Ein ELISA-basierte Bindung und Wettbewerbsverfahren zu schnell zu bestimmen, Ligand-Rezeptor-Wechselwirkungen

Zusammenfassung

Die vorgestellten Protokolle beschreiben zwei enzymgekoppelte Immunsorbentassays (ELISA) basierende Techniken zur schnellen Untersuchung von Ligand-Rezeptor-Interaktionen: Der erste Assay ermöglicht die Bestimmung der Dissoziationskonstante zwischen Ligand und Rezeptor. Der zweite Assay ermöglicht eine schnelle Überprüfung von blockierenden Peptiden für Ligand-Rezeptor-Interaktionen.

Zusammenfassung

Ein umfassendes Verständnis von Signalwegen erfordert detailliertes Wissen über die Ligand-Rezeptor-Interaktion. Dieser Artikel beschreibt zwei schnelle und zuverlässige punktuelle Protokolle von enzymgekoppelten Immunadsorptionstests (ELISAs) zur Untersuchung von Ligand-Rezeptor-Interaktionen: den direkten Ligand-Rezeptor-Interaktionstest (LRA) und den kompetitiven LRA. Als Fallstudie wird die ELISA-basierte Analyse der Interaktion zwischen verschiedenen Lambda-Interferonen (IFNLs) und der Alpha-Untereinheit ihres Rezeptors (IL28RA) vorgestellt: Der direkte LRA wird zur Bestimmung der Dissoziationskonstanten (K_D-Werte) zwischen Rezeptor und IFN-Liganden verwendet, und der kompetitive LRA zur Bestimmung der inhibitorischen Kapazität eines Oligopeptids, das entwickelt wurde, um mit den IFNLs an ihrer Rezeptorbindungsstelle zu konkurrieren. Analytische Schritte zur Schätzung von K_D- und halbmaximaler inhibitorischer Konzentration (IC₅₀)-Werten werden beschrieben. Schließlich hebt die Diskussion die Vor- und Nachteile der vorgestellten Methode hervor und erläutert, wie die Ergebnisse ein besseres molekulares Verständnis von Ligand-Rezeptor-Interaktionen ermöglichen.

Einleitung

Ein umfassendes Verständnis der Signalwege erfordert detailliertes Wissen über die Ligand-Rezeptor-Wechselwirkung. Die meisten Methoden zur Beurteilung der Wechselwirkung eines bestimmten Liganden mit seinem spezifischen Rezeptor sind teuer, zeitaufwendig, arbeitsintensiv und erfordern eine spezielle Ausrüstung und Know - how ^1.

Dieser Artikel beschreibt zwei schnelle und zuverlässige Punkt-für-Punkt-Protokolle den Liganden-Rezeptor-Interaktion an ein Enzym linked immunosorbent assay (ELISA) basieren, zu untersuchen: den direkten Liganden-Rezeptor-Wechselwirkung-Assay (LRA) und den Wettbewerb LRA. ELISA ist ein sehr empfindlich, spezifisch und leicht verfügbare Technik routinemäßig in fast jedem Labor eingesetzt. ELISA kann in verschiedener Weise durchgeführt und angepasst werden. Die vorgestellten Protokolle werden für die Untersuchung der Wechselwirkung zwischen verschiedenen lambda Interferone (INFLs) und deren Rezeptor optimiert.

Die direkte LRA ermöglicht eine quantificatiauf der Ligand-Rezeptor in Bezug auf Ligandenkonzentration Bindung und somit eine Bindungskurve ergibt. Verwendung eines geeigneten Modells für den Liganden-Rezeptor - Interaktion können die Daten analysiert werden , weiter die Dissoziationskonstante (K _D) zu schätzen.

In dem vorgestellten Protokoll wird die allgemein verwendete Hill-Gleichung, die Ligand-Rezeptor-Bindung an Modell angewendet. Obwohl andere Verfahren wie beispielsweise die Oberflächenplasmonresonanz - Technologie ^2,3 die Bestimmung der Bindungsaffinitäten zwischen zwei Proteinen zu ermöglichen, ist diese Technik oft arbeitsintensiv, teuer und erfordert eine spezielle Laborausrüstung.

Der Wettbewerb LRA ermöglicht das Screening von inhibitorischen Peptide: Die Ligand-Rezeptor-Bindung wird in Bezug auf Peptidkonzentration quantifiziert. Dies ergibt eine Dosis-Wirkungs-Kurve, die die hemmende Wirkung des Peptids beschreibt. Die Daten können weitere ₅₀ die Hälfte der maximalen Hemmkonzentration (IC abzuschätzen analysiert werden ) des Blockierungspeptids.

