Summary
在本文中，我们展示了一种优化的基于BODIPY 493 / 503荧光的方案，用于肝组织中的脂滴表征。通过使用正交投影和3D重建，荧光团可以成功区分微泡和大泡脂肪变性，并且可能代表用于肝脂肪变性评估的经典组织学方案的补充方法。
Abstract
脂滴（LDs）是介导脂质储存的特化细胞器，在抑制脂毒性和预防游离脂肪酸（FAs）引起的功能障碍方面起着非常重要的作用。鉴于肝脏在人体脂肪代谢中的关键作用，肝脏一直受到微泡和大泡肝脂肪变性形式的LDs细胞内积累的威胁。LD的组织学表征通常基于脂溶性重氮染料，例如油红O（ORO）染色，但许多缺点一直阻碍了该分析在肝脏标本中的使用。最近，亲脂性荧光团 493/503 因其快速吸收和积累到中性脂滴核心中而变得流行用于可视化和定位 LD。尽管大多数应用在细胞培养中都有很好的描述，但很少有证据表明亲脂性荧光团探针在组织样品中可靠地用作LD成像工具。在本文中，我们提出了一种优化的基于硼二吡咯甲烷（BODIPY）493/503的方案，用于评估来自高脂肪饮食（HFD）诱导的肝脂肪变性动物模型的肝脏标本中的LD。该协议涵盖肝脏样本制备、组织切片、BODIPY 493/503 染色、图像采集和数据分析。我们证明了HFD喂养时肝LD的数量，强度，面积比和直径增加。使用正交投影和3D重建，可以观察到LD核心中性脂质的全部含量，这些脂质显示为近球形液滴。此外，使用荧光团BODIPY 493/503，我们能够区分微囊泡（1μm
Introduction
脂滴（LDs），通常被视为能量库，是介导脂质储存的特化细胞器，它们包括疏水性中性脂质核心，主要含有胆固醇酯和甘油三酯（TG），由磷脂单层封装1，2，3。
LD生物发生发生在内质网（ER）中，从三酰基甘油（TAG）和甾醇酯的合成开始。中性脂质以低浓度在ER双层的小叶之间扩散，但聚结成油状体，当其细胞内浓度增加时，油状体从ER膜生长并芽成近球形液滴4。随后，来自ER双层和细胞质的蛋白质，特别是脂周（PLIN）蛋白家族，易位到LD的表面以促进出芽5，6，7，8，9。
通过新的脂肪酸合成和LD融合或聚结，LD长成不同的大小。因此，不同细胞类型中LD的大小和数量差异很大。小液滴（直径300-800nm），被称为初始LD（iLDs），几乎可以由所有细胞形成4。在LD形成的后期，大多数细胞能够将一些iLD转化为更大的iLDs-膨胀LDs（eLDs直径>1μm）。然而，只有特定的细胞类型，如脂肪细胞和肝细胞，才有能力形成巨大或超大的LD（直径可达数十微米）4，10。
LDs在调节细胞脂质代谢，抑制脂毒性，预防ER应激，线粒体功能障碍以及最终由游离脂肪酸（FAs）引起的细胞死亡方面起着非常重要的作用11，12，13，14。此外，LDs还与基因表达，病毒复制蛋白隔离以及膜运输和信号传导的调节有关15，16，17。因此，LD生物发生的失调是与代谢综合征，肥胖，2型糖尿病（T2DM）和/或动脉硬化相关的慢性疾病的标志，仅举几例18，19，20。
肝脏作为代谢中枢，主要负责通过储存和处理脂质的脂质代谢，因此，它不断受到脂毒性的威胁21。肝脂肪变性（HS）是一系列进行性肝病的共同特征，其特征是细胞内脂质以胞质LD的形式过度积累，最终可能导致肝脏代谢功能障碍，炎症和晚期非酒精性脂肪性肝病22，23，24，25.当极低密度脂蛋白（VLDL）中脂肪酸氧化和作为甘油三酯输出的速率低于血浆和从头脂肪酸合成中摄取肝脂肪酸的速率时，就会发生HS26。脂质的肝脏蓄积通常以两种形式发生 - 微泡和大泡脂肪变性 - 并且它们显示出不同的细胞结构特征27。通常，微泡性脂肪变性的特征是存在分散在整个肝细胞中的小LD，细胞核位于中央，而大泡性脂肪变性的特征是存在单个大LD，该LD占据肝细胞的大部分，将细胞核推向外围28，29.值得注意的是，这两种类型的脂肪变性经常一起发现，目前尚不清楚这两种LD模式如何影响疾病发病机制，因为证据仍然不一致31，32，33，34。然而，这种类型的分析通常被用作临床前和临床研究中的“参考标准”，以了解LD的动态行为并表征肝脂肪变性29，34，35，36。
