Name: Dezellularisierung und Recellularization von Whole Livers (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-04T17:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 24 s
Description: Erfahren Sie die Perfusion-Dezellularisierung von Lebern zur Herstellung funktionaler Lebertransplantate. Diese Methode ermöglicht die Rekultivierung mit Hepatozyten und die Untersuchung hepatischer Funktion in vitro.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Die Autoren bedanken sich bei Jack Milwid für die Gestaltung der in vitro Perfusionskammer danken. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse der US NIH, R01DK59766 und R01DK084053 zu MY, R00DK080942 zu KU, US NSF CBET-0853569 zu KU und die Shriners Hospitals for Children zu BEU (Grant No. 8503) unterstützt. Wir danken für die Unterstützung und die Shriners Hospitals for Children.

1. Liver Dezellularisierung <ol><li> Ernte einer Rattenleber mit Pfortader Kanülierung mit und 18-Gauge-Katheter. Lassen Sie die untere und obere Hohlvene zu öffnen. Halten Sie die Orgel hydratisiert in Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung (PBS) in einer 10-cm-Petrischale. </li><li> Einrichten einer Perfusion System, das von 8-Liter-Behälter, Schlauchpumpe und einer Blasenfalle besteht. </li><li> Füllen Sie die Perfusion mit Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung und halten Sie es läuft für 10 Minuten. Füllen PBS in einem 10-cm-Petrischale und reduzieren die Fließgeschwindigkeit des Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung zu 1 mL / min. </li><li> Sorgfältig Übertragung der geernteten Leber zu den Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung gefüllt 10-cm-Petrischale. </li><li> Fahren Sie mit PBS Perfusion über Nacht. </li><li> Starten Perfusion mit 0,01% (w / v) Natriumdodecylsulfat (SDS) in destilliertem Wasser für 5 Minuten. </li><li> Perfundieren mit PBS für 1 Stunde. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1,6 und 1,7 noch dreimal die Erhöhung der SDS Perfusion auf 10, 15 und 20 Minuten zu jeder Zeit. </li><li> Weiter Perfusion mit 0,01% (w / v) SDS für 24 Stunden. </li><li> Weiter Perfusion mit 0,1% (w / v) SDS für 24 Stunden. </li><li> Perfundieren mit 0,2% (w / v) SDS für 3 Stunden. </li><li> Perfundieren mit 0,5% (w / v) SDS für 3 Stunden. </li><li> Perfundieren mit destilliertem Wasser für 15 Minuten. </li><li> Perfundieren mit 1% (w / v) Triton X-100 in destilliertem Wasser für 30 Minuten keine gebundenen Nukleinsäuren zu entfernen. </li><li> Zum Waschen der dezellularisierte Leber-Matrix (DLM), perfuse mit PBS für 2 Stunden. </li><li> Optional: reseziert allen Lappen mit Ausnahme der Mittellappen. </li><li> Bewahren Sie die DLM in einer sauberen und verschlossenen Petrischale in PBS bei 4 o C eingeweicht, bis sie verwendet (Abbildung 1). </li><li> Um sterilisieren DLM: 1) Spülen Sie die DLM mit sterilem PBS mit 0,1% (v / v) Peressigsäure und 4% (v / v) Ethanol und Inkubation für 3 Stunden bei 4 o C. 2) mit sterilem PBS 2 mal waschen. 3) mit sterilem PBS mit 2% Penicillin-Streptomycin, 10ug / mL Gentamicin und 2,5 ug / ml Amphotericin B. Bewahren Sie die dezellularisierte Leber in der gleichen Lösung bei 4 o C bis bereit, für recellularization Experimenten Wash. </li></ol> 2. Recellularization von dezellularisierte Leber Matrix <ol><li> Einrichten einer Perfusion System, das von einer Perfusionskammer, Schlauchpumpe und einer Blasenfalle unter sterilen Bedingungen besteht. Füllen Sie die Perfusion mit 200 ml Kulturmedium, z. B. hohe Glukose-DMEM (Sigma), 10% fötalem Rinderserum (Hyclone,), 100 U mL -1 Penicillin und 100 ug mL -1 Streptomycin (Invitrogen). </li><li> Legen Sie die dezellularisierte Leber-Matrix in der Perfusionskammer und verbinden Sie die DLM die Perfusion System durch die Pfortader Kanüle, während die Pumpe mit 5 ml / min läuft, um die Bildung von Luftblasen zu vermeiden. </li><li> Lassen Perfusion des Mediums durch die DLM für 30 Minuten. </li><li> Isolieren primären Hepatozyten aus einer erwachsenen Ratte mit mindestens 90% Lebensfähigkeit. </li><li> Stoppen Sie die Strömung in der Perfusion und injizieren Sie langsam 50 Millionen Hepatozyten (in 1-3 ml Kulturmedium) in Perfusionssystem durch die Blasenfalle. </li><li> Starten Sie den Durchfluss bei 10 mL / min und rezirkulieren das Medium für 10 Minuten. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 2.5 und 2.6 bis insgesamt 200 Millionen Zellen in die DLM (Abbildung 2) 6 eingeführt werden. </li><li> Wenn alle Zellen in die DLM perfundiert werden, sammeln das Perfusat in vier 50-ml-Zentrifugenröhrchen und Zentrifuge bei 600 rpm für 10 Minuten. Entsorgen Sie die Überstände und sammeln Sie die Pellets in einem einzigen Rohr. Bestimmen Sie die Anzahl der Zellen und die Lebensfähigkeit über Trypanblau-Ausschluss für die Aussaat Effizienz zu bestimmen. </li></ol> 3. In-vitro-Kultur der Recellularized Leber Graft <ol><li> Einrichten einer Perfusion System, das von einer Perfusionskammer, Schlauchpumpe, Oxygenator und eine Blasenfalle unter sterilen Bedingungen (Abbildung 3) besteht. Füllen Sie die Perfusion mit 50 ml Kulturmedium, z. B. Williams 'E (Sigma), 5% fötalem Rinderserum (Hyclone,), 0,5 U mL -1 Insulin (Eli Lilly), 20 ng mL -1 EGF (Invitrogen) , 14 ng mL -1 Glukagon (Bedford Laboratories), 7,5 pg mL -1 Hydrocortison (Pharmacia), 100 U mL -1 Penicillin und 100 ug mL -1 Streptomycin (Invitrogen). </li><li> Legen Sie die recellularized Lebertransplantation in der Perfusionskammer und verbinden Sie die DLM die Perfusion System durch die Pfortader Kanüle, während die Pumpe mit 5 ml / min läuft, um die Bildung von Luftblasen zu vermeiden. </li><li> Aseptischen Bedingungen in der Nähe der Perfusionskammer und dicht schließen, um ein Auslaufen während der Kultur zu vermeiden. </li><li> Übertragen Sie die Perfusion System in einen Inkubator, dass 37 o C ist und 10% CO 2 und erhöhen die Perfusionsflussrate bis 15 mL / min. </li><li> Verbinden Sie den Oxygenator zu einem 95% O 2 und 5% CO 2-Gasgemisch Tank und stellen Sie den Gas-Durchfluss bis 0,5 Liter / min. Dies sollte erreicht eine Sauerstoff-Partialdruck von NaherungTely 400 mmHg. </li><li> Die Kultur kann bis zu 10 Tagen mit täglich wechselnden Kulturmedium weiter. Das Kulturmedium kann täglich zur Überwachung der Leberfunktion des Transplantats, wie Albumin, Harnstoff und insgesamt Gallensäure Sekretion abgetastet werden. Am Ende der Kultur Frist kann der recellularized Lebertransplantation für molekulare und histologische Analyse beprobt werden. </li></ol> 4. Repräsentative Ergebnisse: Die komplette Dezellularisierung einer Rattenleber dauert etwa 72 Stunden mit dem beschriebenen Protokoll. Die resultierende Matrix behält 100% der fibrillären Kollagen, 50% der Glykosaminoglykane und nur 5% der DNA des nativen Leber (Tabelle 1) 6. Die vaskuläre Struktur der Matrix bleibt erhalten, wie durch Korrosion Gieß-und Rasterelektronenmikroskopie Analyse (Abbildung 4) 6 belegt. Die Anwesenheit des vaskulären Mikroarchitektur innerhalb der DLM erleichtert die Wiederbesiedlung mit Zellen mit einem Wirkungsgrad von 96% und die anschließende Perfusion in vitro-Kultur. Die recellularized Leber Transplantat kann bis zu 10 Tage in vitro kultiviert werden und zeigt geeignete Leber funktioniert als über Albumin, Harnstoff und insgesamt Gallensäure Sekretion (Abbildung 5) 6 bestätigt. <img src="/files/ftp_upload/2394/2394fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Dezellularisierte Leber-Matrix am Ende des Dezellularisierung Prozess. (A) die ganze Leber (b) der Mittellappen nach Resektion. <img src="/files/ftp_upload/2394/2394fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Schematische Darstellung der recellularization der DLM. <img src="/files/ftp_upload/2394/2394fig3.jpg" alt="Abbildung 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 3"> Abbildung 3. Perfusion System-Setup für In-vitro-Kultur der recellularized Lebertransplantation. <img src="/files/ftp_upload/2394/2394fig4.jpg" alt="Abbildung 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 4"> Abbildung 4. Die mikrovaskuläre Struktur wird in der Leber dezellularisierte Matrix beibehalten. Ausgusspräparat Bilder aus a) einer normalen Leber b) eine dezellularisierte Leber-, Portal-(rot) und venösen (blau) Gefäßsystem. Rasterelektronenmikroskopie Bilder des DLM c) ein Gefäß, d) ein Abschnitt mit Gallengang-like kleinen Gefäße (Pfeile), Scale Bars (a, b) 5 mm (c, d) 20 um. <img src="/files/ftp_upload/2394/2394fig5.jpg" alt="Abbildung 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 5"> Abbildung 5. Liver spezifischen Funktionen des recellularized Lebertransplantation während der in vitro Perfusion Kultur. a) Albumin-Sekretion (p = 0,5249), b) zur Herstellung von Harnstoff (p = 0,5271) und c) insgesamt Gallensäure-Sekretion (p = 0.0114). Die statistische Analyse der Differenz zwischen dem Experiment und der Kontrolle wurde über die 10 d Kultur Zeitraum von Friedman-Test bei a = 0,01 durchgeführt. Fehlerbalken stellen sem (n = 3). <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> Frische Livera </td><td> Dezellularisierte Leber Matrix ein </td><td rowspan="2"> p-Werte </td><td rowspan="2"> % Der frischen Leber </td></tr><tr><td></td><td> n = 4 </td><td> n = 8 </td></tr><tr><td> Collagen </td><td rowspan="2"> 0,07 ± 0,01 </td><td rowspan="2"> 0,08 ± 0,03 </td><td rowspan="2"> 0,56 </td><td rowspan="2"> 114% </td></tr><tr><td> (Mg pro g Leber) </td></tr><tr><td> Glykosaminoglykane </td><td rowspan="2"> 73,1 ± 6,7 </td><td rowspan="2"> 34,2 ± 2,9 </td><td rowspan="2"> 0,004 </td><td rowspan="2"> 47% </td></tr><tr><td> (Mg pro g Leber) </td></tr><tr><td> DNA </td><td rowspan="2"> 14,9 ± 5,6 </td><td rowspan="2"> 0,44 ± 0,08 </td><td rowspan="2"> 3.3 10 -5 </td><td rowspan="2"> 2,9% </td></tr><tr><td> (Mg pro g Leber) </td></tr></tbody></table> Tabelle 1. Die biochemische Zusammensetzung der dezellularisierte Leber-Matrix auf die native Leber verglichen. a Werte werden als Mittelwert ± SEM dargestellt

