til højre: set ovenfra, med den gennemskinnelige tragt limet ind i røret med akryllim, synlig. Klik her for at se en større version af denne figur.

Figure 2
Figur 2: En gnathiid isopod i en petriskål efter fangst. Bemærk fiskens gennemsigtige kropsvæske og brunligt rødt fiskeblod i gnathiidens tarm. Klik her for at se en større version af denne figur.

Figure 3
Figur 3: En modificeret lysfælde (forgrund), hvor lyset rettes nedad. Dette design kan bruges under rolige havforhold til at prøve mere direkte underlaget under fælden. Fremkomstfælder vises i baggrunden. Denne figur er genoptrykt med tilladelse fra reference32. Klik her for at se en større version af denne figur.

Figure 4
Figur 4: Boxplots, der viser forskelle i fordelingen. Boxplots, der viser forskelle i fordelingen (A) af førstestadie-gnathiid-forekomst, (B) førstetrinshyperoverflod, (C) total overflod og (D) blodvolumen ekstraheret pr. fiskebiomasse. Stikprøvestørrelsen for hver undergruppe er vist i parentes under hver undergruppegennemsnit. Kasser viser første og tredje kvartil kanter, mens whiskers viser den tredje kvartil plus 1,5 gange interkvartilområdet. For (C) er hængsler en tilnærmelse af 95% konfidensintervallet. Forskellene i (A), (B) og (C) er betydelige; se tillæg S1: tabel S7 i reference29. Denne figur er genoptrykt med tilladelse fra reference29. Klik her for at se en større version af denne figur.

Figure 5
Figur 5: Haplotypenetværk, der repræsenterer den genetiske mangfoldighed af Gnathia marleyi og dens rumlige fordeling før og efter orkanerne i 2017. Datasæt før og efter orkanen er angivet i henholdsvis panel I og II. De haplotyper, der findes i både præ- og post-orkandatasæt, er angivet med haplotypenummer. Haplogruppe A, B og C er angivet med stiplede bokse. Denne figur er genoptrykt med tilladelse fra reference33. Klik her for at se en større version af denne figur.

Gnathiid tæller Lysfælder (n) Samlet antal Betyde Median Minimum (pr. fælde) Maksimum (pr. fælde) Standardfejl (+-)
Total 34 9336 275 191 1 1343 54
Leve 34 6605 206 114 4 1226 46
Død 34 2667 86 42 1 659 24

Tabel 1: Sammenfattende statistik for gnathiidtællinger fra 36 lysfælder, der blev indsat ved åndedrætdykning natten over i Bantayan koralrev, Filippinerne, fra juli til september 2017. Den numeriske værdi i kolonnen Levende henviser til gnathiider fra lysfælden, der var i live på tidspunktet for optællingen, kolonnen Døde henviser til gnathiider, der var døde, og kolonnen Total er summen af antallet af døde og levende gnathiider.

Gnathiid tæller N Samlet antal Betyde
Total 10 434 43

Tabel 2: Sammenfattende statistik for gnathiidtællinger fra lysfælder indsat i 3 timer i Bantayan koralrev, Negros Oriental provinsen, Filippinerne, fra juli-august 2022.

Fælde type Median antal 95% CI
Sænke Øvre
Un-baited fremkomst 0.31 0.04 0.81
Fiske-agn fremkomst 0.42 0.19 0.69
Fiske-agn stativ 0.92 0.46 1.46
Åbenmasket Fisk-agn 1.5 0.35 3.54
Tændt planktonfælde 5.69 2.69 9.58

Tabel 3: Ydeevnen for forskellige fældedesign, herunder lette fælder, i Caribien blev sammenlignet. Estimater af medianantal pr. prøve og 95 % konfidensintervaller for hvert fældedesign blev evalueret i multitrap-sammenligningen. Estimater blev afledt af 10.000 bootstrapping-iterationer, tegning med erstatning fra de 26 prøvetællinger for hver fældetype. Denne tabel er tilpasset med tilladelse fra reference32.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Traditionelle lysfælder, som dem, der bruges til indsamling af larvefisk, er store og er ophængt i vandkolonne34. I modsætning hertil er de lysfælder, der beskrives her, små og indsat på havbunden. Disse fælder kan let transporteres og hurtigt indsættes. De kan placeres ved åndedræt (fri) dykning på lavvandede steder (som i denne undersøgelse) eller på dykning på dybere steder og tiltrække både fodret og ufodret
unge stadier.

