脂多糖输注作为猪内毒素血症休克模型

脓毒症和脓毒性休克是接受重症监护治疗的患者死亡的主要原因^之一1,2,3。当感染引发免疫反应失调导致多器官衰竭时，就会出现脓毒症。它的特征是危及生命的症状，包括血流动力学不稳定、呼吸窘迫、肝肾衰竭以及认知障碍 ^4,5。脓毒性休克是脓毒症的一个亚型集，症状特别严重，可显著增加死亡率。这些症状包括需要血管加压药治疗的持续性低血压和血清乳酸水平超过 2 mmol∙^{L-1 4,5}。脓毒性休克患者的死亡率估计高达 40%，即使住院治疗^{也是如此 1,3,5}。 

革兰氏阴性菌，如假单胞菌和大肠杆菌，经常引起感染，引发这种失调的免疫反应⁴。潜在的病理生理机制很复杂，尚未完全了解。一个充分描述的方面涉及病原体相关分子模式 （PAMP） 激活免疫细胞上的 Toll 样受体，导致细胞因子的释放，例如肿瘤坏死因子-α （TNFα） 或白细胞介素 1 （IL 1）⁴。其中一种 PAMP 是脂多糖 （LPS），它构成革兰氏阴性菌细胞膜的组成部分⁶。LPS 已在动物模型中用于诱导内毒素血症和内毒素休克 ^7,8。

动物模型为开发和研究新的治疗策略提供了一个受控和标准化的环境。由于其相似的解剖结构、免疫生理学和相似的血流动力学参数，猪模型特别适合研究内毒素休克的影响 ^9,10。此外，由于猪的气道和血管大小相似，通常用于人类患者的标准医疗设备可以很容易地应用于猪，从而便于仪器仪表和血流动力学监测。

通过该协议，我们通过静脉输注来自 大肠杆菌的LPS为猪的内毒素休克提供了实验模型。为了监测效果，我们测量了血流动力学和肺参数，包括动脉血压、心率、外周血氧饱和度、肺动脉压和气道压力。为了评估内毒素血症对脑氧供应的影响，我们使用了近红外光谱法（NIRS）。使用这种方法，可以通过施加在前额¹¹上的粘性电极来评估脑血氧饱和度。

该协议中的实验已获得国家和机构动物护理委员会（Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz，Koblenz，Germany，TVA G21-1-080）的批准。实验是根据ARRIVE指南进行的。在这项研究中，使用了六头年龄在2-3个月大、体重30-35公斤的健康雄性德国长白猪。实验时间线总结在 图1中。与本协议中使用的所有材料和仪器相关的详细信息列 在材料表中。

图 1:实验时间表。 在动物制备和30分钟的稳定期后进行基线健康测量。LPS注射诱导内毒素血症超过30分钟，再过30分钟进行0小时测量;之后，每小时继续测量 4 小时。缩写:BLH = 基线健康;LPS = 脂多糖。 请点击这里查看此图的较大版本.

1.动物准备

1. 尽可能长时间地将动物留在通常的环境中，以尽量减少压力。在麻醉前停止进食 6 小时，同时允许自由饮水。
2. 在正常环境中，用肌内注射氮杂哌酮（3mg ∙^kg-1）和咪达唑仑（0.5mgkg-1）镇静动物。
3. 一旦镇静剂生效，通常在给药后约15-20分钟内发生，将猪运送到实验室。
   注意:确保在整个转移过程中保持持续镇静至关重要;根据地区立法机构的不同，这可能需要兽医的永久监督。
4. 在运输过程中密切注意保持猪的正常体温（~38°C）。例如，考虑用毯子盖住动物以防止体温过低。
   注意:重要的是要限制运输时间不超过镇静的持续时间，通常从30分钟到60分钟不等。
5. 消毒后，通过在耳静脉中插入 22 G 导管来建立静脉通路。在对猪进行任何进一步的移动或麻醉诱导之前，请确保导管牢固固定，以防止任何突然移动导致脱位。
6. 使用夹在尾巴或耳朵上的传感器连续监测外周血氧饱和度。