<ol><li>Kulig, K. M., Vacanti, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hepatic+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Transpl+Immunol%22%5BJournal%5D)">Hepatic tissue engineering.</a> Transpl Immunol. 12, 303-310 (2004).</li>
<li>Lutolf, M. P., Hubbell, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+biomaterials+as+instructive+extracellular+microenvironments+for+morphogenesis+in+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+biotechnology%22%5BJournal%5D)">Synthetic biomaterials as instructive extracellular microenvironments for morphogenesis in tissue engineering.</a> Nature biotechnology. 23, 47-55 (2005).</li>
<li>Dahl, S. L., Koh, J., Prabhakar, V., Niklason, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decellularized+native+and+engineered+arterial+scaffolds+for+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Decellularized native and engineered arterial scaffolds for transplantation.</a> Cell Transplant. 12, 659-666 (2003).</li>
<li>Schechner, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engraftment+of+a+vascularized+human+skin+equivalent%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Engraftment of a vascularized human skin equivalent.</a> FASEB J. 17, 2250-2256 (2003).</li>
<li>Gilbert, T. W., Sellaro, T. L., Badylak, S. F., F, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decellularization+of+tissues+and+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Decellularization of tissues and organs.</a> Biomaterials. 27, 3675-3683 (2006).</li>
<li>Uygun, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+reengineering+through+development+of+a+transplantable+recellularized+liver+graft+using+decellularized+liver+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix.</a> Nat Med. , (2010).</li>
</ol>