肝活检是诊断和分级HS的金标准，通过组织学苏木精和伊红（H&E）分析常规评估，其中脂质液滴被评估为H&E染色肝脏切片中的未染色液泡37。虽然可以接受大泡脂肪变性评估，但这种类型的染色通常会缩小微泡脂肪变性的评估范围38。脂溶性重氮染料，如油红O（ORO），通常与明场显微镜结合使用以分析细胞内脂质储存，但这些仍然有许多缺点：（i）在染色过程中使用乙醇或异丙醇，尽管细胞是固定的，但这通常会导致天然LD的破坏和偶尔的融合39;（ii）耗时，因为ORO溶液由于保质期有限而需要新鲜粉末溶解和过滤，从而导致结果不太一致;（iii）以及ORO不仅染色脂滴，而且经常高估肝脂肪变性的事实38。
因此，细胞渗透性亲脂性荧光团（如尼罗红）已被用于活样品或固定样品中，以克服上述一些限制。然而，细胞脂质细胞器标记的非特异性性质反复缩小LD评估的范围40。此外，尼罗河红的光谱特性根据环境的极性而变化，这通常会导致光谱偏移41。
亲脂性荧光探针1，3，5，7，8-五甲基-4-硼-3a，4adiaza-s-茚达烯（激发波长：480nm;最大发射波长：515nm;BODIPY 493/503）表现出疏水性特性，允许其被细胞内LD快速吸收，积聚在脂滴核心中，随后发出亮绿色荧光12。与尼罗红不同，BODIPY 493/503对环境极性不敏感，并且已被证明具有更高的选择性，因为它在LD成像中显示出高亮度。为了染色中性LD，该染料可用于活细胞或固定细胞，并成功与其他染色和/或标记方法偶联42。染料的另一个优点是它几乎不需要努力地放入溶液中并且是稳定的，因此无需为每个实验新鲜制备42。尽管BODIPY 493/503探针已成功用于可视化细胞培养物中LD的定位和动力学，但一些报告也证明了这种染料在组织中的LD成像工具的可靠使用，包括人股外侧肌43，大鼠比目鱼肌42和小鼠肠道44。
在本文中，我们提出了一种优化的基于 BODIPY 493/503 的方案，作为评估肝脂肪变性动物模型中肝脏标本中 LD 数、面积和直径的替代分析方法。该程序包括肝脏样本制备、组织切片、染色条件、图像采集和数据分析。
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Protocol
本研究中执行的所有动物程序均已获得科英布拉临床和生物医学研究所（iCBR）动物福利机构（ORBEA，#9 / 2018）的批准，并符合动物护理国家和欧洲指令以及ARRIVE指南。
1. 实验设计
- 在温度（22°C±1°C），湿度（50%-60%）和光照（12小时明暗循环）的受控环境条件下，在通风笼中配对13周龄雄性Wistar大鼠，并 随意 获得自来水和标准啮齿动物食物。
- 在适应2周后，将大鼠任意分为两组。
- 分别用标准食物和高脂肪饮食（45% kcal/脂肪）喂养对照组（CTRL，n = 6）和高脂肪饮食组（HFD，n = 6），持续 24 周。
- 每周监测体重（BW）。记录每个笼子每天的食物和饮料消耗量。
2. 肝脏样本制备
- 肝脏清扫
- 准备蠕动泵：通过管路运行70%乙醇，将27 G针头连接到管子的出口端，并用冰冷（4°C）1x磷酸盐缓冲盐水（PBS，pH ~7.4）灌注管子（例如，在蠕动泵上200 rpm，内径为1.6毫米硅管，IV迷你滴注组）。调整体重（例如，对于100-150g大鼠，使用约10-12mL / min的流速）。
- 使用麻醉方案通过腹膜内注射麻醉大鼠（氯胺酮的终浓度= 75mg / kg，美托咪定的最终浓度= 1mg / kg）。
注意：确保使用脚趾捏反应方法完全麻醉大鼠。 - 将大鼠放在解剖盘上。
- 用70%乙醇彻底消毒毛皮，然后用纸巾擦干。
- 用剪刀在皮肤上做一个“U”形切口，然后在横膈膜下方切开。然后，在边缘切开肋骨，露出心脏。
- 当 1x PBS 运行时，将针头穿过左心室进入升主动脉，然后夹紧。然后，切开右心房，以便在灌注开始后进行引流。
注意：当血液被PBS取代时，肝脏应该开始变白。 - 使用剪刀和杜蒙镊子，小心取出肝脏，并用 1x PBS 冲洗。
- 将肝脏转移到培养皿上，称重。
- 使用手术刀，从肝脏左叶的侧侧（距边缘 1 厘米）收集 5 毫米厚的肝组织样本以进行包埋过程。
注意剩余的组织可以储存在-80°C以长期储存。
- 肝组织包埋
- 准备一个干冰容器，并在冷冻模具上正确贴上样品ID和方向标签。
- 将几滴冷冻包埋基质滴在冷冻机的中心，以获得最佳切割温度（OCT）。
- 确保组织样品的方向正确适合横截面。
注意：确保接触冷冻机底部的一侧是将首先切片的一侧。 - 小心地将更多的OCT滴在冷冻机上，直到它完全被覆盖。尽量避免形成气泡。如有必要，用普通镊子去除OCT内的任何气泡。
