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JoVE Journal
Neuroscience
磁共振引导立体定向输注猪脑

Research Article

磁共振引导立体定向输注猪脑

DOI: 10.3791/64079

March 31, 2023

Jesus G. Cruz-Garza1, Khaled M. Taghlabi1, Lokeshwar S. Bhenderu1, Shruti Gupta2, Arvind Pandey1, Allison M. Frazier1, Shawn Brisbay1, John D. Patterson1, Ernesto A. Salegio2, Christopher J. Kantorak2, Christof Karmonik3, Philip J. Horner1, Robert C. Rostomily1, Amir H. Faraji1

1Department of Neurosurgery,Houston Methodist Research Institute, 2ClearPoint Neuro, 3Translational Imaging Center,Houston Methodist Research Institute

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

这里介绍的方案展示了使用对流增强输注、实时磁共振成像 (MRI) 可视化指导和实时输液分布可视化对猪大脑的立体定向。

Abstract

该程序的总体目标是通过实时磁共振(MR)可视化指导在猪脑中进行立体定位,以提供精确的输注。受试者俯卧在 MR 孔中,以最佳方式进入颅骨顶部,躯干抬起,颈部弯曲,头部向下倾斜。固定在双侧颧骨上的两个锚针使用头部支架将头部固定下来。将磁共振成像(MRI)柔性线圈放置在头架上,以便头骨可以进入干预程序。放置在头皮上的计划网格用于确定套管的适当入口点。立体定向框架通过软件投影进行固定和迭代对齐,直到投影径向误差小于0.5 mm。使用手钻创建一个用于插入套管的毛刺孔。使用钆增强共输注来可视化细胞悬液的输注。在给药过程中实时记录重复的T1加权MRI扫描,以可视化钆的分布体积。MRI引导的立体定向允许精确和受控地输注到猪脑中,同时监测套管插入的准确性和确定药物的分布体积。

Introduction

在该协议中,我们描述了介入磁共振成像(iMRI)立体定向系统的应用,用于套管放置和实时可视化输注到猪脑中。iMRI系统的发展允许准确的导管放置1。iMRI允许可视化全身麻醉下输液剂在患者大脑中的分布1,2,以实时评估手术的准确性。

MR引导的立体定向系统是一个目标平台,可实现亚毫米级目标精度1。它使用头骨安装的瞄准装置与专用软件相结合,该软件提供大脑的解剖成像,并具有投影的导线插入轨迹和调整参数。用于对大脑进行立体定向手术干预的iMRI引导已被证明在临床应用中是有效的,例如治疗帕金森病的深部脑刺激2,3,4,5,局灶性消融治疗癫痫6,7,以及药物对流增强输送(CED)到中枢神经系统8,9。

CED方法用于通过流体对流直接将治疗剂输送到中枢神经系统。这是基于一个小的静水压力梯度,该梯度使输液从输液套管的尖端流入周围的细胞外空间10。立体定向方法用于将高浓度的大分子、小分子11、12、细胞移植 13、14、15 或治疗剂递送到选定的脑组织靶标中,从而绕过血脑屏障。渗透性、扩散系数、背压、摄取和清除机制等因素会影响治疗剂的扩散16。该技术利用钆基共输注物1用于临床CED,以实时监测输注剂进入实质靶标。iMRI监测组织中的分布体积和相关动力学等参数,以达到目标精度。

通过 MR 引导的立体定位系统 对 输注剂的 CED 研究已在非人灵长类动物中进行了研究,从而产生了准确、可预测和安全的程序。输液插管的放置精度已被证明达到亚毫米的放置误差17。该系统提供可预测的输液分布,观察到分布体积随输液量呈线性增加,导致随后引入用于 CED 输注的抗反流套管18。据报道,这种iMRI输注程序对非人灵长类动物没有不良影响19。

在这里,我们将MR引导的固醇计法的应用扩展到猪脑,以递送和监测由300μL细胞悬液组成的输注剂的分布。猪脑的大小允许成像和神经外科干预,可以在临床上应用于人类,这在较小的疾病动物模型中是不可能的20。此外,猪的免疫系统在对生物或其他治疗剂的反应方面产生与人类相似的反应21。因此,与这种动物物种进行立体定向药物递送程序具有直接的转化临床意义,并且在逻辑上可能比非人类灵长类动物研究更容易。

