在这里,我们描述了迭代漂白扩展多重性(IBEX)方法的应用,该方法利用市售的自动化组织染色机和基于酪胺信号放大的试剂的优化考虑因素。
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在这里,我们描述了迭代漂白扩展多重性(IBEX)方法的应用,该方法利用市售的自动化组织染色机和基于酪胺信号放大的试剂的优化考虑因素。
迭代漂白扩展多重性 (IBEX) 是一种基于酪胺信号放大 (TSA) 的高灵敏度多轮荧光成像技术,能够通过重复漂白、重新染色和图像共配准对单个组织样本中的多种蛋白质生物分子进行详细检查。尽管 IBEX 越来越多地用于生成高度多重免疫染色,但通过在核心设施中部署以自动化方式实施 IBEX 具有许多好处,包括提高通量、可重复性和实验室工作人员的整体效率。在这里,我们展示了IBEX在两个广泛使用的自动染色平台上的成功应用,并讨论了使用基于TSA的反应对福尔马林固定、石蜡包埋(FFPE)组织样品进行面板设计的重要优化考虑因素。这包括测试抗体-抗原修复灵敏度的方法,这是 IBEX 组合设计在确定抗体开发顺序时的一个重要考虑因素。此外,我们还展示了利用市售全玻片扫描仪的下游成像方法,并说明了使用市售细胞表型软件进行质量比对和分析。通过对这些方法的详细描述和随附的视频,我们旨在强调 IBEX 的多功能性和易用性,为核心病理学设施将 IBEX 集成到其现有的自动染色平台中提供实用指导。
迭代漂白扩展多样性 (IBEX) 是基于高灵敏度 TSA 的多轮荧光免疫组织化学的一项重大进步,可以对单个组织样本中的众多生物分子进行详细的可视化和定量。通过采用重复的漂白和再染色循环,IBEX能够以无与伦比的深度和清晰度检查复杂的细胞环境,使其成为免疫染色和多重成像领域的强大工具1,2。
许多学术、政府和行业实体都拥有核心病理学设施,致力于支持各种基于组织的研究方法,旨在生成定性和定量形态分子数据集。这些核心是关键资源,提供基于组织的专业服务,使研究实验室能够外包复杂和劳动密集型的分子病理学过程,并在研究设计、检测开发和数据解释方面直接咨询病理学家。为了确保实验的一致性并减少变异性,这些核心设施通常依赖市售的自动染色仪自动化仪器,这些仪器旨在执行具有高重现性和效率的标准化染色方案3。
虽然自动染色机已成为核心设施免疫染色的支柱,可实现高通量和一致的结果,但它们尚未适应 IBEX 等最新进展。此外,在面板设计方面需要专业知识,特别是在使用基于酪胺信号放大 (TSA) 的试剂4 时,增加了额外的复杂性,限制了 IBEX 在常规研究工作流程中的更广泛采用。因此,希望利用 IBEX 高分辨率多路复用成像功能的研究人员通常可能会受到其核心设施现有设备的限制。创新成像技术与核心设施运营的实际现实之间的差距凸显了 IBEX 在学术研究中更广泛采用的障碍。这项工作旨在通过展示 IBEX 在常见自动染色平台上的成功应用来解决这一障碍,重点是使用福尔马林固定石蜡包埋 (FFPE) 组织的基于 TSA 的试剂。我们首先讨论使用基于TSA的染料构建IBEX组合的必要步骤,以及将这些组合覆盖应用于两种不同的市售自动染色剂。总之,这为抗体抗原修复灵敏度测试提供了实用指导,讨论了优化面板设计的关键考虑因素,并提供了一种使用可能可用的商业软件和核心病理学实验室进行面板对齐的替代方法。
1. 使用基于TSA的染料构建IBEX面板
注意:始终使用新鲜的抗体和染料制备,不使用时储存在 4 °C 下。
2. 使用TSA试剂和全玻片成像平台与自动染色机进行IBEX适应(图3)
注意:有关本协议中使用和讨论的两种经过验证的自动染色剂的比较,请参见 表 4。
3. 使用市售软件分析样品
我们提供了一个在Autostainer 2上使用基于TSA的试剂的IBEX组合的示例(图4)。每个标记都可以清晰地划定,并且标记之间的渗漏最小。图像是通过两轮染色收集的。样本是 感染结核分枝杆菌后的肺组织。使用市售软件示例对两个 IBEX 染色面板进行对齐。使用带有优化的 TSA 试剂(如此处所述)的 IBEX 方法,可以看到和欣赏免疫细胞、炎症标志物和特殊肺细胞的空间组织。适当的优化允许标记以最少的背景轻松出现。