- 将带有OCT覆盖的样品的冷冻快速放入干冰容器中。
注意：组织可以在-80°C下储存3年。
3. 冷冻组织切片
- 调节低温恒温器温度（腔室：-21°C;试样：-18°C），并插入新的无菌刀片。
- 将样品放入低温恒温器中30分钟，然后让温度平衡。
- 在试样盘上制作单层OCT，以允许样品粘附。让OCT冷冻，并将组织样品安装在所需的方向。
注意： 切割表面应与刀片平行。为了保持良好的附着力，请将热提取器放在样品的顶部。前面的步骤也可以在装有干冰的干冰容器中进行。 - 将样品放在标本头中，并修剪组织表面（几个30μm组织样品切片）。
- 一旦感兴趣区域可以切片，切割12μm厚的切片，并将它们放在室温（RT）下保存的标记显微镜载玻片上。
注意：要收集切片，请慢慢将载玻片移向组织切片。每张载玻片可以收集两个肝脏切片。 - 让载玻片在室温下干燥10分钟。
注意：载玻片可在-20°C下储存6-12个月或在-80°C下储存长达3年。
4. 胸部染色
- 在室温下在载玻片染色系统中解冻载玻片30分钟。
- 用 1 次 PBS（每次 3 次，每次 5 分钟）洗涤。
- 使用屏障笔用疏水层圈出该部分。
- 准备 500 μg/mL BODIPY 493/503 储备溶液：将 1 mg BODIPY 493/503 溶解在 2 mL 溶剂（90% DMSO;10% 1x PBS）中。避光。在37°C的超声波浴中超声处理1小时（9.5-10W）。
注意：溶液可以在-20°C下储存至少30天。 - 通过将 2 μL BODIPY 493/503 储备溶液和 0.1 μL DAPI 储备溶液 （5 mg/mL） 加入 997.9 μL 1x PBS 中来制备 BODIPY 染色溶液 （1 μg/mL）。
- 将载玻片（75 μL/载玻片）与 BODIPY 493/503 （1 μg/mL） 和 DAPI （0.1 μg/mL） 在室温下孵育 40 分钟。
注意：从此步骤开始，将幻灯片保持在黑暗中。 - 用 1x PBS（每次 3 次，每次 5 分钟）清洗载玻片。
- 使用荧光封片介质用盖玻片安装载玻片，让它们干燥30分钟，并用指甲油密封。
注意：载玻片可以储存在4°C直至成像。
5. 脂质定量
- 使用经过验证的自动方法和设备测量血清总胆固醇和TG水平。
- 根据制造商的方案，使用甘油三酯比色测定试剂盒（材料表）测量肝脏TG水平。
6. 图像采集
- 将载玻片放在激光扫描共聚焦显微镜载玻片支架上。
- 对于图像可视化和采集，请使用带有20倍物镜的共聚焦显微镜（平面复消色差：20x/0.8）。
- 为避免 BODIPY 493/503 和 DAPI 之间的串扰，请在共聚焦软件上使用顺序（最佳信号）扫描模式。
- 使用 488 nm 氩激光线激发 BODIPY 593/503，使用 405 nm 激光线激发 DAPI。将 BODIPY 493/503 的发射范围设置为 493-589 nm，为 DAPI 设置 410-464 nm。
- 使用以下设置：针孔：1 AU，分辨率：1，024 像素 x 1，024 像素，位深度：12，像素大小：0.415 μm，双向模式，扫描速度：7（20 倍物镜为 ~1.58 μs/像素），线平均：2 倍，数码变焦：1。
注意：上述扫描参数必须针对所使用的每个共聚焦显微镜和物镜进行优化。 - 适当设置增益和数字增益，以便在范围指示器上检测到饱和像素。
注意：通过调整偏移来校正背景信号。 - 正确识别LD后，使用BODIPY和DAPI通道获取图像。
注：每个颜色通道的所有照片必须在相同的条件下（曝光和常规设置）拍摄。 - 要创建广域图像（图2），请将物镜更改为a10x物镜（plan-neofluar：10x/0.3）。
- 选择 平铺扫描 模式，每 5 张图像制作 5 个马赛克。
注意：在本工作中，每个图块都有 10% 的重叠，以便适当地合并图块进行分析。 - 要创建3D和正交视图（图3A），请将一滴浸油放在盖玻片的顶部，并将物镜更改为40倍物镜（Plan-neofluar：40x/1.30油）。
- 选择 Z-Stack 模式，并通过调整Z平面，用最佳厚度（~0.5μm）的光学切片定义采集的第一个和最后一个位置，以确保捕获所有液滴。
