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Teil 1: Herstellung von geklärt Gewebehomogenaten
- Dounce homogenisieren fixierten kortikalen Gewebe in 4-fache Volumen von eiskaltem Puffer (0,1 M Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung [Ca + + - und Mg + +-freien] plus 2x Protease-Inhibitor-Cocktail [Santa Cruz]) mit ca. 30 sogar Pistill Schlägen (zB das Hinzufügen von 400μl Puffer bis 100 mg Gewebe).
- Spin-Homogenate für 5 Minuten bei 3.000 g (4 ° C). Entfernen Sie vorsichtig geklärt Überstände und speichern Aliquots dieser Extrakte bei -80 ° C bis zur Verwendung.
- Bestimmen Gesamt-Protein-Konzentration (ug / ul) für geklärt Homogenaten mit einem Bicinchoninsäure (BCA)-Assay, nach den Anweisungen des Herstellers (ThermoFisher).
Teil 2: SDS-PAGE Probenvorbereitung
- Mit einem 10 gut, ist 10-20% Tricin-Gel (Invitrogen), die maximale Lautstärke, die pro Vertiefung geladen werden können ~ 25 &mgr; l. Das Gesamtvolumen umfasst 2x SDS Probenpuffer und 10x Reduktionsmittel, so das maximale Volumen der Klärung Homogenat, dass pro Vertiefung geladen werden kann, ist 10 &mgr; l. Geklärt 20% (w / v) kortikalen Homogenaten sollte eine Gesamt-Protein-Konzentration von mehr als 5 ug / ul, so dass für 50 Mikrogramm Gesamt-Protein pro Vertiefung. Proben mit weniger als 5mg/ml Protein wird notwendig loading insgesamt weniger Protein pro Well. Allerdings sind hohe Protein-Spiegel optimal für den Nachweis von monomeren und aggregierten Aß (50-60μg Gesamt-Protein ist optimal).
Legen Sie immer die gleiche Menge an Gesamt-Protein pro Vertiefung. - Für jedes Gel, Last mindestens eine Vertiefung mit 10 &mgr; l einer Molekulargewichtsmarker wie SeeBlue Plus2 (Invitrogen). Als positive Kontrolle, laufen 10-100 ng der synthetischen Aβ40 oder Aß42 Peptid (verdünnt in 1xPBS) in einen anderen Brunnen.
- Bereiten Reaktionsmischungen auf Eis, mit frisch aufgetauten, geklärt Homogenaten. Vortex Rohre für 5-10 Sekunden, Wärme in einem trockenen Bad bei 100 ° C für 5 Minuten, dann schnell drehen alle Proben, um Kondensation in den Deckel zu entfernen.
Teil 3: SDS-PAGE-Gel-Elektrophorese
- Laden gevortext Proben auf eine 10-20% Tricin-Gel in den XCell Sure Lock-Mini-Cell Gelbox mit Tricin SDS Laufpuffer, nach den Anweisungen des Herstellers (Invitrogen),
- Run Gel bei einer konstanten Spannung von 125V für etwa 90 Minuten. Lassen Proben laufen, bis die 4KDa Marker Band ist ca. 1 cm vom unteren Rand des Gels.
Teil 4: Übertragen von Proteinen aus Gelen auf Membranen
- Entfernen Sie vorsichtig Gele aus Kunststoff-Gehäuse und montieren die Übertragung Sandwich im Inneren des XCell II Blot Module, nach den Anweisungen des Herstellers (Invitrogen). Vornässen Schreibunterlagen und 0,2 um Nitrozellulose-Membranen mit Tris-Glycin-Transfer-Puffer (20% Methanol), und entfernen Sie alle Blasen aus Schreibunterlagen oder das Filterpapier / Membran-Sandwich.
- Im XCell Gelbox, füllen die innere Kammer mit Transfer-Puffer und füllen die äußere Kammer mit DIH 2 O (Methanol Belichtung kann zermürben die Kunststoff gelbox im Laufe der Zeit).
- Führen Sie den Transfer für 2-3 Stunden bei einer konstanten Stromstärke von 25 mA.
- Wenn die Übertragung abgeschlossen ist, dekonstruieren das Sandwich und Ort der Gele in DIH 2 O und die Membranen in 1xPBS, sowohl in eckigen Kunststoff-Petrischalen (oder einem anderen geeigneten Behälter).
