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1. Produktion und Aufreinigung von sGMRα
- Amplify cDNA von sGMRα aus menschlicher Plazenta-cDNA-Bank mittels Polymerase-Kettenreaktion (PCR).
- Dann werden 50 Basis-5'-UTR-Sequenz von Baculovirus-Polyhedrin Ende und 27 Basis-Codierung RGS His-tag an das 3'-Ende der PCR Amplikon von einer anderen PCR.
- Legen Sie die amplifizierte PCR-Produkt in ein Plasmid pMSG1.1MG.
- Inject das Konstrukt psGMR/M1.1MG mit dem Helfer-Vektor pHA3PIG in Eier der Seidenraupe PND-w1 Belastung.
- Hinten die geschlüpften Larven zu Motten G0 bei 25 ° C. Screen-G1 Embryonen, die durch Paarung unter Geschwistern oder mit PND-w1 erhalten für MGFP Ausdruck in den Augen zu erhalten transgenen Seidenraupen mit dem sGMRα Gen.
- Auszug rekombinanten sGMRα aus den Kokons der Seidenraupen transgenen mit Phosphat-Puffer mit 500 mM NaCl und rühren bei 4 ° C für 24 Stunden.
- Centrifuge Probe bei 20000 g für 15 Minuten zu entfernen ausfällt.
- Wenden Sie den Überstand in ein Nickel-Affinitätssäule.
- Die Säule wird mit 10 mM Imidazol, 500 mM NaCl und 20 mM Natriumphosphat, pH6.3, und eluieren mit einem linearen Gradienten von Imidazol von 10mm bis 250mm. Pool der Fraktionen, die das gereinigte sGMRα und dialysieren gegen Phosphat-gepufferte Kochsalzlösung (pH 7,4) (PBS).
2. Biotinylierung von rekombinantem GM-CSF
- Entfernen Sorbit Vorbereitung durch Dialyse gegen PBS.
- Add 1 ml 20 mM kalten Natrium-meta-Perjodat-Lösung bei 4 ° C, um die Lösung auf Eis.
- Inkubieren Sie die Probe für 30min auf Eis im Dunkeln.
- Add Glycerin, um die Lösung in einer Endkonzentration von 15 mm.
- Dialysieren die Lösung gegen 100 mM Natriumacetat-Puffer (pH 5,5)
- Add Biotinhydrazid die Lösung mit einer Endkonzentration von 5 mM und kontinuierlich rühren die Lösung für 2 h bei Raumtemperatur.
- Entfernen Sie das nicht umgesetzte Material durch Dialyse gegen PBS, pH 7,4.
3. Ein zellfreier GM-CSF-Rezeptor-Ligand-Bindungs-Assay
- Coat eine Mikrotiterplatte mit 50 ul monoklonalen anti-Polyhistidin Antikörper über Nacht bei 4 ° C.
- Wash fünfmal mit 500μl PBST.
- Add 100 &mgr; einer Blockierungslösung und Inkubation für 3h bei 4 ° C.
- Wash fünfmal mit 500μl PBST.
- Add 50 ul sGMRα in Blocking-Lösung und Inkubation über Nacht bei 4 ° C.
- Wash fünfmal mit 500μl PBST.
- Add 25 &mgr; l der Proben mit GM-CSF Autoantikörper und dann 25 &mgr; l des biotinylierten GM-CSF. Inkubieren 1h bei 4 ° C zu bilden sGMRα-GM-CSF-Komplex.
- Wash fünfmal mit 500μl PBST.
- Add 50 ul 0,4 mM Streptavidin-alkalische Phosphatase für 1 Stunde bei 4 ° C an den biotinylierten GM-CSF gebunden sGMRα erkennen.
- Wash fünfmal mit 500μl PBST.
- Add 50 ul einer Chemilumineszenzsubstrat zur Lösung resuspendiert und für 1h bei Raumtemperatur.
- Mit Hilfe eines Chemilumineszenz-Reader, erkennen die Chemilumineszenz-Aktivität.
4. Repräsentative Ergebnisse:
Der erste Schritt in die GM-CSF-Rezeptor-Signalweg ist die Bindung von GM-CSF, GM-CSF-Rezeptor alpha auf der Zelloberfläche. Weil GM-CSF Autoantikörper bindet spezifisch an GM-CSF und blockieren die Bindung an den Rezeptor in vitro 16,17 stellten wir die Hypothese, dass die Autoantikörper dieser ersten Reaktion unmittelbar verbindlich GM-CSF zu hemmen. Wie zuvor beschrieben (Ref. 9-15), wandten wir transgene Seidenraupe Technologie, um eine große Menge an rekombinantem sGMRα mit hoher Reinheit zu erhalten.
Wenn die Seidenraupe abgeleitete rekombinante sGMRα auf SDS-PAGE wurde unter nicht-reduzierenden Bedingungen geladen, zeigte die sGMRα sowohl monomere (45 kDa) und dimeren (90 kDa) bildet, während nur die monomere Form unter reduzierenden Bedingungen festgestellt wurde (Abbildung 1B) , was darauf hinweist, dass die rekombinanten sGMRα eine Mischung aus Monomeren und Disulfid-linked-Dimmer 18 Jahre alt war.
Mit dem zellfreien System (Abb. 2A), wir die Hemmung der GM-CSF-Bindung an sGMRα von GM-CSF-Autoantikörpern (Abb. 2B und Abb.. 2C) ausgewertet. Diese Methoden wurden in Bezug 19 von Urano et al. Die Wachstumshemmung war eng mit dem Binding-Hemmung (r = 0,988, p = 0,002) bei verschiedenen Konzentrationen der GM-CSF Autoantikörper (Abb. 3A) 19 korreliert. Ebenso wurde die Bindung Hemmung signifikant mit der Wachstumshemmung korreliert. Die Binding-Hemmung in einer dosisabhängigen Weise durch GM-CSF-Autoantikörpern (Abb. 3B) 19 erhöht. Diese beiden Parameter für die Serum-IgG-Fraktionen von verschiedenen Patienten wurden miteinander korreliert (r = 0,589 p = 0,006, Abb.. 3C). Weder Bindungsinhibition noch Wachstumshemmung mit Kd-Werten korreliert, und somit waren beide Parameter unabhängig von Bindungsaffinität 19. Folglich Reproduzierbarkeit der Daten zwischen Bindung und gachstum Hemmung durch drei unabhängige Experimente an drei verschiedenen Proben erhalten wurde, ausgewertet. Der Variationskoeffizient angedeutet, dass die zellfreien System mehr gute als die von Biotest (Tabelle 1) wurde.