Beide ELISA-Protokolle sind einfach zu bedienen und kann auf ein breites Spektrum an Forschungsfragen angepasst werden. Rekombinante Proteine ​​jeglicher Art verwendet werden, um zuverlässig und schnell die Wechselwirkungsteile bestimmen. Darüber hinaus kann der Wettbewerb LRA verwendet werden, um kritische Interaktionsstellen von Liganden und Rezeptoren zu bestimmen durch Verwendung von blockierenden Peptiden, die ausgelegt sind, entweder den Liganden oder den Rezeptor zu imitieren. Wenn das Blockierungspeptid effiziente und spezifische Hemmung zeigt, nimmt das Peptid eine kritische Interaktionsstelle des Liganden (wenn das Peptid-Mimetika der Rezeptor) oder des Liganden (wenn das Peptid-Mimetika der Ligand).

Das erste Protokoll der K _D -Wert Bestimmung verschiedener INFLs beschreibt und die alpha - Untereinheit von ihrer Rezeptor, dh der Interleukin-28 - Rezeptor (IL28RA) die direkte LRA verwenden. Als nächstes zeigt das zweite Protokoll, wie die Fähigkeit eines langen Peptid 20 Aminosäuren zu bestimmen,die INFL-IL28RA Wechselwirkungen hemmen. Das Peptid wurde entwickelt mit IFNLs an ihren Rezeptor-Bindungsstelle konkurrieren, und ermöglicht somit ein Molekular Verständnis der Wechselwirkung. Darüber hinaus kann dieses Peptid verwendet werden IL28RA in in vitro - Experimenten zu blockieren , die Auswirkungen auf nachgeschalteten Signaleffekte ⁴ zu bestimmen.

Protokoll

1. Vorbereitung der Reagenzien

1. Zur Herstellung von Karbonat Beschichtungspuffer, lösen sich 0,36 g Na ₂ CO ₃ und 0,84 g NaHCO ₃ in 100 ml destilliertem Wasser; Sterilfilter der Puffer durch ein Vakuum von 0,22 um Polyethersulfon (PES) Membranfilter und lagern bei RT bis zur Verwendung angetrieben werden.
2. Bereiten Waschlösung durch Zugabe von 0,05% v / v Tween 20 in phosphatgepufferter Salzlösung (PBS).
3. Bereiten Sie eine 5% Rinderserumalbumin (BSA) (Blocking-Lösung) in PBS-Lösung durch Auflösen von 5 g BSA (≥98%) in 100 ml PBS und lagern bei 4 ° C.
4. Rekombinante Rezeptor, Liganden und Blocking Peptide
   1. Reconstitutethe rekombinanten humanen Interleukin-Rezeptor-alpha-Untereinheit (IL28RA) und rekombinante His-markierten Liganden des menschlichen IFN (IFNL1-3) gemäß den Anweisungen des Herstellers und bei -80 ° C. Blockierende Peptide synthetisieren und verwendet wie zuvor ⁴ beschrieben. Verwenden PBS auf verschiedene Konzentrationen von Ligand vorbereitens und Peptide zur Verwendung in den Assays.
5. An den primären Antikörper herzustellen, verdünnte 6x His monoklonalen Maus-Antikörper in PBS mit 0,1% BSA auf 1: 1.000-Verdünnung. Meerrettich-Peroxidase (HRP) konjugiertes Ziege-anti-Maus-IgG (H + L) in PBS mit 0,1% BSA in 1 an den sekundären Antikörper herzustellen, verdünnter: 10.000-Verdünnung.
6. Bereiten Sie TMB-Lösung durch die Reagenzien A und B Mischen gemäß den Anweisungen des Herstellers.
7. Bereiten Sie Stop - Lösung durch Zugabe von 5 N Schwefelsäure (H ₂ SO ₄₎ in destilliertem Wasser und lagern bei RT.