2.麻醉和机械通气

1. 静脉注射芬太尼（4μgkg-1）和丙泊酚（3mgkg-1）以诱导麻醉。
2. 将猪置于仰卧位。
3. 施用阿曲库铵（0.5mg ^kg-1）作为肌肉松弛剂，并立即使用狗通气面罩开始无创通气。将面罩放在鼻子上，用拇指用力按压，同时用中指/无名指向前拉下颌。将呼吸机设置为以下参数: 吸气氧分数 （F_iO₂ ） = 100%，潮气量 = 6-8 mL ^kg-1，呼气末正压 （PEEP） = 5 mbar，峰值吸气压 ≤ 20 mbar，呼吸频率 = 18-20 ^min-1。
4. 通过开始连续输注平衡电解质溶液（5 mL ^{kg-1 h-1}）、芬太尼（10 μg ^{kg-1 h-1}）和丙泊酚（6 mg ^{kg-1 h-1}）来维持麻醉。
5. 使用标准气管插管（内径 6-7 mm）、导丝和配备 Macintosh 刀片（4 号）的喉镜进行气管插管。
   1. 让助手张开嘴巴，将舌头放在左侧。
   2. 插入 Macintosh 刀片，直到看到会厌。然后，向上抬起喉镜，使会厌向腹侧移动并观察声带。有时，会厌可能会粘在软腭上;在这种情况下，通过用管子或布吉轻轻向侧面滑动来动员它。
   3. 小心地将气管插管插入声带并取出诱导器。如果遇到困难，请尝试在不施加过大力的情况下旋转管子。如有必要，请使用较小的管子。管子就位后，用 10 mL 空气给袖带充气。
6. 将气管插管连接到呼吸机并开始通气。通过检测呼气末 CO₂ 并进行双侧听诊来确认管子的正确定位。使用以下通气设置: F_iO₂ = 40%，潮气量 = 6-8 mL ^kg-1，PEEP = 5 mbar，吸气呼气比 = 1:2，呼吸频率 = 调整以达到呼气末 CO₂ 水平 <45 mmHg，通常为 30-40 ^min-1 。
   注意: 如果管子错误地放置在食道中，空气会使胃充气，导致明显的隆起。在这种情况下，请立即取出管子，进行无创通气1-2分钟，并正确重新定位管子。
7. 插入胃管以防止反流或呕吐。如果插入被证明具有挑战性，请使用喉镜更好地观察食管入口。

3. 仪器仪表

1. 在股动脉和静脉中分别放置动脉和中心静脉管路，用于血流动力学监测和静脉容量治疗。
2. 使用绷带缩回并固定后腿，以便更好地进入股血管。
3. 在仪器之前准备所有必要的材料。用生理盐水填充所有导管，并确保易于接触电线和导管，以尽量减少多次导管插入尝试和不必要的失血。
4. 将酒精消毒剂涂抹在腹股沟区域，然后用无菌拭子擦拭。重复此过程两次。再次涂抹消毒剂，无需擦拭，等待 3 分钟。在腹股沟区域放置无菌开窗窗帘。
5. 使用超声波识别股血管。使用平面超声引导的 Seldinger 技术进行导管插入术，以最大限度地减少组织损伤和失血。
6. 纵向观察股动脉。用连接到针头的注射器刺穿动脉以进行连续抽吸。鲜红色的搏动血液证实动脉穿刺。取出注射器并插入准备好的电线。取下针头，同时将电线留在原位。
7. 对股静脉重复相同的过程。静脉穿刺通过缓慢流动的暗红色血液确诊。
8. 通过使用超声波观察两条股血管来确认两条导线的正确位置。
9. 使用 Seldinger 技术先插入动脉引诱导器鞘，然后插入静脉引引子鞘。通过对从两条线抽取的血样进行血气分析来确认正确定位。
10. 确保可以从所有管路抽出血液。用生理盐水冲洗所有管路，以防止血栓形成。
11. 使用手术缝合线将线条牢固地固定在皮肤上，以防止脱位。
12. 将动脉和中心静脉管路连接到换能器，以测量血流动力学参数。
13. 将脉搏轮廓心输出量 （PiCCO） 导管插入动脉导引器鞘，并将其连接到动脉压力传感器和 PiCCO 监护仪的温度接口电缆。
14. 将 Swan-Ganz 导管连接到换能器。
    1. 在连续测量压力的同时，将导管插入中心静脉导引器鞘中。在大约 30 cm 后，当中心静脉压力曲线变得可见时，将球囊充气。
    2. 在监测压力曲线的同时缓慢推进导管。当导管进入右心室时，寻找收缩压高、舒张压低的脉搏曲线。导管的进一步推进将导致一致的收缩压值和舒张压值的增加，表明位于肺动脉中。
    3. 将导管固定在此位置（通常在 50 到 70 厘米之间）。将 PiCCO 系统的注射液温度传感器连接到 Swan-Ganz 导管的近端管腔。
15. 剃掉猪的额头，并用粘性传感器电极测量脑区域血氧饱和度。
16. 麻醉诱导和仪器仪表后，让动物稳定30分钟或直到血流动力学参数稳定，然后进行基线测量并诱导内毒素休克。

4. 电击感应

注意: 使用 LPS 时，请始终戴上手套、护目镜、口罩和实验室外套。避免直接接触LPS。

1. 通过将 5 mg LPS 溶解在 50 mL 0.9% NaCl 中，制备浓度为 100 μg ^mL-1 的 LPS 溶液。
2. 在开始 LPS 输注之前立即获得基线血流动力学测量值。
3. 在30分钟内施用150μkg-1剂量的LPS（相当于300μkg-1∙^h-1连续输注速率30分钟）。
4. 30分钟后，在实验的剩余时间内将输注速率降低至15μg∙^kg-1∙^h-1 。
5. 持续监测血流动力学参数，包括动脉和肺动脉血压、心率和通气参数。持续监测体温以维持正常体温。