Abbildung 1. Flussdiagramm des Verfahrens zur Herstellung von sGMRα mit transgenen Seidenraupen. A) Strukturen der Transformationsvektoren 9-11. B) SDS-PAGE und Coomassie Brilliant Blue-Färbung des gereinigten sGMRα unter reduzierenden und nicht reduzierenden Bedingungen. sGMRα, lösliches GM-CSF-Rezeptor alpha; MGFP, Monster grün fluoreszierendes Protein; BmNPVpol5'-UTR, 5'-untranslatierten Region Abfolge von Bombyx mori nuklearen polyhedrosis Virus Polyhedrin; SV40 polyA, SV40 polyA-Signal-Sequenz; P 3xP3, 3xP3 Promotor; P SER1, SER1 Promotor; FibL polyA, Fibroin L-Kette polyA-Signal-Sequenz, hr3, Bombyx mori nuklearen polyhedrosis Virus hr3-Enhancer.

Abbildung 2. Schema der zellfreien Assay-System. A) Ein wettbewerbsfähiger Bindungsassay mit sGMRα von Seidenraupen produziert. B) Wirkung zu neutralisieren und nicht-neutralisierende Antikörper auf die Bindung der Hemmung durch zellfreien System. C) Die Differenz von Bindungsinhibition zwischen verschiedenen Konzentrationen von neutralisierenden Antikörpern und nicht-neutralisierenden Antikörpern. GM-CSF, Granulozyten-Makrophagen-Kolonie-stimulierender Faktor; sGMRα, lösliches GM-CSF-Rezeptor alpha, His, RGS-His-tag, AP, alkalische Phosphatase.

Abbildung 3. GM-CSF Bindungsinhibition zu sGMRα durch Wirkung von GM-CSF polyklonale Antikörper oder das Serum IgG-Fraktionen von Patienten mit Autoimmun-PAP. A) Beziehung zwischen verbindlichen Hemmung und Wachstumshemmung von GM-CSF Autoantikörper. B) Binding-Hemmung bei verschiedenen Konzentrationen von GM-CSF Autoantikörper. C) Beziehung zwischen IC 50 für Prozent Bindungsinhibition und Prozent Wachstumshemmung durch das Serum IgG-Fraktionen 19. IC 50, 50% ige Hemmkonzentration; GM-CSF, Granulozyten-Makrophagen-Kolonie-stimulierender Faktor.
| Probe | A | B | C |
| Inter-Assay- |
| Anzahl der Bestimmungen | 3 | 3 | 3 |
| Mittelwert (% Bindung Hemmung) | 61,6 | 63,8 | 69,7 |
| Mittelwert (% Wachstumshemmung) | 21,0 | 73,4 | 82,8 |
| Variationskoeffizient (%) (% Bindung Hemmung) | 6,0 | 5,6 | 8,3 |
| Variationskoeffizient (%) (% Wachstumshemmung) | 64,4 | 18,3 | 10,4 |
Beide Assays wurden bei 5 ng / ml GM-CSF und einer Konzentration von GM-CSF Autoantikörper durchgeführt.
Tabelle 1. Vergleich der Koeffizienten von Variationen zwischen Prozent verbindlich und Wachstum Hemmungen durch drei unabhängigen Experimenten.