Ultrazentrifugationsbasierte Isolierung von Legionella-pneumophila-Außenmembranvesikeln

0 Ansichten3:04 Min. • January 30th, 2026

Beginnen Sie mit einer Kultur von Legionella pneumophila, einem pathogenen gramnegativen Bakterium, das äußere Membranvesikel freisetzt.

Diese OMVs enthalten Lipopolysaccharide und Membranproteine, die zur bakteriellen Virulenz beitragen.

Zentrifugiere die Kultur, um intakte Bakterien zu pelletieren.

Sammeln Sie das Supernatant mit OMVs und zentrifugieren Sie erneut, um Restbakterien zu pelletieren.

Filtern Sie den Überstandsstoff durch eine Membran, um die verbleibenden Bakterien zu entfernen, während OMVs erhalten bleiben.

Führen Sie eine zweite Filtration mit einer frischen Membran durch, um bakterielle Rückstände zu entfernen.

Sammeln Sie das bakterienfreie Filtrat und ultrazentrifugieren Sie es, um die OMVs zu pelletieren.

Entsorge das Supernatant, suspendiere das Pellet wieder in Puffer und ultrazentrifugiere erneut, um lose assoziierte Proteine und Lipopolysaccharide zu entfernen.

Entferne das Supernatant und suspendiere die gereinigten OMVs wieder in Puffer.

Streifen Sie einen Aliquot der OMVs auf Blutagar und BCYE-Agarplatten und inkubieren.

Das Fehlen einer Koloniebildung bestätigt das Fehlen bakterieller Kontamination.

Lagern Sie die OMVs bei niedriger Temperatur für Studien zur Wirts-Pathogen-Interaktion.

Gib die verbleibende Flüssigkeitskultur zu 90 Millilitern frischem YEB-Medium und brütet die Kultur auf einem rotierenden Schüttel, bis sie einen OD600 von 3,0 bis 3,5 erreicht. Zentrifugieren Sie die Flüssigkultur bei 4.000 g für 20 Minuten, um die Bakterien zu pelletieren. Dann wird der Überstandsstoff in frische Zentrifugenröhren übertragen.

Entsorgen Sie die bakteriellen Pellets und zentrifugieren Sie die Proben erneut, bevor Sie den Zentrifugationsschritt erneut wiederholen. Als Nächstes filtersterilisieren Sie das verbleibende Supernatant zweimal.

Dann wird das bakterienfreie Überbeutungsmittel in Ultrazentrifugenröhren übertragen und die Proben 3 Stunden lang bei 100.000 g bei 4 Grad Celsius gedreht. Kippe das Supernatant aus und entsorge es. Dann verwenden Sie sterile PBS, um die OMV-Pellets wieder aufzuhängen und sie zu sammeln.

Wiederholen Sie den Ultrazentrifugationsschritt, um kontaminierende Proteine zu entfernen und LPS freizumachen. Entsorge nun das Supernatant und trockne das Ultrazentrifugenrohr mit einem sterilen Wattestäbchen. Das OMV-Pellet mit 500 Mikrolitern sterilem PBS neu suspendieren.

Anschließend streicht man jeweils 20 Mikroliter auf die Blutagar- und BCYE-Agarplatten, um eine bakterielle Kontamination des vorbereiteten Vesikels auszuschließen. Inkubiere die Blutagarplatte über Nacht und die BCYE-Agarplatte 3 Tage lang.

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Regie Protein Verpackung innerhalb der äußeren Membran von Vesikeln

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026