通过激光捕捉微分,用 Azure B 染色 70% 乙醇的脊髓部分后,从小鼠脊髓运动神经元的细胞体中制备了高质量的总RNA。从 3,000-4,000 个运动神经元中恢复足够的 RNA(+40-60 ng),以便通过 RNA-seq 和 qRT-PCR 进行下游 RNA 分析。
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通过激光捕捉微分,用 Azure B 染色 70% 乙醇的脊髓部分后,从小鼠脊髓运动神经元的细胞体中制备了高质量的总RNA。从 3,000-4,000 个运动神经元中恢复足够的 RNA(+40-60 ng),以便通过 RNA-seq 和 qRT-PCR 进行下游 RNA 分析。
从感兴趣的细胞中制备高质量的RNA对于精确和有意义地分析细胞类型之间、健康和疾病中同一细胞类型之间的转录差异或遵循药理治疗至关重要。在脊髓中,运动神经元的这种制备,是许多神经和神经退行性疾病感兴趣的目标,由于运动神经元占细胞总数的<10%,因此变得复杂起来。激光捕获微分(LMD)已经开发出来来解决这个问题。在这里,我们描述了一个协议,快速恢复,冻结,并部分鼠标脊髓,以避免RNA损伤的内源性和外源性RNA,然后沾上Azure B在70%乙醇,以确定运动神经元,同时保持内源性RNASE抑制。然后,LMD 用于将染色的神经元直接捕获到瓜尼丁硫氰酸酯裂解缓冲器中,保持 RNA 完整性。标准技术用于恢复总RNA并测量其完整性。然后,此材料可用于 RNA-seq 和 qRT-PCR 对成绩单的下游分析。
在由多种不同细胞类型组成的哺乳动物组织中,激光捕获微分(LMD)仪器的出现为选择特定的细胞类型以进行RNA或蛋白质水平分析提供了可能性。目前,放大和下一代测序技术能够利用几千个细胞的总RNA池,对转录组进行相对彻底的清点,包括评估RNA的相对水平和识别各种拼接形式。迄今为止,蛋白质组学对几千个细胞的分析将只通过更丰富的物种进行。例如,我们从3000-4000个运动神经元细胞体中鉴定出1000种最丰富的蛋白质中的 <1000种(未显示),朱和同事最近报告说,他们从15,000个肿瘤细胞1中识别出2,665种蛋白质。然而,随着质谱学的进一步发展,这种分析很可能将扩展到更深的深度。
在这里,我们提出了一个特定的协议,用于从小鼠脊髓运动神经元细胞体的LMD,然后准备RNA。该协议用于比较来自预症状转基因突变分解(SOD)1肌萎缩侧索硬化(ALS)小鼠运动神经元的RNA,这些小鼠的RNA由RNA-seq和qRT-PCR验证2从野生型SOD1转基因菌株中制备。值得注意的是,运动神经元,在脊髓灰质前角,占细胞总数的<10%,被星形细胞的海洋包围,因此,它们的转录轮廓不能轻易地从整个线的研究中去分解。因此,激光捕获方法非常适合分析这些细胞中的RNA表达,通过在短暂的内皮盐水灌注后快速切除和冷冻脐带来保持生理学。运动神经元somata是大,因此很容易检测,在这里使用一种染料,具有很强的亲和力神经元3。此外,在这样的大小下,这些细胞为捕获的每个细胞提供相对较大的RNA。所使用的程序,如下所述,可以很容易地调整,以获得其他神经元细胞类型,以及潜在的其他细胞类型,具体识别通过染料染色技术或抗体染色。
这里描述的老鼠麻醉、安乐死和心脏灌注的程序是根据耶鲁大学机构动物护理和使用委员会批准的协议进行的。
1. 准备无 RNase 仪器和解决方案
2. 从小鼠准备脊髓部分(图1A)
3. 脊髓部分污渍(图1A)
4. 激光捕获微分(LMD)(图1B)
5. 运动神经元的RNA制备