图 1:使用发射 520 nm 两种不同抗原的荧光团进行抗原修复测试。 使用保守的暴露时间对 RAGE 和 CD3e 进行成像。这种 RAGE 抗体的表位高度敏感,容易受到重复抗原修复的影响,随着随后的抗原修复,检测灵敏度会迅速下降。相反,CD3e 测定灵敏度随着多轮抗原修复而提高。比例尺 = 50 μm。缩写:RAGE = 晚期糖基化终产物受体。 请点击此处查看此图的大图。

图 2:序列开发相对于伞效应的重要性示例。 RAGE 是 AT1 细胞中高表达的标志物,与 CD31 结合可有效阻断 SARS-CoV-2 免疫反应性。然而,当首先进行 SARS-CoV-2 IHC 时,所有信号都可以可视化。比例尺 = 25 μm。缩写:RAGE = 晚期糖基化终产物受体;AT1 = 肺泡 1 型;SARS-CoV-2 = 严重急性呼吸系统综合症冠状病毒 2;IHC = 免疫组织化学。 请点击此处查看此图的大图。

图 3:使用 IBEX 协议自动染色设备的过程概述。 湿式安装用于第 2 轮或更高级别的染色过程,以防止组织变干。缩写:IBEX = 迭代漂白扩展了多重性。 请点击此处查看此图的大图。

图 4:IBEX 在感染 结核分枝杆菌的肺部使用来自自动染色剂 2 的 TSA 染料的示例。 图 1 包含所有染料,图 2 包含可漂白的染料。显示肺部图像完整 IBEX 中所有通道的合并图像。比例尺 = 200 μm。缩写:IBEX = 迭代漂白扩展了多重性;TSA = 酪胺信号放大。 请点击此处查看此图的大图。
表 1:用于验证循环数对 1、3 和 6 周期测试抗体影响的示例方案。请按此下载此表。
表 2:用于面板验证的 IBEX 自动染色机的五种抗体的示例面板 1。请按此下载此表。
表 3:示例面板 2,其中包含用于用于面板验证的 IBEX 自动染色器的四种抗体。请按此下载此表。
表4:两种自动染色剂的比较。 总结了 Ventana Autostainer 和 Bond Rx 优缺点的表格。 请点击此处下载此表。
表 5:图像分析的软件摘要。 表格总结了一些可用于分割后图像分析的分析方法和软件工具。 请按此下载此表。
在这里,我们提供了通过应用自动染色设备和优化 IBEX 协议中基于 TSA 的试剂,将 IBEX 协议调整到核心病理设施中的注意事项。我们演示了如何最好地优化反复轮次的抗原修复和第 2 轮或更高级别的正确加载到自动化设备上。此外,我们还演示了一种使用核心设施中可能提供的 Halo 软件执行对齐的另一种方法。这些方法已被证明可用于确定 SARS-CoV-2 感染后非人灵长类动物组织肺部环境的差异5。
这项工作的一个关键组成部分是强调在实验组织染色之前对 IBEX 面板设计进行广泛优化的必要性。特别是,在使用基于 TSA 的试剂时,必须考虑基本 IBEX 方法中未看到的一些注意事项。首先是多轮抗原修复对抗体敏感性的影响。使用基于 TSA 的试剂,每次新的抗体开发之前都会发生抗体变性。一些抗体/抗原对将容易受到额外几轮抗原修复的影响并降低测定灵敏度,而有些抗体/抗原对将通过重复变性/抗原修复获得增强的灵敏度。在设计组合之前,仔细测试靶组织中的每种抗体对于确保最佳染色实践并告知抗体和荧光染料的序列顺序非常重要。对缓冲液(包括柠檬酸盐基 (pH 6.0)和基于 Tris-EDTA 基 (pH 9.0) 的缓冲液进行所有抗体测试,以确定最佳抗原修复条件。这涉及系统地评估每种缓冲液,以确定哪一种缓冲液可以最大限度地提高给定抗体的抗原暴露量。此外,优化温度(例如,20-37 °C)、孵育时间(通常为 30-60 分钟)和封闭条件,以减少非特异性背景染色并确保一抗和二抗的特异性结合(如有必要)。在一抗和二抗之前进行封闭可能包括使用市售的封闭试剂来解释组织特异性自发荧光或非特异性相互作用。在最终确定 IBEX 面板之前必须优化的其他重要考虑因素包括伞效应,如果顺序不满足所提出的特定研究问题,则可能会发生表位屏蔽6。为避免荧光渗漏,通常将高表达的抗原靶标放入480-520 nm范围内渗漏最少、标记较弱的远红通道中,鉴于这些荧光染料是最亮的7,因此具有最佳的信噪比。然而,应注意在此范围内可能最亮的高度自发荧光组织样品;我们建议通过不使用任何染料对组织进行成像来解决这个问题,以解决潜在的自发荧光水平。这些优化步骤与通常使用 IBEX 完成的所有正常优化和控制一起进行,可以为使用 TSA 试剂的 IBEX 的正确组合设计提供信息。
