方法文章

免疫细胞健康和疾病肝脏使用CXCR6.Gfp记者小鼠长期活体多光子显微镜成像

DOI：

10.3791/52607

⸱

2015年3月24日

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medicine III, RWTH University-Hospital Aachen, 2IZKF Aachen Core Facility "Two-Photon Imaging", RWTH University-Hospital Aachen, 3Institute for Laboratory Animal Science & Experimental Surgery, RWTH Aachen University, 4Institute for Pharmacology, RWTH University-Hospital Aachen

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

肝脏免疫细胞的稳定活体高分辨率成像具有挑战性。在这里，我们提供了一种高度灵敏和可靠的方法，通过活体多光子激光扫描显微镜结合重症监护监测来研究免疫细胞在小鼠肝脏中长时间（约 6 小时）的迁移和细胞-细胞-相互作用。

摘要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

肝脏炎症作为对损伤的响应是，涉及白细胞的不同的亚型，包括单核细胞，嗜中性粒细胞，T细胞亚群，B细胞，自然杀伤（NK）和NKT细胞的浸润高度动态的过程。肝脏用于监测免疫细胞迁移的活体显微镜是特别具有挑战性的，由于有关样品制备和固定，光学分辨率和动物长期存活的高要求。然而，炎症过程以及细胞相互作用研究的动力学能提供更好的理解炎性肝病的发生，发展和回归的关键信息。因此，建立了一个高度敏感的和可靠的方法来研究的迁移和不同的免疫细胞在小鼠肝脏在长时间内（约6小时），通过活体双光子激光扫描显微镜（TPLSM）细胞 - 细胞相互作用中有重症监护组合监控。 ENT“>所提供的方法包括：一个轻柔的制备和与器官的极小扰动肝脏的稳定固定;使用多色多光子显微镜，几乎没有光漂白或光毒性效果在长达6小时的时间段长期活体成像，允许跟踪具体的白细胞子集;而由于大量监测小鼠重要参数和流通，温度和气体交换的稳定稳定的成像条件。

调查在肝脏炎症淋巴细胞迁移CXCR6.gfp敲入小鼠下基线条件和后诱导四氯化碳腹腔注射（多个）（CCL 4）的急性和慢性肝损伤进行活体肝成像。

CXCR6是表达在淋巴细胞趋化因子受体，主要对天然杀伤T（NKT） - ，天然杀伤（NK） - 和T淋巴细胞，如CD4 + T细胞亚群，而且粘膜associated不变（MAIT）T细胞1。继允许在肝损伤的详细洞察他们的行为改变，因此他们的病情恶化可能参与的迁徙模式CXCR6.gfp +免疫细胞和定位。

引言

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

细胞和在整个器官的细胞功能或甚至整个生物体的可视化受到了极大的兴趣超过50年，包括本体2的几乎所有的部分。因此，一些早期的研究已经采用的肝3,4的活体成像。但是，有几个局限存在最新关于长期稳定的高分辨率的肝组织的成像。

由于在与膜片和胃肠道5紧密接触肝脏的解剖位置，因为微观活体成像的最常见的问题是移动由于呼吸和，在较小程度上，蠕动肠道6。相较于其他实体器官，肝脏手术是特别具有挑战性。由于密集的微血管结构，手术操作可导致大量出血病灶，居民受损的微循环7，也激活我mmune细胞如Kupffer细胞8。因此，该组织的机械固定如别处公布6,9-可能妨碍与活体显微镜成像。

在一个健康的肝脏，总血量的10-15％驻留在肝脉管系统中，并且该机关收到整体心输出10的25％左右，使该器官极易受到在循环变化（ 例如 ，血压波动）。因此，由于例如 ，剪切应力，位移，伤害由过度的组织处理或集中式循环中断的肝血流量将导致人工改变在白细胞迁移行为，受损的肝的氧合，因此进一步的肝损伤，影响肝的免疫反应，以及作为器官保存和动物的整体使用寿命。