Die Perfusion Dezellularisierung hier beschriebene Methode produziert eine ganze Leber Gerüst, das die gleiche grobe Struktur und die vaskuläre Mikroarchitektur des nativen Leber hat. Das Gerüst hat eine extrazelluläre Matrix Zusammensetzung ähnlich der nativen Leber. Die recellularization Methode erreicht Wiederbesiedlung des Gerüsts mit Zellen mit hohem Wirkungsgrad und die Zellen lebensfähig bleiben und funktionelle während der in vitro-Kultur Zeitraum getestet. Mit dem Zusatz von nonparenchymal Zellen in di...

A correction was made to <a href="http://www.jove.com/Details.php?ID=2394">Decellularization and Recellularization of Whole Livers</a>. There was an error with an author's name. The author's last name had a typo and was corrected to:
Nima Saeidi
instead of:
Nima Saedi.

Erratum: Decellularization and Recellularization of Whole Livers

<table><tbody><tr><td>Natriumdodecylsulfat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L4390</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>Masterflex L/S Digitalantrieb</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-07523-80</td><td></td></tr><tr><td>Masterflex L/S Standardpumpenkopf</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW- 07013-81</td><td></td></tr><tr><td>Blasenfalle</td><td>Radnoti Glass Technology Inc.</td><td>130149</td><td></td></tr></tbody></table>

dezellularisierung und recellularization von whole livers

Decellularization and Recellularization of Whole Livers

Die Leber ist ein komplexes Organ, das konstante Perfusion erfordert für die Lieferung von Sauerstoff und Nährstoffen und Beseitigung von Abfällen, um 1 überleben. Die Bemühungen zu erstellen oder zu imitieren die Leber Mikrostruktur mit Gründen up-Ansatz mit Tissue Engineering und Mikrofabrikationstechniken sind nicht erfolgreich gewesen, so weit durch, um diesen Entwurf Herausforderung. Darüber hinaus haben synthetische Biomaterialien verwendet werden, um Gerüste für Leber Tissue Engineering-Anwendungen zu erstellen bei der Induktion der Geweberegeneration und Reparatur zu einem großen Teil durch das Fehlen von spezifischen Zell-Bindung Motive, die die richtige Zelle Funktionen 2 induzieren wäre begrenzt. Dezellularisierte nativen Gewebe wie Blutgefäße 3 und Haut 4 auf der anderen Seite haben viele Anwendungen im Tissue Engineering gefunden, und sofern eine praktische Lösung für einige der Herausforderungen. Der Vorteil der dezellularisierte nativen Matrix ist, dass es, bewahrt in einem Umfang, der ursprünglichen Zusammensetzung und die Mikrostruktur, also die Verbesserung Zelladhäsion und Reorganisation 5. In dieser Arbeit beschreiben wir die Methoden zur Perfusion-Dezellularisierung der Leber, so dass eine intakte Leber biologisches Gerüst, dass die Struktur der großen Blutgefäße behält erhalten ist durchzuführen. Des Weiteren beschreiben wir Methoden, um diese bioscaffolds mit adulten primären Hepatozyten recellularize, die Schaffung eines Lebertransplantation, die funktionelle in vitro ist, und hat das Schiff den Zugang erforderlich für die Transplantation in vivo.