Variationer af de bentiske lysfælder, der er beskrevet her til undersøgelse af gnathiider, er blevet brugt til forskellige formål af vores team og samarbejdspartnere, og ændringer kan foretages i designet eller protokollen afhængigt af det specifikke formål (figur 3). Disse er beskrevet nedenfor.

Nogle undersøgelser kræver levende gnathiider. Disse omfatter undersøgelser, der identificerer kilden (fiskearten) til blodmåltider35,36 eller undersøgelser, der kræver opdræt. Lysfælderne i denne undersøgelse var 30 cm lange, med en diameter på 10,16 cm og dermed et volumen på ~ 1,3 L. Når de bliver overfyldte med organismer, kan iltbehovet inde i røret overgå leveringen af ilt via portene, hvilket får organismer til at dø og forværre problemet. For at undgå dette kan fælden anvendes i kortere perioder eller modificeres ved at øge dens volumen (PVC med større diameter) eller tilføje yderligere huller dækket med planktonnet 9,29,32. Bemærk, at mens PVC med større diameter kan bruges til at øge volumenet, gøres dette på bekostning af lavere bærbarhed, hvilket resulterer i transport af færre fælder til feltstedet. Dette er især bekymrende, når transporten involverer længere overfladesvømning og/eller brug af små både med begrænset opbevaringsplads.

Alternativt eller derudover kan fælden indsættes i en kortere varighed. En stor fordel ved dette design er, at mens fælden kun samler organismer om natten (når lyset er effektivt), kan den indstilles når som helst og hentes når som helst. For at samle så mange gnathiider som muligt satte vi fælder før solnedgang og hentede dem kort efter solopgang den følgende dag. Men for at maksimere antallet af levende gnathiider begrænser vi implementeringen til 3-4 timers mørke. En kort fastsat tid reducerer også mængden af "bifangst", der skal sorteres for at udvinde gnathiiderne.

De fælder, der beskrives her, ligger vandret med lysstrålen pegende i en retning. Således strækker stimulussignalet sig så langt som lyset skinner, normalt krydser flere substrattyper, og der udsendes også noget lys fra den bageste tragt. For at fokusere prøveudtagningen på et bestemt substrat i kort afstand fra fælden kan fælden ændres, så den sidder lodret med lyset pegende nedad (figur 3). Dette opnås ved at tilføje "ben" for at danne et stativ29,32. Denne type lysfælde er dog kun nyttig i lavstrømssituationer.

Den lommelygte, vi brugte (se materialetabel), tager fire (4) AAA-batterier. Vi bruger genopladelige batterier for at reducere omkostninger og affald. Brændetiden for disse lys er cirka 12 timer, hvilket gør det muligt for dem at fungere natten over. En passende erstatning er dog "glødepinde". Disse er især nyttige, når du sætter i dybere vand, såsom mesophotiske rev.

Mens de lysfælder, der er beskrevet her, tiltrækker en bred vifte af små, mobile hvirvelløse dyr, er sammensætningen af denne bifangst meget variabel. Men når de sættes i et levested, der omfatter murbrokker og fisk, fanges gnathiider konsekvent. Selvom denne demonstrationsundersøgelse fokuserede på steder i Filippinerne, er fælder af lignende design også blevet brugt med succes til undersøgelser på steder i den caribiske region og Great Barrier Reef.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne erklærer ingen afsløringer at gøre.

Acknowledgments

Finansieringen blev ydet af US National Science Foundation (NSF OCE 2023420 og DEB 2231250, P. Sikkel PI). Vi takker kommunen Dumaguete City, Negros Oriental, Filippinerne, for tilladelse til at gennemføre denne undersøgelse. Vi takker også de mange frivillige for deres felthjælp og personalet og vores kolleger på Silliman University Institute for Environmental and Marine Sciences for deres støtte.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Buckets, small sample containers hardware store
Funnels Supplier No. 2209-03 Funnels: AMERICAN SCIENTIFIC LLC SE - 75 mm (3”)  https://us.vwr.com/store/product/8884369/plastic-funnels
Main body of light traps (made from commercially available PVC sanitarty pipes) (SKU 145640)  Alasco Sanitary uPVC Pipes Series 1000 107mm/4'  https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-pipe-series-1000/.  This brand can be found in the Philippines. Other simular brands can also be used
Modeling clay  Can be found in art suppliy and childreans toy stores To seal the funnel after retreival
Plankton mesh (50-100 µm) any reputable brand and source https://www.adkinstruments.in/products/plankton-nets-in-various-mesh-size-1633936883
Screw on lids for the light trap Alasco  Sanitary  Clean-Out  4" https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-clean-out/. This brand can be found in the Philippines. Other simular brands can also be used
Scuba/snorkel equipment any reputable brand and source
Stereo-microscopes Scientific suppliers
Underwater touches Princeton Tec Ecoflare or Fantasea Nanospotter 6023