早期的微观研究是基于活体萤光英里croscopy，但一些技术限制，如光漂白和低渗透深度限制使用这种技术的长期的肝脏成像4,11,12。在20世纪90年代多光子显微术的发展，光漂白或穿透深度的限制，主要是解决了，因为这种新的方法，在技术上是能够在根据实际生活情况13-15几乎所有的器官进行成像研究。然而，对于肝脏成像主剩余的挑战是：呼吸运动，肝组织的自体荧光，确保为几个小时，16长时间不变的血流量在肝窦，特别是稳定的成像。

尽管一些研究涉及的功能和各种白细胞的迁移在肝脏17， 如 NKT细胞18-20，T细胞21,22，肝巨噬细胞23,24或25的中性粒细胞，长期的多光子米icroscopy成像尚未成功建立，任务更有挑战性的动物的急性或慢性肝病，由于现有的损害，因此，较高的敏感性，以进一步的损害26。然而，监测在实时肝白细胞的迁移行为和细胞功能允许在其特定的作用，在肝脏内稳态和疾病27新的见解。

趋化因子受体CXCR6上表达几种淋巴细胞亚群，包括自然杀伤（NK）细胞，NKT细胞和一些T细胞群18,28。在小鼠中之前的研究已经表明，CXCR6和其同源配体CXCL16可能动态平衡期间控制NKT细胞的巡逻肝血窦。因此，使用CXCR6.gfp小鼠（携带一敲，在绿色荧光蛋白[GFP]在CXCR6基因）被描述为调查淋巴细胞迁移的各种器官如脑29并且还肝脏18,20，示出了在炎症增加CXCR6.gfp细胞浸润。

在这项研究中所提供的方法有可能在一段时间稳定的条件下长时间遵循这些进程。活体多光子基于程序允许成像，这是与动物的器官极小扰动高度重复性;长期生存的动物被大量监控后严密控制呼吸和循环的优化;高度灵活，也容易采取其他实质器官如肾脏或脾脏。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

方案

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

注：该实验按照管理下的“指南实验动物的护理和使用”（NIH出版，第8版，2011）动物研究的德国法律执行和动物保护的指令六十三分之二千零一十/ EU用于科学目的（官方公报欧洲联盟，2010年）。官方许可从政府的动物护理和使用办公（LANUV北威州，雷克林豪森，德国），视为理所当然。

注意：步骤可以为短期成像省略（ 例如卡扣镜头，三维堆叠或还短的持续时间的时间推移显微镜）的标有星号（*），以减少准备时间和简化手术协议。也可以不广泛的监测和控制循环执行成像如果有必要，但是，生存时间会明显减少。

1.显微镜设置和手术前的准备（5-10英里N）

  1. 开关系统（显微镜，电源实验室，激光，加热垫，气候室，网络摄像头，注射泵设备，呼吸器）。
  2. 连接的O 2供给到异氟烷蒸气，并设置电平异氟烷1.5％（体积）（体积/体积）中，连接到一个小动物呼吸器。
    1. 短期成像，只在最初的IP麻醉诱导使用异氟醚维持麻醉（见步骤2.2）。然后用2体积％（体积/体积）异氟醚，并且保持成像时间低于2小时，以保证稳定的肝脏微循环。
  3. 设置呼吸到120-140呼吸周期/分钟150-200微升的体积。
  4. 设置鼠标琼脂糖阶段。制备100ml的3％（重量/体积）琼脂糖，倒入在40°的角度的盘（约10cm×15cm的基体）。
  5. 成立了手术工作区域收集所需要的仪器仪表。防止微生物感染，消毒使用Sekusept复S的1％溶液（文书9.9％w / v的），戊二醛9.8％w / v的，甲醛的实验（ 图1A前5分钟）。
  6. 获得剩余组分：皮肤消毒剂（ 例如 ，10％聚维酮碘溶液），肝期（栈＆桥），琼脂糖溶液（3％（重量/体积）的PBS），注射泵，用5％（重量/体积）的葡萄糖溶液（G-5），注射泵用麻醉剂溶液I（氯胺酮0.1毫克/毫升，甲苯噻嗪0.5毫克/毫升，芬太尼5微克/毫升），棉签，正丁基-2- Cyanoacrylat，和1x PBS中。把琼脂糖阶段菜进入孵化室预热。