- Zur Visualisierung der Effizienz von Protein zu übertragen, können Gele mit Simply Blue SafeStain (Invitrogen) gefärbt werden, und die Membranen mit roten Flecken Ponceau S (Sigma Aldrich), die beide nach den Anweisungen des Herstellers. Diese Färbung wird nicht mit Immunoblotting stören. Wenn Färbung zeigt ineffiziente Protein übertragen, ändern Transferzeit in Schritt 3.
Teil 5. Antigen-Epitopdemaskierungslösung & Immunoblotting
- Antigen-Retrieval ist ein wichtiger Schritt bei der Enthüllung des Aß-Epitope auf der Membran für die Antikörperbindung im Immunoblot. Alle Dampfgarer, Mikrowelle oder Wasserbad, dass eine konstante Temperatur von 100 ° C hält genügt. Für Antigen-Retrieval in einem Dampfer, Wärme-Dichtung der Membran in einer Heavy-Duty-Kapak Plastikbeutel mit 1xPBS gefüllt, bei Raumtemperatur. Legen Sie den Beutel flach in eine vorgewärmte Dampfer, einmal den Beutel beginnt zu expandieren, inkubieren für weitere 15 Minuten. Lassen Sie die Membran langsam abkühlen, bevor Sie sie aus dem Beutel, um eine übermäßige Faltenbildung zu verhindern.
- Bei Raumtemperatur vorsichtig die Membran aus dem dampfenden Tasche und spülen Sie die Membran für 5 Minuten in 1xPBS, durch eine 5-minütige in TBS-T spülen (Saline, pH 8,0 mit 0,05% Tween-20 Tris-Buffered gefolgt [Sigma] ), auf einem Schüttler. Inkubieren Sie die Membran in Blocking-Lösung (2,5% Magermilch in TBS-T) für eine Stunde lang. Ohne Ausspülen, Transfer-Membran in eine Schale oder Kunststoff Beutel mit dem primären Antikörper in Blockierungslösung verdünnt (6E10 bei 1:1000 [1μg/ml] 1:5.000 [0.2μg/ml] Verdünnung Covance), Vermeidung von Blasens. Inkubieren auf einem Schüttler bei Raumtemperatur für 1 Stunde und dann 24-48 Stunden unter Schütteln bei 4 ° C (längere Inkubationszeit kann ein besseres Signal zu geben).
- Spülen Sie die Membran für 30 Minuten in TBS-T (eine schnelle Spülung, gefolgt von 3 x 10 Minuten spült).
- Inkubieren Sie die Membran in HRP-konjugierten sekundären Antikörper (Amersham ECL Schaf-Anti-Maus, GE Healthcare), bei 1:10.000 in Blocking-Lösung verdünnt, für 90 Minuten auf dem Schüttler bei Raumtemperatur.
- Spülen Sie die Membran für 30 Minuten in TBS-T (eine schnelle Spülung, gefolgt von 3 x 10 Minuten spült).
- Auf dem Schüttler inkubieren die Membran in frisch zubereiteten SuperSignal West Pico Elektrochemilumineszenz Reagenz (ThermoFisher) für 5 Minuten, tupfen Sie das überschüssige Reagenz auf fusselfreien Filterpapier und Ort der Membran in einer Filmkassette, zwischen Plastikfolie Protektoren. Blot off zusätzliche SuperSignal Reagenz mit staubfreien Kimwipes, wenn nötig.
- Expose auf Kodak Biomax MR-Film für Intervalle von 30 Sekunden bis 30 Minuten und entwickeln in einem Film-Entwickler. Nach 5 Minuten wird die Aß Monomer-Banden wohl gesättigt sein.
- Membranen können ausgezogen (nach dem Spülen in TBS-T) durch Schütteln in Restore Plus Stripping-Puffer für 30 Minuten bei Raumtemperatur und reprobed mit zusätzlichen Antikörpern, wenn gewünscht.
Teil 6: Repräsentative Immunoblot:
Abbildungen 1a-c. Aufgeklärt Homogenate mit 50 Mikrogramm Gesamt-Protein von 7 Probanden werden auf das Vorhandensein von multimeren Aß und APP analysiert. Immunoblotting mit dem Antikörper 6E10 zeigt Aß Monomere, Dimere, Trimere, Tetramere und APP (Top-Band) in allen Alzheimer-Fälle, sowie reichlich höherem Molekulargewicht Aß-Multimere in 2 AD-Fälle. Synthetische Aβ40 bestätigt die Identität des niedermolekularen Banden. AD: Alzheimer, DLB: Demenz mit Lewy-Bodies, ND: Nondemented Menschen (a) 30 Minuten Filmbelichtung, (b) 5 Minuten Filmbelichtung, (c) 30 Sekunden Filmbelichtung..