注意：为了加快图像采集速度并避免漂白，可以将光学切片调整到次优尺寸，确保至少 30% 的过采样以实现良好的 3D 重建。 - 选择正 交 模块，然后创建正交视图。
- 通过使用共聚焦显微镜软件在透明渲染模式下选择3D模块来获取3D图像。
7. 图像分析
- 使用CellProfiler（版本4.2.5）处理和分析单平面图像（20倍放大倍率）。
注意：这项工作中使用的管道改编自Adomshick等人。45. - 单击CellProfiler窗口左上角 的图像模块， 然后将图像作为.tiff文件上传。
- 使用 “名称和类型” 模块根据文件名在 BODIPY（液滴）和 DAPI（细胞核）染色图像之间进行排序。仅使用BODIPY染色图像进行LD分析。
- 要启动管道构造，请单击调整 模块，然后选择模块 ColorToGray 以将图像转换为灰度图像。
注意：要识别对象，需要灰度图像。 - 通过使用灰度图像的 IdentifyPrimaryObjects 模块来识别液滴。
注意：必须调整此模块中的参数才能完成良好的LD识别。在这项工作中，定义大小在6像素到300像素之间且阈值校正因子为1.0的LD导致了最准确的识别。 - 要测量已识别的脂滴的像素强度，请添加 测量对象强度 模块。
- 添加一个额外的 FilterObjects 模块，以确保仅量化最强的信号，而从最终的脂滴分析中排除强度较低的信号（最小强度：0.15;最大强度：1 任意单位）。
- 若要测量与输出数据相关的 LD，请添加 MeasureObjectSizeShape 模块。
- 此时添加一个 OverlayOutline 模块，将识别的液滴叠加在原始图像上，从而确保分割在未处理的图像上看起来也准确。
注意：这是一个可选的（质量控制）步骤。 - 在末尾添加一个 导出到电子表格 模块，然后单击左下角的 “分析图像 ”按钮。
8. 统计分析
- 使用任何统计分析软件应用程序将结果表示为平均值（S.E.M.）的平均值±标准误差。
注意：在本研究中，GraphPad软件用于统计分析。 - 使用柯尔莫哥罗夫-斯米尔诺夫检验分析值的分布，以评估与正态性的显著偏差。使用学生非配对 t 检验分析参数数据。
注： p < 0.05的值被认为具有统计学意义。
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Representative Results
该技术的成功实施应导致清晰的脂滴染色，以同时表征LD形态（基于3D重建的形状和脂质核心密度）以及它们的空间分布，每总面积的数量和平均大小（使用上述管道进行评估， 图1）。
图 1：使用细胞分析器处理示例 图像。 （A） CTL 组中用 BODIPY 493/503（绿色）染色的 LD 和用 DAPI（蓝色）染色的细胞核的原始图像。（B）CTL组的分化LD（洋红色）使用 叠加轮廓 模块进行叠加。（C）HFD组中用BODIPY 493/503（绿色）染色的LD和用DAPI（蓝色）染色的细胞核的原始图像。（D）使用 叠加轮廓 模块覆盖HFD组的分化LD（洋红色）。使用激光点扫描共聚焦显微镜以20倍放大倍率拍摄图像。比例尺 = 50 μm。缩写：CTL = 对照组;HFD = 高脂肪饮食组。 请点击此处查看此图的大图。
评估血清TGs、总胆固醇、LDL-c、HDL-c以及肝脏TG含量（表1）。HFD喂养的动物表现出明显的血脂异常特征，其特征是肝脏TG的积累加剧（与CTL相比为345%，p <0.001），以及循环TG水平的轻微增加（与CTL相比为129%，p >0.05）。
| 参数 | 中联 | 高频 | |
| 血清 | |||
| 总胆固醇（毫克/分升） | 56.67 ± 9.35 | 80.40 ± 7.45 | |
| 低密度脂蛋白（毫克/分升） | 7.66 ± 0.84 | 7.40 ± 1.03 | |
| 高密度脂蛋白（毫克/分升） | 17.83 ± 2.93 | 28.40 ± 2.40 * | |
| 甘油三酯（毫克/分升） | 154.8±40.17 | 201.2 ± 38.12 | |
| 肝 | |||
| 甘油三酯（毫克/克） | 15.29 ± 1.31 | 52.83 ± 6.73 *** |