我们使用猪模型(家猪,雌性,25公斤,14周龄)进行MR引导的立体定向。本研究报告了猪立体定向手术的视觉实施。我们描述了空间适应猪头,视频和图像中程序的可视化,以及同步MR成像以评估猪脑中的输注液分布。MR引导的立体定向在3T MRI空间中进行。

通过这个实验,我们小组展示了MR引导的立体定向在猪脑中的性能,以及跟踪大脑内输液的基本成像时间表。在人类中进行临床立体定向的一般技术可以应用于猪头骨和大脑。

该程序的总体目标是在实时MRI可视化指导下在猪脑中进行MR引导的立体定位。这是通过首先将俯卧在MRI孔中的受试者定位以实现最佳进入颅骨顶部来实现的。第二步是通过MRI辅助可视化引导计划手术插入,这涉及放置和扫描基准网格,以确定预先计划轨迹的适当切入点。这是通过高分辨率(1 mm各向同性)T1加权3D磁化制备快速梯度回波(MPRAGE)扫描实现的,持续时间为7分44秒。接下来,我们将立体定向框架固定在头部,并通过软件投影迭代调整对齐方式,直到投影径向误差小于0.5 mm。倾斜方向的快速2D涡轮自旋回波扫描(持续时间为13秒)提供图像引导。然后,在皮肤上切开一个切口,并使用手钻创建一个毛刺孔,以便在预定义的坐标处插入输液套管。最后一步是通过重复的T1加权MRI扫描(3D MPRAGE;1分45秒)实时监测输注。结果表明,MR引导的立体定位允许精确和受控地输注到猪脑中,基于实时MR引导和随后用于可视化分布体积的T1加权3D MPRAGE扫描(1 mm各向同性分辨率)。

Protocol

该研究已获得休斯顿卫理公会研究所机构动物护理和使用委员会的批准,IACUC批准号为IS00006378。所有实验方法均按照国家和机构的相关指南和规定进行。

1. 动物定位

  1. 定位受试者以最佳方式接近颅骨顶部:将受试者放在MRI工作台上,为MRI扫描做准备。
    注:主题信息:家猪,雌性,25公斤,14周龄。
    1. 用氯胺酮(600 mg 肌内注射 [IM])和咪达唑仑(5 mg IM)镇静受试者。给予镇痛药氢吗啡酮(4 mg 肌注)、卡洛芬(每 盎司 100 毫克)和芬太尼(外用 25 微克)、抗生素头孢曲松(550 毫克静脉注射 [IV])和氯化钠(0.9% 静脉注射)。
    2. 插管受试者。用2%-3%异氟醚维持麻醉。
  2. 在整个过程中监测受试者的生命体征。
    1. 使用呼吸机以 16-19 次呼吸/分钟的速度进行机械通气。
  3. 将受试者放在MRI台上,为MRI扫描做准备。
  4. 将受试者置于俯卧位置,头部朝向MRI孔。
  5. 将标准 MRI 四通道柔性线圈放在头架上。
  6. 用头部支架稳定受试者的头部。
  7. 用毛巾和泡沫垫抬高躯干。目标是头部略微向下,颈部弯曲,鼻子几乎接触桌子。这将有助于确保立体定向框架和输液插管适合MRI扫描仪的孔内。将 MRI 头架别针固定在双侧颧骨上,以保持头部固定在 MRI 台上。
  8. 检查颅骨顶部是否向扫描仪后部倾斜,颈部弯曲。这个位置使外科医生能够在受试者进入MRI时进入头皮顶部。
  9. 设置后,MRI工作台被移动到扫描仪的孔中,直到受试者的头部到达孔的末端。

