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方法文章

铜绿假单胞菌产铁载体的定性与定量分析

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DOI:

10.3791/65980

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2024年3月15日

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本文内容

摘要

该方案可对总铁载体、绿脓菌素和嗜铁素进行定性和定量分析 铜绿假单胞菌.

摘要

Pseudomonas aeruginosa(P. aeruginosa)因其可产生多种毒力因子而在宿主体内引发感染。其中一种机制是通过产生铁载体来获取铁元素。P. aeruginosa 可产生两种不同的铁载体:嗜铁素(pyochelin),其结合铁的能力较弱;以及绿脓菌素(pyoverdine),其结合铁的能力较强。本报告表明,绿脓菌素可直接从细菌上清液中定量检测,而嗜铁素则需先从上清液中提取后再进行定量。

定性分析铁载体产生的主要方法是铬天青S(Chrome Azurol Sulfonate, CAS)琼脂平板实验。在该实验中,Fe3+-染料复合物释放CAS染料,导致颜色由蓝色变为橙色,表明有铁载体产生。为了定量总铁载体含量,将细菌上清液与CAS染料等比例混合后加入微孔板,随后在630 nm处进行分光光度分析。绿脓菌素(pyoverdine)的定量则通过将细菌上清液与50 mM Tris-HCl等比例混合后直接进行分光光度分析完成;在380 nm处出现吸收峰可确认其存在。至于嗜铁素(pyochelin),无法直接从细菌上清液中定量,因此需先进行提取,再经分光光度分析检测其存在,其特征吸收峰位于313 nm处。

引言

生物体需要铁来执行多种重要功能,例如电子传递和DNA复制1。Pseudomonas aeruginosa是一种革兰氏阴性机会性病原菌,已知其具有多种毒力因子,可在宿主体内建立感染,其中一种机制是产生铁载体2。在缺铁条件下,P. aeruginosa会释放一类称为铁载体的特化分子,从周围环境中夺取铁。铁载体在细胞外螯合铁,形成的高铁-铁载体复合物被主动转运回细胞内3。

P. aeruginosa 能够产生两种铁载体:绿脓菌素和嗜铁素。绿脓菌素的铁螯合亲和力较高(1:1),而嗜铁素的铁螯合亲和力较低(2:1)4。由于嗜铁素的铁螯合亲和力较低,也被称为次要铁载体5。P. aeruginosa 中铁载体的产生和调控由群体感应(Quorum Sensing, QS)系统主动调控6。

除了铁淬灭作用外,铁载体还参与调控毒力因子,并在生物膜形成中发挥积极作用7。铁载体还具有其他关键功能,包括参与细胞信号传导、抵御氧化应激,以及促进微生物群落之间的相互作用8。铁载体通常根据其螯合铁的特定功能基团进行分类。在此分类中,三种主要的双齿配体为儿茶酚盐、羟肟酸盐和α-羟基羧酸盐3。绿脓菌素是荧光假单胞菌属(如 P. aeruginosa 和 P. fluorescens)的典型特征5。它由一种混合的绿色荧光发色团与一个含6-12个氨基酸的寡肽连接而成。其合成过程涉及多个非核糖体肽合成酶(NRPs)9。参与绿脓菌素合成与调控的四个基因为 pvdL、pvdI、pvdJ 和 pvdD10。绿脓菌素还在哺乳动物感染和致病性中起重要作用11。P. aeruginosa 在中度缺铁条件下产生嗜铁素,而在严重缺铁环境中则产生绿脓菌素12。参与嗜铁素合成的两个操纵子为 pchDCBA 和 pchEFGHI13。研究表明,在吩嗪(pyocyanin)存在的情况下,嗜铁素(儿茶酚盐类)会诱导氧化损伤和炎症反应,并产生对宿主组织有害的羟基自由基11。

铬天青 S(Chrome Azurol Sulfonate, CAS)法因其全面性、高灵敏度以及相比微生物检测法更高的便捷性而被广泛采用,尽管微生物检测法虽然灵敏,但可能过于特异14。CAS 法可在琼脂表面或溶液中进行,其原理基于三价铁离子从深蓝色复合物转变为橙色时发生的颜色变化。CAS 比色法通过测定 Fe-CAS-表面活性剂三元复合物中铁的消耗量来定量。该特定复合物由金属、有机染料和表面活性剂组成,呈蓝色,在 630 nm 处具有吸收峰。

本报告介绍了一种用于定性检测嗜铁素产生的方法,可在琼脂平板上检测嗜铁素的产生。同时提供了一种在微量滴定板中对总嗜铁素产量进行定量估算的方法,以及对铜绿假单胞菌(P. aeruginosa)产生的两种嗜铁素——绿脓菌素(pyoverdine)和嗜铁菌素(pyochelin)——进行检测和定量分析的方法。