表1：血清TGs，总胆固醇，LDL-c，HDL-c和肝脏TG含量。 数据表示为平均±SEM（每组n = 5-6）。 p < 0.001 与 CTL。使用学生非配对 t 检验进行统计分析。缩写：CTL = 对照组;HFD = 高脂肪饮食组。
图2显示了肝脏切片的代表性广域图像（具有10倍物镜的切片扫描），其中LD用BODIPY 493/503（绿色）染色，细胞核用DAPI（蓝色）染色。用BODIPY 493/503染色成功观察了不同大小的个体LD，在HFD喂养的动物中显示出广泛的分布模式。
图2：LD在肝组织中积累的代表性图像。 用BODIPY 493/503（绿色）染色的LDs和用DAPI染色的细胞核（蓝色）。使用激光点扫描共聚焦显微镜以10倍放大倍率拍摄图像。比例尺 = 200 μm。缩写：CTL = 对照组;HFD = 高脂肪饮食组。 请点击此处查看此图的大图。
图3A显示了具有20倍物镜的代表性正交投影和具有40倍物镜的肝LD的3D图像。 通过CellProfiler（版本4.2.5）处理和分析单平面图像，以评估LC的荧光强度，数量，面积和直径（图3B-E）。可以确认HFD喂养的动物显示出增加的肝脏LDs数量（151%与CTL，图3B），并且增强的BODIPY 493/503荧光强度证实了这一点（182%与CTL，p <0.001，图3C）。此外，LD的面积比几乎增加了两倍（360%与CTL，p <0.0001，图3D），因为它们在HFD喂养的动物中呈现更大的直径（182%与CTL，图3E）。 为了评估尺寸分布，根据直径范围将LD分为三组：1μm
图 3：LD 和数据分析的正交/3D 视图。 （A）喂食正常或HFD饮食的小鼠肝脏中肝脂滴（绿色，BODIPY 493 / 503）和细胞核（蓝色，DAPI）的代表性正交投影和3D渲染图像。使用激光点扫描共聚焦显微镜以20倍（左）和40倍（右）放大倍率拍摄图像。比例尺 = 20 μm。 （B） 肝 LD 的数量。 （C） 肝 LD 的荧光强度。 （D） 肝 LD 的面积比。 （E） 脂滴直径。（F）不同直径的肝脂滴组的分数比：1μm
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Discussion
这种基于荧光的 BODIPY 493/503 LD 评估方案旨在开发一种用于评估肝脂肪变性的新型成像方法。鉴于肥胖与脂肪肝之间的强相关性，采用西式高脂肪饮食建立肝脂肪变性动物模型26。定量甘油三酯比色测定试剂盒证实了肝TG含量的强劲增加，这表明HFD喂养的动物的肝脏脂质沉积情况增加。随后，在低放大倍率下，用荧光探针BODIPY 493/503观察LD积累的程度。正如预期的那样，BODIPY 493/503 染色显示 HFD 组肝组织中的水疱结构广泛分布。通过正交投影和3D重建，可以观察到LD核心呈现了中性脂质的全部含量，这些脂质显示为近乎球形的液滴。此外，每总面积LD面积的强劲增加非常明显（与CTL组相比为360%），鉴于HFD组的定量评分（52.83 mg / g±6.73 mg / g;346%与CTL组相比），该区域很可能充满了中性TG。为了进一步表征HFD喂养时的LD动力学，分析了肝脂肪变性的微观或大泡性质。使用先前在文献4，46，47中描述的LD直径范围，可以区分微泡LD计数的显着下降（1μm
近年来，经典脂质染料逐渐被新的荧光亲脂探针阵列所取代，例如BODIPY，因为它们的中性和平面结构由二氟硼配合物48稳定;这些探针已被证明在标记LD方面非常有效，以研究它们的形态，动力学以及与活细胞和一些固定组织中其他细胞器的相互作用49，50。在此介绍的用于肝脂肪变性评估的荧光染色脂滴方案中，该技术的成功有一些关键步骤，主要依赖于组织制备和图像采集。由于BODIPY信号可以被紫外光51漂白，因此在对其他被紫外光激发的荧光染料（例如通常已知的DNA荧光染料）进行成像之前，必须进行LD成像采集。此外，强烈建议保护显微镜载玻片免受光照，以防止在成像前出现BODIPY荧光猝灭。尽管LD的3D重建对于研究其形态非常有用，但由于3D重建图像由几个独立的2D图像组成，因此非常耗时。因此，当实验的主要目标仅仅是评估微泡和大泡肝脂肪变性时，研究人员应考虑避免此步骤。为避免偏倚，两名对治疗组不知情的独立观察者应进行数据采集和分析。半自动图像处理软件（Cell Profiler流水线）进一步有助于半盲定量，并克服了手动分析中持续观察到的处理时间增加的问题。