在这种方法中,我们演示了两种常见的自动染色剂的使用。然而,这些方法也可以应用于其他自动染色方法。这里的关键部分是最佳去除盖玻片和额外染色轮的湿载荷。此外,我们没有指定任何特定的显微镜设置。尽管试剂盒可能建议与某些成像系统一起使用以获得最佳载玻片扫描,但任何显微镜设置,特别是带有兼容滤光片立方体和广谱 LED 光源的落射荧光显微镜,都应该有效。有些染料需要多光谱检测器或专门的滤光片立方体,这些可能并非在所有实验室中都可用,并且由于光谱重叠,与标准滤光片立方体一起使用时可能会带来挑战。使用多光谱成像系统或高度特异性的滤光片可以更好地分离这些染料。一些荧光团超出了传统远红滤光片(通常为 ~700 nm)的范围,需要能够捕获近红外信号的专用滤光片立方体或检测器。专用显微镜是用这些滤光片制造的,但也有替代品。这些需要额外的优化,以确定染料在给定显微镜配置中的表现。
强烈建议对多重荧光 IHC 进行多光谱解混,特别是在处理容易发生自发荧光的组织时,因为它可以有效地将真实信号与背景噪声分离。自发荧光通常与常用荧光团的发射光谱重叠(特别是在更高能量波长的通道中),可能会遮挡或干扰特定信号,从而降低准确性。光谱解混在数学上解开重叠的发射光谱,分离出真实的荧光信号,同时“清理”不需要的自发荧光。光谱解混在 IBEX 工作流程中特别有价值,由于染色和成像过程的迭代性,获得尽可能干净的信号至关重要。在 IBEX 中,来自多轮染色的信号被成像、漂白并堆叠在一起以创建合成图像。任何在一轮中仍未解析的自发荧光或渗漏都可以通过堆叠图像传播,使下游分析复杂化并降低标记定位的可信度。光谱解混可有效地将真实荧光信号与背景自发荧光隔离开来,确保在每一轮中检测出更清晰、更准确的信号。这种信号清晰度对于生成可靠的复合图像至关重要,其中多个标记物在轮次中一起分析,从而实现可靠的表型分析和空间分析。用于该协议的成像平台具有板载解混功能,但需要更多的解混选项才能与其他荧光全载玻片成像平台兼容。
此外,这项工作的局限性是自动染色剂的专有性质,因为它们的相关试剂和洗涤缓冲液针对这些系统进行了优化,但具体配方仍未公开。此外,我们只专注于一种用于全玻片图像分析的市售图像分析软件,并承认软件许可证的成本可能会给某些实验室带来财务障碍。其他分析软件 8,9 和 R 中的选项似乎很有前途;特别是 Bodenmiller Group10,他们创建了一个似乎最适合内核的包集,因为 IMCDataAnalysis11 旨在用于 R 中多路复用图像下游分析的可重复工作流程。然而,未来需要努力开发和表征可访问且具有成本效益的全玻片 IBEX 分析替代方案,以确保在资源有限的环境中更广泛地采用。此外,这种使用IBEX自动染色器的方法可以适用于IBEX中更传统的染色,包括使用荧光偶联一抗,或者如果组织具有足够高的质量和最佳的固定时间以允许良好的信号,则使用不含TSA染料的标准二抗。
总的来说,我们希望这项工作将有助于使用常规使用的病理学核心设施设备应用基于TSA的多重荧光IHC,以更广泛地使IBEX适应这些环境。这种类型的应用真正凸显了 IBEX 方案的多功能性,并展示了其在困难组织样本或大批量方法中的实用性。
作者没有需要声明的利益冲突。
Emily Speranza 得到了克利夫兰诊所基金会的启动资金的支持。这项工作利用了从 NIH SIG 拨款(S10OD026983 和 S10OD030269 给 NAC 的赠款)中获得的仪器。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 染色试剂 Alexa TSA套件 | 热扑鱼 | 如果没有蛋白石显微镜滤镜,可以选择替代的TSA染料。包括Alexa Fluor 488(蓝绿通道)、Alexa Fluor 555或568(红通道)、Alexa Fluor 647(远红通道)、Alexa Fluor 750(近红外,若配备适当滤镜)。nbsp; | |
| 抗体 Arg1 | 细胞信号传导 | 93668 | 图4中1:100处的使用情况 |
| 材料 刀刃 | 徕卡生物系统 | 或者类似,高低的结构取决于组织类型 | |
