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Methodenartikel

Ganze Genom-Sequenzierung von Candida Glabrata für Erkennung von Markierungen von Antimykotika Resistenz

12.1K Ansichten

DOI:

10.3791/56714

28. Dezember 2017

* These authors contributed equally

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Diese Studie implementiert kompletten Genoms für die Analyse von Mutationen in Genen konferieren antimykotische Resistenzen in Candida Glabrata. Resistent gegen Echinocandine, Azole und 5-Flucytosine, C. Glabrata Isolate wurden sequenziert, um die Methodik zu veranschaulichen. Profile der Anfälligkeit der Isolate korreliert mit Vorhandensein oder Fehlen von spezifischen Mutation Muster in den Genen.

Zusammenfassung

Candida Glabrata erwerben rasch Mutationen, die zu Resistenzen, vor allem Azole und Echinocandine führen. Identifizierung von genetischen Mutationen ist wichtig, da Widerstand erkannt, dass in-vitro- oft mit klinischen Versagen korreliert werden können. Wir untersuchten die Machbarkeit der Verwendung von kompletten Genoms (WGS) für genomweite Analyse von Antimykotika Resistenzen in C. Glabrata. Das Ziel war Torecognize Enabler und Hindernisse bei der Umsetzung WGS und seine Effektivität zu messen. Dieses Papier beschreibt die wichtigsten Qualitätskontrolle Checkpoints und wesentliche Bestandteile der WGS Methodik, genetische Marker, die mit verringerte Empfänglichkeit gegenüber Antimykotika zu untersuchen. Er schätzt auch die Genauigkeit der Datenanalyse und Zug-um-Zeit der Erprobung.

Phänotypische Anfälligkeit von 12 klinische und ein ATCC Stamm von C. Glabrata wurde durch antimykotische Empfindlichkeitsprüfungen ermittelt. Diese enthalten drei isolieren Paare aus drei Patienten, die Anstieg der Droge minimalen inhibitorischen Konzentration entwickelt. Zwei Paare die zweite jedes Paar entwickelt Resistenz gegen Echinocandine isolieren. Das zweite Isolat des dritten Paares entwickelt Resistenz gegen 5-Flucytosine. Die restlichen bestehend anfällig und Azole resistente Isolate. Single-Nukleotid-Polymorphismen (SNPs) in Verbindung mit Echinocandin, Azole und 5-Flucytosine Widerstand Gene wurden in resistenten Isolate durch WGS mit der nächsten Generation-Sequenzierung bestätigt.  Non-Synonyme SNPs in antimykotische Widerstand Gene wie FKS1, FKS2, CgPDR1, CgCDR1 und FCY2 wurden identifiziert. Alles in allem, durchschnittlich 98 % des WGS lautet C. Glabrata Isolate auf das Referenz-Genom mit ca. 75-fold lesen Sie Tiefe Abdeckung abgebildet. Die Turnaround-Zeit und die Kosten waren vergleichbar mit Sanger Sequenzierung.

Zusammenfassend war WGS von C. Glabrata möglich bei der Aufdeckung klinisch signifikanten Genmutationen, die Resistenz gegen verschiedene Antimykotika Medikamentenklassen ohne die Notwendigkeit für mehrere PCR/DNA Sequenzierung Reaktionen beteiligt. Dies ist einen positiven Schritt hin zu WGS Fähigkeit im klinischen Labor für simultane Detektion von Antimykotika Widerstand Verleihung Substitutionen.

Einleitung

Candida Glabrata ist eine zunehmend auftretende Erreger mit Bedeutung als eine Art, der Widerstand der azole sowie in jüngerer Zeit, die Echinocandine1,2,3aufweist. Im Gegensatz zu den diploiden C. Albicanskönnen die haploide Genom von C. Glabrata Mutationen zu erwerben und entwickeln Multi-Resistenzen leichter. Co-Resistenz an beide Substanzklassen wurde auch berichtet,4. Daher ist frühzeitige Bewertung der pilzbefallverhütende Anfälligkeit und Erkennung von Resistenzen in C. Glabrata entscheidend für die richtige u....

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Protokoll

Es bedurfte keine ethischen Genehmigung für diese Studie.

(1) Subkultur und Inokulum Vorbereitung auf Candida glabrata

  1. Wählen Sie eine Schalttafel C.glabrata Isolate untersucht werden, auch mindestens ein C. Glabrata American Art Kultur Sammlung (ATCC) mit bekannten Anfälligkeit Muster umfassen sollte.
  2. Subkultur Isolat durch Berühren einer einzigen Kolonie mit einer sterilen Einweg-Kunststoff-Schleife und Streifen auf einem Sabouraud-Dextrose-Agar (SDA) Platte8.
  3. Inkubieren Sie die SDA-Platte für 24-48 h bei 35 ° C für Isolat mit gutem Wachstum in Reinkultur.

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Ergebnisse

Dreizehn C. Glabrata bestehend aus C. Glabrata ATCC 90030 und 12 Isolaten aus der klinischen Mykologie Referenzlabor (isoliert CMRL1, CMRL12), Westmead Hospital, Sydney wurden untersucht (Tabelle 1). Dazu gehörten die drei Paare von Isolaten CMRL-1/CMRL-2, CMRL-3/CMRL-4 und CMRL-/ CMRL 5-6 vor und nach der antimykotischen Therapie mit keine epidemiologischen Zusammenhänge zwischen ihnen erhalten 24 (Tabelle 1).