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方案

P. aeruginosa 的所有细菌分离株均来自印度瓦多达拉和斋浦尔的医学微生物学实验室。所有选定的临床分离株均在生物安全柜(BSL2)中操作,实验过程中处理细菌分离株时均采取了最严格的防护措施。材料表中提供了所有试剂/溶液的商业信息。

1. 铬天青S(CAS)染料和琼脂培养基的制备

  1. 配制CAS染料(100 mL),其成分为:
    1. 将60 mg的CAS溶解于50 mL蒸馏水中(溶液1)。
    2. 将2.7 mg的FeCl3·6H2O溶解于10 mL的10 mM HCl中(溶液2)。
    3. 将73 mg的十六烷基三甲基溴化铵(HDTMA)溶解于40 mL蒸馏水中(溶液3)。
    4. 小心混合溶液1、溶液2和溶液3,储存于玻璃瓶中。
  2. 按以下步骤配制CAS琼脂:
    1. 将100 mL MM9盐溶液加入750 mL蒸馏水中。
    2. 溶解32.24 g的哌嗪-N,N'-双(2-乙磺酸)(PIPES)游离酸。
    3. 加入15 g琼脂粉,高压灭菌后冷却。
    4. 向混合物中加入30 mL无菌酪蛋白氨基酸溶液和10 mL无菌20%葡萄糖溶液。
    5. 加入100 mL CAS染料,混匀后在无菌条件下倒平板。
      注意:MM9培养基、酪蛋白氨基酸溶液和8-羟基喹啉的配制方法见补充文件1。PIPES缓冲液对pH敏感,只有在pH达到5.6时才会溶解。需持续监测pH,因为PIPES开始溶解时会进一步降低pH。用等体积的氯仿中含3%的8-羟基喹啉溶液萃取酪蛋白氨基酸,将不相溶的溶液在4 °C下静置约20分钟,并小心收集上层相,避免扰动下层相。

2. 铁载体产生的定性分析

  1. 将培养24小时的铜绿假单胞菌(P. aeruginosa)菌液的OD600 nm调至0.2。
  2. 使用无菌接种环,将细菌培养物划线接种于CAS琼脂平板上。
  3. 在30 °C下培养24小时。
    注意:可使用蛋白胨水培养基或0.8%生理盐水稀释菌液。若24小时后未观察到细菌生长,可将CAS平板继续培养48至72小时。

3. 总铁载体的定量估算

  1. 将铜绿假单胞菌(P. aeruginosa)在蛋白胨水培养基中培养24小时后,调节其OD600 nm至0.25,重新接种,并在30 °C下孵育48小时。
  2. 孵育48小时后,在室温下以4650 × g离心细菌培养物10分钟。
  3. 离心后,取100 µL无细胞上清液加入96孔微孔板中,再加入100 µL CAS染料。
  4. 用铝箔覆盖微孔板,在室温下孵育20分钟。
  5. 孵育结束后,在630 nm处进行分光光度读数。
  6. 将测得的结果按总铁载体含量的百分比铁载体单位(PSU)进行计算。
    注:PSU的计算公式为:[(Ar  - As)/Ar] × 100
    其中,Ar 表示630 nm处对照组的吸光度,As 表示样品无细胞上清液的吸光度。对照组应将CAS染料加入未接种的蛋白胨水培养基中。所有玻璃器皿(如试管、烧瓶等)均需用6 M HCl浸泡2小时,并用蒸馏水冲洗两次,以去除其上残留的任何微量铁。

4. 绿脓菌素的定量估算

  1. 将铜绿假单胞菌(P. aeruginosa)在蛋白胨水培养基中培养24小时后,调节其OD600 nm至0.25,重新接种,并在30 °C下孵育48小时。
  2. 孵育48小时后,在进行后续操作前,测定细菌生长的OD600 nm值。
  3. 在室温下,以4650 × g离心细菌培养物10分钟。
  4. 离心后,取100 µL无细胞上清液加入96孔微孔板中,并加入100 µL 50 mM Tris-HCl(pH 8.0)。
  5. 在OD405 nm处进行分光光度读数。

5. 绿脓菌素的提取与分光光度法检测

  1. 将铜绿假单胞菌(P. aeruginosa)在King's B培养基(补充文件1)中培养24小时后,调节OD600 nm至0.25,重新接种,并在30 °C下孵育24小时。
  2. 孵育24小时后,取100 mL培养物,在室温下以4650 × g离心10分钟。
  3. 离心后,向上清液中加入5 mL 1 M柠檬酸,再用50 mL乙酸乙酯萃取两次。
  4. 使用装有硫酸镁的注射器滤器过滤有机相,将过滤后的有机相储存于-20 °C。
  5. 在320 nm处进行分光光度测定。
    注意:由于嗜铁素(pyochelin)在室温下极不稳定,萃取过程需在冰上操作。使用50 mL无菌注射器进行过滤分离,在注射器尖端放置棉花,并加入1 g硫酸镁。在注射器尖端安装无菌注射器滤器,将滤液收集至无菌试管中。

