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Methodenartikel

Mess Bindung und Internalisierung von Influenza A-Virus in A549-Zellen mittels Durchflusszytometrie

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DOI:

10.3791/53372

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4. November 2015

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir präsentieren ein Protokoll, das eine semiquantitative Methode zur Messung sowohl der Bindung von Influenza-A-Viren an A549-Zellen als auch der Internalisierung von Viruspartikeln in die Zielzellen durch Durchflusszytometrie beschreibt.

Zusammenfassung

Die Bindung an Zielzellen, gefolgt von der Internalisierung, sind die allerersten Schritte im Lebenszyklus des Influenza-A-Virus (IAV). Wir stellen hier ein detailliertes Protokoll zur Messung relativer Veränderungen in der Menge an Viruspartikeln zur Verfügung, die an A549-Zellen, einer menschlichen Lungenepithelzelllinie, anlagern, sowie in der Menge der Partikel, die in die Zelle internalisiert werden. Wir verwenden biotinylierte Viren, die nach einer Färbung mit Cy3-markiertem Streptavidin (STV-Cy3) leicht nachgewiesen werden können. Wir beschreiben das Wachstum, die Reinigung und die Biotinylierung von A/WSN/33, einem weit verbreiteten IAV-Laborstamm. Kaltgebundene biotinylierte IAV-Partikel auf A549-Zellen werden mit STV-Cy3 gefärbt und mittels Durchflusszytometrie gemessen. Um die Aufnahme von Viruspartikeln zu untersuchen, lässt man kältegebundene Viren bei 37 °C internalisieren. Um zwischen externen und internalisierten Viruspartikeln zu unterscheiden, wird ein Blockierungsschritt angewendet: Freie Bindungsstellen auf dem Biotin des angehefteten Virus auf der Zelloberfläche werden durch unmarkiertes Streptavidin (STV) gebunden. Die anschließende Zellpermeabilisierung und Färbung mit STV-Cy3 ermöglicht dann den Nachweis internalisierter Viruspartikel. Wir stellen eine Berechnung vor, um die relative Menge an internalisierten Viren zu bestimmen. Dieser Assay ist geeignet, um die Auswirkungen von medikamentösen Behandlungen oder anderen Manipulationen auf die Bindung oder Internalisierung von IAV zu messen.

Einleitung

Der Eintrag von Influenza-A-Virus (IAV) ist ein mehrstufiges Verfahren, das mit der Bindung des Virus an Rezeptoren auf der Plasmamembran von Zielzellen 1 beginnt. Der Rezeptor für die IAV Sialinsäure, die auf einer Vielzahl von Glykoproteinen und Glykolipiden vorliegt. Das Hämagglutinin (HA) Proteins der IAV, die in der Virushülle vorhanden ist bindet an Sialinsäure und vermittelt so die Befestigung der viralen Partikel in der Plasmamembran von Zielzellen 2. Das Virus tritt in die Zellen über Clathrin-vermittelte Endozytose, sondern auch alternative Eintrittswege wie Makropinozytose, beschrieben worden, 3-6. Die Wechselwirkung zwisch....

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Protokoll

Beachten Sie vor dem Start: Verwenden Sie Laminarströmungshaube und geeignete biocontainment bei der Arbeit mit Lebendvirus. Hier beschreiben wir das Wachstum geeigneten Bedingungen, um Kulturinfluenzavirusstamm A / WSN / 33. Multiplizität der Infektion (MOI) und Inkubationszeiten können je nach Virusstamm variieren.

1. Herstellung von biotinyliertem A / WSN / 33-Virus

  1. Samen Madin-Darby canine kindey Zellen (MDCK) in eine T175 cm 2 -Kolben mit Dulbeccos modifiziertem Eagle-Medium (DMEM) mit 10% FBS und 1% Penicillin-Streptomycin (Pen / Strep) ergänzt. Kulturzellen bei 37 ° C bis ungefähr 70% Konfluenz erreicht wird. ....

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Ergebnisse

Ein Cartoon beschreiben die vier verschiedenen experimentellen Bedingungen ist in Figur 1 gezeigten Ergebnissen eines repräsentativen Experiments sind in den 2 vorgelegt. - 5. In der "0 min" Probe ist biotinyliertes Virus Kalt verpflichtet, Zellen, die durch STV-Cy3-Färbung sichtbar gemacht werden können, zielen (Abbildungen 1 und 2). Wenn ein Blockierungsschritt (in der "0 min + STV" Probe) angewend.......

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Diskussion

Unser Protokoll beschreibt eine einfache Möglichkeit zur Messung der Virus-Bindung und Internalisierung durch Durchflusszytometrie. Es erlaubt die Verwendung von markierten Wildtyp-Virus, das imitiert enger Virus-Infektionen im Vergleich zur Verwendung von virusähnlichen Partikeln (VLP). Während unsere Protokoll wurde optimiert, um Bindung und Internalisierung von IAV messen, kann es leicht für andere Viren angepasst werden. Darüber hinaus, wie Durchflusszytometrie ist zum Auslesen verwendet, aufeinander Färbungen könne.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde durch einen Zuschuss aus dem Schweizerischen Nationalfonds (31003A_135278) SST unterstützt. MOP ist der Begünstigte einer Promotionsstipendium der AXA Forschungsfonds. Wir bedanken uns bei Patricia Nigg für die Hilfe bei der Gestaltung der Figur 1.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
DMEMLife Technologies41966-052
FBSLife Technologies10270-106
Penicillin-StreptomycinLife Technologies15140-163
PBSLife Technologies14190-169   
BSAVWR Calbiochem126579
HEPESLife Technologies15630-100
D-SaccharoseFluka84100
TRISBiosolve BV20092391
EDTASigma-Aldrich3680
EZ-LINK NHS-SS-BIOTIN KitFisher ScientificW9971E 
Bio Rad Protein Bio AssayBio Rad500-0006
Deepwell-Röhrchen (1,2 ml Mikroröhrchen)Milian82 00 001
PFA  Lucerna chem  Elektronenmikroskopie Wissenschaften15710
UltrazentrifugenröhrchenHemotec HmbH253070
Triton X-100Fluka93420
STV-Cy3Life Technologies43-4315
STVLife Technologies43-4302
NatriumazidFluka71290
bakterielle Neuraminidase/ sialidaseSigma-AldrichN6514-1UN

Referenzen

  1. Edinger, T. O., Pohl, M. O., Stertz, S. Entry of influenza A virus: host factors and antiviral targets. J Gen Virol. 95, 263-277 (2014).
  2. Palese, P., Shaw, M. L. Fields Virolog. Knipe, D. M., Howley, P. M. 2, Lippincott Williams and Wilkins. (2007).
  3. Matlin, K. S., Reggio, H., Helenius, A., Simons, K.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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