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在这项研究中进行的所有动物的程序都是按照机构动物护理和使用委员会(IACUC)的指导方针,并已通过在医学学院伊坎在西奈山和加州大学圣地亚哥分校的IACUCs。
1.生成GPCR表达的慢病毒转化HEK293细胞
- 获得的cDNA为从商业来源, 例如 ,cdna.org特定GPCR。可替代地,扩增从使用PCR的cDNA文库的GPCR基因。获得慢病毒表达载体,如PCDH-CMV-MCS-EF1-迪普罗(PCDH)。使用该向量来传播该DNA以及生成慢病毒。
- 克隆GPCR的cDNA为通过PCR的慢病毒表达载体。见洛伦茨8,用于PCR的亚克隆的信息。
- 扩大和使用不含内毒素的"MAXI"prep试剂盒按照制造商的说明纯化GPCR-PCDH的DNA。确认GPCR的cDNA克隆到PCDH是mutation-通过DNA测序自由。
注意:在提交用于病毒生产的DNA,消化的等分试样用适当的限制性内切酶,以确认插入物与DNA的纯度的大小。 - 利用病毒核心设施,比如一个在索尔克研究所,宾夕法尼亚,大学和北卡罗莱纳大学等产生慢病毒,或者在内部生成9。使用约25 HEK细胞转染无内毒素的DNA微克(> 1微克/微升)在T75烧瓶中。确保DNA是高纯度的,具有1.8〜的吸收比(A 260 / A 280)。
注:病毒效价〜10 11 -10 12 GC /毫升是最适合HEK293细胞转导。
2.选择HEK293 / TN-XXL骨干细胞类型的体外培养
注:确定G蛋白偶联的特异性, 例如 ,G 的i / o,G Q / 11,或克S-的G蛋白的G蛋白偶联受体的,因为这DICtates是否需要为CNiFER G蛋白嵌合体。对于G q -偶联受体, 例如 ,M1毒蕈碱受体,选择HEK293 / TN-XXL(#3G8)为骨干的HEK293细胞类型。对于G I / O偶联的受体,该嵌合G G蛋白qi5需要10。对于克S-偶联的受体,对G QS5嵌合体需要10。在这个协议中,一个D2R CNiFER的结构被用作一个例子。通过G I / O的G蛋白和D2R信号需要HEK293细胞稳定表达嵌合G蛋白,G qi5, 例如 ,HEK293 / TN-XXL / G qi5 _#qi5.6。
- 获取HEK293 / TN-XXL / G qi5 _#qi5.6克隆细胞从研究实验室。注:以下克隆细胞,HEK293 / TN-XXL(#3G8)对于G q -偶联受体,HEK293 / TN-XXL / G qi5(#qi5.6)对于G 的i / o偶联的受体,和HEK293 / TN -XXL / G QS5(#qs5.47)为克S-偶联的重ceptors,可自由根据要求提供6,7。
- 发展和扩大HEK293 / TN-XXL / G qi5 _#qi5.6至〜90%汇合的T25烧瓶5毫升HEK293生长介质( 表1)。生长在潮湿的培养箱将细胞在37℃用5%(体积/体积) 的 CO 2。
注意:用培养HEK293细胞所有工作都应该使用标准的无菌组织培养技术进行。 - 首先从T25瓶中吸媒体收获HEK293细胞。轻轻加入5毫升的PBS并摇动烧瓶洗细胞。
- 移除PBS并加入0.05%(重量/体积)胰蛋白酶/ EDTA( 表2)1毫升用5%(体积/体积) 的 CO 2下孵育1至2分钟,在37℃。
- 收集细胞,并转移到无菌的15毫升锥形管中。在细胞培养离心机1000 xg离心离心5分钟。吸出上清液。
- 重悬在5ml HEK293生长培养基的细胞沉淀。计数使用血球细胞台盼蓝。计算细胞密度,并进行第3步。
3. HEK293的慢病毒转/ TN-XXL / Gqi5一起细胞
- 种子用0.7×10 6 HEK293 / TN-XXL / G qi5细胞T25烧瓶中。生长在潮湿的培养箱将细胞在37℃用5%(体积/体积)CO 2,直到〜50%汇合,在大约1天。冻结剩余的细胞(步骤8.2-8.3)。这些细胞将作为CNiFER控制, 即一个CNiFER缺乏的GPCR。