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结果

在对临床分离株的铁载体进行定量分析之前,首先进行了铁载体产生的定性筛选,以确认其产铁载体能力。通过将细菌划线接种于CAS琼脂平板上,观察临床分离株中铁载体的定性检测结果。本研究选取了三个临床分离株MR1、TL7、J3以及参考菌株PAO1。所有三个临床分离株和PAO1均显示铁载体产生呈阳性,表现为蓝色琼脂表面菌落周围出现清晰的橙色晕圈(图1)。CAS琼脂上形成的晕圈(图1)可对临床分离株的铁载体产量提供粗略估计。因此,进一步采用CAS试剂和液体培养基对铁载体产量进行了定量测定。

总铁载体的定量直接从无细胞上清液中进行。培养后观察到颜色变化,其中黄色表明CAS染料从铁复合物中被移除。此处以未接种的生长培养基中的CAS染料作为对照,用于铁载体的计算。分离株MR1和TL7在总铁载体产量上无显著差异,而与PAO1相比,J3的总铁载体产量显著增加...

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讨论

本方案使研究人员能够定量分析铜绿假单胞菌(P. aeruginosa)无菌培养上清液中的总铁载体以及两种不同类型的铁载体,即绿脓菌素(pyoverdine)和绿脓菌铁素(pyochelin)。在CAS琼脂平板实验中,CAS染料与Fe3+离子形成复合物。当细菌产生铁载体时,会从CAS-Fe3+复合物中螯合Fe3+离子,从而在菌落周围引起颜色变化。这种变化表现为菌落周围出现清晰的橙色晕圈14,15。虽然可将细菌直接划线接种于CAS琼脂平板上,但整体结果可能受到影响:若接种的细菌细胞数量过多,可能导致菌落周围形成较宽的橙色晕圈;而接种细胞数量过少,则可能产生较窄的透明区域。为解决这一问题,我们通过调节OD600使接种的细菌细胞数量保持一致。营养要求苛刻的细菌可能在24小时后即显现结果,而生长缓慢的细菌则可能需要超过72小时才能显示出铁载体的产生。

为了定量测定总铁载体...

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

作者感谢来自DBT - 生物技术教学计划、DBT - BUILDER计划和FIST项目提供的经费支持。MR感谢SHODH提供的奖学金。HP感谢印度科学与工业研究理事会(CSIR)提供的奖学金。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
琼脂,I型HIMEDIAGRM666
8-羟基喹啉Loba Chemie4151
酪蛋白氨基酸SRL Chemicals68806
十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)HIMEDIARM4867-100G
氯仿Merck1070242521
铬天青SHIMEDIARM336-10G
柠檬酸Merck100241
一水葡萄糖Merck108342
二氯甲烷Merck107020
六水合三氯化铁HIMEDIAGRM6353
玻璃烧瓶Borosil5100021
玻璃试管Borosil9820U05
盐酸SDFCL20125
King's medium B基础培养基HIMEDIAM1544-500G
M9最小培养基盐HIMEDIAG013-500G
硫酸镁 Qualigens10034
MultiskanGO紫外分光光度计Thermo Scientific51119200
蛋白胨I型,细菌学级HIMEDIARM667-500G
PIPES游离酸MP Biomedicals190257
磷酸二氢钾Merck1048731000
蛋白䏡胨HIMEDIARM005-500G
岛津UV-Vis分光光度计Shimadzu2072310058
Sigma实验室离心机Sigma-Aldrich3-18K
氯化钠Qualigens15915