从一种动物中解冻所有收集的神经元,并将它们汇集在一起提取RNA。样品可能看起来淡蓝色,这取决于其中运动神经元的数量(沾染了Azure B)。根据为 LMD 组织提供的协议,使用合适的套件提取 RNA,以尽可能小的体积提取。服用1微克检查样品的数量和完整性。将剩余的RNA快速冷冻在干冰上,储存在-80°C。
6. 确定RNA质量和数量
根据制造商的协议,用毛细丝电泳微流体芯片上的 1 μl 样本确定 RNA 质量。RNA 完整性编号 (RIN) 高于 8.5 的总 RNA 制剂可用于 RNA-seq 和 qRT-PCR。数据输出通常还包括样品的大致浓度。
上面概述的协议和 图1 应产生50 ng或以上的总RNA与RIN的 >rin 8.5从3,000-4,000脊髓运动神经元细胞体解剖从9-10 20 μm切片约20笔幻灯片。由于此幻灯片数量小于鼠标脊髓 O .C.T.嵌入块的 10%,因此可以返回存储在 -80 °C 的块,并切开更多切片以进行另一轮 RNA 制备。如果分析需要大量的RNA,最好在几天内通过解剖和RNA准备一次只制作幻灯片(如20张幻灯片)的数量,然后为第二轮制作更多的幻灯片并组合产品。请务必先检查每个准备的RIN,以避免将好的与坏的结合在一起。RNA-seq 方法正变得越来越敏感,新的 PCR 技术有望比现有方法具有更高的灵敏度。因此,需要更少的神经元细胞体的RNA,从而允许更大的测序深度和更全面的验证有趣的命中。另一方面,完全遵守 MIQE 关于 qRT-PCR 分析和验证4 的建议可能需要更大的金额,以便对低丰度RNA做出必要的控制反应。
图 2 显示了 Azure B 染色和解剖后脊髓心室角部分的典型图像系列。在面板A中,大而暗的彩色细胞体是运动神经元,通过抗聊天抗体染色2得到证实,并且很容易与较小的相邻细胞区别。面板 B 显示与用轻笔勾勒出的单独细胞体的相同区域,并按显微镜软件编号。轮廓紧贴细胞体的边缘,激光的切割宽度稍小。此间距必须确定为每个激光功率设置,以尽量减少无关材料的包含,同时避免运动神经元细胞索的损失。面板 C 和 D 显示激光切割后的部分,单个细胞体已落入收集盖。请注意,切割幅度并不完全遵循面板 C 中的轻笔轮廓,但基本上不位于它之外。这种不规则性在面板 D 中很明显,每个切口周围的黑暗区域也很明显,这反映了激光对组织的热损伤。因此,如果两个细胞体非常接近对方,最好勾勒出它们进行单次切割的轮廓,而不是试图单独切割它们,并失去一些RNA,以在它们近接触的区域造成热损伤。
图3 显示了从LMD收集的约4,000个小鼠运动神经元细胞体中准备的RNA样本的RNA完整性的电泳分析的典型结果。上面板是总RNA的1μl产生的电图:右侧的插图是凝胶的图像。在这两个,请注意突出的核糖核化物峰值。下面板是包含RNA大小标准的车道的电传。分析软件计算出此样本的RIN为 9.8,浓度为 4.9 ng/μl。分析后,共提供了 13 μl 的此解决方案,为下游 qRT-PCR 验证成绩单金额提供了 64 ng 的 RNA。对于中等丰富的成绩单的典型 qRT-PCR 分析,总 RNA 的 0.15-0.20 ng 足以产生准确的量定量 2,因此此制备提供的 RNA 量足以验证多个引物集的多个脚本,如建议的那样 4。当然,大量的输入RNA可用于验证罕见的成绩单。这一数额也足以允许图书馆的编写和下一代RNA-seq。

图1。 脊髓切片生产概况和脊髓运动神经元细胞体激光捕捉微分。A) 切片生产和染色的主要步骤。B) 脊髓部分和激光解剖的卡通视图。 单击此处查看更大的图像。