2. Enzyme-linked immunosorbent assays (ELISAs)

HINWEIS: Die direkte Ligand-Rezeptor - Wechselwirkung ELISA (direct LRA, 1) können die Rezeptor-Ligand - Dissoziationskonstante (K _D), als Maß für die Rezeptor-Liganden - Bindungsaffinität zu messen , verwendet werden. Der Wettbewerb Ligand-Rezeptor - Wechselwirkung ELISA (Wettbewerb LRA, Abbildung 2) alleOWS Screening von Peptiden (und andere blockierende Verbindungen), die mit der Wechselwirkung zwischen Ligand und Rezeptor zu interferieren handeln. Das Basisprotokoll , die zuvor ⁵ veröffentlicht wurde , wurde weiter optimiert.
Hinweis: In beiden ELISA Methoden Mehrkanalpipette nach Lösungen zu den Vertiefungen von 96-Well-Platte in jedem Schritt hinzugefügt wird. In Lösung dekantieren oder Waschschritte, werfen die Lösungen direkt in die Spüle.

1. Direkter Ligand-Rezeptor-Interaktion Assay (direkte LRA)
   HINWEIS: Eine Abbildung des Workflows (siehe Abbildung 1).
   1. Lackplatte mit rekombinanten Rezeptor
      1. Verdünne den rekombinanten Rezeptor in Carbonat-Puffer auf eine Endkonzentration von 100 ng / & mgr; l. Coat Wells von 96-Well-Mikrotiterplatte mit festen Rezeptor-Konzentration (100 ng / ul) durch Pipettieren von 100 ul in jede Vertiefung einer Mehrkanalpipette mit. Ausschließen Außenwände der Platte gut Kante Artefakt zu vermeiden. Decken Sie die Platte mit einem Deckel und brüten diebei 4 ° CO / N Platte.
   2. Sperren und Zusatz von Liganden
      1. Am nächsten Tag, entfernen Sie die Beschichtungslösung durch die Platte gegen das Waschbecken kippen und die Platte 3-mal mit Waschlösung (PBS + 0,05% v / v Tween 20) waschen.
      2. Blockieren Sie die freien Rezeptor-Bindungsstellen in der beschichteten Platte unter Verwendung von 200 ul 5% BSA-Lösung in jede Vertiefung einer Mehrkanalpipette mit und inkubieren Sie die Platte für 2 Stunden bei RT.
      3. Entsorgen Sie die Blockierungslösung (siehe Schritt 2.1.2.1.) Und waschen Sie die Platte 3-mal mit Waschlösung.
      4. Bereiten Sie die rekombinante His-markierte Liganden bei verschiedenen Konzentrationen (beispielsweise 8 & mgr; g / ml, 4 ug / ml, 2 ug / ml, 1 & mgr; g / ml, 0,5 ug / ml, 0,25 & mgr; g / ml, 0,125 & mgr; g / ml, 0,063 & mgr; g / ml, 0,031 & mgr; g / ml, 0,0 ug / ml) in PBS. In nur PBS in den leeren Brunnen.
      5. Füge 100 ul jeder Ligandenkonzentration in die Vertiefungen in zweifacher Ausfertigung und inkubiere die Platte für 2 h bei RT ermöglicht Rezeptor-LigandenInteraktion.
   3. Inkubation mit Antikörper
      1. Nach der Inkubation mit den Liganden, waschen Sie die Platte 3-mal mit Waschlösung.
      2. Je 100 & mgr; l der primären anti-His monoklonalen Maus-Antikörperlösung (1: 1000) in jede Vertiefung.
      3. Die Platte bei RT für 2 h; nach der Inkubation, entsorgen Sie die Antikörperlösung (siehe Schritt 2.1.2.1.) und waschen Sie die Platte 3-mal mit Waschlösung.
      4. Füge 100 & mgr; l HRP gekoppelten Ziege-anti-Maus-IgG-sekundärem Antikörper-Lösung (1: 10.000) in jede Vertiefung. Die Platte 45 min bei RT.
      5. Entsorgen Sie die Antikörperlösung (siehe Schritt 2.1.2.1.) Und waschen Sie die Platte 3-mal mit Waschlösung.
   4. Zugabe von Substrat und Entwicklung
      1. Bringen Sie die TMB Substratlösungen auf RT und bereiten TMB Substratlösung A und B in 1: 1-Verhältnis. 100 l frisch hergestellte Substrat in jede Vertiefung und halten die Platte bei RT für 15-30 min. Nach ausreichender col oder Entwicklung werden 50 & mgr; l Stopplösung.
   5. Das Lesen der Platte und Datenanalyse
      HINWEIS: Die beschriebene Protokoll wird auf der Annahme basiert, dass das gemessene Signal von spezifischen Bindungs ​​ansteigt. Es könnte erforderlich sein, den Beitrag der unspezifischen Bindung an das Signal zu schätzen, aber dies ist aus dem Geltungsbereich dieses Protokolls.
      1. Die Absorption (optische Dichte, OD) direkt bei 450 nm.
      2. Ziehen Sie das Hintergrundsignal aus den gemessenen OD-Werte und normalisieren. Wandeln Sie alle Werte der Ligandenkonzentration auf logarithmische Skala (Basis 10, log _10).
      3. Plot der normierten und Hintergrund korrigierten OD - Werte (Y-Achse entspricht dem Anteil der besetzten Rezeptor - Bindungsstellen) gegen den Logarithmus der Ligandenkonzentration (X-Achse, ₁₀ Skala log).
      4. Um den K _D - Wert zu schätzen, passen die Daten an die folgende Form der Hill - Gleichung:
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         HINWEIS: Hier Y bezeichnet den Anteil der besetzten Rezeptor - Bindungsstellen und Y _max die maximale Bindung; [L] die Konzentration an freiem Liganden und der Hill-Koeffizient. Wenn es nur eine Bindungsstelle für den Liganden ist, ist der Hill-Koeffizient n = 1. Bei Systemen mit mehr als einem Ligandenbindungsstelle, die Bindungs ​​weist positive Kooperativität, wenn n> 1 ist, negativen Kooperativität wenn n <1 und keine Kooperativität wenn n = 1. die mikroskopische Dissoziationskonstante wird bezeichnet und entspricht der Hälfte der maximalen wirksamen Konzentration EC ₅₀ ^6. Die scheinbare Dissoziationskonstante K _d = (K _D) ^n. Im einfachsten Fall , in dem n = 1, die Dissoziationskonstante entspricht dem Ligandenkonzentration , bei der die Hälfte der Rezeptorbindungsstellen besetzt sind , und K _d = K _D. Dieses Modell geht davon aus Massenaktion unter Gleichgewichtsbedingungen verbindlich, sowie, dass nur ein kleiner Bruchteildie zugegebene Liganden an den Rezeptor gebunden, das heißt, [L] >> [RL].