2. 通过 MRI 辅助可视化引导计划手术插入

  1. 以无菌方式准备该区域,注意避免准备好的材料进入受试者的眼睛。将无菌毛巾放在手术区域周围。将无菌窗帘放在颅骨顶部,外科医生可以接触到。
  2. 通过将网格的粘合剂侧固定在患者的头部上,以毛刺孔的位置为中心,将基准计划网格放在受试者的头皮上。
  3. 撕下网格的顶部充满液体的层,同时将下层牢固地固定到位。
  4. 在网格设置到位的情况下执行 MRI 侦察扫描。扫描通常需要静脉给予 MR 造影剂以显示脉管系统:使用 1 mmol/mL 浓度的造影剂钆造影剂,输注量为 2.5 mL。
    注意:侦察扫描是在确定性成像研究之前拍摄的初步图像。目的是让外科医生确保成像在感兴趣区域附近进行,并定义成像边界。根据制造商的说法,造影剂在 1 mmol/mL 浓度下的推荐剂量为动物称重的每公斤 0.1 mL。
  5. 在 MR 引导软件中选择用于插入套管的精确大脑位置。
  6. 确保软件允许根据所选目标可视化外科医生计划的套管放置轨迹。确保软件输出轨迹可视化和相应的入口点。
    注意:在这项研究中,选择额叶皮层中的一个位点来靶向白质。这是许多人类胶质瘤出现和生长的地方22.它也是沿白质束传播的首选地点23.
    注意:考虑外科医生对入口点、目标和所需轨迹的决定,以尽量减少皮亚尔和脑沟违规并避免血管。
  7. 通过在软件中手动拖动投影的入口点和目标点来调整建议的轨迹,包括所需的入口点和目标点,以避免血管并最大限度地减少皮亚尔和脑沟违规。轨迹可以更改并在三维空间中查看。
  8. 根据外科医生的偏好确定所需的轨迹后,运行MR引导软件以找到网格上的入口点。
    1. 滚动浏览扫描的计划轨迹以找到头皮上的入口点。该软件根据网格上计划轨迹的投影指定网格坐标。

3.固定立体定向框架,通过软件投影迭代调整对齐方式

  1. 首先用六个骨锚螺钉和四个偏置螺钉固定底座,围绕网格上所需的入口点坐标组装立体定向框架。
  2. 将六个骨锚螺钉固定在网格上的头骨上,穿过头皮。六个锚固螺钉用于稳定立体定向框架并避免钻孔过程中的任何移动。
  3. 通过固定在头骨上的皮肤固定位于塔底部的四个偏置螺钉。它们通过将框架底座提升到中心螺钉来作为反作用力来拧紧中心骨螺钉,并稳定底座。
  4. 立体定向框架底座固定后,继续框架组装。
  5. 执行高分辨率 T1 加权 MPRAGE MRI 扫描,这是 MRI 软件中的一个选项,并设置框架以捕获帧基准点并确认轨迹。
  6. 使用软件确认所需的投影套管插入轨迹,可视化MRI扫描和计划轨迹。
    1. 随后进行2D涡轮自旋回波MRI扫描,以确认框架与主体的对齐,一旦框架就位。如果当前帧位置与所需轨迹之间存在未对准,软件将输出调整参数。
      注意: 软件计算立体定向帧当前位置的投影与定义的目标点之间的径向差。该误差用于计算投影误差,而投影误差又用于计算帧所需的调整以使其最小化。
  7. 通过转动拇指轮执行俯仰滚动和 X-Y 调整,如软件中的输出调整参数所示。
  8. 重复支持软件的轨迹MRI可视化,并根据需要对目标套管进行旋转和平移调整(使用拇指轮)。
  9. 使用MR引导软件,在所需轨迹处测量头骨的厚度以及到大脑的总距离。
    注意:软件会计算从框架顶部(拧到头骨上)到目标点的距离,以估计总长度。

4.钻孔和插入套管进行输液

  1. 在进行切口之前使用碘磨砂膏以防止感染。
  2. 在立体定向框架下使用手术刀在头皮上做一个3厘米的切口。
  3. 通过在创建检修孔之前执行调整来设置钻孔插入框架。
    1. 拆下并更换中心导向管,更换为适合钻孔的 3.4 mm 钻头的导向管。
  4. 确保助手在场以将框架固定到位,同时外科医生使用手动钻头进行钻头,以增加框架的额外稳定性。
  5. 让外科医生用手动麻花钻钻,以创建一个直径为 3.4 毫米的毛刺孔。
  6. 为第二个钻头插入设置框架,以加宽毛刺孔并避免可能改变轨迹的骨碰撞。
    1. 用 4.5 毫米钻头设置钻头;将中心导向管更换为适合此更大钻头的导向管。
    2. 创建一个 4.5 mm 的毛刺孔。
  7. 执行MRI扫描以确保目标套管已恢复到计划的轨迹,因为钻穿框架有时会移动套管。
  8. 用锋利的探针刺穿硬脑膜。
  9. 插入预先灌注的框架兼容输液插管。确保套管具有一致的中性或正背压,以限制气泡的引入。
    注意:软件为计划目标提供指定的深度。
  10. 测量立体定向框架兼容输液插管的深度,并使用与套管相关的深度停止。这种深度停止可确保套管到达所需位置并且不会超出该位置。还有一个带有附加螺钉的锁和底座组件,以确保套管保持在所需的深度。