2.气管切开术（10-15分钟）

  1. 从在房子育种称量25-28克使用C57BL / 6小鼠。房子无特定病原体条件下按照FELASA指南，在一个温度和湿度可控的环境中以12小时光照/ 12小时黑暗周期下的小鼠。让动物自由出入标准小鼠饲料（嗅嗅标准啮齿类动物食物），自由采食和饮水。
  2. 麻醉鼠标由init胶质腹膜内（IP）注射250微升麻醉剂溶液II（氯胺酮0.1毫克/毫升，甲苯噻嗪1毫克/毫升，丁丙诺啡10微克/毫升）。
    1. *对于在活体成像的维持，连续地通过连续腹腔注射施用麻醉剂溶液I（氯胺酮0.1毫克/毫升，甲苯噻嗪0.5毫克/毫升，芬太尼5微克/毫升）使用注射泵装置为0.2毫升/小时的流速用吸入性异氟烷0.5％（体积）的组合（体积/体积）。
    2. 检查反射5分钟（ 如捏垫脚用钳子）后，皮肤消毒气管切开，开始准备，如果鼠标在手术麻醉的耐受状态。
    3. 适用于眼部防护霜（ 如泛醇50毫克/克），以防止角膜变干（ 图1B）。
  3. 注视鼠标放在准备表暴露腹侧使用的四肢胶带;轻轻过度伸张颈部，固定在这个位置上， 例如 ，通过使用橡胶带钩住吨澳门牙。
    1. 使用聚维酮碘溶液，通过施加消毒剂用棉签消毒皮肤和毛皮。
  4. 执行最初的皮肤切口（0.5〜1厘米长）的正下方的下巴（ 图1C）
    1. 小心解剖唾液腺（ 图1D）之间的结缔组织。
    2. 小心撕开肌性管道周围的气管（ 图1E，F）。
  5. 将手术线气管的后通风管固定（ 图1G）下方。
    1. 与进行T形切口软骨环之间微型剪刀打开气管（ 图1H）
  6. 将通风管进入气管通过切口（约0.5厘米）。要管推进，抢尾端的小镊子解剖，轻轻推进管插入气管（ 图1I）
  7. 注视管手术线（ 如 ，5-0）螺纹放置在步骤2.5绑管周围结气管内;在皮肤进行管的第二颅固定，以避免意外的撤离（ 图1J，K）。
  8. 密封切割用组织胶（ 例如 ，正-丁基-2- Cyanoacrylat）（ 图1L）。
  9. 固定管在头用胶带。

3.开腹（15-20分钟）

  1. 放在加热垫的鼠标，以防止体温过低。剃腹部，小心地从皮肤去除毛发。通过使用聚维酮碘溶液消毒皮肤剃光和毛皮。
  2. 进行小皮用切割手术剪（ 图2A）胸骨下方。延长横向切下面的肋骨两侧，烧灼所有可见的血管，防止出血。
  3. 认真履行一个小切口，在胸骨下方的白线，打开腹膜（ 图2B）。延长削减双方使用cauterizATION防止出血（ 图2C，D）。
  4. 将鼠标放到琼脂糖阶段菜（ 图2E）。放置成堆的适当高度上的鼠标（通常12-14盖玻片）（ 图2F）的两侧上。
  5. 广场上背部下方的呼吸触发传感器同步的呼吸显微镜。激活触发单元（ 图2G）。
  6. 通过胸骨将手术线（5-0）收回肋骨（ 图2I）。
  7. 小心使用弯曲的手术剪刀剪韧带连接肝脏和隔膜（镰状韧带），以及肝和胃肠道。切镰状韧带下到主动脉（ 图2J）。