5.血流动力学不稳定的治疗

1. 当平均动脉血压低于 60 mmHg 时，使用 PiCCO 测量心脏指数 （CI）、整体舒张末期容积指数 （GEDI） 和血管外肺水指数 （ELWI）。根据 图2流程图中的建议治疗低血压。
   1. 在 PiCCO 显示器上，按热稀释按钮 （TD）。
   2. 按下 中心静脉压 （CVP） 输入 按钮并输入当前 CVP 值。
   3. 按 "开始 "按钮。
   4. 当指示这样做时，将 10 mL 冷盐水溶液 注入连接到 Swan-Ganz 导管的注射液温度传感器中。
      注意: 不要在 PiCCO 测量之前或期间直接注入任何其他东西，因为这会影响测量。
2. 获得 CI、GEDI 和 ELWI 的测量值后，根据图 2 中的流程图治疗血流动力学不稳定。如果建议容量加载，请快速输注 200 mL 平衡电解质溶液。如果推荐儿茶酚胺治疗，将去甲肾上腺素输注速率增加1μgkg-1h-1。
3. 每当平均动脉血压低于 60 mmHg 时，重复此过程。在严重血流动力学不稳定的情况下，选择快速升级治疗。

图 2:PiCCO 引导的血流动力学不稳定治疗。 获得 CI、GEDI 和 ELWI 的测量值后，根据图表进行治疗。此图改编自 PiCCO 用户指南¹²。缩写:PiCCO = 脉搏轮廓心输出量;V+ = 体积加载;猫=儿茶酚胺疗法;V- = 体积减少;CI = 心脏指数;GEDI = 全球舒张末期容积指数;ELWI = 血管外肺水指数。 请点击这里查看此图的较大版本.

6. 实验结束和安乐死

1. 静脉注射 0.5 mg 芬太尼。等待 5 分钟。注射200mg异丙酚。
2. 通过中心静脉管路快速注射 40 mL 1 M 氯化钾对猪实施安乐死。

在这项研究中，对6头年龄为2-3个月、体重30-35公斤的健康公猪进行麻醉，并接受脂多糖（LPS）输注以诱导内毒素血症。为了确定持续诱发休克症状所需的适当LPS剂量，在30分钟内给予猪从100μgkg-1到200μgkg-1的各种诱导剂量的LPS，然后在实验的剩余时间里维持剂量为每小时初始剂量的1/10。所有动物在LPS输注后不久都表现出休克迹象。使用 PiCCO 系统监测血流动力学参数。动物表现出心脏指数下降和心率增加，表明休克状态下的血流动力学不稳定。LPS输注后平均动脉血压下降，但必要时通过液体复苏或去甲肾上腺素输注保持在60mmHg以上（图3）。肺损伤表现为PaO2 FiO 2-1比值降低和肺动脉压升高（图4）。使用近红外光谱 （NIRS） 测量脑氧合，并在诱导休克后降低（图 5）。这些动物还表现出酸中毒和乳酸水平升高（图6）。采用多重比较单因素方差分析确定显著性。

图 3:LPS 输注后血流动力学参数的发展。 （A） 诱导休克后平均动脉血压下降，但必要时使用去甲肾上腺素输注保持在 60 mmHg 以上。（B）输注LPS后心脏指数降低，（C）心率增加。显示均值和标准差。*P < 0.05 与基线测量值相比。缩写:BLH = 基线健康;LPS = 脂多糖。 请点击这里查看此图的较大版本.

图 4:LPS 输注后肺部参数的发展。 （A） LPS 输注后不久 PaO2 FiO2-1 比值降低。（二）激波感应后驱动压力升高。（C）休克期间肺动脉压也升高。显示均值和标准差。*P < 0.05 与基线测量值相比。缩写:BLH = 基线健康;LPS = 脂多糖;FiO2 = 吸气氧分数;PaO2 = 动脉血氧分压。请点击这里查看此图的较大版本.

图5:LPS输注后的脑氧合。 通过近红外光谱测量的脑氧合在LPS电击诱导后降低。显示均值和标准差。*P < 0.05 与基线测量值相比。缩写:BLH = 基线健康;LPS = 脂多糖;NIRS = 近红外光谱。 请点击这里查看此图的较大版本.

图 6:LPS 诱导的内毒素血症期间的动脉血气分析。 （A）随着时间的推移，动物变得更加酸中毒，（B）LPS输注后乳酸水平增加。显示均值和标准差。*P < 0.05 与基线测量值相比。缩写:BLH = 基线健康;LPS = 脂多糖。 请点击这里查看此图的较大版本.

近红外光谱设备由美国美敦力公司无条件提供，用于实验研究目的。亚历山大·齐巴特（Alexander Ziebart）获得了美敦力公司（Medtronic PLC）的演讲费。没有作者报告任何财务或其他利益冲突。稿件由ChatGPT®（Python软件，版本:2023年5月24日）校对和编辑。