Abbildung 1. Direkte Ligand-Rezeptor-Interaktion Assay (direkte LRA). Schritt- für -Schritt - Protokoll für die direkte LRA. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

2. Wettbewerb Ligand-Rezeptor-Interaktion Assay (Wettbewerbs LRA)
   HINWEIS:. Für eine Darstellung des Workflows siehe Abbildung 2 Der Wettbewerb LRA Verfahren folgt die gleichen Schritte wie die direkte LRA (Beschichtung der Platte, Antikörperinkubation, Entwicklung Platte) , mit Ausnahme wichtige Veränderungen in den Liganden und Peptiden Additionsschritt. Die richtige Negativkontrollen sind für diesen Test von wesentlicher Bedeutung. In einer früheren Screening-Studie 4, das verschlüsselte Blockierung Peptid zeigte keine antagonistische Wirkungen.
   1. Blocking - Zusatz von Liganden und Blocking Peptide
      1. Am nächsten Tag, entfernen Sie die Beschichtungslösung und waschen Sie die Platte (siehe 2.1.2.1).
      2. Blockieren Sie die beschichtete Platte durch Zugabe von 200 ul 5% BSA-Lösung in jede Vertiefung und inkubieren Sie die Platte für 2 Stunden bei RT.
      3. Bereiten Sie die rekombinante His-markierte Liganden (IFNL1-3) bei einer festen Konzentration (2x-20 ng / ml) in PBS.
      4. Bereiten Sie die blockierende Peptid (siehe Tabelle 3) mit unterschiedlichen Konzentrationen von 10 nM bis 100 uM in PBS Bereich eine Dosis-Wirkungs-Kurve zu gewährleisten.
         ANMERKUNG: Dies ermöglicht die anschließende Bestimmung des IC ₅₀ -Wertes für das Blockierungspeptid. In Kontrollvertiefungen, fügen Sie nur feste Ligand-Konzentration ohne Peptid das Maximum (100%) Bindung abzuleiten. In dem leeren, fügen Sie nur PBS ohne Ligand oder Peptid.
      5. Je 50 ul der Liganden (IFNL1-3) und 50 ul jeder peptide Konzentration auf die Vertiefungen in Duplikaten.
      6. Inkubieren der Platte für 2 h bei RT.
   2. Das Lesen der Platte und Datenanalyse
      HINWEIS: Die beschriebene Protokoll wird auf der Annahme basiert, dass das gemessene Signal von spezifischen Bindungs ​​ansteigt. Es könnte erforderlich sein, den Beitrag der unspezifischen Bindung an das Signal zu schätzen, aber dies ist aus dem Geltungsbereich dieses Protokolls.
      1. Die Absorption (optische Dichte, OD) direkt bei 450 nm.
      2. Ziehen Sie das Hintergrundsignal aus den gemessenen OD-Werte und normalisieren. Wandeln Sie alle Werte der Peptidkonzentration auf logarithmische Skala (Basis 10, log _10).
      3. Plot der normierten und Hintergrund korrigierten OD - Werte (Y-Achse entspricht dem Anteil der besetzten Rezeptor - Bindungsstellen) gegen den Logarithmus der Ligandenkonzentration (X-Achse, ₁₀ Skala log).
      4. Um die IC - ₅₀ - Wert zu schätzen, passen die Daten an die folgende Gleichung:
         