5.通过重复MRI扫描监测输液

  1. 进行MRI扫描以评估套管插入大脑中正确的目标位置。
  2. 开始输注所需药物,与钆造影剂共同输注。
    注意:在本实验中,使用了1 mM浓度的钆基造影剂,但这可能需要根据应用进行调整。以10μL/分钟的速率总共施用300μL输注体积,尽管这也可以变化。
  3. 定期进行MRI扫描,以监测脑中插管剂的输注和分布量,这可以由于钆的共同输注而推断。
    注意:套管尖端周围的高信号区域表明存在钆基造影剂。
  4. 输注结束后,停止泵。
    注意:本研究中使用的输注速率为30μL / min,直到完全注入300μL体积的细胞悬液。
  5. 在移除套管之前,让套管在输注终止后在大脑中停留 5 分钟。
    注意:输液插管通常在输液终止后留在原位 5 分钟以减少回流21,24。
  6. 通过框架手动取出套管。
  7. 通过以与构建方式相反的顺序拆卸框架,将其从头部卸下。
  8. 用运行 3-0 或 4-0 单烯缝合线关闭切口。
  9. 关闭异氟醚以准备恢复。
  10. 拔管受试者,让受试者在兽医团队的观察下恢复。

Representative Results

MRI扫描仪中的猪位置为外科医生提供了最佳的操作通道,并为立体定向框架和输液插管提供了间隙(图1)。受试者的躯干用毛巾和泡沫垫抬起。这使得头部在MR孔的末端略微向下下降,因此确保了立体定向框架和输液插管插入位置对外科医生来说是最佳的。

MRI引导的可视化允许精确规划和插入大脑套管(图2)。MR引导软件提供插入点以实现所需的轨迹。

在软件中扫描立体定向框架,并对其进行调整以有效地到达所需位置(图3)。在这个演示中,选择了额叶皮层中的一个位置。设置框架后,使用软件估计猪头骨的厚度,到框架底部到所需位置的距离,以及框架参数调整以达到所需位置。在这种情况下,对于选择的位置和插入角度,套管将穿过的头骨厚度为4.7毫米,从颅骨内表面到大脑表面的厚度为4.4毫米(图3A)。

最后,套管输注后的反复术间MRI扫描显示了输注如何输送到脑组织(图4)。这些扫描还提供了套管投影(蓝色矩形)和投影套管轨迹(黄色矩形)的比较,这表明该技术在到达所需位置方面的有效性。MR扫描以4-6分钟的固定间隔进行,并以10和30分钟的扫描完成。在这些扫描中,钆增强输注是可处理的,这提供了药物分布体积的实时可视化。

Figure 1
图 1:MRI 表上的受试者位置。 躯干抬起,颈部弯曲,头部向下倾斜。(A)在进入MR孔之前。(B)通过MR孔定位的受试者,以最佳方式进入颅骨顶部。 请点击此处查看此图的大图。

Figure 2
图 2:MR 引导的立体定位 可视化。 (A)计划轨迹的可视化。软件输出网格中放置在头皮上的入口点位置。(B) 头皮上的入口点位置。 请点击此处查看此图的大图。

Figure 3
图3:框架固定在头骨上的干预轨迹 。 (A)测量骨深度和到大脑的距离。(B)颅骨上的立体定向框架,用手钻创建一个毛刺孔。(C)软件上的立体定向框架和三维重建投影。 请点击此处查看此图的大图。

