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方法文章

ex vivo 培养完整发育中的Drosophila 大脑

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DOI:

10.3791/4270

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2012年7月27日

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本文内容

摘要

本文介绍了一种可模拟的方法 体内 发育 果蝇 蕈体在其中 离体 培养系统

摘要

我们介绍了一种对完整 Drosophila 大脑进行 ex vivo 培养的方法。该方法可用于与长期遗传操作相对照,通过实现急性药物干预和对细胞过程的活体成像,研究中枢脑结构的细胞生物学与发育过程。作为该技术的一个示例,本实验室先前的研究1表明,在 Drosophila 中枢脑神经元的轴突中,轴突区与胞体-树突区之间存在一个此前未被识别的亚细胞区室。这一被称为轴突起始段(AIS)2的区室的发育,已通过遗传学手段证实依赖于神经元特异性的周期蛋白依赖性激酶 Cdk5。本文中我们显示,对野生型 Drosophila 幼虫大脑进行 ex vivo 处理,使用 Cdk5 特异性药理学抑制剂 roscovitine 和 olomoucine3,可导致肌动蛋白组织结构以及细胞表面蛋白 Fasciclin 2 定位的急性改变,这些变化与在遗传上缺失 Cdk5 活性的突变体中观察到的现象相似。

第二个ex vivo培养技术的示例用于研究果蝇从幼虫到成虫的变态过程中,胚胎期蘑菇体(MB)γ神经元连接的重塑。蘑菇体是果蝇嗅觉学习与记忆的中枢4,这些γ神经元在蛹期发育过程中会修剪其轴突和树突分支,随后在较晚的时间点重新延伸分支,以建立成体的神经支配模式5。研究表明,MB中这些神经元的修剪通过神经突分支的局部退化实现6,该过程由蜕皮激素(一种类固醇激素)通过蜕皮激素受体B1触发7,并依赖泛素-蛋白酶体系统的活性6。我们的ex vivo培养方法可用于进一步探究发育重塑的机制。我们发现,在ex vivo培养条件下,MB的γ神经元重现了发育性修剪过程,其时间进程与in vivo情况相似。然而,必须等到蛹壳形成后1.5小时再取出组织,以确保细胞不可逆地进入变态过程;若在蛹化起始时即进行解剖,则培养中几乎不发生或完全不发生变态。因此,经过适当改进后,ex vivo培养方法可用于研究中枢脑生物学中的动态过程以及稳态特征。

方案

A. 培养基的制备

  1. 通过滤膜除菌制备完全培养基:在 Schneider's Drosophila 培养基中添加 10% 胎牛血清和 1% 青霉素/链霉素。
  2. 培养基应每次新鲜配制。或者,每次使用前可解冻一份预先分装冷冻的培养基。
  3. 接种培养前,向培养基中加入 10 μg/ml 胰岛素和 2 μg/ml 蜕皮激素。药物配制成高浓度储备液后,分装冷冻保存。解冻后的分装液不得再次冷冻。
  4. 所有工作液应保持在 25 °C。

幼虫大脑的培养

1. 幼虫大脑的选取与解剖

  1. 向12 mm Millicell细胞培养插件中加入500 μl培养基。解剖所得脑组织将置于这些插件中,以便于进行免疫染色。
  2. 向解剖用表面皿中加入少量制备好的培养基。
  3. 使用小解剖铲挑取游走期三龄幼虫,并将其放入表面皿中。(我们假定 离体 培养方法同样适用于一龄或二龄幼虫,但我们尚未对此进行测试。
  4. 用一对镊子夹住幼虫的后端,用另一把#5号镊子小心地打开其前端。
  5. 迅速解剖出脑组织,同时保持腹神经索完整。

2. 离体 分离幼虫大脑的培养

  1. 使用预先....

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讨论

对组织结构和功能进行长期的遗传操作(包括基因突变和外源基因表达)通常会产生即时效应与晚期间接后果的复合表现,二者往往难以区分。将遗传学方法与药理学手段相结合,有助于解析表型背后的时间进程。例如,该策略已被成功用于解析不同细胞骨架组分在黑腹果蝇(Drosophila)精子发生过程中的作用10。在本研究示例中,该方法使我们得以证明,Cdk5 在维持黑腹果蝇(Drosophila)轴突起始段(AIS)结构方面具有持续性需求。在其他实验中,我们还成功使用了靶向其他细胞组分的药物,包括蛋白激酶(伊马替尼,imatinib)、肌动蛋白聚合(细胞松弛素,cytochalasin;拉帕酮,latrunculin;夹竹桃霉素,jasplakinolide)以及微管(长春碱,vinblastine;紫杉醇,taxol)。

离体 培养方法还可实现对发育过程动态的高分辨率分析。既往研究已报道了对中枢脑的短期活体成像 11,或对神经系统其他部位(如胸神经节)进行更长期的成像 12 以及.......

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致谢

我们感谢实验室所有成员在稿件撰写过程中提供的建议、有益的讨论和意见。我们尤其感谢 Marta Koch 和 Bassem Hassan 提出的宝贵建议,即在重塑实验中培养脑组织时,应等待 1.5 小时 APF 后再进行脑解剖。我们还感谢 NHGRI 成像设施为我们提供共聚焦显微镜的使用权限。本研究由 NIH 国家神经疾病与中风研究所(NINDS)院内研究计划的基础神经科学项目(Z01 NS003106)资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
斯氏果蝇培养基Invitrogen21720-024
胎牛血清(热灭活)Invitrogen10082-14710%
青霉素/链霉素Invitrogen15140-1221%
胰岛素Invitrogen12585-01410μg/ml
蜕皮激素Sigma-AldrichH51422μg/ml
罗斯可维汀Sigma-AldrichR7772100μM
奥洛莫星Sigma-AldrichO0886100μM
正常山羊血清Invitrogen50062Z1%
牛血清白蛋白Fisher ScientificM95011%
甲醛Sigma-AldrichD45514%
吐温-100Fisher ScientificBP1510.5%
磷酸盐缓冲液Invitrogen70011-0441X
VectashieldVector LaboratoriesH1000
Millicell 细胞培养小室EMD MilliporePI8P01250
多孔培养皿,4 孔Thermo Fisher Scientific, Inc.176740
Dumont #5 镊子Fine Science Tools11251-20
显微镜载玻片Fisher Scientific12-544-7
盖玻片Fisher Scientific12-548-5M

参考文献

  1. Trunova, S., Baek, B., Giniger, E. Cdk5 regulates the size of an axon initial segment-like compartment in mushroom body neurons of the Drosophila central brain. J. Neurosci. 31 (29), 10451-10462 (2011).
  2. Nakada, C., et al.

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