4.样品设置（10-15分钟）

  1. 将鼠标放在右侧以45°为方便大肝叶的角度。
  2. 添加分期桥下面的肋骨，覆盖腹部腔。通过使用标准的盖玻片用胶带涂层以覆盖尖锐边缘（ 图2K）制造的桥梁。
  3. 将大肝叶在舞台上。小心滑双球触笔探针或肝脏低于衬垫刮刀和保持利用湿式棉签或湿纸巾的器官的顶部。提起叶到幻灯片和应用温和的阻力。叶可弯曲或折叠。提供额外的小心，只温柔的操控肝脏（ 图2L）中。
  4. 放置侧向支承树桩， 例如 ，小的盖玻片（20毫米×20毫米），它旁边的肝叶的大致相同的高度桩支撑盖玻片。
  5. 将大盖玻片（24毫米×50毫米）的肝叶。确保盖玻片是面向尽可能的水平（ 图2M）。
    注：盖玻片应该在与组织接触而不挤压它。检查受损的血流量（白色组织）的明显迹象。如果microcirculation被打乱，进一步增加支持的股份。
  6. *将两个独立的腹腔导管（ 图2N）长期麻醉和G-5的应用程序。横向下腹部安装导管旁边的后肢。
    注：腹膜内导管可自由连接27G的针，柔性硅树脂管（ 图3）。
  7. *固定针用5-0手术线在皮肤上的循环，以避免意外的位移。
  8. *附加​​注射泵麻醉解决方案，我到导管1，设置流速0.2毫升/小时;附加注射器泵与G-5到导管2，设置流速0.1毫升/小时。

5.鼠标监测

  1. *将ECG电极成前部和后端部（ 图4A）。
  2. *附加到期油管CO 2液位传感器。
  3. 添加外部温度传感器连接到散热垫（ 图4C）。

6.嵌入和组织固定（5-10分钟）

  1. 制备100ml的3％（重量/体积）琼脂糖在1X PBS中。嵌入肝时温度为41°C使用5毫升注射器和18G的针头（ 图5A）。
  2. 倒入其余琼脂糖上盖玻片和周围的小鼠（ 图5B，C）。等到琼脂糖完全糊化。
  3. 删除使用海德曼抹刀过量琼脂糖，制备足够一个视场大的扫描准备肝叶（ 图5D中的E）。

7.成像

  1. 转移鼠标放到显微镜气候室。
  2. 加50-100毫升的1×PBS的（预热37℃）。
  3. 覆盖样品盘，以防止蒸发（ 图5F）。
  4. *缩小吸入性异氟烷〜0.5体积％（体积/体积）。
  5. *启动监控软件，记录心电图，心脏率和呼气CO 2。
  6. 启动成像：开拉SER百叶窗，确定视场的利益，定义为Z-栈上下边界，并且开始时间推移录音。调整的Z堆叠如果需要校正的Z-漂移（ 例如 ，由于血压变化或温度波动， 如图（5G）。
    注意：在摄像期间的动物的循环或麻醉的，或者如果完成变得不稳定，通过颈脱位（没有觉醒从麻醉）牺牲小鼠。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

为了验证我们的活TPLSM方法，我们受到CXCR6 GFP / +小鼠活体成像TPLSM。小鼠要么不及时治疗作为基线控制或受到单一腹腔注射四氯化碳（CCL 4）诱发急性肝功能损害20。

视频序列进行了接管2-5小时的时间段，并将细胞追踪随着时间的推移，由于其绿色荧光。来显示普通细胞运动，在操作过程中检测到的所有轨道被绘制为叠加后的图像（ 图6A）。虽然基准条件下的细胞表现出长距离迁徙沿肝血窦向中央静脉，经过18小时四氯化碳治疗CXCR6 + / GFP的细胞显示出已经部分受损的运动模式。尽管一些快速移动的细胞仍然存在于肝血窦，几个重点领域是可见的与细胞从随机迁移到本地扫描已经改变，表明趋化反应招募细胞损伤的面积。效果更为明显36小时后，呈现出CXCR6 +细胞的几乎完全停滞，几乎没有活性迁移。而在基线条件下最迁移细胞具有可变的迁移速度与随机定向的改变， 四氯化碳处理的动物表现出的细胞只慢慢爬行以及...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

我们研究的目的是开发一个高度标准化的，稳定的和可重复的方法肝脏活体成像TPLSM。一般活体成像给以下归巢和发展，动态平衡和疾病的不同白细胞群体的互动有价值的见解在现实生活条件的细胞行为。但是，肝脏的几分有挑战性解剖位置，由于其呼吸道和肠道蠕动运动直接被传递到肝以及它们的高脆性相对于其他固体器官施加用于稳定长期活体成像几个挑战。近年来，许多实验研究小鼠揭示了免疫细胞浸润高度动态性质伤肝28，与居民或浸润单核/巨噬细胞30-32，中性粒细胞33或各种淋巴细胞亚群34,35作出了重大贡献。然而，米这些数据的OST来源于终点分析（ 例如 ，多色牺牲动物后，流式细胞仪）。截至目前只有少数研究存在使用多色活体成像，描述在肝脏炎症细胞的流量的动态。使用倒置显微镜绕过必要性固定和肝脏的保湿由于组织到玻璃底24的牢固的粘合。然而，由于许多多光子显微镜构建为直立成像系统，还需要更复杂的制备和固定方法，以稳定的组织进行成像的时间。通常，定制分期系统已经描述用于组织固定6，36,37，但是与这些关键的是要验证肝脏...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