         HINWEIS: Hier [P] ist die Peptidkonzentration und der Hill-Anstieg. Der Hügel Steigung beschreibt die Steilheit der Dosis-Wirkungs-Kurve. Der IC ₅₀ entspricht der Inhibitorkonzentration , bei der 50% Inhibierung der Bindung zwischen Ligand und Rezeptor beobachtet wird.

Abbildung 2. Wettbewerb Ligand-Rezeptor-Interaktion Test (Wettbewerb LRA). Schritt- für -Schritt - Protokoll für den Wettbewerb LRA. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Ergebnisse

Die Dissoziationskonstanten zwischen INFL1-3 und deren Rezeptor alpha-Untereinheit IL28RA wurden unter Verwendung des direkten LRA bestimmt. Die Ergebnisse sind in Abbildung 3: Der Anteil an besetzten Bindungsstellen aufgetragen gegen den Logarithmus der jeweiligen IFN - Konzentration. Die Scatchard-Plot der Daten wird in der rechten unteren Ecke des Bildschirms angezeigt. Die Ergebnisse zeigen , dass die direkte LRA eine Bindungskurve ergibt, was die K _D -Wer...

Diskussion

ELISA ist ein Standard und gut etablierte Methode für viele Laboratorien. Wir haben weiter modifiziert und verbessert eine zuvor Methode ^5,7 veröffentlicht. Die aufgezeigte Schritt- für -Schritt - Protokoll zeigt , wie es in einfacher Weise verwendet werden können , um die K _d -Werte von Ligand-Rezeptor - Wechselwirkungen zu bestimmen. Darüber hinaus ist die IC50 eines Blockierungspeptid, das bestimmt werden kann, mit dem Liganden-Rezeptor-Wechselwirkung stört.

Wesentli...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
Nunc-Immunoplate (F96 Maxi sorp)	Thermo Scientific	442404	ELISA-Platte
Sodium carbonate (Na2CO3)	Merck	497-19-8	Für ELISA-Platten-Beschichtungspuffer
Sodium hydrogen carbonat(NaHCO3)	Merck	144-55-8	Für ELISA-Platten-Beschichtungspuffer
Bovine Serum Albumin (BSA)	Sigma	A7030-100G	5% BSA in PBS zum Blockieren
rhIL-28Rα/IFNλR1	R&D systems	5260-MR	Rekombinanter humaner Interleukin-28-Rezeptor alpha
rhIL-29/IFNλ1	R&D systems	1598-IL/CF	Rekombinantes humanes Interleukin-29/Trägerfrei/C-terminal 10-His-Tag
rhIL-28A/IFNλ2	R&D systems	1587-IL/CF	Rekombinantes humanes Interleukin-28A/Trägerfrei/C-terminal 6-His-Tag
rhIL-28B/IFNλ3	R&D systems	5259-IL/CF	Rekombinantes humanes Interleukin-28B/Trägerfrei/C-terminal 6-His-Tag
6x His Monoklonaler Antikörper (Maus)	Clontech	631212	Primärantikörper zum Erfassen von His-markierten Liganden
Goat anti-Mouse igG (H+L)	Jackson Immuno Research	115-035-166	Pferde-Radieschen-Peroxidase-konjugiertes Sekundärantikörper
BDoptEIA TMB-Reagenz-Set	BD Biosciences	555214	ELISA-TMB-Substratlösung
Schwefelsäure (H2SO4)	Fulka	84720	5 N H2SO4 (Enzymreaktionsstopplösung)
Synergy/H1 - Mikroplatten-Reader	BioTeK		ELISA-Platten-Reader