该技术可以扩展到更广泛的应用，结合其他组织和物种的免疫组织化学染色，只要确定最佳BODIPY浓度和图像采集设置以最大化信号/背景比。这种实验设置可以允许同时检测其他抗原，前提是使用的第二个荧光团不与BODIPY激发/发射光谱重叠。
总体而言，本文介绍的优化的基于荧光的BODIPY 493/503方案是用于LD表征的可靠且简单的工具，并且可能代表通常用于确认和分级肝脂肪变性的经典组织学方案的补充方法。
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Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
这项研究由国家和欧洲基金 通过 葡萄牙科学技术基金会（FCT），欧洲区域发展基金（FEDER）和竞争运营因素计划（COMPETE）：2020.09481.BD，UIDP / 04539 / 2020（CIBB）和POCI-01-0145-FEDER-007440资助。作者要感谢iLAB - 显微镜和生物成像实验室的支持，科英布拉大学医学院的设施，国家基础设施PPBI-葡萄牙生物成像平台（POCI-01-0145-FEDER-022122）的成员，以及FSE CENTRO-04-3559-FSE-000142的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1.6 mm I.D. silicone tubing, I.V mini drip set | Fisher Scientific | ||
| 4,4-difluoro-1,3,5,7,8-pentametil-4-bora-3a,4a-diaza-s-indaceno (BODIPY 493/503) | Sigma-Aldrich, Lyon, France | D3922 | |
| 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Molecular Probes Inc, Invitrogen, Eugene, OR | D1306 | |
| 70% ethanol | Honeywell | 10191455 | |
| Adobe Illustrator CC | Adobe Inc. | Used to design the figures | |
| Automatic analyzer Hitachi 717 | Roche Diagnostics Inc., Mannheim, Germany | 8177-30-0010 | |
| Barrier pen (Liquid blocker super pap pen) | Daido Sangyo Co., Ltd, Japon | _ | |
| Blade | Leica | 221052145 | Used in the cryostat |
| Cell Profiler version 4.2.5 | https://cellprofiler.org/releases/ | Used to analyse the acquired images | |
| Coverslips | Menzel-Glaser, Germany | _ | |
| Cryomolds | Tissue-Tek | _ | |
| Cryostat (including specimen disc and heat extractor) CM3050 S | Leica Biosystems | _ | |
| Dimethyl Sulfoxide (DMSO) | Sigma-Aldrich, Lyon, France | D-8418 | Used to dissolve Bodipy for the 5 mg/mL stock solution. CAUTION: Toxic and flammable. Vapors may cause irritation. Manipulate in a fume hood. Avoid direct contact with skin. Wear rubber gloves, protective eye goggles. |