Figure 4
图 4:钆增强输注剂的延时。 套管尖端周围的高信号区域表明存在钆。随时间推移进行重复的MR扫描,以跟踪输注过程中药物的分布体积:(A)t = 0,(B)t = 4分钟,(C)t = 8分钟,(D)t = 12分钟,(E)t = 20分钟,(F)t = 26分钟;输注结束后:(G)t = 36分钟,(H)t = 60分钟。共输注剂的可视化发生在 4 分钟后。蓝色矩形是测量的套管位置,而黄色矩形显示投影的套管轨迹。 请点击此处查看此图的大图。

Discussion

SG,EAS,CJK有以下披露:受雇于ClearPoint Neuro。

所有其他作者声明没有利益冲突。

Disclosures

这里介绍的方案展示了使用对流增强输注、实时磁共振成像 (MRI) 可视化指导和实时输液分布可视化对猪大脑的立体定向。

Acknowledgements

作者宣称,这项研究得到了休斯顿卫理公会脑肿瘤研究的John S. "Steve" Dunn, Jr.和Dagmar Dunn Pickens Gipe主席的慈善资助。资助者没有参与研究的设计、收集、分析、数据的解释、本文的撰写或提交发表的决定。

这项工作部分由癌症预防和研究计划(CPRIT)和休斯顿卫理公会基金会的RP190587资助。

作者感谢休斯顿卫理公会研究所转化成像中心的Vi Phan和Lien My Phan在MR成像方面的帮助。

作者宣称,这项研究得到了休斯顿卫理公会Paula和Rusty Walter以及Walter Oil & Gas Corp Endowment的慈善资助。资助者没有参与研究的设计、收集、分析、数据的解释、本文的撰写或提交发表的决定。

Materials

杆
3个特斯拉西门子MAGNETOM VidaSiemens Healthineers70厘米宽口径 3个特斯拉全身MRI扫描仪
四通道柔性线圈Siemens Healthineers位于腹侧以允许进入颅骨 
MR 神经患者铺巾ClearPoint Neuro, IncNGS-PD-05MR 神经患者铺巾、记号笔、轨迹球套、电缆盖
MR 神经手术垂坠锥形 - LongClearPoint Neuro, IncNGS-PD-02-LMR 神经手术垂坠锥形、记号笔、轨迹球套
MR 神经手术垂坠锥形带延长杆 - LongClearPoint Neuro, IncNGS-PD-03-LMR 神经手术垂坠锥形带延长杆、记号笔、轨迹球罩
MR 神经扫描仪孔垂坠带延长ClearPoint Neuro, IncNGS-PD-04MR 神经扫描仪孔垂坠带延长
头皮支架底座ClearPoint Neuro, IncNGS-SM-01头皮支架底座和定心头
骨支架底座ClearPoint Neuro, IncNGS-SK-01颅骨支架底座
SMARTFrame 附件套件ClearPoint Neuro, IncNGS -AK-01-11探针、柳叶刀、剥离鞘 (2)、标尺、深度挡块 (2)
SMARTFrame 导管ClearPoint Neuro, IncNGS-GT-0115 GA 导管、18 GA 导管和 16GA 导管
SMARTFrame 导管 .052" / 18 gaClearPoint Neuro, IncNGS-GT-02.052"适合 18 ga 设备的导管 (5)
SMARTFrame 导管 .060" / 17 gaClearPoint Neuro, IncNGS-GT-03.060"适合 17 ga 设备的导管 (5)