披露

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

作者没有披露任何利益冲突。

致谢

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

作者感谢亚琛大学医院中央动物设施的技术支持。这项工作得到了德国研究基金会 （DFG Ta434/2-1、DFG SFB/TRR 57） 和亚琛临床研究跨学科中心 （IZKF） 的支持。这项工作得到了核心设施"双光子成像"的进一步支持，该设施是亚琛工业大学医学院临床研究跨学科中心 （IZKF） 的核心设施。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
麻醉剂
丁丙诺啡Essex Pharma997.00.00镇痛剂，0.1 mg/kg
芬太尼Rotex 药物费用：30819
Fluovac 麻醉系统哈佛仪器34-1030
葡萄糖 5%Braun
ISOFLO（异氟醚蒸气）蒸发器Eickemeyer4802885
异氟醚Forene AbbottB 506
等渗 （0.9%） NaCl 溶液DeltaSelect GmbHPZN 00765145
酮 10%ceva充电：36217/09
甲苯噻嗪 2%medistar充电：04-03-9338/23
消耗品
20 毫升注射器BD Plastipak
250 ml 锥形瓶Schott Duran21 226 36
25 ml 烧杯 2xSchott Duran50-1150
2 ml 注射器BD Plastipak
4-0 Vicryl 缝合EthiconV7980
琼脂糖市售
Bepanthen Eye 和鼻膏Bayer Vital GmbH6029009.00.00
Change-A-Tip 豪华高温烧灼套件Fine Science Tools Inc.18010-00
棉纱布棉签Fuhrmann GmbH32014
盖玻片 24x50 毫米ROTH1871
Durapore 丝带3M1538-1
羽毛一次性手术刀羽毛02.001.30.011
细孔聚乙烯管 0.58 毫米内径史密斯医疗800/100/200
组织丙烯酸Braun10500525x 0.5 ml
LeukoplastBSN Medical， Inc.
显微镜载玻片ROTH1879
Poly-Alcohol Haut…farblos AntisepticumAntiseptica GmbH72PAH200
Sterican 针 18 G x 1B. Braun304622
Sterican 针 27 3/4 G x 1B. Braun4657705
售纸巾
器械
汞合金抛光机 3PLGatz0110？
Blair 牵开器（4 叉（钝））x2Storz&KleinS-01134
Dumont No.7 镊子Fine Science Tools Inc.91197-00
Graefe 镊子弯曲 x1Fine Science Tools Inc.11151-10
Graefe 镊子直 x2Fine Science Tools Inc.11050-10
Heidemann 刮刀 HD2造口2030.00
持针器 MathieuFine Science Tools Inc.12010-14
剪刀精细科学工具公司14074-11
Semken 镊子Fine Science Tools Inc.11008-13
弯曲的小型手术剪刀Fine Science Tools Inc.14029-10
小手术剪刀直线Fine Science Tools Inc.14028-10
标准型镊子Fine Science Tools Inc.11000-12
Vannas 弹簧剪刀Fine Science Tools Inc.15000-08
设备
心电图触发装置快速生物医学3000003686
MICROCAPSTAR 呼气末二氧化碳分析仪AD 仪器
Minivent Typ 845哈佛仪器73-0043
多光子显微镜 Trimscope ILaVision
Perfusor CompactB. Braun
PowerLab 8/30 8 通道记录仪AD InstrumentsPL3508
温控加热垫Sygonix26857617
温度传感器市售
温控系统 -Cube&BoxLife 成像服务
线 市 手术 显微镜

