May 25th, 2017
يوضح هذا البروتوكول طريقة القائم على مضان لتصور الأوعية الدموية وتحديد مدى تعقيدها في القيطم الاستوائية . الأوعية الدموية يمكن تصويرها بعد دقائق من حقن صبغة الفلورسنت في قلب الضرب من الجنين بعد التلاعب الجيني و / أو الدوائية لدراسة التنمية القلب والأوعية الدموية في الجسم الحي .
الهدف العام من هذا الإجراء هو تصور الأوعية الدموية للضفادع الصغيرة Xenopus tropicalis. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال بيولوجيا القلب والأوعية الدموية مثل كيفية تنظيم تكوين الأوعية. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنه يمكن تصور الأوعية الدموية في جنين سليم من نوع البئر عن طريق حقن صبغة الفلورسنت البسيطة.
ابدأ باستخدام محمل صغير لملء ماصة زجاجية صغيرة مدببة بحوالي خمسة ميكرولترات من محلول LDL الأسيتيل ثنائي الكثافة الشفاف مع الحرص على عدم تحميل الجسيمات المترسبة. تحت مجهر التشريح ، استخدم زوجا دقيقا من الملقط رقم 55 لقص طرف الماصة لضبط حجم المركب الذي تم تحميله وضبط نظام الحقن الذي يتم التحكم فيه بالضغط لإخراج ما يقرب من خمسة لترات نانو من المحلول لكل حقنة. ثم اغمر طرف الماصة في 0.04٪ MS-222 في محلول ملحي بارث المعدل 0.1X أو MBS في قالب سيلجارد مصنوع خصيصا.
بعد ذلك ، قم بنقل جنين Xenopus tropicalis إلى قالب Sylgard وتأكيد التخدير الكامل مع عدم الاستجابة لتحفيز الزعنفة الظهرية. تحت مجهر التشريح ، قم بتحميل الجانب البطني للجنين لأعلى في المسافة البادئة على شكل حرف V للقالب في وضع مائل قليلا. ضع بإحكام دبابيس دقيقة مقاس 0.1 ملم على حامل دبوس واستخدم دبوسا واحدا لثقب الجلد فوق القلب الذي يجب أن يكون نابضا بشكل واضح.
أدخل الدبوس من خلال الفتحة الموجودة في الفراغ بين القلب والجلد دون ثقب القلب وضع الطرف المدخل داخل المنطقة التي سيتم إجراء الشق فيها. ثم افركي الدبوس الثاني على الدبوس الذي تم إدخاله لعمل شق خطي واستخدم كلا الدبابيس معا لتوسيع الشق برفق ، مما يؤدي إلى تعريض القلب. لحقن محلول LDL الأسيتيل DiI ، أدخل طرف الماصة الزجاجية في القلب وحقن 50 إلى 60 لترا نانو من LDL الأسيتيل DiI في حوالي 10 نبضات طردية.
عندما يتم تسليم كل محلول الصبغة ، تأكد من أن القلب لا يزال ينبض وانقل الجنين إلى طبق بتري جديد يحتوي على 0.1X MBS. بعد خمس إلى 10 دقائق ، يجب أن يتعافى الشرغوف من التخدير ويبدأ في الحركة. بعد حقن عدد مناسب من الأجنة ، قم بفحص الأجنة المخدرة المصنفة بشكل صحيح بصريا تحت المجهر الفلوري للتخلص من أي لها أعضاء أخرى مصنفة.
يمكن حقن الأجنة التي لم يتم تصنيفها بشكل كاف مرة أخرى. ثم التقط صورا للأجنة المسماة بشكل صحيح. للحصول على تصوير أكثر شمولا للأوعية الدموية ، قم بإصلاح الأجنة المخدرة في 4٪ بارافورمالدهيد لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة المحمية من الضوء للتصور بواسطة الفحص المجهري متحد البؤر.
إذا تم حقن كمية كافية من diI acetylated LDL في القلب ، فيجب أن يكون الوريد الكاردينال الخلفي ، أو PCV ، مرئيا على الفور تحت المجهر الفلوري. تظهر الأوردة الداخلية ، أو ISV ، ظهريا من PCV في موجة أمامية إلى خلفية تبدأ في المرحلة 36 وتنتهي حوالي المرحلة 40 إلى 41 لتصبح متفرعة قليلا حول المرحلة 43. ينمو PCV و ISV في نمط نمطي لتولد الأوعية الدموية يخضع لرقابة تنموية مشددة.
ومن المثير للاهتمام ، أن ضربة قاضية لإشارات TIE-2 بواسطة المورفالينوس المضاد للمعنى يقلل من طول وتعقيد بائعي البرامج المستقلين بينما يؤدي التعبير عن الشكل النشط التأسيسي ل TIE-2 إلى التفرع المفرط لبائعي البرامج المستقلين. يمكن حساب مؤشر تعقيد الوريد لتقييم تعقيد بائعي البرامج المستقلين ويمكن إنشاء المسارات المقدمة لتصور البنية العامة للأوعية الدموية Xenopus tropicalis الجنينية. تم وصف البروتوكول الأصلي لاستخدام Xenopus laevis بواسطة Levin and Colics وقمنا بتكييفه مع Xenopus tropicalis.
بمجرد إتقانها ، يمكن إكمال هذه التقنية في ساعة واحدة إذا تم إجراؤها بشكل صحيح. قبل هذا الإجراء ، يمكن إجراء التلاعب الجيني والدوائي للإجابة على أسئلة إضافية مثل الجينات ومسارات الإشارات التي تنظم نمو الأوعية الدموية. باستخدام هذا الإجراء ، يمكن تصوير الأوعية الدموية المسماة في سليم في الوقت الفعلي ، مما يوفر أداة قوية للتحقيق في ديناميكيات تطور الأوعية الدموية.
بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية حقن diI أسيتيل LDL في قلب الشرغوف Xenopus الاستوائي لتصور الأوعية الدموية.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
يُظهر هذا البروتوكول طريقة تعتمد على الفلورسنت لتصور الأوعية الدموية وتحديد تعقيدها في Xenopus tropicalis. تتيح التقنية تصوير الأوعية الدموية بعد فترة قصيرة من حقن صبغة فلورية في قلب الجنين، مما يسهل الدراسات على تطور القلب والأوعية الدموية في الجسم الحي.
This method enables direct visualization and quantification of vascular complexity in a vertebrate model, supporting early-stage target validation in angiogenesis pathways. By providing quantitative readouts of vessel sprouting and branching, it facilitates mechanistic de-risking of vascular targets before committing to lead identification campaigns. The Xenopus tropicalis system offers a disease-relevant platform for assessing angiogenic phenotypes with predictive confidence in preclinical cardiovascular research.
The method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing through lead identification, providing vascular phenotype data that informs go/no-go decisions in angiogenesis-focused programs.