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sikkel, P. C., Welicky, R. L. The ecological significance of parasitic crustaceans. Parasitic Crustacea. 17 (17), Springer. Cham. 421-477 (2019).
  2. Svavarsson, J., Bruce, N. L. New gnathiid isopod crustaceans (Cymothoida) from Heron Island and Wistari Reef, southern Great Barrier Reef. Zootaxa. 4609 (1), 4609 (2019).
  3. Shodipo, M. O., Sikkel, P. C., Smit, N. J., Hadfield, K. A. First record and molecular characterisation of two Gnathia species (Crustacea, Isopoda, Gnathiidae) from Philippine coral reefs, including a summary of all Central-Indo Pacific Gnathia species. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 14, 355-367 (2021).
  4. Losey, G. S. Jr Cleaning symbiosis in Puerto Rico with comparison to the tropical Pacific. 4 (4), 960-970 (1974).
  5. Grutter, A. S., et al. Parasite infestation increases on coral reefs without cleaner fish. Coral Reefs. 37, 15-24 (2018).
  6. Smit, N. J., Davies, A. J. The curious life-style of the parasitic stages of gnathiid isopods. Advances in Parasitology. 58. , 289-391 (2004).
  7. Tanaka, K. Life history of gnathiid isopods-current knowledge and future directions. Plankton and Benthos Research. 2 (1), 1-11 (2007).
  8. Sikkel, P. C., Schaumburg, C. S., Mathenia, J. K. Diel infestation dynamics of gnathiid isopod larvae parasitic on Caribbean reef fish. Coral Reefs. 25, 683-689 (2006).
  9. Santos, T. R. N., Sikkel, P. C. Habitat associations of fish-parasitic gnathiid isopods in a shallow reef system in the central Philippines. Marine Biodiversity. 4, 83-96 (2019).
  10. Nagel, L. The role of vision in host-finding behaviour of the ectoparasite Gnathia falcipenis (Crustacea). Isopoda). Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. 42 (1), 31-42 (2009).
  11. Sikkel, P. C., Sears, W. T., Weldon, B., Tuttle, B. C. An experimental field test of host-finding mechanisms in a Caribbean gnathiid isopod. Marine Biology. 158, 1075-1083 (2011).
  12. Vondriska, C., Dixson, D. L., Packard, A. J., Sikkel, P. C. Differentially susceptible host fishes exhibit similar chemo-attractiveness to a common coral reef ectoparasite. Symbiosis. 81 (3), 247-253 (2020).
  13. Grutter, A. S. Parasite infection rather than tactile stimulation is the proximate cause of cleaning behaviour in reef fish. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. 268 (1474), 1361-1365 (2001).
  14. Sikkel, P. C., Cheney, K. L., Côté, I. M. In situ evidence for ectoparasites as a proximate cause of cleaning interactions in reef fish. Animal Behaviour. 68 (2), 241-247 (2004).
  15. Sikkel, P. C., Herzlieb, S. E., Kramer, D. L. Compensatory cleaner-seeking behavior following spawning in female yellowtail damselfish. Marine Ecology Progress Series. , 1-11 (2005).
  16. Triki, Z., Grutter, A. S., Bshary, R., Ros, A. F. Effects of short-term exposure to ectoparasites on fish cortisol and hematocrit levels. Marine Biology. 163, 1-6 (2016).
  17. Hayes, P. M., Smit, N. J., Grutter, A. S., Davies, A. J. Unexpected response of a captive blackeye thicklip, Hemigymnus melapterus (Bloch), from Lizard Island, Australia, exposed to juvenile isopods Gnathia aureamaculosa Ferreira & Smit. Journal of Fish Diseases. 34 (7), 563-566 (2011).
  18. Grutter, A. S., Pickering, J. L., McCallum, H., McCormick, M. I. Impact of micropredatory gnathiid isopods on young coral reef fishes. Coral Reefs. 27 (3), 655-661 (2008).
  19. Artim, J. M., Sellers, J. C., Sikkel, P. C. Micropredation by gnathiid isopods on settlement-stage reef fish in the eastern Caribbean Sea. Bulletin of Marine Science. 91 (4), 479-487 (2015).