参考文献

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Dusseaux, M., et al. Human MAIT cells are xenobiotic-resistant, tissue-targeted, CD161hi IL-17-secreting T cells. Blood. 117 (4), 1250-1259 (2011).
  2. Reese, A. J. The effect of hypoxia on liver secretion studied by intravital fluorescence microscopy. Br J Exp Pathol. 41, 527-535 (1960).
  3. Bhathal, P. S., Christie, G. S. Intravital fluorescence microscopy study of bile ductule proliferation in guinea pigs. Gut. 10 (11), 955(1969).
  4. Stefenelli, N. Terminal vascular system and microcirculation of the rat liver in intravital microscopy. Wien Klin Wochenschr. 82 (33), 575-578 (1970).
  5. Hori, T., et al. Simple and sure methodology for massive hepatectomy in the mouse. Ann Gastroenterol. 24 (4), 307-318 (2011).
  6. Tanaka, K., et al. Intravital dual-colored visualization of colorectal liver metastasis in living mice using two photon laser scanning microscopy. Microsc Res Tech. 75 (3), 307-315 (2011).
  7. Schemmer, P., Bunzendahl, H., Klar, E., Thurman, R. G. Reperfusion injury is dramatically increased by gentle liver manipulation during harvest. Transpl Int. 13, Suppl 1. S525-S527 (2000).
  8. Schemmer, P., et al. Activated Kupffer cells cause a hypermetabolic state after gentle in situ manipulation of liver in rats. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 280 (6), G1076-G1082 (2001).
  9. Toiyama, Y., et al. Intravital imaging of DSS-induced cecal mucosal damage in GFP-transgenic mice using two-photon microscopy. J Gastroenterol. 45 (5), 544-553 (2010).
  10. Zimmon, D. S. The hepatic vasculature and its response to hepatic injury: a working hypothesis. Yale J Biol Med. 50 (5), 497-506 (1977).
  11. Wong, J., et al. A minimal role for selectins in the recruitment of leukocytes into the inflamed liver microvasculature. J Clin Invest. 99 (11), 2782-2790 (1997).
  12. Bonder, C. S., et al. Essential role for neutrophil recruitment to the liver in concanavalin A-induced hepatitis. J Immunol. 172 (1), 45-53 (2004).
  13. Xu, C., Zipfel, W., Shear, J. B., Williams, R. M., Webb, W. W. Multiphoton fluorescence excitation: new spectral windows for biological nonlinear microscopy. Proc Natl Acad Sci U S A. 93 (20), 10763-10768 (1996).
  14. Centonze, V. E., White, J. G. Multiphoton excitation provides optical sections from deeper within scattering specimens than confocal imaging. Biophys J. 75 (4), 2015-2024 (1998).
  15. Amore, J. D., et al. In vivo multiphoton imaging of a transgenic mouse model of Alzheimer disease reveals marked thioflavine-S-associated alterations in neurite trajectories. J Neuropathol Exp Neurol. 62 (2), 137-145 (2003).
  16. Hickey, M. J., Westhorpe, C. L. V. Imaging inflammatory leukocyte recruitment in kidney, lung and liver--challenges to the multi-step paradigm. Immunol Cell Biol. 91 (4), 281-289 (2013).
  17. McLellan, M. E., Kajdasz, S. T., Hyman, B. T., Bacskai, B. J. In vivo imaging of reactive oxygen species specifically associated with thioflavine S-positive amyloid plaques by multiphoton microscopy. J Neurosci. 23 (6), 2212-2217 (2003).
  18. Geissmann, F., et al. Intravascular Immune Surveillance by CXCR6+ NKT Cells Patrolling Liver Sinusoids. PLoS Biology. 3 (4), (2005).
  19. Velázquez, P., et al. Cutting edge: activation by innate cytokines or microbial antigens can cause arrest of natural killer T cell patrolling of liver sinusoids. J Immunol. 180 (4), 2024-2028 (2008).
  20. Wehr, A., et al. Chemokine receptor CXCR6-dependent hepatic NK T Cell accumulation promotes inflammation and liver fibrosis. J Immunol. 190 (10), 5226-5236 (2013).
  21. Khandoga, A., Hanschen, M., Kessler, J. S., Krombach, F. CD4+ T cells contribute to postischemic liver injury in mice by interacting with sinusoidal endothelium and platelets. Hepatology. 43 (2), 306-315 (2006).
  22. Egen, J. G., et al. Macrophage and T cell dynamics during the development and disintegration of mycobacterial granulomas. Immunity. 28 (2), 271-284 (2008).
  23. Beattie, L., et al. Leishmania donovani-induced expression of signal regulatory protein alpha on Kupffer cells enhances hepatic invariant NKT-cell activation. Eur J Immunol. 40 (1), 117-123 (2010).
  24. Beattie, L., et al. Dynamic imaging of experimental Leishmania donovani-induced hepatic granulomas detects Kupffer cell-restricted antigen presentation to antigen-specific CD8 T cells. PLoS Pathog. 6 (3), e1000805(2010).
  25. McDonald, B., et al. Intravascular danger signals guide neutrophils to sites of sterile inflammation. Science. 330 (6002), 362-366 (2010).
  26. Vanheule, E., et al. An intravital microscopic study of the hepatic microcirculation in cirrhotic mice models: relationship between fibrosis and angiogenesis. Int J Exp Pathol. 89 (6), 419-432 (2008).
  27. Jenne, C. N., Kubes, P. Immune surveillance by the liver. Nat Immunol. 14 (10), 996-1006 (2013).
  28. Zimmermann, H. W., Tacke, F. Modification of chemokine pathways and immune cell infiltration as a novel therapeutic approach in liver inflammation and fibrosis. Inflamm Allergy Drug Targets. 10 (6), 509-536 (2011).
  29. Kim, J. V., et al. Two-photon laser scanning microscopy imaging of intact spinal cord and cerebral cortex reveals requirement for CXCR6 and neuroinflammation in immune cell infiltration of cortical injury sites. J Immunol Methods. 352 (1-2), 89-100 (2010).
  30. Karlmark, K. R., et al. Hepatic recruitment of the inflammatory Gr1+ monocyte subset upon liver injury promotes hepatic fibrosis. Hepatology. 50 (1), 261-274 (2009).
  31. Heymann, F., et al. Hepatic macrophage migration and differentiation critical for liver fibrosis is mediated by the chemokine receptor C-C motif chemokine receptor 8 in mice. Hepatology. 55 (3), 898-909 (2012).
  32. Ramachandran, P., et al. Differential Ly-6C expression identifies the recruited macrophage phenotype, which orchestrates the regression of murine liver fibrosis. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (46), E3186-E3195 (2012).
  33. Moles, A., et al. A TLR2/S100A9/CXCL-2 signaling network is necessary for neutrophil recruitment in acute and chronic liver injury in the mouse. J Hepatol. 60 (4), 782-791 (2014).
  34. Hammerich, L., et al. Chemokine receptor CCR6-dependent accumulation of γδ T cells in injured liver restricts hepatic inflammation and fibrosis. Hepatology. 59 (2), 630-642 (2014).
  35. Syn, W. -K., et al. NKT-associated hedgehog and osteopontin drive fibrogenesis in non-alcoholic fatty liver disease. Gut. 61 (9), 1323-1329 (2012).
  36. McDonald, B., et al. Interaction of CD44 and hyaluronan is the dominant mechanism for neutrophil sequestration in inflamed liver sinusoids. J Exp Med. 205 (4), 915-927 (2008).
  37. Egen, J. G., et al. Intravital imaging reveals limited antigen presentation and T cell effector function in mycobacterial granulomas. Immunity. 34 (5), 807-819 (2011).
  38. Singer, G., Stokes, K. Y., Granger, D. N. Hepatic microcirculation in murine sepsis: role of lymphocytes. Pediatr Surg Int. 24 (1), 13-20 (2008).
  39. Phillipson, M., Kubes, P. The neutrophil in vascular inflammation. Nat Med. 17 (11), 1381-1390 (2011).
  40. Khandoga, A. G., et al. In vivo imaging and quantitative analysis of leukocyte directional migration and polarization in inflamed tissue. PLoS One. 4 (3), e4693(2009).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

Intravital MicroscopyLiver ImagingCXCR6 Gfp MiceLeukocyte MigrationCell Cell InteractionsLong Term ImagingTissue StabilizationVital Parameter MonitoringLaser Scanning Microscopy

相关文章