Perfusion Dezellularisierung ist eine neuartige Technik, um ganze Leber Gerüste, dass die Orgel extrazellulären Matrix Zusammensetzung und Mikroarchitektur behält produzieren. Hierbei wird das Verfahren zur Herstellung von ganzen Organs Gerüste mit Perfusion Dezellularisierung und anschließende Wiederaufforstung mit Hepatozyten beschrieben. Funktionelle und transplantierbaren Leber Transplantate kann mit Hilfe dieser Technik werden.

Dezellularisierung und Recellularization von Whole Livers

Die Leber ist ein komplexes Organ, das eine konstante Perfusion zur Zufuhr von Nährstoffen und Sauerstoff sowie zum Abtransport von Stoffwechselprodukten benötigt, um zu überleben1. Bemühungen, ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, maßgeschneiderte Lebertransplantate unter Verwendung einer entzellulierten Lebermatrix herzustellen. Dies wird erreicht, indem zunächst eine Spenderleber katheterisiert wird. Anschließend erfolgt die Entzellulierung des Organs durch Perfusion mit einer Reihe von Detergenzlösungen. Die Revascularisierung der dezellularisierten Lebermatrix wird anschließend durchgeführt, indem adulte primäre Hepatozyten per Perfusion eingeführt werden. Abschließend wird ein in-vitro-Perfusionssystem verwendet, um das zelluläre Lebertransplantat zu kultivieren. Letztendlich können Ergebnisse erzielt werden, die die hepatische Funktion der verkleinerten Transplantate in vitro durch Messung der Albumin-, Harnstoff- und Gesamtbiliasäuresekretion im Perfusionsmedium zeigen.Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Verfahren wie der Gerüstherstellung mittels synthetischer Biomaterialien und herkömmlichen Gewebeengineering-Methoden liegt meiner Meinung nach in der Anwesenheit der gewebespezifischen Zusammensetzung der extrazellulären Matrix. Das perfundierte, dezellularisierte Gerüst weist zudem die gewebespezifische Mikroarchitektur, wie b

decellularization-and-recellularization-of-whole-livers

Research

Forschung

JoVE Journal

Bioengineering

Biotechnik

Das Studium der Leber sinusförmige Endothelzellen (SECS) muss mit primären Zellen aus dem Tier erhalten, da keine Zelllinien existieren durchgeführt werden. Diese Methode basiert auf Leber Verdauung und differentielle Zentrifugation für SEC Reinigung für nachfolgende Kultivierung und Experimentieren.

In vivo Leber Endozytose durch Reinigung von Leberzellen durch Leberperfusion Gefolgt

Ein Verfahren, um schnell und vollständig zu entfernen zellulären Komponenten aus einer intakten Schweineherz durch retrograde Perfusion wird beschrieben. Dieses Verfahren ergibt eine ortsspezifische kardialen extrazellulären Matrix Gerüst, das das Potential für die Verwendung in einer Vielzahl von klinischen Anwendungen hat.

Verfahren für Dezellularisierung der Porcine Heart von Retrograde Coronary Perfusion

Der Artikel beschreibt eine Methode für die Herstellung einer azellulären Matrix aus Rattendarm. Die Ableitung von Darm Gerüste ist wichtig für zukünftige Anwendungen im Tissue Engineering, Stammzellbiologie und Drogentests.

Ein Dezellularisierung Methodik für die Herstellung von Naturdarm Azelluläre Matrix

Die Dezellularisierung ganzer Organe erzeugt natürliche biologische Gerüste, die für die regenerative Medizin verwendet werden können. Die Beschreibung eines nichtmenschlichen Primatenmodells der Lungenregeneration wird vorgestellt, in dem ganze Lungen dezellularisiert und dann mit adulten Stammzellen und Endothelzellen in einem Bioreaktor besiedelt werden, der die Gefäßzirkulation und die Beatmung von Flüssigmedien erleichtert.

Dezellularisierung und Rezellularisierung der Lunge nichtmenschlicher Primaten mit einem spezialisierten Großorgan-Bioreaktor

Die vorgestellten Techniken zur Leberentnahme, Kanülierung und Perfusion unter Verwendung unseres proprietären Geräts ermöglichen ausgefeilte Perfusionsaufbauten, um Dezellularisierungs- und Rezellularisierungsexperimente in Rattenlebern zu verbessern.

Verfahren für Dezellularisierung von Rattenlebern in einer oszillierenden Druck Perfusionsvorrichtung

Dieses Protokoll beschreibt die Dezellularisierung von Sprague-Dawley-Rattennieren durch antegrade Perfusion von Detergenzien durch das Gefäßsystem, wodurch azelluläre extrazelluläre Nierenmatrizen entstehen, die als Vorlagen für die Wiederbestückung mit menschlichen Nierenepithelzellen dienen. Die Rezellularisierung und Verwendung des Resazurin-Perfusionsassays zur Überwachung des Wachstums wird in speziell entwickelten Perfusionsbioreaktoren durchgeführt.

Epithelialen Zellwiederbevölkerung und Herstellung von Nagetier extrazellulären Matrix Scaffolds für Nierengewebe Entwicklung

Die rezellularisierte extrazelluläre Matrix einer dezellularisierten Rattenleber kann als humanisiertes, dreidimensionales ex vivo-Modell verwendet werden, um die Verteilung und Transgenexpression eines Virus oder viralen Vektors zu untersuchen.

Studie von viralen Vektoren in einem dreidimensionalen Modell der Leber neu besiedelt mit dem menschlichen hepatozellulären Karzinom-Zelllinie HepG2

Hier beschreiben wir ein Protokoll für die stammvenen Decellularization mit Wasch- und Recellularization durch die Durchblutung der peripheren Blut und die endotheliale Medium.

Decellularization und Recellularization Methoden für menschliche Saphenous Adern

Wir etablieren eine neuartige Operationstechnik für ein Modell in Vivo einzelne Leber Lappen Perfusion in der Ratte als Voraussetzung für das weitere Studium in Vivo teilweise Leber engineering in der Zukunft.

Eine neuartige Operationstechnik als Grundlage für In Vivo teilweise Leber Engineering in der Ratte

Diese Methode ermöglicht Decellularization ein komplexes solide Organ mit einem einfachen Protokoll basierend auf osmotischen Schock und Durchblutung des Ionischen Waschmittel mit minimalen Orgel Matrix Störung. Es verfügt über eine neuartige Decellularization-Technik für die Herzen der Menschen in einem unter Druck stehenden Beutel mit Echtzeit-Überwachung der Strömung Dynamik und zellulären Schutt Abfluss.

Decellularization des ganzen menschlichen Herz in einem unter Druck stehenden Beutel in eine umgekehrte Orientierung

Gewebe-Engineering der gesamten Bauchspeicheldrüse ist eine Herausforderung, weil die exokrinen und endokrine Funktionen. Wir zeigen eine Methode für die Zerlegung einer intakten Schweinen der Bauchspeicheldrüse und der Prozess der erfolgreichen Decellularization von Perfusion von Waschmitteln Triton x-100, Natrium Deoxycholate und Deoxyribonuclease.

Isolation und Decellularization eine ganze Schweine Pankreas

Erfahren Sie die Perfusion-Dezellularisierung von Lebern zur Herstellung funktionaler Lebertransplantate. Diese Methode ermöglicht die Rekultivierung mit Hepatozyten und die Untersuchung hepatischer Funktion in vitro.

Dezellularisierung und Recellularization von Whole Livers

Weitere Videos entdecken