SMARTFrame 导管 .064" / CP StyletClearPoint Neuro, IncNGS-GT-04.064"适合 ClearPoint 管心针的导向管 (5)
SMARTFrame 导向管 .068" / 16 gaClearPoint Neuro, IncNGS-GT-05.068"适合 16 ga 设备的导管 (5)
SMARTFrame 导管 .074" / 15 gaClearPoint Neuro, IncNGS-GT-06.074"适合 15 ga 设备的导管 (5)
SMARTFrame MR 基准ClearPoint Neuro, IncNGS-BM-05MR 基准 (5)
SMARTFrame 头皮安装救援螺钉 –LongClearPoint Neuro, IncNGS-RS-02短头皮安装救援骨螺钉 (3)
SMARTFrame 头皮安装救援螺钉 –短ClearPoint Neuro, IncNGS-RS-03长头皮支架救援骨螺钉 (3)
SMARTFrame 颅骨支架救援螺钉ClearPoint Neuro, IncNGS-RS-01颅骨支架救援骨螺钉 (3)
SMARTFrame 拇指轮扩展套件。ClearPoint Neuro, IncNGS -TE-01轻型手动控制器
SmartFrame XG 设备指南,2.5 毫米ClearPoint Neuro, IncNGS-XG-032.5 毫米设备指南
SmartFrame XG 设备指南,3.2 毫米ClearPoint Neuro, IncNGS-XG-043.2 毫米设备指南
SMARTFrame XG 钻孔指南,4.5 毫米ClearPoint Neuro, IncNGS-XG-024.5 毫米钻孔指南
SMARTFrame XG 钻孔导轨,6.0 毫米ClearPoint Neuro, IncNGS-XG-056.0 毫米钻孔导轨
SMARTFrame XG 可更换设备导轨ClearPoint Neuro, IncNGS-XG-01设备导轨,3.4 毫米,设备导轨,14 GA
SMARTFrame XG MRI 引导轨迹框架ClearPoint Neuro, IncNGS-SF-02-11立体定向框架、颅骨安装底座、定心环、扩展坞、标准设备锁、大型设备锁、螺丝刀、带垫圈的滚动锁螺钉
SMARTFrame XG MRI 引导轨迹框架、5 FrClearPoint Neuro, IncNGS-SF-02-11-5立体定向框架、定心环、扩展坞、5 Fr 设备锁、大型设备锁、螺丝刀、带垫圈的滚动锁螺钉
SMARTFrame XG MRI 引导轨迹框架、7 FrClearPoint Neuro、 IncNGS-SF-02-11-7立体定向框架、定心环、码头、7 Fr 设备锁、大型设备锁、螺丝刀、带垫圈的滚动锁螺丝
SMARTGrid MR 规划网格ClearPoint Neuro, IncNGS -SG-01-11标记网格和标记工具
SMARTTip MR 钻头套件,4.5 毫米ClearPoint Neuro, IncNGS-DB-454.5 毫米钻头,3.2 毫米钻头,柳叶刀,深度限位器,标尺
SMARTTwist MR 手钻ClearPoint Neuro, IncNGS-HD-01手钻
VentiPAC SurgiVetV727000   机械呼吸机
Wharen 定心指南ClearPoint Neuro, IncNGS-CG-01Wharen 定心指南

References

  1. Larson, P. S., et al. An optimized system for interventional magnetic resonance imaging-guided stereotactic surgery: preliminary evaluation of targeting accuracy. Neurosurgery. 70, 95-103 (2012).
  2. Foltynie, T., et al. MRI-guided STN DBS in Parkinson's disease without microelectrode recording: efficacy and safety. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 82 (4), 358-363 (2011).
  3. Sidiropoulos, C., et al. Intraoperative MRI for deep brain stimulation lead placement in Parkinson's disease: 1 year motor and neuropsychological outcomes. Journal of Neurology. 263 (6), 1226-1231 (2016).
  4. Ostrem, J. L., et al. Clinical outcomes using ClearPoint interventional MRI for deep brain stimulation lead placement in Parkinson's disease. Journal of Neurosurgery. 124 (4), 908-916 (2016).
  5. Lee, P. S., et al. Outcomes of interventional-MRI versus microelectrode recording-guided subthalamic deep brain stimulation. Frontiers in Neurology. 9, 241 (2018).
  6. Patel, N. K., Plaha, P., Gill, S. S. Magnetic resonance imaging-directed method for functional neurosurgery using implantable guide tubes. Operative Neurosurgery. 61 (5), 358-366 (2007).
  7. Drane, D. L., et al. Better object recognition and naming outcome with MRI-guided stereotactic laser amygdalohippocampotomy for temporal lobe epilepsy. Epilepsia. 56 (1), 101-113 (2015).
  8. Chittiboina, P., Heiss, J. D., Lonser, R. R. Accuracy of direct magnetic resonance imaging-guided placement of drug infusion cannulae. Journal of Neurosurgery. 122 (5), 1173-1179 (2015).
  9. Han, S. J., Bankiewicz, K., Butowski, N. A., Larson, P. S., Aghi, M. K. Interventional MRI-guided catheter placement and real time drug delivery to the central nervous system. Expert Review of Neurotherapeutics. 16 (6), 635-639 (2016).
  10. Bobo, R. H., et al. Convection-enhanced delivery of macromolecules in the brain. Proceedings of the National Academy of Sciences. 91 (6), 2076-2080 (1994).
  11. Mittermeyer, G., et al. Long-term evaluation of a phase 1 study of AADC gene therapy for Parkinson's disease. Human Gene Therapy. 23 (4), 377-381 (2012).
  12. Lonser, R. R., Sarntinoranont, M., Morrison, P. F., Oldfield, E. H. Convection-enhanced delivery to the central nervous system. Journal of Neurosurgery. 122 (3), 697-706 (2015).
  13. Subramanian, T., Deogaonkar, M., Brummer, M., Bakay, R. MRI guidance improves accuracy of stereotaxic targeting for cell transplantation in parkinsonian monkeys. Experimental Neurology. 193 (1), 172-180 (2005).
  14. Emborg, M. E., et al. Intraoperative intracerebral MRI-guided navigation for accurate targeting in nonhuman primates. Cell Transplantation. 19 (12), 1587-1597 (2010).
  15. Silvestrini, M. T., et al. Interventional magnetic resonance imaging-guided cell transplantation into the brain with radially branched deployment. Molecular Therapy. 23 (1), 119-129 (2015).
  16. Faraji, A. H., Rajendran, S., Jaquins-Gerstl, A. S., Hayes, H. J., Richardson, R. M. Convection-enhanced delivery and principles of extracellular transport in the brain. World Neurosurgery. 151, 163-171 (2021).
  17. Richardson, R. M., et al. T2 imaging in monitoring of intraparenchymal real-time convection-enhanced delivery. Neurosurgery. 69 (1), 154-163 (2011).
  18. Richardson, R. M., et al. Novel platform for MRI-guided convection-enhanced delivery of therapeutics: preclinical validation in nonhuman primate brain. Stereotactic and Functional Neurosurgery. 89 (3), 141-151 (2011).
  19. San Sebastian, W., et al. Safety and tolerability of magnetic resonance imaging-guided convection-enhanced delivery of AAV2-hAADC with a novel delivery platform in nonhuman primate striatum. Human Gene Therapy. 23 (2), 210-217 (2012).
  20. Sauleau, P., Lapouble, E., Val-Laillet, D., Malbert, C. -. H. The pig model in brain imaging and neurosurgery. Animal. 3 (8), 1138-1151 (2009).
  21. Yin, D., Forsayeth, J., Bankiewicz, K. S. Optimized cannula design and placement for convection-enhanced delivery in rat striatum. Journal of Neuroscience Methods. 187 (1), 46-51 (2010).
  22. Larjavaara, S., et al. Incidence of gliomas by anatomic location. Neuro-Oncology. 9 (3), 319-325 (2007).
  23. Pallud, J., Devaux, B., Daumas-Duport, C., Oppenheim, C., Roux, F. X. Glioma dissemination along the corticospinal tract. Journal of Neuro-Oncology. 73 (3), 239-240 (2005).
  24. White, E., Bienemann, A., Megraw, L., Bunnun, C., Gill, S. Evaluation and optimization of the administration of a selectively replicating herpes simplex viral vector to the brain by convection-enhanced delivery. Cancer Gene Therapy. 18 (5), 358-369 (2011).
  25. Chen, M. Y., Lonser, R. R., Morrison, P. F., Governale, L. S., Oldfield, E. H. Variables affecting convection-enhanced delivery to the striatum: a systematic examination of rate of infusion, cannula size, infusate concentration, and tissue-cannula sealing time. Journal of Neurosurgery. 90 (2), 315-320 (1999).
  26. Sterk, B., et al. Initial clinical experience with ClearPoint smartframe array-aided stereotactic procedures. World Neurosurgery. 162, 120-130 (2022).
  27. Rohrer, M., Bauer, H., Mintorovitch, J., Requardt, M., Weinmann, H. -. J. Comparison of magnetic properties of MRI contrast media solutions at different magnetic field strengths. Investigative Radiology. 40 (11), 715-724 (2005).
  28. Dawson, H. D. A comparative assessment of the pig, mouse and human genomes. The Minipig in Biomedical Research. 1, 323-342 (2011).

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