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Diskussion

Diese Studie stellte fest, Machbarkeit, ungefähre Timelines und Präzision der WGS-geführte Nachweis von Resistenzen in C. Glabrata. Die Bearbeitungszeit (TAT) für die Bibliothek Vorbereitung und Sequenzierung wurde vier Tage und Berichterstattung der analysierten Ergebnisse ein bis zwei Tage. Im Vergleich dazu mindestens einer ähnlichen Menge TAT für Anfälligkeit Assays von Kultur Teller und Sanger-Sequenzierung mit deutlich höheren Anzahl von Proben. Ca. 30-90 C. Glabrata Genome sequenziert werden könn.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keinen finanziellen Interessenkonflikt und keine Interessenskonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde vom Zentrum für Infektionskrankheiten und Mikrobiologie, die öffentliche Gesundheit unterstützt. Die Autoren erhielten keine anderen Mittel für diese Studie nicht. Die Autoren danken Drs Alicia Arnott, Nathan Bachmann und Ranjeeta Menon für ihre kompetente Beratung und Unterstützung mit dem gesamten Genom-Sequenzierung-Experiment.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
DensiCHECK PlusBioMé rieux IncK083536Densitometer für McFarland-Messungen
Sensititre YeastOneTREK Diagnostic Systems, Thermo ScientificYO10Kommerzielle Empfindlichkeitstestplatte mit Standard-Antimykotika.
Fisherbrand Einweg-Impfösen und -NadelnFisher Scientific, Thermo Fisher Scientific22-363-605Einweg-Kunststoffschlaufen können direkt aus der Verpackung verwendet werden. Kein Abflammen erforderlich.
Eppendorf Safe-Lock MikrozentrifugenröhrchenSigma Aldrich, MerckT2795     Volumen 2,0 mL, natürlich
 
ZYMOLYASE 20T von Arthrobacter luteusMP Biomedicals, LLC8320921Wird für die Zellwandlyse von Pilzisolaten vor
DNA-Extraktion
verwendet Wizard Genomic DNA Purification Kit Promega A1120führt 100 DNA-Extraktionen
durch Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay KitThermo Fisher ScientificP7589  Picogreen-Reagenz, das im Protokoll als Fluoreszenzfarbstoff bezeichnet wird.
Enthält den Lambda-DNA-Standard und das Picogreen-Reagenz für den Assay.
Nextera XT DNA-ProbenvorbereitungskitIlluminaFC-131-1096Enthält Box 1 und Box 2  Reagenzien für 96 Proben
Nextera XT Index Kit v2 IlluminaFC-131-2001,
FC-131-2002,
FC-131-2003,
FC-131-2004
Indexsatz A
Indexsatz B
Indexsatz C
Indexsatz D
NextSeq 500/550 High Output Kit v2 IlluminaFC-404-2004300 Zyklen, mehr als 250 Samples pro Kit
NextSeq 500 Mid Output v2 KitIlluminaFC-404-2003300 Zyklen, mehr als 130 Samples pro Kit
PhiX Control KitIlluminaFC-110-3001So ordnen Sie Indizes aus dem Index-Kit in der richtigen Reihenfolge
an TruSeq Index Plate Fixture KitFC-130-1005  2 Vorrichtungen
KAPA Library Quantification Kit
für Next-Generation-Sequencing
KAPA BiosystemsKK4824Enthält vorgefertigte Standards, Primer und das MasterMix
Janus NGS Express Liquid-Handling-System PerkinElmerYJS4NGSWird für DNA-Verdünnungen während der Sequenzierung verwendet
  0,8 mL Storage PlateThermo ScientificAB0765BMIDI Plate für die Bereinigung von DNA-Bibliotheken und
Normalisierung
Agencourt AMPure XPBeckman CoulterA63881  Magnetische Beads in Lösung für die Bibliotheksaufreinigung
Magnetic Stand-96Thermo Fisher ScientificWird für die DNA-Aufreinigung auf Basis von magnetischen Beads
verwendet OrbiShaker MP Benchmark ScientificBT150296-Well-Plattenschüttler mit 4 Plattformen
Hartschalen-PCR-PlatteBioRadHSP9601dünnwandig, 96 Well
LightCycler 480 Instrument II Roche 5015278001Geeignet für 96-Well-Platten
Microseal 'B' PCR-Plattenversiegelungsfolie, selbstklebend, optisch BioRad  MSB1001Klare 96-Well-Plattenversiegeler
CLC Genomics WorkbenchQiagenCLCBioSoftware für die Datenanalyse, Version 8
NextSeq500 GerätIllumina Illumina Benchtop-Sequenzer für die Sequenzierung der nächsten Generation
, AM10027

Referenzen

  1. Beyda, N. D., et al. FKS mutant Candida glabrata: risk factors and outcomes in patients with candidemia. Clin Infect Dis. 59 (6), 819-825 (2014).
  2. Chapeland-Leclerc, F., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

Schlagwörter

Antifungale ResistenzSNP DetektionNext Generation SequencingDNA Bibliothekspr parationminimale HemmkonzentrationFKS1 GenFKS2 GenCgPDR1 Gen