- 在感染当天,淡化GPCR表达慢病毒(步骤1.4),以10 9的GC /毫升〜终浓度在2毫升的HEK293生长培养基( 表1)的总体积。例如,在一个T25培养瓶中加入20微升10 11 GC / ml的病毒至2ml介质。
注意:病毒滴度信息应由病毒核心设施来提供。结合慢病毒和媒体在一个离心管中,轻轻磨碎。 lentiv高滴度病毒属的生物安全2级(BSL-2)。 - 吸从T25烧瓶中的介质。从步骤3.2加入2 mL萃取病毒/媒体的混合物。用5%(体积/体积) 的 CO 2孵育T25烧瓶O / N在37℃。
- 感染后一天,吸去病毒/媒体混合物并用含有嘌呤霉素的HEK293生长培养基更换(2微克/毫升; 表1)。嘌呤霉素选择用于转导的细胞。孵育烧瓶在37℃下用5%(体积/体积) 的 CO 2,直至约90%汇合,之后〜1-2天。
- 制备涂覆有纤连蛋白,对于在步骤4.1产生一个10点激动剂/激活曲线96孔板(黑色,透明底)。在无菌罩中,添加每孔50μl的纤连蛋白(5微克/毫升)在排A和B的96孔板的。孵育在室温下该板1小时。每冲洗5分钟,用PBS冲洗两次。加入50μl的HEK293生长培养基,用5%(体积/体积) 的 CO 2孵育O / N在37℃。
注:Fibronectin处理板是市售的。 - 收获在T25烧瓶中的细胞作为在步骤2.3-2.6( 见表2)中所述。
- 重悬在5ml HEK293生长培养基的细胞沉淀。种子T25培养瓶中用1.5ml细胞用于FACS分析的。此外,种子用1ml细胞的T75烧瓶中冷冻和存储(见步骤8.2-8.3)
- 为10点激动剂曲线,种子纤连蛋白包被的96孔板(来自步骤3.5)与每孔100μl的细胞悬浮液的前两行(A和B)。
- 孵育HEK293细胞在T25烧瓶中,一个T75烧瓶生长和一个96孔板直到大约〜90%汇合,在37℃用5%(体积/体积) 的 CO 2,后〜1-2天。
4,流式细胞仪及单CNiFER克隆的分离
- 使用96孔板,用于产生一个10点激动剂活化曲线。
注意:起始荧光激活细胞分选(FACS)分析前,以确认是非常重要的通过测试转导的细胞对激动剂响应(10点激动剂曲线)的GPCR的表达。这个试验进行使用荧光板读数器。 - 准备的10点激动剂激活曲线的药物板。选择10种不同的促效剂浓度的支架上的预测的EC 50,这可以从文献中确定。
注意:药物板含有各浓度(一式两份)的3倍,调整为1:3稀释在CNiFER板。例如,用于测试D2 CNiFER药物板包含3倍浓度10不同浓度的多巴胺; 0.2,0.5,1,3,5,10,20,30,50和1000纳米。在CNiFER板,因此,多巴胺的最终浓度是0.067,0.167,0.333,1.00,1.67,3.33,6.67,10.0,16.7,和333纳米。 - 用人工脑脊髓液(ACSF)( 见表1)制备的激动剂的解决方案。使用两个井"学联", 例如 ,A1和A2,和两口井关于'无细胞的, 例如 ,B1和B2。
注意:使用连续稀释方法制备不同浓度的药物。创建模板跟踪CNiFER克隆和药物浓度( 图3)的。 - 使用该软件,用于测量FRET和表演溶液转移96-孔荧光平板读数器进行编程。
- 设置板器温度到37℃。
- 为了测量FRET与TN-XXL,将激发波长为436±4.5纳米(±中心HWHM)。设置ECFP并为黄水晶527±7.5纳米发射器485±7.5纳米。分别设定截止滤波器475和515纳米的ECFP和黄水晶。
- 编程板读数器在485纳米和每4秒,共180秒527纳米至测量发射。选择从3倍药物板提供50微升到100微升在CNiFER板的选项,收集30秒后基线荧光。
- 从行A和B吸媒体,并添加100μl的ACSF向96孔CNiFER板,其为〜90%汇合(步骤3.9)。
- 加载96- CNiFER板和'3倍"药物板进入板器。允许〜30分钟,在37℃下平衡板。然后,启动该程序。
- 分析酶标仪数据,荧光值导出到电子表格。创建一个公式中减去从与CNiFERs井背景测量(从孔中无细胞的对各信号)。正常化荧光强度进行预刺激的基线,女黄晶 (叔)/ F 黄晶 (基线),以及计算出的FRET比率(ΔR/ R;等式1),使用在527 nm和485 nm的发射峰响应(参见步骤11 )。
注意:如果在ΔR/ R与激动剂显著变化,那么这表明GPCR的表达,并可以进行FACS分析(步4.2)。如果日ERE是具有激动剂没有FRET响应,通过使用钙离子载体, 例如 ,A21387,以测试的 Ca 2+响应,并确认基于FRET的传感器工作排除故障。如果离子载体的工作原理,然后将受体不可能表达。
- 上的FACS前一天,制备涂覆有纤连蛋白4个96孔板(见步骤3.5)用于收集分选的细胞。加入50μl的HEK293生长培养基,用5%(体积/体积) 的 CO 2孵育O / N在37℃。
- 制备5%(重量/体积)牛血清白蛋白的PBS(5克/ 100毫升),并过滤(0.2微米)到无菌瓶中。
- 收获在T25培养瓶中生长的细胞(参见步骤2.3-2.5, 表2)。重悬细胞沉淀在4毫升的5%在PBS(重量/体积)BSA中。离心细胞以1000 xg离心5分钟。
- 吸媒体和重悬在约5毫升的5%的细胞沉淀(重量/体积)牛血清白蛋白的PBS,得到的〜5×10 6个细胞/ ml的终浓度。
注:请与FACS核心设施对细胞密度和排序条件的具体要求。 - 过滤悬浮的细胞与一个40微米的细胞滤网以除去团块。转移细胞到5ml的聚丙烯圆底试管中。将管冰上运输到FACS设施。
- 排序在FACS工厂转导HEK293细胞。程序在FACS参数流式细胞仪如下:设置4℃样品架,100微米的喷嘴和20磅。根据排序前的分析,选择单元格, 即选择一个"门",那有一个大的ECFP荧光(ECFP激发,ECFP排放)和大FRET(ECFP激发,黄晶发射)的荧光(参见下面的结果, 图2 )。
- 存个人,分选的细胞成在步骤4.2每孔含有HEK293生长培养基50微升嘌呤制备,其中一个克隆的96孔板中。加入50μlHEK293生长介质的嘌呤( 钽竹叶提取1),共每孔100μl的。维持细胞O / N在37℃下用5%(体积/体积) 的 CO 2。
注:HEK293生长介质包含转导细胞嘌呤选择。
5.培养和分类的扩展,克隆CNiFERs
- 通过从各取出50微升旧媒体的井,并用50微升新鲜的HEK293生长培养基含有嘌呤( 表1)代替保持在96孔板的CNiFERs。此重复每5至7天,直到〜90%汇合时,2-3周后。
- 收获CNiFER细胞吸轻轻的媒体和PBS,一旦轻轻冲洗。除去PBS中并添加0.05%20微升(重量/体积)胰蛋白酶/ EDTA。用5%(体积/体积) 的 CO 2下孵育1至2分钟,在37℃。
- 加入100微升的HEK293生长培养基以胰蛋白酶处理细胞并悬浮细胞。传送内容含有400微升新鲜HEK293培养基机智24孔板^ h嘌呤霉素。在24孔板,通过更换250微升的HEK293生长培养基每5-7天,直到井〜90%汇合维持细胞。
6.确定基于FRET回答候选CNiFERs使用荧光微孔板检测仪
注意:使用以下的FACS 4个96孔板,应该有>存活下来并扩展到24孔平板平台100可检验的克隆,因为许多原始克隆失败增长。以确定潜在的候选者CNiFERs,使用3点分析与同源激动剂, 如多巴胺D2R为FRET的响应。
- 当细胞是〜于24孔板的90%汇合时,轻轻吸去介质。添加0.05%〜100微升(重量/体积)胰蛋白酶/ EDTA,在37℃,5%(体积/体积) 的 CO 2孵育1-2分钟。添加400微升的HEK293生长培养基以胰蛋白酶处理细胞,并通过温和研磨混合细胞。
- 设置了3点激动剂曲线为CLO的初步筛选网元。对于每个CNiFER克隆, 即 ,从24孔平板,等份加入100μl细胞悬浮液(〜4×10 3细胞/孔)的孔中到每个三个孔, 例如 ,A1,A2,A3的中的一个纤连蛋白包被的96孔板(黑色,透明底)(参见步骤3.5)。
- 传输剩余〜200微升的细胞悬液至含有HEK293生长培养基1000微升(1.2 ml终体积)的12孔板中。在37℃下用5%(体积/体积) 的 CO 2孵育两板,直到〜90%汇合。在96孔板是用于荧光分析和12孔板是用于生长和扩大的克隆。
- 为3点分析,确定三种不同浓度的激动剂是0.1-,1.0-和10倍的EC 50为特定的GPCR。如步骤4.1.1-4.1.2中所述的药物板制备激动剂的浓度。按照步骤4.1.3-4.1.5描述执行荧光酶标仪检测。
- 计算FR如在步骤4.1.6说明的ET比率(ΔR/ R)。选择具有适当的灵敏度和用于扩张最大FRET响应CNiFERs,冷冻背部,和更全面的分析(步骤7)。
- 在步骤6.5中选定,并在12孔板正在成长的克隆,删除和替换600微升每5〜7天HEK293生长培养基,直到〜90%汇合。
- 逐渐扩大,从一个12孔板克隆到6孔板,然后向一个T25培养瓶中(步骤2.3 - 2.6和表2)。当T25烧瓶是具有描述〜90%汇合,收获细胞(步骤2.3-2.5)。重悬在5ml HEK293生长培养基的细胞沉淀。
- 1毫升细胞悬浮液添加至T75烧瓶用9ml HEK293生长培养基。使用剩下的4毫升细胞悬浮液冷冻保护和储存在液体N 2(步骤8.2-8.3)。准备81.5毫升冻存管置于冰上。
- 在T75烧瓶中,保持细胞通过更换媒体瓦特第i个新鲜HEK293生长介质, 例如 ,每隔3-5天10毫升直到70-80%汇合,之后〜1-2周。
使用荧光板读CNiFER克隆人的最终7.选择
- 在板读数器测定的前一天:
- 从〜90%汇合的T75烧瓶收获细胞(参见步骤2.3-2.6, 表2)。以5×10 4个 /种子的96孔纤维连接蛋白包被的板(黑色透明底)以及与约100微升细胞悬浮液。注意:一个克隆被分配到一个单一的96孔板中。
- 制备药物板CNiFER克隆的全面筛选,区分非特异性CNiFER应答特异性激动剂响应。
- 以产生一个完整的剂量-响应曲线,选择围绕所述预测EC 50 10个不同的激动剂的浓度。使用两个井"无细胞"和两个井"学联"。
- 为了确定非特异性反应,选择THRee值浓度的12种不同的神经递质或调制器(72孔)( 图3)。像激动剂,所述药物板包含在重复3倍的浓度。例如,100微升的三种不同浓度的乙酰胆碱,谷氨酸盐,食欲素,VIP,腺苷,血清素,去甲肾上腺素,γ-氨基丁酸,P物质,褪黑激素,促生长素抑制素和组胺,每个在50 3倍浓度,1000,和3000纳米被加载到96孔药物板。
- 坐落在荧光酶标仪的参数,如步骤4.1.3-4.1.5描述测量FRET和执行解决方案转移。
- 用于分析所述全剂量反应曲线,计算峰值的FRET比率(ΔR/ R)(步骤4.1.6),情节日志激动剂浓度的函数,并且适合与希尔方程(步骤11.4)。确定EC 50,希尔系数和最大FRET比率。对于其他12递质/调制器,情节峰值ΔR/ R作为函数O˚F药物浓度。
- 选择具有大的FRET比率,适当的EC 50为同源激动剂,以及其它神经递质激动剂(非特异性反应)很少或没有背景应答〜10 CNiFER克隆。
8.冷冻回选择CNiFER克隆
- 使用单个CNiFER克隆的〜90%汇合的T75烧瓶中。收获细胞如所述(步骤2.3-2.5, 表2)。用于冷冻细胞,重悬在5ml HEK293生长培养基的细胞沉淀。标号101.5毫升冻存管并在冰上设置。
- 对于冷冻保护,混合细胞1:1用20%在HEK293生长培养基(体积/体积)的DMSO, 例如 ,将5ml的20%(体积/体积)的DMSO /介质混合物轻轻用5ml细胞悬液(最终混合的DMSO浓度为10%)。
- 分装1毫升到每个冻存管的。冻结与细胞管在-80°C冰箱O / N,在泡沫绝缘箱(见材料 )。转移到冷冻管理屈编号氮气长期贮存。
9. CNiFER植入小鼠皮层
- 手术前消毒在高压釜中所有的外科手术工具。通过用70%乙醇擦拭和放下一个干净的实验室尿布制备用于外科手术的半无菌区域。
- 通过在垂直电极拉马拉玻璃毛细管(0.53毫米)准备CNiFER注射吸管。使用一对没有。 5细尖镊子打破电极的尖端的直径为〜40微米。
注:这是一个刻度立体声变焦显微镜下很好地完成。 - 维修4%(V / V),用于感应和1.5%至2.0%(V / V):麻醉成年人(60-90日龄)C57BL / 6小鼠用异氟烷。使用尾巴或脚趾捏,以确保鼠标完全麻醉。
注:重新捏定期和评估整个手术晶须抽搐,重新评估麻醉深度。 - 捂在眼睛上用眼药膏为pr事件干燥。安装在鼠标耳酒吧立体框架。维持使用由直肠探头调节的热垫的鼠标体温在37℃。
- 剃的区域大约5mm通过用动物电动剃须刀12毫米,应用优碘随后70%(体积/体积)异丙醇。使用手术刀刀片切割并去除皮肤上的颅骨表面。使用手术刀刀片从颅骨表面去除骨膜。揭露和清理头骨表面,为立体定向手术11描述。
- 放下空杯子吸管前囟门和记录前 - 后(A / P)和内 - 外(M / L)坐标。参照小鼠脑图谱,计算注射部位的位置。移吸管到目标网站,标志着随后出现的窗口形成的头骨。见切廷等人的关于与鼠类11立体注射的信息。
注:注入和窗口的网站取决于章离子进行研究,并在皮质神经递质或肽释放凸起的分布。例如,在最近的一份出版物7,立体坐标+1.0 +2.0毫米的/ P和+1.0至2.0毫米M / L被用来CNiFER细胞注入额叶皮层古典调节过程中多巴胺释放的体内成像。 - 如前所述12,13形成2毫米x 3毫米变薄,骨窗。
注:在窗口中的骨骼应该是15-20微米厚。当颅骨表面润湿,如果骨被充分减薄12,13在骨中的小的白色斑点应该是不可见的。 - 将浸泡在窗口海绵的学联,以保持湿润,同时准备细胞注入。
- 收成是在T75烧瓶〜80%汇合生长的克隆CNiFER。吸媒体并用无菌PBS洗涤细胞。
注:胰蛋白酶省略了这些步骤。 - 删除PBS和使用10个毫升邻˚FACSF撞出从烧瓶底部的细胞。磨碎的细胞分离细胞团块。离心机和悬浮颗粒在100微升学联。离心30秒在1400 XG,去除上清,留下覆盖学联颗粒。这一步叶悬浮细胞的一丛。
- 回填在步骤9.2与矿物油制得的注射吸量管,装入吸管到nanoinjector,推进柱塞喷射的油的小珠。放5微升CNiFER细胞悬液到邻近的小鼠制备塑料石蜡膜的带材。制定任CNiFERs或控制CNiFER细胞进入拉出吸管。
- 移动吸移管到目标X和Y坐标, 即 A / P和M / L,在步骤9.5指出。放下吸管,刺穿颅骨变薄,继续〜200-400微米颅骨表面之下,存放CNiFER细胞层皮质的2/3。
- 注入〜4.6 NL CNiFER细胞在与nanoinjec最深部位器,中石油和细胞界面注意运动,然后等待5分钟,使细胞进行分配。拔出吸管〜100微米,并注入CNiFER细胞的另一个〜4.6 NL,等待5分钟,然后慢慢地,轻轻地抽出吸管,防止CNiFERs的回流。在一个或多个相邻站点重复注射。
- 重复注射步骤9.8-9.12与对照HEK293细胞( 即 HEK293 / TN-XXL / G qi5克隆缺乏GPCR)。分开CNiFER和控制由〜200微米的细胞注射部位。
- 在完成细胞植入后,冲洗变薄,骨窗与学联和等待头骨干燥。应用氰基丙烯酸酯胶一滴(见材料 )在窗口和快速地将一个预切的无菌护罩玻璃上胶的顶部。轻轻推压颅骨玻璃盖几秒钟。让胶水干2分钟12,13。
- 密封该玻璃盖的边缘与牙科水泥和形式AW在窗口ELL举办水浸渍目标。
- 对于成像时固定鼠标的头,附加一个定制的头酒吧窗户后面氰基丙烯酸酯胶的一小滴(见14在尺寸上和材料的细节)。让胶水彻底干燥,然后添加额外的牙科水泥,以进一步加强定制的头吧。
- 覆盖颅骨表面的其余部分,除窗口,用牙科水泥的层。确保皮肤的边缘由水泥覆盖并让它干燥20分钟。
- 继手术,异氟醚停止和管理上留下一个加热垫鼠标在一个笼子里,直到它完全从麻醉中恢复。手术后止痛注入补液5%(重量/体积)葡萄糖的生理盐水(SC)和0.05〜0.1毫克/公斤丁丙诺啡(IP,即时释放)。
注意:要尽量减少人类CNiFERs潜在的免疫反应,每天20微升/ 100g的环注入鼠标sporine(IP)开始CNiFERs的注射前一天。 - 返回鼠标其家笼食物和水。
10. 在 CNiFER克隆人的体内成像
注意:实时成像,使用双光子显微镜和一个头固定装置的小鼠进行的。在成像会议无需麻醉。如果在清醒状态下成像动物,限制头枕只有几个小时时间,以减少压力。返回动物吧成像会话之间的家庭笼食物和水。潜在应力被变暗房间的灯和包围该鼠标的一部分在外壳最小化。
- 手术后的当天,通过拧植入颅骨的头固定帧的金属头杆装入成像平台上的鼠标。
注意:当成像清醒小鼠,成像会话不应超过几个小时,由于由首约束装置引起的潜在压力。 - 放置成像平台与头部-抑制小鼠在装有10X(0.30 NA)和40X(0.80 NA)的水浸入目标的双光子成像的显微镜。
- 插入滤波器立方体FRET成像(ECFP和黄晶),其具有在505 nm和带通滤波器跨越460纳米至500纳米为测量ECFP和520纳米至560纳米为测量黄晶的分色镜。
- 加入学联到井含变薄,骨窗和降低水浸泡的目的进入学联。使用与汞灯和GFP滤波器立方体一起使用时的目镜定位皮质和脉管的窗口下方的表面上。
注:脉管系统的模式有助于在成像的重复定位日子和图像同一区域。 切换到40倍水浸泡的目的通过手动专注于皮质上使用GFP过滤立方体和汞灯细胞表面定位CNiFERs。 - 成立了双光子成像。选择AP对于双光子成像propriate光路。对于一个典型的商业系统中,使用软件切换到双光子成像模式和重定向光以在非退扫描检测器光电倍增管(PMT)。开启近红外飞秒脉冲激光,选择的820纳米波长和5-15%的功率设置。注:5%的功率通常提供〜25毫瓦的标本。
- 设置PMT1&PMT2电压接近最大值,通常700-1,000 V取决于PMT。将增益设置为1的每个信道 和零为目标的z位置。
- 降低目标从〜皮质表面100至200微米,并开始在xy扫描。调整激光功率,增益和每个通道的PMT电压, 即 ECFP和黄晶,以优化CNiFER荧光的信噪比。
- 使用缩放功能的软件的图像限制到包含CNiFER细胞以及一个背景和一个区域D区。使用的扫描速度不超过每像素4微秒的一帧,每2秒(0.5赫兹)慢。调整线平均为合适的信噪比, 例如 ,卡尔曼2行平均。
- 绘制区域周围的兴趣CNiFER细胞(ROI),周围的每架飞机约3〜4个细胞。投资回报率平均强度的建立实时分析。开始采集随时间监测CNiFER荧光。
- 之前和期间的实验操作, 例如 ,电刺激,的ChR2刺激,行为,如由用户确定收集CNiFERs荧光。
- 当完成成像实验中,小鼠返回其家笼。重复成像跨天,根据需要。当重新成像的细胞是指先前获得的低倍率脉管图像来定向回到同一摄像视野(步骤10.4)。
注:植入CNiFERs可以成像至少7天。
11.数据分析
打开图像文件,并选择投资回报率对CNiFERs和背景1的投资回报率。选择每个ROI的两个通道"系列分析"。出口平均荧光强度为每个投资回报为制表符分隔的文件。 使用数学软件(见材料 )程序来分析荧光值。低通滤波器(0.3赫兹),每个信号,然后减去背景荧光从ECFP和黄晶荧光强度每个ROI。 计算平均荧光基线和如公式1描述的测量FRET比率ΔR(t)的/ R计算比率。 为了确定CNiFERs的敏感性,绘制FRET比率日志激动剂浓度的函数。与希尔公式来确定EC 50和希尔系数(n)的配合,使用科学的统计软件和希尔方程(方程2)。 