  20. Sellers, J. C., Holstein, D. M., Botha, T. L., Sikkel, P. C. Lethal and sublethal impacts of a micropredator on post-settlement Caribbean reef fishes. Oecologia. 189, 293-305 (2019).
  21. Allan, B. J., et al. Parasite infection directly impacts escape response and stress levels in fish. Journal of Experimental Biology. 223 (16), (2020).
  22. Spitzer, C. A., Anderson, T. W., Sikkel, P. C. Habitat associations and impacts on a juvenile fish host by a temperate gnathiid isopod. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 17, 65-73 (2022).
  23. Sikkel, P. C., et al. Nocturnal migration reduces exposure to micropredation in a coral reef fish. Bulletin of Marine Science. 93 (2), 475-489 (2017).
  24. Artim, J. M., Hook, A., Grippo, R. S., Sikkel, P. C. Predation on parasitic gnathiid isopods on coral reefs: a comparison of Caribbean cleaning gobies with non-cleaning microcarnivores. Coral Reefs. 36, 1213-1223 (2017).
  25. Artim, J. M., Sikkel, P. C. Live coral repels a common reef fish ectoparasite. Coral Reefs. 32, 487-494 (2013).
  26. Paula, J. R., et al. The role of corals on the abundance of a fish ectoparasite in the Great Barrier Reef. Coral Reefs. 40, 535-542 (2021).
  27. Sikkel, P. C., et al. Changes in abundance of fish-parasitic gnathiid isopods associated with warm-water bleaching events on the northern Great Barrier Reef. Coral Reefs. 38 (4), 721-730 (2019).
  28. Shodipo, M. O., Duong, B., Graba-Landry, A., Grutter, A. S., Sikkel, P. C. Effect of acute seawater temperature increase on the survival of a fish ectoparasite. In Oceans. 1 (4), (2020).
  29. Artim, J. M., Nicholson, M. D., Hendrick, G. C., Brandt, M., Smith, T. B., Sikkel, P. C. Abundance of a cryptic generalist parasite reflects degradation of an ecosystem. Ecosphere. 11 (10), (2020).
  30. Richardson, A. J., et al. Using continuous plankton recorder data. Progress in Oceanography. 68 (1), 27-74 (2006).
  31. McLeod, L. E., Costello, M. J. Light traps for sampling marine biodiversity. Helgoland Marine Research. 71 (1), 1-8 (2017).
  32. Artim, J. M., Sikkel, P. C. Comparison of sampling methodologies and estimation of population parameters for a temporary fish ectoparasite. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 5 (2), 145-157 (2016).
  33. Pagán, J. A., Veríssimo, A., Sikkel, P. C., Xavier, R. Hurricane-induced disturbance increases genetic diversity and population admixture of the direct-brooding isopod, Gnathia marleyi. Scientific reports. 10 (1), (2020).
  34. Doherty, P. J. Light-traps: selective but useful devices for quantifying the distributions and abundances of larval fishes. Bulletin of Marine Science. 41, 423-431 (1987).
  35. Jones, C. M., Nagel, L., Hughes, G. L., Cribb, T. H., Grutter, A. S. Host specificity of two species of Gnathia (Isopoda) determined by DNA sequencing blood meals. International Journal for Parasitology. 37 (8-9), 927-935 (2007).
  36. Hendrick, G. C., Dolan, M. C., McKay, T., Sikkel, P. C. Host DNA integrity within blood meals of hematophagous larval gnathiid isopods (Crustacea). Isopoda, Gnathiidae). Parasites & Vectors. 12 (1), 1-9 (2019).

Tags

Denne måned i JoVE nummer 199
Indsamling af Marine Gnathiid Isopod Fish Parasitter med lysfælder
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Shodipo, M. O., Lauguico, R. Y.,… More

Shodipo, M. O., Lauguico, R. Y., Stiefel, K. M., Sikkel, P. C. Collecting Marine Gnathiid Isopod Fish Parasites with Light Traps. J. Vis. Exp. (199), e65059, doi:10.3791/65059 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter