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方法文章

piggyBac 转座子系统对人原代T细胞的改造

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DOI:

10.3791/4235

2012年11月5日

本文内容

摘要

我们描述了一种利用非病毒型piggyBac转座子系统将外源基因导入原代人T细胞的遗传修饰方法。通过piggyBac转座子系统修饰的T细胞可实现外源基因的稳定表达。

摘要

piggyBac 转座子系统在自然界中具有活性,最初来源于卷心菜夜蛾1,2. 这种非病毒系统基于质粒,最常见的是使用两种质粒,其中一种表达 piggyBac 转座酶以及含有目的基因的转座子质粒,该质粒在反向重复元件之间携带目的基因,这些反向重复元件是基因转移活性所必需的。 PiggyBac 通过“剪切-粘贴”机制介导基因转移,即转座酶将转座子片段整合到目标细胞基因组中。 PiggyBac 在多种昆虫中均表现出高效的基因递送活性1,2哺乳动物3-5以及人类细胞6,包括原代人T细胞7,8. 近期,一种超活性 piggyBac 转座酶的生成提高了基因转移效率9,10.

人类T淋巴细胞在癌症过继性免疫治疗中具有临床研究价值11值得注意的是,首个利用转座子修饰人类T细胞的临床试验 睡美人 转座子系统已获批准12我们先前已评估了其效用 piggyBac 作为一种非病毒性的人类T细胞基因修饰方法。我们发现 piggyBac 高效地对人T细胞进行遗传修饰,以导入报告基因和非免疫原性可诱导自杀基因7基因组整合位点分析显示,其整合过程对已知原癌基因内部或邻近区域并无偏好性13我们使用了 piggyBac 对细胞毒性T淋巴细胞进行基因修饰,使其表达靶向肿瘤抗原HER2的嵌合抗原受体,并发现经基因修饰的T细胞可介导对HER2阳性肿瘤细胞的靶向杀伤 体外 体内 在原位小鼠模型中14我们还使用了 piggyBac 生成对雷帕霉素具有抗性的T细胞,这在使用雷帕霉素的癌症治疗中应具有应用价值15.

本文介绍了一种利用piggyBac对原代人T细胞进行遗传修饰的方法。该方法包括从人血液中分离外周血单个核细胞(PBMCs),随后进行T细胞的培养、基因修饰和活化。在本报告中,T细胞被导入一种报告基因(eGFP),以便通过流式细胞术对基因表达进行分析和定量。

PiggyBac 可用于将多种目的基因导入人T细胞中进行修饰。尽管我们已利用piggyBac引导T细胞靶向肿瘤抗原14,但也曾利用piggyBac引入可诱导的安全开关,以便在需要时清除基因修饰的细胞7。由于piggyBac具有较大的载荷容量,还可实现对大型基因的转移,例如耐雷帕霉素的mTOR分子(15 kb)15。因此,本文介绍了一种非病毒性的方法,可用于多种目的的原代人T细胞稳定基因修饰。

方案

第0天

1. 从人血液中分离外周血单个核细胞

  1. 使用静脉穿刺法将20 ml新鲜人血采集至含钠-肝素的真空采血管中。
  2. 按1:1(v/v)比例混合血液与高级RPMI 1,640培养基。
  3. 向50 ml离心管中加入20 ml淋巴细胞分离液(25 °C)。缓慢将25–30 ml血液-RPMI 1,640混合液叠加于淋巴细胞分离液上方。
  4. 以400 × g离心40分钟,不启用刹车。
  5. 使用一次性移液管收集清晰层及模糊层,并转移至含10 ml 1× PBS(25 °C)的容器中,再用1× PBS补足体积至50 ml。
  6. 以450 × g离心10分钟。
  7. 彻底吸除上清液,加入20 ml高级RPMI 1,640培养基。
  8. 以400 × g离心5分钟。
  9. 吸除上清液,加入10 ml完全T细胞培养基,并补充5 ng/ml预热至37 °C的重组人IL-15(rhIL-15)。
  10. 计数细胞数量,将细胞以每孔2 × 106个接种于24孔组织培养包被板中,培养基为含5 ng/ml rhIL-15的完全T细胞培养基。在周围孔中加入无菌水。于37 °C、5% CO2的加湿培养箱中孵育过夜。

第1天

2. 使用抗CD28和抗CD3抗体包被培养板以刺激T细胞

  1. 将抗CD28和抗CD3抗体分别用无菌水稀释至每种抗体浓度为1 μg/ml。
  2. 向一个未包被的24孔组织培养板中5个已标记的孔内,每孔加入500 μl上述每种抗体溶液。
  3. 向其余孔中加入无菌水。用封口膜包裹培养板,并置于4 °C冰箱中。

3. 未刺激T细胞的核转染

  1. 将T细胞培养基在37 °C预热,并添加5 ng/ml的rhIL-15。通过将500 μl的核转染补充剂1加入2.25 ml的核转染溶液中,制备完全核转染溶液。
  2. 在1.5 ml微量离心管中分别加入5 μg转座子(Zeo-pT-CMV-eGFP)和转座酶(pCMV-piggyBac)。注意:可能需要优化转座酶和转座子DNA的用量,以实现最佳基因递送效果并最小化细胞毒性。质粒可通过申请向作者索取。
  3. 从24孔组织培养板中收集PBMC至50 ml离心管中,计数细胞数量。保留2 × 106个细胞,用于流式细胞术对照。
  4. 将7–10 × 106个细胞加入15 ml离心管中,以400 × g离心5分钟,吸除上清液后轻弹管底沉淀。
  5. 向松散的细胞沉淀中加入100 μl T细胞完全核转染溶液。
  6. 将溶液-细胞混合物加入含有质粒的离心管中。
  7. 将溶液-细胞-质粒混合物加至核转染杯底部,注意避免产生气泡。
  8. 使用程序U-014(未刺激的人T细胞,http://bio.lonza.com/resources/product-instructions/protocols/)进行核转染。
  9. 立即向核转染杯中加入500 μl预热的含rhIL-15的培养基,然后将细胞转移至24孔板的一个孔中,孔中已含有1.5 ml预热的含rhIL-15的培养基。
  10. 在37 °C、5% CO2的加湿培养箱中过夜培养。

第2天

4. T细胞的非特异性刺激

  1. 收集细胞并确定细胞数量。保留 0.5 x 106 通过流式细胞术检测细胞,以确定GFP阳性细胞的频率。以未转染的PBMCs作为对照。
  2. 吸弃非组织培养包被板中的CD3/28抗体溶液,每孔用T细胞培养基清洗一次。
  3. 将核转染后的细胞重悬于 0.5 x 106 每毫升完全CTL培养基中加入5 ng/ml rhIL-15,重悬细胞。将转染后的细胞每2.0 ml加入非组织培养板的4个孔中。每孔加入0.5 × 106 非核转染细胞至5th 好。
  4. 在37 °C、5% CO₂的湿润培养箱中孵育3天2.

第5天

  1. 从未经包被的组织培养板中收集刺激后的T细胞。
  2. 计数细胞,并将细胞重新接种至包被的24孔组织培养板中,密度为0.7 × 106 个细胞/mL,使用含5 ng/mL IL-15的T细胞培养基。

第7天

7. 基因表达分析

  1. 收集细胞,用抗人CD8抗体(也可使用抗CD3和抗CD4抗体)染色,通过流式细胞术分析GFP表达百分比。

第8天(可选)

8. T细胞扩增

  1. 转染后第8天,T细胞可重悬于含IL-15的T细胞培养基中,以每孔0.7 × 106个细胞的密度接种,以进行进一步扩增16

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结果

示意图展示了利用报告基因(eGFP)对人类T淋巴细胞进行遗传修饰的各个步骤 图1这些质粒可向作者索取。图示展示了利用报告基因(eGFP)进行基因修饰的人T淋巴细胞的步骤。 图2. 为了使T细胞在培养中分裂、扩增和增殖,必须对其进行活化。对经过修饰的人T细胞在培养第1天和第7天通过流式细胞术分析其基因表达。图中显示的是来自一位供体的结果 图3. 细胞经别藻蓝蛋白(APC)标记的抗CD8抗体染色后,使用配备四色荧光滤光片组的FACSCalibur流式细胞仪及CellQuest软件(Becton Dickinson)分析eGFP(转基因)与APC荧光信号。我们此前已观察到CD4和CD8阳性T细胞均发生基因修饰,本文以CD8阳性细胞为例进行展示。7尽管本文仅针对单个转基因表达进行了分析, piggyBac 也已用于人类细胞的多基因(或多重)基因转移17第1天到第7天之间eGFP表达的下降可能是由于并非所有转染的细胞都发生了转座子DNA的稳定整合。

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讨论

本文所述方法可实现对原代人T淋巴细胞的稳定转基因修饰。我们此前已测试了该方法的使用 piggyBac 转座子系统用于改造T细胞,使其表达报告基因(超过4周)、非免疫原性自杀基因、用于过继性免疫治疗的嵌合抗原受体(超过100天),并赋予其对免疫抑制药物的抗性7,13-15非病毒性T细胞修饰技术用于过继性免疫治疗及其他应用时,成本应远低于逆转录病毒转导,因而有望得到更广泛的应用。新型高活性 piggyBac 增加稳定转基因修饰人T细胞制造的可行性9尽管本文未予详述,但可通过以下组合方法获得足量的稳定转染T细胞,以满足潜在的临床应用需求。 piggyBac-介导的基因转移和aK562(人工抗原呈递)饲养细胞,初始产量约为2 x 106 稳定转染的T细胞可扩增4到5个对数级,达到10以上10 4至5周内转导的T细胞数量达到1012 6至7周内7. 分析 piggyBac 人类T细胞中的整合位点未显示出对原癌基因的偏好性,但在采用上述核转染技术时...

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致谢

SS 部分得到 TBMM 项目中通过 HHMI 医学转化研究生培训资助的支持。MHW 部分得到美国退伍军人事务部职业发展奖以及 Harold M. Selzman 博士夫妇慷慨支持。本工作还部分得到 NIH 淋巴瘤 SPORE 资助项目 P50CA126752 和 NIH R01 DK093660 的支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
LympholyteCedarlaneCL5015
高级RPMI 1,640LifeTechnologies12633020
Hyclone 胎牛血清Fisher ScientificSH3008803
GlutaMAX-I 补充剂LifeTechnologies35050-061
人白细胞介素-15重组蛋白eBioscience14-8159
EndoFree 质粒大提试剂盒Qiagen12362
Amaxa NucleofectorLonzaAAD-1001S
人T细胞核转染试剂盒LonzaVPA-1002
CD8-APCSouthern Biotech9536-11
抗人CD3eBioscience16-0037-81
抗人 CD28BD Pharmingen555725
24孔组织培养处理板BD Falcon353047
24孔非组织培养处理板BD Falcon351147
完全T细胞培养基成分
1x 高级 RPMI 1,640
5% 热灭活胎牛血清
2 mM GlutamaxIM-I

参考文献

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外周血单个核细胞流式细胞术分析基因修饰核转染操作T细胞活化GFP报告基因表达稳定转基因整合非病毒转座子