Quantifizierung von bakteriellem Alginat mit dem Uronsäure-Carbazol-Assay

0 Ansichten4:17 Min. • September 26th, 2025

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Nehmen Sie eine Kultur des Bakteriums Pseudomonas aeruginosa in Brühe.

Die Kultur auf Isolationsagar aufsetzen und inkubieren, um das Bakterienwachstum und die Produktion von Alginat, einem Exopolysaccharid, das aus Uronsäuren besteht, zu fördern.

Geben Sie isotonische Kochsalzlösung auf den Bakterienrasen und kratzen Sie, um die Bakterienzellen zusammen mit Alginat zu sammeln.

Übertragen Sie die Suspension in ein Röhrchen, wirbeln Sie sie ein, um den Inhalt zu dispergieren, und legen Sie sie auf Eis, um einen enzymatischen Abbau zu verhindern.

Messen Sie die optische Dichte (OD), um die Bakteriendichte zu bestimmen.

Geben Sie die Bakteriensuspension in die Säure-Borat-Lösung und mischen Sie, um das Alginat zu Uronsäuremonomeren zu hydrolysieren.

Fügen Sie Carbazol, ein chromogenes Reagenz, hinzu und inkubieren Sie. Unter sauren Bedingungen reagiert das Reagenz mit Uronsäuren zu farbigen Komplexen.

Messen Sie die Absorption, um den Uronsäuregehalt zu quantifizieren, der die Alginatkonzentration widerspiegelt.

Bestimmen Sie die Alginatkonzentration anhand einer Standardkurve und dividieren Sie sie dann durch die gemessene Bakterienzelldichte, um die Alginatproduktion pro Biomasseeinheit zu berechnen.

Um mit dem Uronsäure-Carbazol-Assay zu beginnen, identifizieren Sie eine einzelne Kolonie aus einer Reinkultur des gewünschten zu testenden Stammes und wählen Sie die Kolonie mit einem sterilen Zahnstocher aus.

Legen Sie den Zahnstocher in ein Kulturreagenzglas mit fünf Millilitern PIB. Grow in einem Shaker-Inkubator bei 37 Grad Celsius für 24 Stunden. Nach der Inkubation ein Aliquot der kultivierten PIB-Brühe auf eine vorgewärmte PIA-Platte geben.

Mit einem sterilen Zellspreizer die Brühe auf dem Teller verteilen und 24 Stunden lang bei 37 Grad Celsius wachsen. Geben Sie mit einer Pipettierhilfe und einer sterilen 50-Milliliter-Pipette 0,85 % Natriumchlorid auf den Rasen der Erwachsenen und entnehmen Sie die Probe, indem Sie die Platte mit einem Zellstreuer abkratzen. Die Probe wird mit einer frischen 50-Milliliter-Pipette abgesaugt und in ein 50-Milliliter-Sammelröhrchen überführt.

Wirbeln Sie die Probe auf hoher Stufe, um sie zu mischen und auf Eis zu legen. Um den OD 600 der Proben zu messen, wird das Spektralphotometer zunächst mit einem Milliliter 0,85 % Natriumchlorid abgeblendet. Geben Sie dann einen Milliliter der Probe in eine neue Einwegküvette und lesen Sie den OD ab. Wiederholen Sie diesen Schritt zweimal, um ein Dreifaches an Messwerten für jede Probe zu erhalten.

Geben Sie nun drei Milliliter der Schwefelsäureboratlösung in Kulturröhrchen und lassen Sie sie auf Eis ziehen. Geben Sie 350 Mikroliter der gesammelten Probe langsam zu der Säuremischung in den Reagenzgläsern. Nach kurzem Vortexen auf niedriger Stufe 100 Mikroliter 0,1%ige Carbazol- und Ethanollösung in die saure Probenmischung geben.

Verschließen Sie das Rohr und den Wirbel fünf Sekunden lang auf mittlerer Stufe. Dann 30 Minuten lang bei 55 Grad Celsius in ein trockenes Bad stellen. Nach der Inkubation die Röhrchen kurz auf hoher Stufe wirbeln und fünf Minuten abkühlen lassen.

Verwenden Sie das Röhrchen mit 0,85 % Natriumchlorid als Rohling für das Spektralphotometer. Geben Sie dann einen Milliliter der Mischung in eine saubere Küvette und lesen Sie den Außendurchmesser der Proben bei 530 Nanometern auf einem Spektralphotometer ab. Erstellen Sie eine Standardkurve, indem Sie den OD 530 der seriellen Verdünnungen bekannter Konzentrationen von d-Mannuronsäure messen.

Wiederholen Sie dies zweimal und extrahieren Sie eine lineare Gleichung aus diesen Messwerten. Berechnen Sie die Konzentration des Alginats in jeder Probe unter Verwendung der Standardkurve und dividieren Sie die Alginatkonzentration aus der linearen Gleichung durch OD 600, um die Gesamtmenge an Alginat pro OD 600 zu erhalten.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026