图2。Azure B 染色运动神经元细胞体激光解剖的前后图像。A) 染色部分的腹角的一部分。注意四个大的,深色的细胞。也有一些轻微的染色和稍小的细胞,它们不是运动神经元(通过抗聊天抗体染色确认;未显示,但见Bandyopadhyay2),不会选择解剖。许多小的黑点可能是神经元过程(树突和轴突),但这还没有得到证实。B) 用轻笔勾勒出四个细胞体。请注意,轮廓紧贴细胞的边距,它们之间的距离最小。此间距应为每个显微镜和激光建立经验。该软件对单个神经元进行编号,从而简化了对已收集到的神经元的跟踪。C 和 D) 激光切割后,包含细胞体的碎片已落入收集帽。请注意,留下的孔比轮廓稍大,且不规则。这反映了激光束的宽度及其微变化的切割效率,具体取决于组织的局部组成。同样明显的是,由于激光造成的局部加热损伤,每个孔周围暗组织的边缘。
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图3。从LMD样品中对RNA完整性的电光分析。A) 通过微流体芯片上的微胶囊电泳分析,从上述协议从约 4,000 个运动神经元细胞体中制备的 RNA 的 1μl 等音标进行了分析。显示电球图,并显示突出的核糖核化物峰值。右边是凝胶本身的图像。B) 显示尺寸标准的电图,右侧有相应的凝胶通道。仪器软件计算出此样本的RIN为9.8,浓度为4.9 ng/μl。
通过激光微分脊髓切片产生总RNA的这一协议的成功与否的最重要指标是RIN值5。对于来自更高真核生物的RNA样本,8.5以上的值通常会产生高质量的测序和qRT-PCR数据。如果产量低但质量高,重复准备。但是,如果完整性较低(甚至为 7.5-8),则最好找到问题的根源并重试。有许多步骤可能会出问题,但实际上只有两个来源的问题 - 内源性 RNase 污染或外源 RNase 污染。第一个可以通过实践来解决,以便将鼠标从牺牲到冻结其 O .C.T 嵌入线的时间降到最低。协议中内源性 RNase 可能导致不良结果的另一点是在切片的准备过程中。每片应快速粘附在室温 PEN 滑动上,但会融化(O.C.T 变得清晰)。切片的重新冻结速度越快越好。我们使用的冷冻器在腔室内有平坦的表面,位于 -20 °C,我们用它来快速重新冻结切片。在使用的冷冻统计器中查找类似的位置,并确保切片再次迅速变得不透明。
追踪外源 RNase 的来源可能很困难,因为存在许多可能性。唯一未明确无 RNase 的试剂是 O .C.T. 和 Azure B。如果 Azure B 以前表现令人满意,请尝试一瓶新鲜的 O .C.T.,尽管这种试剂从来都不是问题。即使来自其他供应商,也可以更换无 RNase 试剂。更可能的来源是调查员。除了彻底清理工作区域外,让另一个实验室成员跟随并观察程序中的所有步骤通常也是有用的。即使这是一个人谁不定期执行这个程序,一组新的眼睛可能会拿起一个否则被忽视的污染源。
将此协议扩展到从其他脊髓细胞、来自其他物种的脊髓细胞或从其他器官的特定细胞类型恢复RNA,将需要在几个方面进行修改,旨在明确识别感兴趣的细胞,同时消除或至少尽量减少内源性RNASE的影响。在此处的协议中,快速去除和冻结脐带,加上 Azure B 染色在 70% 乙醇中,既能最大限度地减少RNA降解,又能轻松识别运动神经元细胞体。Azure B 是神经元成熟的组织化学污渍,似乎与 RNA3 结合,用于评估神经元在神经退行性疾病 6 患者脑组织解剖样本中的RNA含量。值得注意的是,Azure B 染色既不影响纯化RNA的完整性,也不影响其反向转录和分析的能力。其他染料,如紫罗兰色7 和甲苯丙胺蓝色8 已用于类似的LMD协议。在解剖细胞体时将细胞体直接收集到瓜尼丁硫氰酸酯溶液中,这提供了最终步骤,导致完整RNA的常规恢复。