参考文献

  1. Wang, J., Pontopolous, K. Regulation of iron cellulatar metabolism. Biochemical Journal. 434 (3), 365-381 (2011).
  2. Schalk, I., Perraud, Q. Pseudomonas aeruginosa and its multiple strategies to access iron. Environmental Microbiology. 25 (4), 811-831 (2022).
  3. Ghssein, G., Ezzeddine, Z. A review of Pseudomonas aeruginosa metallophores: Pyoverdine, pyochelin and pseudopaline. Biology. 11 (12), 1711(2022).
  4. Sanchez-Jimenez, A., Marcos-Torres, F. J., Llamas, M. A. Mechanisms of iron homeostasis in pseudomonas aeruginosa and emerging therapeutics directed to disrupt this vital process. Microbial Biotechnology. 16 (7), 1475-1491 (2023).
  5. Dingemans, P., Cornelis, J. Pseudomonas aeruginosa adapts its iron uptake strategies in function of the type of infections. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 4 (11), (2013).
  6. Lin, J., Cheng, J., Shen, X. The pseudomonas quinolone signal (pqs): Not just for quorum sensing anymore. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 8 (7), 1-9 (2018).
  7. Sass, G., et al. Intermicrobial interaction: Aspergillus fumigatus siderophores protect against competition by pseudomonas aeruginosa. PLoS ONE. 14 (5), 1-19 (2019).
  8. Dao, K. -H. T., Hamer, K. E., Clark, C. L., Harshman, L. G. Pyoverdine production by pseudomonas aeruginosa exposed to metals or an oxidative stress agent. Ecological Applications. 9 (2), 441-448 (1999).
  9. Visca, P., Imperi, F., Lamont, I. L. Pyoverdine siderophores: From biogenesis to biosignificance. Trends in Microbiology. 15 (1), 22-30 (2007).
  10. Ackerley, D. F., Caradoc-Davies, T. T., Lamont, I. L. Substrate specificity of the nonribosomal peptide synthetase pvdd from pseudomonas aeruginosa. Journal of Bacteriology. 185 (9), 2848-2855 (2003).
  11. Geum-Jae-Jeong,, et al. Pseudomonas aeruginosa virulence attenuation by inhibiting siderophore functions. Applied Microbiology and Biotechnology. 107 (4), 1019-1038 (2023).
  12. Dumas, Z., Ross-Gillespie, A., Kummerli, R. Switching between apparently redundant iron-uptake mechanisms benefits bacteria in changeable environments. Biological Sciences. 280 (1764), 20131055(2013).
  13. Gaille, C., Reimmann, C., Haas, D. Isochorismate synthase (pcha), the first and rate-limiting enzyme in salicylate biosynthesis of pseudomonas aeruginosa. Journal of Biological Chemistry. 278 (19), 16893-16898 (2003).
  14. Schwyn, B., Neilands, J. B. Universal chemical assay for the detection and determination of siderophores. Analytical Biochemistry. 160 (1), 47-56 (1987).
  15. Louden, B. C., Haarmann, D., Lynne, A. M. Use of blue agar cas assay for siderophore detection. Journal of Microbiology & Biology Education. 12 (1), 51-53 (2011).
  16. Arora, N. K., Verma, M. Modified microplate method for rapid and efficient estimation of siderophore produced by bacteria. 3 Biotech. 7 (381), 1-9 (2017).
  17. Frac, M., Gryta, A., Oszust, K., Kotowicz, N. Fast and accurate microplate method (biolog mt2) for detection of fusarium fungicides resistance/sensitivity. Frontiers in Microbiology. 7 (4), 1-16 (2016).
  18. Cezard, C., Farvacques, N., Sonnet, P. Chemistry and biology of pyoverdines, pseudomonas primary siderophores. Current Medicinal Chemistry. 22 (2), 165-186 (2015).
  19. Braud, A., Hoegy, F., Jezequel, K., Lebeau, T., Schalk, I. J. New insights into the metal specificity of the pseudomonas aeruginosa pyoverdine-iron uptake pathway. Environmental Microbiology. 11 (5), 1079-1091 (2009).
  20. Brandel, J., et al. a siderophore of pseudomonas aeruginosa: Physicochemical characterization of the iron(iii), copper (ii) and zinc (ii) complexes. Dalton Transactions. 41 (9), 2820-2834 (2012).
  21. Hoegy, F., Mislin, G. L. A., Schalk, I. J. Pseudomonas methods and protocols. Methods in Molecular Biology. 1149, (2014).
  22. Cunrath, O., et al. The pathogen pseudomonas aeruginosa optimizes the production of the siderophore pyochelin upon environmental challenges. Metallomics. 12 (12), 2108-2120 (2020).
  23. Ji, A. J., et al. A novel and sensitive LC/MS/MS method for quantification of pyochelin in human sputum samples from cystic fibrosis patients. Biomarkers & Applications. 4 (1), 135(2019).
  24. Visaggio, D., et al. A highly sensitive luminescent biosensor for the microvolumetric detection of the pseudomonas aeruginosa siderophore pyochelin. ACS Sensors. 6 (9), 3273-3283 (2021).
  25. Miethke, M., Marahiel, M. A. Siderophore-bases iron acquisition and pathogen control. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 71 (3), 443-451 (2007).
  26. Il, J. M. R., Lin, Y. -M., Lu, Y., Miller, M. J. Studies and syntheses of siderophores, microbial iron chelators, and analogs as potential drug delivery agents. Current Medicinal Chemistry. 7 (2), 159-197 (2000).

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