| 抗体 CD11b | 阿布卡姆 | AB133357 | 图4中1:2000处的使用情况 |
| 抗体 CD163 | 阿布卡姆 | ab182422 | 图4中1:500处的使用情况 |
| 抗体 CD31 | 细胞信号传导 | 77699S | 图2 1:100处的使用情况 |
| 抗体 CD3e | 达科 | A045201-2 | 图1 1:100处的使用情况 |
| 工具 科普林罐 | 费舍尔科学 | 01-816-21 | 或类似情况 |
| 材料 覆盖滑 | VWR | V48393-026 | 或类似情况 |
| 抗体 CX3CR1 | 阿布卡姆 | AB308613 | 图4在1:450处使用 |
| 染色<> DAPI | 阿古谷 | FP1490 | |
| Software FIJI | 用于测量信号强度 | ||
| Slide Fisher超前滑梯 | 费舍尔科学 | 22-037-246 | 或者类似的 |
| 软件 HALO | 印迪卡实验室 | 市面上可用的图像分析软件示例。用于对齐和分析图像。 | |
| 抗体 Iba1 | 细胞信号传导 | 17191 | 图4在1:800处使用 |
| Software inForm | 阿古谷 | 用于测量信号强度 | |
| 抗体 iNOS | 阿布卡姆 | AB283655 | 图4中1:400处的使用情况 |
| 仪器 徕卡粘胶处方(或RXm) | 徕卡生物系统 | 21.2201 | 文本中称为“Autostainer 1”。确保所有相关试剂也都备齐,包括染色盒和散装溶液。 |
| 试剂 LiBH4 | 西格玛-奥尔德里奇 | 62460-5G-F | 保持在无水环境中 |
| 乐器 咒语响指 | 阿古谷 | 需要多光谱荧光显微镜来鉴定染料。示例显微镜可用于检测蛋白石染料。 | |
| 工具 切片机 | 徕卡生物系统 | 或者类似的,但配上更喜欢的配件,比如刷子 | |
| 染色试剂 Opal IHC 480套件 | 阿古谷 | FP1500001KT | 图4中的使用 |
| 染色试剂 Opal IHC 6-plex 套件 | 阿古谷 | NEL821001KT | 520和620不漂白,图1、2和4中使用 |
| 染色试剂 Opal IHC 780套装 | 阿古谷 | FP1501001KT | 图4中的使用 |
| 工具<热/>烤箱 | 米利波尔西格玛 | Z683329 | 或者类似的,也可以在自动污渍上完成 |
| 抗体 全细胞角蛋白 | 阿布卡姆 | AB9377 | 图4中1:50处的使用情况 |
| 试剂 PBS(可选) | 费舍尔科学 | AAJ61196AP | |
| 仪器 表型成像仪 | 阿古谷 | 软件中包含多光谱全片影像,并集成了内置光谱去混合功能 | |
| 试剂 ProLong 金防褪入剂 | 费舍尔科学 | P36961 | 或者类似的水相附介质 |
| 抗体 ProSP-C n端(ProSPC) | 七山生物试剂 | WRAB-9337 | 图4在1:250处使用 |
| 抗体 RAGE | R&D | MAB1179 | 图1和图2中1:50的使用情况 |
| 试剂 反应缓冲液 | 罗 氏 | NC1895692 | 用于Ventana自动染色 |
| 抗体 SARS-CoV-2-N | 细胞信号传导 | 68344 | 图2 1:1000处的使用 |
| 载玻片 TOMO 粘附 CC 显微镜载玻片-WH | 前锋 | SKUSL6519-1 | 如果组织附着性是个问题 |
| 仪器 Ventana Discovery Ultra | 罗 氏 | 文中称为“Autostainer 2”。确保所有相关试剂也都备齐,包括染色盒和散装溶液。 | |
| 试剂 洗涤缓冲剂 | 徕卡生物系统 | AR9590 | 用于徕卡邦德自动染色机 |
| 试剂 水 | 费舍尔科学 | 15-230-147 | DI最好,而不是千层 |
| 工具 水浴 | 徕卡生物系统 | 140607020C1 | 或类似情况 |
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