其他细胞和器官可以设想类似的方法,认识到识别感兴趣的细胞,同时最大限度地减少或最好地防止RNA通过内源性RNA退化是成功分析的关键要求。在具有高水平RNASE的组织中,如胰腺,快速处理和低温已经结合,允许从β细胞中恢复RNA,利用其自然的自流可视化9。使用抗体染色进行鉴定的程序也已报告10,但尚未完全成功在我们的手中。最后,许多小鼠模型可用于在感兴趣的细胞中表达荧光融合蛋白(即GFP、YFP、RFP),这些模型可用于在LMD显微镜上的组织部分识别它们。事实上,我们用这个协议分析的老鼠菌株表达了SYD1和YFP11之间的融合蛋白,它们的脊髓运动神经元是高度荧光的。然而,我们未能找到一套乙醇洗涤和/或脱水条件,可以同时去除O.C.T.,抑制RNase活性,并持续保持足够的YFP荧光,使运动神经元可视化,并通过LMD恢复。也许可以找到一种新的荧光蛋白或在有机溶剂中保持荧光的可用蛋白质的变种,以克服这一限制。
作者宣称他们没有相互竞争的经济利益。
作者要感谢乔治·法尔和霍维奇实验室的成员们的有益讨论。 这项工作得到了霍华德·休斯医学研究所的支持。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 氯胺酮 | 韦伯斯特兽医 | 26637041101 | 任何经机构兽医服务批准的 |
| 来源 解剖工具(剪刀、镊子、 etc.) | 任何方便的高质量解剖器械来源 | ||
| Cryostat | 徕卡显微系统 | CM3050S | 其他低温恒温器应适合 |
| LMD6000 B | 徕卡显微系统 | 其他 LMD 系统尚未经过测试 | |
| 不含 RNase 的 PEN 膜 2 μM 滑梯 | 徕卡显微系统 | 11505189 | 其他载玻片类型已经过测试,性能不佳 |
| RNeasy Micro套件 (50) | Qiagen | 74004 | 任何使用硫氰酸胍裂解缓冲液并已经过回收少量RNA测试的试剂盒都可以使用 |
| 安捷伦2100生物分析仪 | 安捷伦科技 | G2939A | |
| Azure B 认证 | MP Biomedicals | 190520 | 关键!任何来源的产品在使用前都必须经过测试,以确定其保持 RNA 完整性的能力 |
| PBS | Sigma 生命科学 | D8537 | 任何可靠的无 RNase 来源 PBS |
| RNA 乙醇 70%(用 DEPC 处理过的水制成) | American Bioanalytical | AB04010-00500 | 任何可靠的来源,可以是实验室制造的 |
| 水,不含 RNase,经过内毒素测试(用 DEPC 处理以消除 RNase) | American Bioanalytical | AB02128-00500 | 任何可靠的来源,都可以是实验室制造的 |
| RNase AWAY | Invitrogen Life Technologies | 10328-011 | 其他类似的 RNase 去除试剂,如 RNaseZAP(也来自 Invitrogen)可以使用 |
| 2-甲基丁烷 | 电子显微镜科学 | 78-78-4 | 任何来源 |
| Maxymum Recovery 微量离心管(0.6 和 1.5 ml)和移液器吸头 | Axygen | 311-03-051 & 311-09-051 | 超低吸附、不含 RNase 的试管和吸头;使用OCT 复合组织前测试其他制造商的产品 |
| -Tek | 4583 | ||
| Cryomold 中等尺寸 | 组织-Tek | 4566 | |
| 实验室湿巾 (Kimwipes) | KIMTECH | 34155 |
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