| Dry ice container (styrofoam cooler) | Novolab | A26742 | |
| Dumont forceps | Fine Science Tools, Germany | 11295-10 | |
| Glass Petri dish (H 25 mm, ø 150 mm) |
Thermo Scientific | 150318 | Used to weigh the liver after dissection |
| Glycergel | DAKO Omnis | S303023 | |
| GraphPad Prism software, version 9.3.1 | GraphPad Software, Inc., La Jolla, CA, USA | ||
| High-fat diet | Envigo, Barcelona, Spain | MD.08811 | |
| Ketamine (Nimatek 100 mg/mL) | Dechra | 791/01/14DFVPT | Used at a final concentration of 75 mg/kg |
| Laser scanning confocal microscope (QUASAR detection unit; ) | Carl Zeiss, germany | LSM 710 Axio Observer Z1 microscope | |
| Medetomidine (Sedator 1 mg/mL) | Dechra | 1838 ESP / 020/01/07RFVPT | Used at a final concentration of 1 mg/kg |
| Needle | BD microlance | 300635 | |
| No 15 Sterile carbon steel scalpel Blade |
Swann-Morton | 205 | |
| Objectives 10x (Plan-Neofluar 10x/0.3), 20x (Plan-Apochromat 20x/0.8) and 40x (Plan-Neofluar 40x/1.30 Oil) | Carl Zeiss, Germany | ||
| Paint brushes | Van Bleiswijck Amazon B07W7KJQ2X | Used to handle cryosections | |
| Peristaltic pump (Minipuls 3) | Gilson | 1004170 | |
| Phosphate-buffered saline (PBS, pH ~ 7.4) | Sigma-Aldrich, Lyon, France | P3813 | |
| Scalpel handle, 125 mm (5"), No. 3 | Swann-Morton | 0208 | |
| Slide staining system StainTray | Simport Scientific | M920 | |
| Standard diet | Mucedola | 4RF21 | |
| Superfrost Plus microscope slides | Menzel-Glaser, Germany | J1800AMNZ | |
| Tissue-Tek OCT mounting media | VWR CHEMICALS | 361603E | |
| Triglycerides colorimetric assay kit | Cayman Chemical | 10010303 | |
| Ultrasonic bath | Bandelin Sonorex | TK 52 | |
| Vannas spring scissors - 3 mm cutting edge |
Fine Science Tools, Germany | 15000-00 | |
| ZEN Black software | Zeiss |
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